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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Avances en la reproducción controlada del lenguado Paralichthys orbignyanus en Argentina]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[This study evaluates the effect of temperature on gonadal maturation, egg release and broodstock performance of the flounder Paralichthys orbignyanus (Valenciennes 1839) in captivity. The sex ratio (female:male) was kept at 1:2.2 in broodstock 1 (B1) and 1:2.5 in broodstock 2 (B2). Mean female body weight was 3461 ± 861 g in B1 and 1416 ± 435 g in B2. Final maturation of broodfish was achieved through the use of a photoperiod and water temperature regimen simulating natural seasonal changes over a 10-month period, reaching 19-20°C and 16 h L:08 h D by February and March. The photothermal conditions used in this study successfully induced egg release in P. orbignyanus. The spawning period was extended for more than four months, egg release occurring at a frequency of 1-3 days: B1 spawned for 133 days, yielding 31.9% buoyant eggs, a mean egg diameter of 882.5 ± 76.4 &#956;m, a hatching rate of 76.9 ± 17.0%, a 3-day post-hatching (3dph) survival rate of 38.3 ± 25.7%, and a specific activity index (SAI) of 6.1 ± 6.6; B2 spawned for 90 days, yielding 67.1% buoyant eggs, a mean egg diameter of 866.4 ± 37.9 &#956;m, a hatching rate of 66.4 ± 30%, a 3dph survival rate of 67.8 ± 26.9% and SAI of 10.5 ± 7.5. No significant differences (Kruskal-Wallis nonparametric test, P &gt; 0.05) in total egg production, fertilization rate, fecundity, egg diameter, hatching rate, survival at 3dph and SAI were found between B1 and B2; however, there were significant differences (P < 0.01) in the percentage of buoyant eggs, which was higher for B2. Egg diameter, hatching rate and larval length are good criteria for determining the egg and larval quality of P. orbignyanus.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Avances en la reproducci&oacute;n controlada del lenguado <i>Paralichthys orbignyanus</i> en Argentina</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Improvement in flounder <i>Paralichthys orbignyanus</i> controlled spawning in Argentina</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>M Radonic*, MI M&uuml;ller, AV L&oacute;pez, GA Bambill, M Spinedi, JJ Boccanfuso</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Estaci&oacute;n Experimental de Maricultura, Instituto Nacional de Investigaci&oacute;n y Desarrollo Pesquero (INIDEP), Paseo Victoria Ocampo No. 1, B7602HSA Mar del Plata, Provincia de Buenos Aires, Rep&uacute;blica Argentina. * E&#45;mail:</i> <a href="mailto:mradonic@inidep.edu.ar">mradonic@inidep.edu.ar</a>.</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido en junio de 2006;     <br> Aceptado en abril de 2007</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; el efecto de la temperatura sobre la maduraci&oacute;n gonadal, la liberaci&oacute;n de huevos y el comportamiento reproductivo del lenguado <i>Paralichthys orbignyanus</i> (Valenciennes 1839) en cautiverio. La relaci&oacute;n de sexos fue de 1:2.2 y 1:2.5 (hembra:macho) en los grupos de reproductores B1 y B2, respectivamente. La talla promedio de las hembras en B1 fue de 3461 &plusmn; 861 g y en B2 fue de 1416 &plusmn; 435 g. La maduraci&oacute;n gonadal se logr&oacute; con la aplicaci&oacute;n de un esquema de fotoperiodo y temperatura simulando las condiciones del medio natural en un periodo de 10 meses, alcanzando en febrero y marzo 19&#45;20&deg;C y 16 h L:08 h O. Las condiciones fototermales usadas en este estudio indujeron la liberaci&oacute;n de huevos en <i>P. orbignyanus.</i> La producci&oacute;n de huevos se extendi&oacute; por un periodo mayor a 4 meses con una frecuencia de 1 a 3 d&iacute;as. El grupo B1 desov&oacute; durante 133 d&iacute;as, produciendo 31.9% de huevos viables con di&aacute;metro de 882.5 &plusmn; 76.4 &#956;m, una tasa de eclosi&oacute;n de 76.9 &plusmn; 17.0%, una supervivencia al tercer d&iacute;a posterior a la eclosi&oacute;n (S&#45;3dpe) de 38.3 &plusmn; 25.7%, y un &iacute;ndice de actividad larval (IAE) de 6.1 &plusmn; 6.6. El grupo B2 desov&oacute; durante 90 d&iacute;as con una producci&oacute;n de huevos viables de 67.1%, di&aacute;metro de 866.4 &plusmn; 37.9 &#956;m, tasa de eclosi&oacute;n de 66.4 &plusmn; 30%, una S&#45;3dpe de 67.8 &plusmn; 26.9% y un IAE de 10.5 &plusmn; 7.5. No se hallaron diferencias significativas en la producci&oacute;n total de huevos, tasa de fecundaci&oacute;n, fecundidad, di&aacute;metro del huevo, tasa de eclosi&oacute;n, S&#45;3dpe y IAE (test no param&eacute;trico de Kruskal&#45;Wallis, <i>P</i> &gt; 0.05) entre B1 y B2, sin embargo, el porcentaje de huevos viables fue significativamente diferente (<i>P</i> &lt; 0.01) siendo mayor para B2. Los par&aacute;metros di&aacute;metro del huevo, tasa de eclosi&oacute;n y longitud larval ser&iacute;an criterios apropiados para determinar la calidad de huevos y larvas en <i>P. orbignyanus.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b><i> Paralichthys orbignyanus,</i> desove espont&aacute;neo, esquema fototermal, calidad de huevos, reproducci&oacute;n controlada.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">This study evaluates the effect of temperature on gonadal maturation, egg release and broodstock performance of the flounder <i>Paralichthys orbignyanus</i> (Valenciennes 1839) in captivity. The sex ratio (female:male) was kept at 1:2.2 in broodstock 1 (B1) and 1:2.5 in broodstock 2 (B2). Mean female body weight was 3461 &plusmn; 861 g in B1 and 1416 &plusmn; 435 g in B2. Final maturation of broodfish was achieved through the use of a photoperiod and water temperature regimen simulating natural seasonal changes over a 10&#45;month period, reaching 19&#45;20&deg;C and 16 h L:08 h D by February and March. The photothermal conditions used in this study successfully induced egg release in <i>P. orbignyanus.</i> The spawning period was extended for more than four months, egg release occurring at a frequency of 1&#45;3 days: B1 spawned for 133 days, yielding 31.9% buoyant eggs, a mean egg diameter of 882.5 &plusmn; 76.4 &#956;m, a hatching rate of 76.9 &plusmn; 17.0%, a 3&#45;day post&#45;hatching (3dph) survival rate of 38.3 &plusmn; 25.7%, and a specific activity index (SAI) of 6.1 &plusmn; 6.6; B2 spawned for 90 days, yielding 67.1% buoyant eggs, a mean egg diameter of 866.4 &plusmn; 37.9 &#956;m, a hatching rate of 66.4 &plusmn; 30%, a 3dph survival rate of 67.8 &plusmn; 26.9% and SAI of 10.5 &plusmn; 7.5. No significant differences (Kruskal&#45;Wallis nonparametric test, <i>P</i> &gt; 0.05) in total egg production, fertilization rate, fecundity, egg diameter, hatching rate, survival at 3dph and SAI were found between B1 and B2; however, there were significant differences (P &lt; 0.01) in the percentage of buoyant eggs, which was higher for B2. Egg diameter, hatching rate and larval length are good criteria for determining the egg and larval quality of <i>P. orbignyanus.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b><i> Paralichthys orbignyanus,</i> natural spawning, photothermal conditioning, egg quality, controlled spawning.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Desde 1994 la Estaci&oacute;n Experimental de Maricultura (EEM) del INIDEP viene desarrollando dentro del Proyecto de Cultivo de Peces Marinos, t&eacute;cnicas de producci&oacute;n de especies de lenguados aut&oacute;ctonos tales como <i>Paralichthys patagonicus</i> y <i>Paralichthys orbignyanus</i> con buenos resultados en t&eacute;rminos de aclimataci&oacute;n, reproducci&oacute;n, larvicultura y engorde (Bambill <i>et al.</i> 2000, Bambill <i>et al.</i> 2003, M&uuml;ller <i>et al.</i> 2006a, b). Desde el a&ntilde;o 2000, las investigaciones se han centrado en el manejo y acondicionamiento de reproductores de <i>P. orbignyanus</i> debido a la calidad de su carne, alto precio en los mercados y creciente demanda pesquera. Es considerada una especie estuarina que tolera amplios rangos de salinidad (Wasielesky <i>et al.</i> 1995, Cousseau y Perrotta 1998), lo que facilitar&iacute;a su cultivo a nivel experimental. Radonic <i>et al.</i> (2005a) y Bambill <i>et al.</i> (2006) estudiaron el comportamiento reproductivo de un grupo de ejemplares salvajes de esta especie mantenidos en cautiverio durante tres a&ntilde;os (2001&#45;2003). La relaci&oacute;n de sexos fue de diez hembras:siete machos (1:0.7) bajo condiciones finales de temperatura del agua de 15 &plusmn; 1&deg;C y fotoperiodo de 16 h L:08 h O (horas luz:horas oscuridad). A pesar de que los machos se encontraban fluyentes, no se observ&oacute; ning&uacute;n cambio significativo en las hembras en t&eacute;rminos de maduraci&oacute;n y desove, siendo finalmente en 2003 inyectadas con hormona gonadotropina humana. Los reproductores fueron sometidos a masaje abdominal y los huevos fecundados artificialmente.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Numerosos autores citan la importancia de la temperatura en la maduraci&oacute;n final de los peces. Al respecto, Silva (1994) observ&oacute; una influencia directa de la temperatura sobre la producci&oacute;n de ovocitos o de huevos de mala calidad en <i>P. microps.</i> Bromley <i>et al.</i> (1986) y Devauchelle <i>et al.</i> (1988) confirman esta observaci&oacute;n en rodaballo y solea, respectivamente. Robaldo (2003) registr&oacute; desoves naturales para <i>P. orbignyanus</i> cuando la temperatura disminuy&oacute; de 26&deg;C a 22&deg;C. Esta informaci&oacute;n sugiere que la maduraci&oacute;n gonadal y el desove de <i>P. orbignyanus</i> ocurren en aguas con temperaturas mayores a los 15&deg;C aplicados en la EEM durante el periodo 2001&#45;2003. En dicho periodo la relaci&oacute;n de sexos tampoco favoreci&oacute; el comportamiento de cortejo. Kumagai (1999), Smith <i>et al.</i> (1999), Silva (2001), y Watanabe y Carroll (2001) recomiendan, para la reproducci&oacute;n del g&eacute;nero <i>Paralichthys,</i> una proporci&oacute;n de sexos de 1 a 3 machos por cada hembra.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existe poca informaci&oacute;n sobre la biolog&iacute;a reproductiva de <i>P. orbignyanus</i> en Argentina. En diciembre de 2003, dos hembras silvestres maduras de esta especie (5 y 14.5 kg peso total) fueron capturadas en campa&ntilde;as de investigaci&oacute;n del INIDEP. Estas hembras se encontraron en 39&deg;S, 61&deg;O, a 12 m de profundidad, 33 ppm de salinidad y temperaturas que oscilaron entre 19&deg;C y 20.6&deg;C. Las g&oacute;nadas fueron disectadas y examinadas encontr&aacute;ndose ovocitos en diferentes estadios vitelog&eacute;nicos (Militelli 2004). L&oacute;pez&#45;Cazorla (2005) estudi&oacute; la edad, crecimiento y maduraci&oacute;n gonadal de <i>P. orbignyanus</i> en el estuario de Bah&iacute;a Blanca (38&deg;S, Argentina), indicando que es un desovante parcial cuya estaci&oacute;n reproductiva se extiende de noviembre a enero con temperaturas del agua de 19&deg;C a 23&deg;C. Mellito da Silveira <i>et al.</i> (1995) en un estudio similar observaron que la maduraci&oacute;n final y desoves de esta especie se registran de octubre a abril en el estuario de la Laguna Dos Patos (32&deg;S, Brasil).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con la finalidad de obtener huevos fecundados con desoves espont&aacute;neos de ejemplares reproductores de <i>P. orbignyanus</i> mantenidos en la EEM, se determin&oacute; (1) el efecto de la temperatura final del agua (19&#45;20&deg;C) en la maduraci&oacute;n gonadal y desoves espont&aacute;neos, y (2) el comportamiento de los reproductores cuando se aplica una relaci&oacute;n de sexos de 1 hembra por cada 2&#45;3 machos.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Manejo de reproductores</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La EEM cuenta con una sala equipada con dos tanques para reproductores (5 m di&aacute;metro, 80 cm profundidad del agua) conectados cada uno a un sistema de recirculaci&oacute;n de agua de mar, en el cual el agua se reutiliza en un ciclo continuo de depuraci&oacute;n y desinfecci&oacute;n en base a filtraci&oacute;n mec&aacute;nica, biol&oacute;gica y luces ultravioleta. Asimismo, el sistema de recirculaci&oacute;n cuenta con decantador, espumador e intercambiador de calor (autom&aacute;tico, de titanio), como detallan Bambill <i>et al.</i> (2006).</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los grupos de reproductores se conformaron a partir de ejemplares silvestres obtenidos mediante pesca de arrastre en la zona costera aleda&ntilde;a a la ciudad de Mar del Plata. El grupo 1 (B1) se form&oacute; en 1998 con 6 hembras:13 machos (relaci&oacute;n de sexos 1:2.2), siendo los pesos en promedio de 3461 &plusmn; 861 g para hembras y de 1472 &plusmn; 354 g para machos, y las tallas medias de 63.6 &plusmn; 6.5 cm para hembras y 48.8 &plusmn; 4.7 cm para machos. El grupo de reproductores 2 (B2) se inici&oacute; en 2001 con 11 hembras:28 machos (relaci&oacute;n de sexos 1:2.5) siendo los pesos en promedio de 1416 &plusmn; 435 g y 856 &plusmn; 431 g, y las tallas medias de 50.0 &plusmn; 8.5 cm y 40.0 &plusmn; 7.1 cm para hembras y machos, respectivamente.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La maduraci&oacute;n final y los desoves de los peces se lograron simulando los cambios naturales de fotoperiodo y temperatura del agua por un periodo de 10 meses, alcanzando en febrero y marzo 19&#45;20&deg;C y 16 h L:08 h O (<a href="#f1">fig. 1)</a>. El fotoperiodo de la sala de reproductores se regul&oacute; mediante un temporizador y la temperatura del agua de cada tanque se control&oacute; por medio de una unidad intercambiadora de temperatura.</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>         <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v33n2/a6f1.jpg"></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los reproductores se alimentaron diariamente a saciedad con calamar fresco <i>(Illex argentinus),</i> ancho&iacute;ta <i>(Engraulis anchoita),</i> jurel <i>(Trachurus lathami)</i> y dos especies de pejerreyes <i>(Odonthestes argentinensis</i> y <i>Sorgentinia incisa).</i> Durante los dos meses previos al desove, se aliment&oacute; cuatro veces por semana con los productos frescos anteriormente mencionados, y el resto de la semana con una dieta peletizada h&uacute;meda elaborada en la EEM con agregados de vitaminas y minerales (Vitafac Super Reproductores, Roche Vitaminas Argentina SA). Los par&aacute;metros de temperatura, salinidad y pH se midieron diariamente, registr&aacute;ndose valores de 33&#45;36 ppm de salinidad y de 7.30&#45;8.40 para pH.</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Biopsia gonadal</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La maduraci&oacute;n gonadal de las hembras fue evaluada mediante canulaci&oacute;n. El di&aacute;metro de los ovocitos (<i>n</i> = 50) se midi&oacute; mediante un analizador de im&aacute;genes (Nikon V&#45;12B, Jap&oacute;n) y un calibre electr&oacute;nico (Mitutoyo, Jap&oacute;n).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Recolecci&oacute;n de huevos</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los huevos se recolectaron por rebalse de cada tanque de reproductores en un colector de malla de 300 &#956;m que se revis&oacute; diariamente, obteniendo todos los huevos provenientes de los desoves espont&aacute;neos. Posteriormente &eacute;stos se ubicaron en jarras graduadas para su posterior separaci&oacute;n. Los huevos flotantes son esf&eacute;ricos, trasl&uacute;cidos y generalmente fecundados. Aquellos que se acumulan en el fondo del recipiente se consideran no viables (Bromage 1996, Aristiz&aacute;bal <i>et al.</i> 1997). La recolecci&oacute;n y separaci&oacute;n de los huevos, las mediciones de la tasa de fecundaci&oacute;n (TF) y el di&aacute;metro de los huevos (DH) (los valores se presentan como promedio &plusmn; DE) se mencionan en detalle en Radonic <i>et al.</i> (2005b). El tiempo estimado de desove y el estadio embrionario se determinaron en base a la metodolog&iacute;a descrita por Oka y Bambill (2003).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Tasa de eclosi&oacute;n, &iacute;ndice de actividad larval, supervivencia al tercer d&iacute;a posterior a la eclosi&oacute;n y largo total larval</i></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La calidad de las diferentes camadas de huevos se determin&oacute; mediante la aplicaci&oacute;n de diversos par&aacute;metros. Se utilizaron las siguientes ecuaciones para evaluar la tasa de eclosi&oacute;n (TE) con base en las larvas eclosionadas (LE):</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v33n2/a6s1.jpg"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">y el &iacute;ndice de actividad espec&iacute;fica (IAE):</font></p>         <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v33n2/a6s2.jpg"></font></p>      	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde <i>N</i> es el n&uacute;mero total de larvas, <i>h&iexcl;</i> la mortalidad acumulada al d&iacute;a <i>i</i>, y <i>k</i> el n&uacute;mero de d&iacute;as hasta la muerte de todas las larvas por inanici&oacute;n (Radonic <i>et al.</i> 2005). La supervivencia al tercer d&iacute;a posterior a la eclosi&oacute;n) (S&#45;3dpe, %) se determin&oacute; de acuerdo con Furuita <i>et al.</i> (2000). El largo total (LT) de 20 larvas reci&eacute;n eclosionadas se midi&oacute; desde la punta del hocico hasta el extremo posterior de la aleta caudal. La TE, S&#45;3dpe, IAE y LT se muestran como promedio &plusmn; DE. La fecundidad se calcul&oacute; en base al n&uacute;mero total de huevos recolectados de cada tanque a lo largo de todo el periodo reproductivo, por kilogramo medio de hembra.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>An&aacute;lisis estad&iacute;sticos</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores del total de huevos, huevos flotantes, TF, fecundidad, DH, TE, S&#45;3dpe, IAE y LT fueron analizados estad&iacute;sticamente mediante el test no param&eacute;trico de Kruskal&#45;Wallis. Esta informaci&oacute;n fue comparada con la de Bambill <i>et al.</i> (2006) sobre desoves obtenidos por masaje abdominal durante la temporada reproductiva 2003.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La maduraci&oacute;n gonadal para B1 fue evaluada el 12 y el 25 de febrero de 2004, con temperaturas de agua de 15.9&deg;C y 17.6&deg;C, respectivamente. El 25 de febrero se observaron ovocitos vitelados que midieron 410 &plusmn; 7.7 um, con citoplasmas cargados de gl&oacute;bulos y ves&iacute;culas de vitelo distribuidas uniformemente.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La &eacute;poca reproductiva para B1 se extendi&oacute; del 3 de febrero al 15 de junio (133 d&iacute;as), obteni&eacute;ndose un m&iacute;nimo de 217,530 huevos en total en febrero y un m&aacute;ximo total de 3,608,224 huevos en mayo (<a href="/img/revistas/ciemar/v33n2/a6f2.jpg" target="_blank">fig. 2a</a>, <a href="/img/revistas/ciemar/v33n2/a6t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). En mayo, cinco desoves de un total de 15 resultaron con el 100% de los huevos fecundados naturalmente (15,000 a 452,667 huevos fecundados). A pesar de que la temperatura del agua en abril fue de 19.7&deg;C, se registraron 13 desoves cuando la temperatura se increment&oacute; de 15.7&deg;C a 19.4&deg;C durante febrero y marzo. Se registr&oacute; un DH medio de 882.5 |am y una TE media de 76.9%. La S&#45;3dpe larval fue de 38.3% y el IAE de 6.1.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La temporada reproductiva para B2 dur&oacute; del 25 de febrero al 25 de mayo (90 d&iacute;as), obteni&eacute;ndose un m&iacute;nimo de 26,567 huevos en total en febrero y un m&aacute;ximo total de 1,729,305 huevos en mayo (<a href="/img/revistas/ciemar/v33n2/a6f2.jpg" target="_blank">fig. 2b</a>, <a href="/img/revistas/ciemar/v33n2/a6t2.jpg" target="_blank">tabla 2</a>). De marzo a mayo, una vez alcanzados los 19.7&deg;C, los desoves se caracterizaron por tener tasas de fecundaci&oacute;n mayores a 80%. En la temporada reproductiva se registr&oacute; un DH medio de 866.4 | m y una TE media de 66.4%. La S&#45;3dpe larval fue de 67.8% y el IAE de 10.5. No se hallaron diferencias estad&iacute;sticamente significativas en el n&uacute;mero total de huevos, TF, DH, TE, S&#45;3dpe y IAE (P &gt; 0.05), aunque se hallaron diferencias significativas en el n&uacute;mero de huevos flotantes para ambos grupos de reproductores (<i>P</i> &lt; 0.01), siendo mayor para el grupo B2. Las fecundidades estimadas para B1 y B2 fueron de 313,780 y 222,353 huevos totales/kg peso hembra, respectivamente, y no se encontraron diferencias estad&iacute;sticamente significativas <i>(P</i> &gt; 0.05).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#t3">tabla 3</a> se presentan los resultados de la producci&oacute;n de huevos correspondiente a los periodos de desove de 2004 (trabajo actual) y 2003 (desoves por masaje abdominal, Bambill <i>et al.</i> 2006). Se hallaron diferencias estad&iacute;sticas significativas en el n&uacute;mero total de huevos, fecundidad, DH, TE y LT de larvas (P &lt; 0.0001), mientras que no se encontraron diferencias estad&iacute;sticas <i>(P</i> &gt; 0.05) en el porcentaje de huevos viables, TF, S&#45;3dpe e IAE.</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t3"></a></font></p>         <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v33n2/a6t3.jpg"></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El r&eacute;gimen fotot&eacute;rmico y la temperatura final del agua de 19&#45;20&deg;C, aplicados a reproductores del lenguado <i>Paralichthys orbignyanus</i> fueron efectivos para la obtenci&oacute;n de desoves espont&aacute;neos y viables. Entre febrero y mediados de junio de 2004, la obtenci&oacute;n de huevos fecundados y de larvas vitelinas permiti&oacute; la producci&oacute;n masiva de semillas y posterior engorde de juveniles de esta especie (M&uuml;ller <i>et al.</i> 2006a). Seg&uacute;n Furuita <i>et al.</i> (2000), Smith y Denson (2000), Izquierdo <i>et al.</i> (2001), Schreck <i>et al.</i> (2001), Watanabe y Carroll (2001) y Rueda&#45;Jasso <i>et al.</i> (2005), otros par&aacute;metros tales como tama&ntilde;o de los tanques, buenas condiciones nutricionales y de cultivo, calidad del agua y m&iacute;nimos niveles de estr&eacute;s, aplicados a reproductores, han demostrado influir en el comportamiento reproductivo y producci&oacute;n de huevos en otras especies de lenguado.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Desde 1998 y bajo las condiciones presentadas en este trabajo, no se han registrado ni mortalidad ni enfermedades en los grupos de reproductores (Bambill <i>et al.</i> 2006). Cerqueira <i>et al.</i> (1997) reporta una mortalidad total de reproductores de <i>P. orbignyanus</i> luego de 30 d&iacute;as de cautiverio y mantenidos en tanques de 150 L de capacidad. Robaldo (2003) registr&oacute; una supervivencia de 64% cuando mantuvo ejemplares de <i>P. orbignyanus</i> 6.5 meses en cautiverio, aclimatados en tanques de 3000 L y condiciones de cultivo apropiadas. Las principales causas de mortalidad fueron ayuno e infecci&oacute;n por el par&aacute;sito dinoflagelado <i>Amyloodinium</i> cf. <i>ocelatum.</i> Por su parte, Silva (1994) report&oacute; alta mortalidad durante la aclimataci&oacute;n de ejemplares salvajes de <i>P. microps</i> reci&eacute;n capturados.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio, una vez alcanzada la temperatura final del agua de 19&#45;20&deg;C se registraron huevos fecundados con desoves espont&aacute;neos liberados con una frecuencia de 1 a 3 d&iacute;as. Sin embargo, se recolectaron peque&ntilde;os desoves una vez que la temperatura super&oacute; los 15&deg;C, sugiriendo un efecto de la temperatura en la liberaci&oacute;n de huevos. Este comportamiento tambi&eacute;n fue observado por Watanabe <i>et al.</i> (2001) para el lenguado <i>P. lethostigma</i> sometido a un prolongado r&eacute;gimen fotot&eacute;rmico. Bromage <i>et al.</i> (2001) citan a la temperatura como uno de los factores que inducen la maduraci&oacute;n de carpas, bagres y otros peces tropicales y subtropicales. En otras especies de lenguado se ha demostrado que las variaciones de fotoper&iacute;odo y temperatura inducen desoves espont&aacute;neos en especies tales como <i>P. microps</i> (Silva 1994), P <i>olivaceus</i> (Tsujigado <i>et al.</i> 1989, Ikenoue y Kafuku 1992, Watanabe 1996), <i>Scophthalmus maximus</i> (Devauchelle <i>et al.</i> 1988, For&eacute;s <i>et al.</i> 1990, Peleteiro <i>et al.</i> 1993), <i>Solea senegalensis</i> (Anguis y Ca&ntilde;avate 2005), <i>P. lethostigma</i> (Watanabe <i>et al.</i> 2001) e <i>Hippoglossus hippoglossus</i> (Holmefjord <i>et al.</i> 1993, Olsen <i>et al.</i> 1999).</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Asimismo, se observ&oacute; una importante variabilidad en las tasas de fecundaci&oacute;n de los grupos de reproductores estudiados, condici&oacute;n frecuente en especies de peces planos. Houghton <i>et al.</i> (1985) y Bromley <i>et al.</i> (1986) presentan tasas de huevos no viables de 49% para solea y 53&#45;66% para rodaballo, respectivamente. Entre las especies del g&eacute;nero <i>Paralichthys,</i> el lenguado chileno produjo 51&#45;66% de huevos no viables (Silva 1994), mientras que en el lenguado japon&eacute;s esta tasa vari&oacute; entre 47% y 93% (Tsujigado <i>et al.</i> 1989, Mihelakakis <i>et al.</i> 1995). Por su parte, Watanabe <i>et al.</i> (1998, 2001) registraron una producci&oacute;n de huevos no viables de 49.6% y 62% para <i>P. dentatus</i> y <i>P. lethostigma,</i> respectivamente.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de fecundidad registrados en este estudio, son similares a los citados para otros peces planos, considerando que el tama&ntilde;o, edad y genotipo de los reproductores, as&iacute; como las tasas de alimentaci&oacute;n diarias y estacionales pueden influir en el n&uacute;mero de huevos producidos (Bromage 1996). Cerqueira <i>et al.</i> (1997) y Bambill <i>et al.</i> (2006) mencionan fecundidades por masaje abdominal para hembras de <i>P. orbignyanus</i> de 224,000 y 280,000 huevos/kg peso y de 185,951 y 399,118 huevos/kg peso, respectivamente.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La relaci&oacute;n de sexos aplicada durante la temporada 2004 favoreci&oacute; la producci&oacute;n de un importante n&uacute;mero de huevos fecundados. En especies del g&eacute;nero <i>Paralichthys</i> la proporci&oacute;n de sexos var&iacute;a entre 1:1 en <i>P. olivaceus</i> (Watanabe 1996), a 1 hembra:2 machos para <i>P. dentatus</i> y <i>P. lethostigma,</i> aunque la tasa &oacute;ptima no ha sido a&uacute;n determinada (Watanabe y Carroll 2001). Por su parte, en los lenguados chilenos <i>P. microps</i> y <i>P. adspersus</i> se lograron desoves espont&aacute;neos empleando 2&#45;3 machos por hembra (Silva 2001).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Comparando la producci&oacute;n de huevos y larvas obtenida por desoves naturales (2004) y por masaje abdominal (2003), se concluir&iacute;a que los par&aacute;metros DH, TE y LT de larvas ser&iacute;an criterios apropiados para determinar la calidad de huevos y larvas en <i>P. orbignyanus.</i> Estos indicadores de calidad junto con S&#45;3dpe e IAE son mencionados como determinantes de la calidad de los huevos de peces marinos por Kjersvik <i>et al.</i> (1990, 2003), Bromage (1996), Furuita <i>et al.</i> (2000) y Thorsen <i>et al. </i>(2003).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, los resultados obtenidos de este estudio se&ntilde;alan la importancia de la temperatura (19&#45;20&deg;C) y la relaci&oacute;n de sexos de 1 hembra:2&#45;3 machos para lograr huevos fecundados con desoves espont&aacute;neos en <i>P. orbignyanus.</i> Este protocolo de trabajo podr&iacute;a aplicarse en un futuro como pr&aacute;ctica estandarizada para el cultivo a nivel industrial de la especie. Sin embargo, se requieren de futuras investigaciones de largo plazo en conjunto con programas espec&iacute;ficos de temperatura, para una mejor comprensi&oacute;n de la influencia de este par&aacute;metro en la maduraci&oacute;n gonadal y desove de esta especie. Adem&aacute;s, es preciso estudiar la fecundidad y calidad de huevos en parejas desovantes aisladas.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este estudio fue financiado por INIDEP y la Agencia de Cooperaci&oacute;n de Ultramar de Jap&oacute;n (OFCF). Agradecemos a A Est&eacute;vez (IRTA, Espa&ntilde;a), E Aristiz&aacute;bal (INIDEP), a los evaluadores an&oacute;nimos por la revisi&oacute;n de este manuscrito, y a D Hern&aacute;ndez (INIDEP) qui&eacute;n realiz&oacute; los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos. Contribuci&oacute;n INIDEP No. 1341.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anguis V, Ca&ntilde;avate JP. 2005. Spawning of captive Senegal sole <i>(Solea senegalensis)</i> under a natural fluctuating temperature regime. Aquaculture 243: 133&#45;145.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902632&pid=S0185-3880200700020000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aristiz&aacute;bal EO, M&uuml;ller MI, Bambill GA, L&oacute;pez AV, Sabatini M, Costagliola M, Incorvaia S, Vega A, Carrizo JC, Manca E. 1997. Producci&oacute;n de alimento vivo y cr&iacute;a de besugo. Periodo 1995&#151; 1996. Informe T&eacute;cnico Interno INIDEP 83, 92 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902634&pid=S0185-3880200700020000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bambill GA, P&eacute;rez FAR, M&uuml;ller MI, L&oacute;pez AV, Aristiz&aacute;bal EO, Radonic M, Vega AG. 2000. Larvicultura del lenguado argentino <i>Paralychthys patagonicus.</i> IV Jornadas de Ciencias del Mar, 11&#45;15 septiembre 2000, Puerto Madryn, Argentina: 36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902636&pid=S0185-3880200700020000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bambill GA, L&oacute;pez AV, M&uuml;ller MI, Radonic M, Boccanfuso JJ. 2003. Larvicultura del lenguado argentino <i>Paralychthys orbignyanus</i> (Abstract). V Jornadas Nacionales de Ciencias del Mar, Mar del Plata, Argentina: 70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902638&pid=S0185-3880200700020000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bambill G, Oka M, Radonic M, L&oacute;pez AV, M&uuml;ller MI, Boccanfuso JJ, Bianca FA. 2006. Broodstock management and induced spawning of wild black Argentine flounder <i>Paralichthys orbignyanus</i> in captivity. Rev. Biol. Mar. Oceanogr. 41(1): 45&#45;55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902640&pid=S0185-3880200700020000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bromage NR. 1996. Broodstock management and seed quality: General considerations. In: Bromage NR, Roberts RJ (eds.), Broodstock Management and Egg and Larval Quality. Blackwell Science, London, pp. 1&#45;24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902642&pid=S0185-3880200700020000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bromage N, Porter M, Randall C. 2001. The environmental regulation of maturation in farm finfish with special reference to the role of photoperiod and melatonin. Aquaculture 197: 63&#45;98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902644&pid=S0185-3880200700020000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bromley PJ, Sykes PA, Howell BR. 1986. Egg production of turbot <i>(Scophthalmus maximus</i> L.) spawning in tank conditions. Aquaculture 53: 287&#45;293.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902646&pid=S0185-3880200700020000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cerqueira VR, Mioso R, Macchiavello JAG, Br&uuml;gger AM. 1997. Induced spawning of the Brazilian flounder <i>(Paralichthys orbignyanus</i> Valenciennes, 1839). Bol. Inst. Pesca 24: 247&#45;254.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902648&pid=S0185-3880200700020000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cousseau MB, Perrotta RG. 1998. Peces marinos de Argentina: Biolog&iacute;a, distribuci&oacute;n, pesca. INIDEP, Mar del Plata, Argentina, pp. 142&#45;143.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902650&pid=S0185-3880200700020000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Devauchelle N, Alexandre JC, Le Corre N, Letty Y. 1988. Spawning of turbot <i>(Scophthalmus maximus</i> L.) in captivity. Aquaculture 69: 159&#45;184.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902652&pid=S0185-3880200700020000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">For&eacute;s R, Iglesias J, Olmedo M, S&aacute;nchez FJ, Peleteiro JB. 1990. Induction of spawning in turbot <i>(Scophthalmus maximus</i> L.) by a sudden change in the photoperiod. Aquacult. Eng. 9: 357&#45;366.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902654&pid=S0185-3880200700020000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Furuita H, Tanaka H, Yamamoto T, Shiraishi M, Takeuchi M. 2000. Effects of n&#45;3 HUFA levels in broodstock diet on the reproductive performance and egg and larval quality of the Japanese flounder, <i>Paralichthys olivaceus.</i> Aquaculture 187: 387&#45;398.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902656&pid=S0185-3880200700020000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Holmefjord I, Gulbrandsen J, Lein I, Refstie T, L&eacute;ger P, Harboe T, Huse I, Sorgeloos P, Bolla S, Olsen Y, Reitan K, Vadstein O, ie G. 1993. An intensive approach to Atlantic halibut fry production. J. World Aquacult. Soc. 24: 275&#45;283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902658&pid=S0185-3880200700020000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Houghton RG, Last JM, Bromley DPJ. 1985. Fecundity and egg size of sole <i>Solea solea</i> (L.) spawning in captivity. J. Cons. Int. Explor. Mer 42: 162&#45;165.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902660&pid=S0185-3880200700020000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ikenoue H, Kafuku T. 1992. Flatfish <i>(Paralichthys olivaceus).</i> In: Modern Methods of Aquaculture in Japan (2nd rev. ed.). Part III. Marine Aquaculture, pp. 144&#45;149.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902662&pid=S0185-3880200700020000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Izquierdo MS, Fern&aacute;ndez&#45;Palacios H, Tacon AGJ. 2001. Effect of broodstock nutrition on reproductive performance of fish. Aquaculture 197: 25&#45;42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902664&pid=S0185-3880200700020000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kj&oslash;rsvik E, Mangor&#45;Jensen A, Holmefjordi I. 1990. Egg quality in fishes. Adv. Mar. Biol. 26: 71&#45;113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902666&pid=S0185-3880200700020000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kj&oslash;rsvik E, Hoehne&#45;Reitan K, Reitan KI. 2003. Egg and larval quality criteria as predictive measures for juvenile production in turbot <i>(Scophthalmus maximus</i> L.). Aquaculture 227: 9&#45;20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902668&pid=S0185-3880200700020000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kumagai A. 1999. Broodstock management and egg collection of Japanese flounder. Hakatajima Station, Annual Report of JASFA (in Japanese), pp. 37&#45;10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902670&pid=S0185-3880200700020000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">L&oacute;pez&#45;Cazorla A. 2005. On the age and growth of flounder <i>Paralichthys orbignyanus</i> (Jenyns 1842) in Bah&iacute;a Blanca Estuary, Argentina. Hidrobiologia 537: 81&#45;87.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902672&pid=S0185-3880200700020000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mellito da Silveira MP, Cousin JCB, Haimovici M. 1995. Estructura ov&aacute;rica e testicular do linguado <i>Paralichthys orbignyanus </i>(Valenciennes 1839). Atl&aacute;ntica (Rio Grande) 17: 135&#45;152.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902674&pid=S0185-3880200700020000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mihelakakis A, Yoshimatsu T, Kitajima C. 1995. Change in egg size of Japanese flounder during one spawning season. J. Fac. Agric. Kyushu Univ. 40: 53&#45;59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902676&pid=S0185-3880200700020000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Militelli MI. 2004. Actividad reproductiva de las principales especies de peces &oacute;seos en la Zona Com&uacute;n de Pesca Argentino&#45;Uruguaya (ZCPAU) y en El Rinc&oacute;n. Diciembre 2003. Informe T&eacute;cnico Interno INIDEP No. 59, 21 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902678&pid=S0185-3880200700020000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">M&uuml;ller MI, Radonic M, L&oacute;pez AV, Bambill GA, Oka M, Odai M, Boccanfuso JJ, Bianca FA, Cadaveira M. 2006a. Engorde a altas densidades del lenguado <i>Paralichthys orbignyanus</i> (Valenciennes, 1839) en Argentina. Primera Conferencia Latino Americana sobre Cultivo de Peces Nativos y Tercera Conferencia Mexicana sobre Cultivo de Peces Nativos. 18&#45;20 octubre 2006, Morelia, M&eacute;xico: 39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902680&pid=S0185-3880200700020000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">M&uuml;ller MI, Radonic M, L&oacute;pez AV, Bambill GA. 2006b. Crecimiento y rinde en carne del lenguado <i>Paralichthys orbignyanus</i> (Valenciennes 1839) cultivado en Argentina. Congreso Iberoamericano Virtual de Acuicultura. 6 diciembre 2006 a 15 enero 2007, Espa&ntilde;a, pp. 267&#45;273.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902682&pid=S0185-3880200700020000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Oka M, Bambill GA. 2003. Egg development of lenguado <i>Paralichthys orbignyanus.</i> In: Oka M (ed.), Technological Development of Seed Production of Besugo and Lenguado in the Argentine Republic. Internal Report (Jan. 2000&#45;Aug. 2003). Overseas Fishery Cooperation Foundation, Instituto Nacional de Investigaci&oacute;n y Desarrollo Pesquero, pp. 37&#45;41.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902684&pid=S0185-3880200700020000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Olsen Y, Evjemo JO, Olsen A. 1999. Status of the cultivation technology for production of Atlantic halibut <i>(Hippoglossus hippoglossus)</i> juveniles in Norway/Europe. Aquaculture 176: 313.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902686&pid=S0185-3880200700020000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Peleteiro JB, Rodr&iacute;guez&#45;Ojea G, Iglesias J. 1993. Individual spawning control in different turbot <i>(Scophthalmus maximus</i> L.) broodstocks under artificial and natural photoperiod. ICES Symposium on Mass Rearing of Juvenile Fish, 11 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902688&pid=S0185-3880200700020000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Radonic M, Bambill GA, Oka M, L&oacute;pez AV, M&uuml;ller MI, Boccanfuso JJ. 2005a. Broodstock management and induced spawning of wild black Argentine flounder <i>Paralichthys orbignyanus</i> in captivity. Aquaculture America 2005. 17&#45;20 January, New Orleans, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902690&pid=S0185-3880200700020000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Radonic M, L&oacute;pez AV, Oka M, Aristiz&aacute;bal EO. 2005b. Effect of the incubation temperature on the embryonic development and hatching time of eggs of the red porgy <i>Pagrus pagrus</i> (Linne, 1758) (Pisces: Sparidae). Rev. Biol. Mar. Oceanogr. 40: 91&#45;99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902692&pid=S0185-3880200700020000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Robaldo RB. 2003. Estudo comparative da reproduc&auml;o do linguado <i>Paralichthys orbignyanus</i> (Valenciennes, 1839) no ambiente em cativeiro. Doctoral thesis, Fundac&auml;o Universidade Federal do Rio Grande, Rio Grande, Brazil, 190 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902694&pid=S0185-3880200700020000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rueda&#45;Jasso RA, Conceic&agrave;o LEC, De Coen W, Rees JF, Sorgeloos S. 2005. Diet and weaning age affect the growth and condition of Dover sole <i>(Solea solea</i> L.). Cienc. Mar. 31: 477&#45;489.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902696&pid=S0185-3880200700020000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schreck CB, Contreras&#45;Sanchez W, Fitzpatrick MS. 2001. Effects of stress on fish reproduction, gamete quality, and progeny. Aquaculture 197: 3&#45;24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902698&pid=S0185-3880200700020000600034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Silva A. 1994. Spawning of the Chilean flounder <i>Paralichthys microps</i> Gunther, 1881 in captivity. J. World Aquacult. Soc. 25: 342&#45;344.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902700&pid=S0185-3880200700020000600035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Silva A. 2001. Advances in the culture research of small&#45;eye flounder, <i>Paralichthys microps,</i> and Chilean flounder, <i>P. adspersus,</i> in Chile. J. Appl. Aquacult. 11: 147&#45;164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902702&pid=S0185-3880200700020000600036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Smith TIJ, Denson MR. 2000. Controlled spawning of southern flounder <i>Paralichthys lethostigma:</i> Issues and progress. UJNR Tech. Rep. 28: 97&#45;108.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902704&pid=S0185-3880200700020000600037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Smith TIJ, McVey DC, Jenkins WE, Denson MR, Heyward LD, Sullivan CV, Berlinsky DL. 1999. Broodstock management and spawning of southern flounder <i>Paralichthys lethostigma.</i> Aquaculture 176: 87&#45;99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902706&pid=S0185-3880200700020000600038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Thorsen A, Trippel EA, Lambert Y. 2003. Experimental methods to monitor the production and quality of eggs of captive marine fish. J. Northwest Atl. Fish. Soc. 33: 55&#45;70.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902708&pid=S0185-3880200700020000600039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tsujigado A, Yamakawa T, Matsuda H, Kamiya N. 1989. Advanced spawning of the flounder <i>Paralichthys olivaceus</i> in an indoor tank with combined manipulation of water temperature and photoperiod. Int. J. Aquat. Fish. Technol. 1: 351&#45;356.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902710&pid=S0185-3880200700020000600040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wasielesky W, Miranda K, Bianchini A. 1995. Tolerancia do linguado <i>Paralichthys orbignyanus</i> &agrave; salinidade. Braz. Biol. Technol. 38: 385&#45;395.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902712&pid=S0185-3880200700020000600041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Watanabe T. 1996. Intensive marine farming in Japan. In: Sheperd CJ, Bromage NR (eds.), Intensive Fish Farming. Blackwell Science, London, pp. 239&#45;267.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902714&pid=S0185-3880200700020000600042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Watanabe WO, Carroll P. 2001. Progress in controlled breeding of summer flounder, <i>Paralichthys dentatus,</i> and southern flounder, <i>P. lethostigma.</i> J. Appl. Aquacult. 11: 89&#45;111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902716&pid=S0185-3880200700020000600043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Watanabe WO, Ellis EP, Ellis SC, Feeley MW. 1998. Progress in controlled maturation and spawning of summer flounder <i>Paralichthys dentatus</i> broodstock. J. World Aquacult. Soc. 29: 393&#45;404.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902718&pid=S0185-3880200700020000600044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Watanabe OW, Carroll PM, Daniels HV. 2001. Sustained, natural spawning of southern flounder <i>Paralichthys lethostigma</i> under an extended photothermal regime. J. World Aquacult. Soc. 32: 153&#45;166.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1902720&pid=S0185-3880200700020000600045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body>
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