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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Crecimiento y perfil bioquímico de Chaetoceros muelleri cultivada en sistemas discontinuos y semicontinuos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[We characterized the growth and biochemical composition of a Chaetoceros muelleri strain from the Araya Peninsula, Sucre, Venezuela. The microalga was cultured under laboratory conditions (25 ± 1°C, 156 &#956;E m-2 s-1 and 12:12 photoperiod) during 13 days, using two culture methods: batch and semicontinuous culture with a daily renewal rate of 30%. Cell density was determined and cells from each treatment were measured. The protein, lipid, carbohydrate and fatty acid contents were quantified to compare the quality of the Araya strain in both culture systems. Cell density showed little variability in the semicontinuous system during the steady-state phase (1.3 &#967; 10(6) cells mL-1 on average), but increased significantly in the batch system, reaching 3.5 &#967; 10(6) cells mL-1. Proteins, lipids and carbohydrates did not show significant variations in the semi-continuous system, with mean values of 21.4 ± 0.8, 18.4 ± 0.8 and 4.1 ± 0.1 pg cells-1, respectively. In the batch system, however, these macromolecules showed greater variability: proteins 3.5-21.1 pg cells-1, lipids 8.5-11.6 pg cells-1 and carbohydrates 4.2-18.1 pg cells-1. Higher levels of saturated (47.5%) and monounsaturated (34.8%) fatty acids were found in the semicontinuous system, whereas the content of polyunsaturated fatty acids (31.4%) was higher in the batch system, in particular of eicosapentaenoic acid (EPA, 20:5 n-3) (16 ± 2% of total fatty acids). Cell size did not vary significantly in the two culture systems and the mean width and length were 5 and 7.5 &#956;m, respectively. The Araya strain of C. muelleri can be used as a food source for cultured larvae, the semicontinuous system providing a more stable nutritional quality.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Notas de investigaci&oacute;n</font></p>     <p>&nbsp;</p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Crecimiento y perfil bioqu&iacute;mico de <i>Chaetoceros muelleri</i> cultivada en sistemas discontinuos y semicontinuos</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font face="verdana" size="3">Growth and biochemical profile of <i>Chaetoceros muelleri</i> cultured in batch and semicontinuous systems</font></b></p>     <p align="center">&nbsp;</p>      <p align="center"><b><font face="verdana" size="2">N Lemus<sup>1</sup>, T Urbano<sup>1</sup>, B Arredondo&#45;Vega<sup>2</sup>, M Guevara<sup>1</sup>*, A V&aacute;squez<sup>1</sup>, L Carre&oacute;n&#45;Palau<sup>2</sup>, N Vallejo<sup>1</sup></font></b></p>  	    <p align="center">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><em>1</em></sup><em>&nbsp;Laboratorio de Acuicultura, ext. Plancton, Departamento de Biolog&iacute;a Pesquera, Instituto Oceanogr&aacute;fico de Venezuela, Universidad de Oriente, Av. Universidad, Cerro Colorado. Apartado 6101, Sucre, Venezuela.</em> * E&#45;mail: <a href="mailto:miguevara2003@yahoo.es">miguevara2003@yahoo.es</a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><em>2</em></sup><em>&nbsp;Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a de Microalgas, Centro de Investigaciones Biol&oacute;gicas del Noroeste, Apartado postal 128, La Paz,</em></font> <em><font face="verdana" size="2">Baja California Sur, CP 23000, M&eacute;xico.</font></em><font face="verdana" size="2"> </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido en septiembre de 2005    <br>   Aceptado en agosto de 2006.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se caracteriz&oacute; bioqu&iacute;mica y poblacionalmente una cepa de <i>Chaetoceros muelleri</i> procedente de la Pen&iacute;nsula de Araya (Venezuela), la cual se cultiv&oacute; en condiciones de laboratorio (25 &plusmn; 1&deg;C, 156 &#956;&#917; m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup> y fotoperiodo 12:12) durante 13 d&iacute;as, bajo sistemas de cultivo discontinuo y semicontinuo con recambios diarios de 30% del volumen. Se evalu&oacute; la densidad celular y se determin&oacute; el tama&ntilde;o celular. Se cuantific&oacute; el contenido de prote&iacute;nas, l&iacute;pidos, carbohidratos y &aacute;cidos grasos. La densidad celular tuvo poca variabilidad en el sistema semicontinuo en la fase de estabilizaci&oacute;n, obteni&eacute;ndose en promedio 1.3 &#967; 10<sup>6</sup> c&eacute;l mL<sup>&#45;1</sup>, mientras que en el discontinuo, este par&aacute;metro increment&oacute; significativamente hasta alcanzar un m&aacute;ximo de 3.5 &#967; 10<sup>6</sup> c&eacute;l mL<sup>&#45;1</sup>. Prote&iacute;nas, l&iacute;pidos y carbohidratos no variaron significativamente en los cultivos semicontinuos, alcanzando promedios de 21.4 &plusmn; 0.8, 18.4 &plusmn; 0.8 y 4.1 &plusmn; 0.1 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup>, respectivamente. En el discontinuo, estas macromol&eacute;culas presentaron mayor variabilidad, con valores de prote&iacute;nas entre 3.5 y 21.1 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup> , l&iacute;pidos entre 8.5 y 11.6 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup> y carbohidratos entre 4.2 y 18.1 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup>. Los &aacute;cidos grasos saturados y monoinsaturados mostraron valores superiores en los cultivos semicontinuos, con concentraciones de 47.5% y 34.8%, respectivamente. El contenido de &aacute;cidos grasos poliinsaturados fue mayor en el sistema discontinuo (31.4%), destacando la presencia del &aacute;cido eicosapentaenoico, 20:5 n&#45;3 EPA, con una proporci&oacute;n de 16 &plusmn; 2%. El tama&ntilde;o celular medio de la microalga no vari&oacute; en los dos sistemas de cultivo, observ&aacute;ndose un ancho y largo medios de 5 y 7.5 &#956;m, respectivamente. La cepa de <i>C. muelleri</i> puede suministrarse como alimento de larvas de organismos cultivables, siendo el sistema semicontinuo garant&iacute;a de una calidad nutricional m&aacute;s estable.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b><i> Chaetoceros muelleri,</i> semicontinuo, Araya. </font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">We characterized the growth and biochemical composition of a <i>Chaetoceros muelleri</i> strain from the Araya Peninsula, Sucre, Venezuela. The microalga was cultured under laboratory conditions (25 &plusmn; 1&deg;C, 156 &#956;E m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup> and 12:12 photoperiod) during 13 days, using two culture methods: batch and semicontinuous culture with a daily renewal rate of 30%. Cell density was determined and cells from each treatment were measured. The protein, lipid, carbohydrate and fatty acid contents were quantified to compare the quality of the Araya strain in both culture systems. Cell density showed little variability in the semicontinuous system during the steady&#45;state phase (1.3 &#967; 10<sup>6</sup> cells mL<sup>&#45;1</sup> on average), but increased significantly in the batch system, reaching 3.5 &#967; 10<sup>6</sup> cells mL<sup>&#45;1</sup>. Proteins, lipids and carbohydrates did not show significant variations in the semi&#45;continuous system, with mean values of 21.4 &plusmn; 0.8, 18.4 &plusmn; 0.8 and 4.1 &plusmn; 0.1 pg cells<sup>&#45;1</sup>, respectively. In the batch system, however, these macromolecules showed greater variability: proteins 3.5&#45;21.1 pg cells<sup>&#45;1</sup>, lipids 8.5&#45;11.6 pg cells<sup>&#45;1</sup> and carbohydrates 4.2&#45;18.1 pg cells<sup>&#45;1</sup>. Higher levels of saturated (47.5%) and monounsaturated (34.8%) fatty acids were found in the semicontinuous system, whereas the content of polyunsaturated fatty acids (31.4%) was higher in the batch system, in particular of eicosapentaenoic acid (EPA, 20:5 n&#45;3) (16 &plusmn; 2% of total fatty acids). Cell size did not vary significantly in the two culture systems and the mean width and length were 5 and 7.5 &#956;m, respectively. The Araya strain of <i>C. muelleri</i> can be used as a food source for cultured larvae, the semicontinuous system providing a more stable nutritional quality.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b><i> Chaetoceros muelleri,</i> semicontinuous, Araya, fatty acids, biochemical composition.</font></p>  	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las microalgas son esenciales como alimento para las primeras fases de desarrollo de la mayor&iacute;a de las especies de moluscos, crust&aacute;ceos y peces en cultivo, debido a su tama&ntilde;o, f&aacute;cil cultivo y probada calidad nutricional (Brown y Jeffrey 1992). Sin embargo, aunque varias especies de microalgas han sido utilizadas como alimento en maricultura, no todas producen un buen crecimiento y supervivencia en todas las especies cultivadas. Algunos de los factores que intervienen en el mayor o menor &eacute;xito en su uso son la talla, la digestibilidad y la composici&oacute;n bioqu&iacute;mica. Los componentes m&aacute;s importantes para la nutrici&oacute;n animal son las prote&iacute;nas, l&iacute;pidos, carbohidratos y minerales, as&iacute; como nutrientes espec&iacute;ficos tales como amino&aacute;cidos y &aacute;cidos grasos esenciales, esteroles, az&uacute;cares y vitaminas (Brown <i>et al.</i> 1989).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n del valor alimenticio de varias especies de microalgas, medido en t&eacute;rminos de crecimiento larvario de bivalvos y crust&aacute;ceos, ha demostrado que especies del g&eacute;nero <i>Chaetoceros</i> son uno de los mejores alimentos (Napolitano <i>et al.</i> 1990, Treece y Yates 1993, Mallo y Fenucci 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la b&uacute;squeda de mejores esquemas de manejo que permitan predecir el valor nutricional de las microalgas bajo condiciones controladas, se han ensayado diferentes estrategias de cultivo entre las que destacan la manipulaci&oacute;n de las variables ambientales y los sistemas de cultivo. En el sistema de cultivo discontinuo o <i>batch,</i> no se a&ntilde;ade ni se elimina medio de cultivo despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n, en el continuo se a&ntilde;ade un suministro de nutrientes en forma continua al cultivo, manteniendo constante el volumen de cultivo, y en el semicontinuo se agrega medio de cultivo a una tasa de diluci&oacute;n constante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente estudio se plante&oacute; la caracterizaci&oacute;n de una cepa de <i>Chaetoceros muelleri</i> aislada del nororiente venezolano, de comprobada utilidad alimenticia en el cultivo de camarones peneidos (N&uacute;&ntilde;ez <i>et al.</i> 2002), como una forma de aumentar el n&uacute;mero de estirpes aut&oacute;ctonas de microalgas con potencial para la maricultura, comparando los sistemas de cultivo discontinuo y semicontinuo.</font></p>  	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Microorganismo seleccionado y condiciones de cultivo</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Chaetoceros muelleri</i> cepa Araya (LAEP&#45;35) se obtuvo del cepario del Laboratorio de Acuicultura, Extensi&oacute;n Plancton del Instituto Oceanogr&aacute;fico de Venezuela de la Universidad de Oriente, donde se mantiene a 37%o en el medio Algal (F&aacute;bregas <i>et al.</i> 1984). &Eacute;sta fue aislada de los canales de suministro de agua para las lagunas artificiales de las salinas de Araya, estado Sucre, Venezuela.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los cultivos se iniciaron con una densidad de 2.3 &#967; 10<sup>5</sup> c&eacute;l mL<sup>&#45;1</sup> en botellas de vidrio de 3 L de capacidad, conteniendo 1.5 L de agua de mar (37%) filtrada con filtros GFC de 47 mm de di&aacute;metro y 1.2 &#956;m de tama&ntilde;o de poro, esterilizada en autoclave a 121&deg;C, 15 psi, 15 min y enriquecida con medio Algal a  una concentraci&oacute;n de 8 mM NaNO3 (F&aacute;bregas <i>et al.</i> 1984). Se mantuvieron a 25 &plusmn; 1&deg;C, intensidad luminosa de 156 &#956;E m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup> con fotoperiodo 12:12 y aireaci&oacute;n constante (200 mL min<sup>&#45;1</sup>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emplearon seis botellas, tres para el sistema discontinuo y tres para el sistema semicontinuo, con recambios diarios del 30% del volumen, iniciados a partir de la fase de crecimiento logar&iacute;tmica y hasta el d&iacute;a 13 del ensayo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Densidad poblacional y tama&ntilde;o celular</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La densidad celular se determin&oacute; tomando diariamente durante el periodo de ensayo una al&iacute;cuota de cada una de las botellas conteniendo la suspensi&oacute;n de algas, fij&aacute;ndola con una soluci&oacute;n de Lugol al 1%. Los recuentos se realizaron con una c&aacute;mara Neubauer. Al final del ensayo se determin&oacute; la longitud y el ancho de 100 c&eacute;lulas de cada cultivo, mediante mediciones en microscopio &oacute;ptico con micr&oacute;metro ocular incorporado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Composici&oacute;n bioqu&iacute;mica</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando se detect&oacute; la fase de equilibrio o de estabilizaci&oacute;n del cultivo semicontinuo y hasta el final del ensayo, se tomaron 5 mL, por triplicado, de ambos sistemas de cultivo y se centrifugaron durante 15 min a 5000 rpm. El precipitado resultante se mantuvo a &#45;20&deg;C para su posterior an&aacute;lisis bioqu&iacute;mico, que incluy&oacute; determinaciones de prote&iacute;nas, l&iacute;pidos, carbohidratos y &aacute;cidos grasos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las prote&iacute;nas se determinaron seg&uacute;n el m&eacute;todo de Lowry (Lowry <i>et al.</i> 1951) modificado por Herbert <i>et al.</i> (1971). La extracci&oacute;n de los l&iacute;pidos se realiz&oacute; por el procedimiento de Bligh y Dyer (1959) y su determinaci&oacute;n espectrofotom&eacute;trica mediante el m&eacute;todo de Marsh y Weinstein (1966). La cuantificaci&oacute;n de los carbohidratos totales se realiz&oacute; por el m&eacute;todo fenol sulf&uacute;rico (Dubois <i>et al.</i> 1956). Los est&aacute;ndares utilizados fueron alb&uacute;mina bovina, tripalmitina y D&#45;glucosa, para prote&iacute;nas, l&iacute;pidos y carbohidratos totales respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La derivatizaci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos se realiz&oacute; seg&uacute;n Sato y Murata (1988) y el an&aacute;lisis de los mismos se realiz&oacute; en un cromat&oacute;grafo de gases&#45;espectr&oacute;metro de masas (GC&#45;MS) Hewlett Packard Series G1800B, adicionado con una columna Omegawax TM 250 de s&iacute;lica fundida (Supelco) de 30 m &#967; 0.25 mm de di&aacute;metro externo &#967; 0.25 &#956;m de di&aacute;metro interno. Los &aacute;cidos grasos presentes en las muestras se identificaron mediante la comparaci&oacute;n de los espectros de masas con los espectros contenidos en la biblioteca de espectros de masas NIST98, NBS75K y una biblioteca creada con 28 est&aacute;ndares de &aacute;cidos grasos metil esterificados (Sigma Chemical Company). Adicionalmente, se confirm&oacute; la identificaci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos mediante la comparaci&oacute;n de los tiempos de retenci&oacute;n de las muestras con los registrados para mezcla comercial de metil&#45;&eacute;steres de &aacute;cidos grasos poliinsaturados (Sigma).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>An&aacute;lisis estad&iacute;sticos</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la evaluaci&oacute;n del bioensayo se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza de dos factores, considerando los sistemas de cultivos  y los diferentes d&iacute;as de muestreo como factores, siguiendo las recomendaciones de Sokal y Rohlf (1995).</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Densidad poblacional y tama&ntilde;o celular</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las mayores densidades celulares de la microalga <i>C. muelleri</i> cepa Araya (LAEP&#45;35) se registraron en el sistema discontinuo (<a href="#f1">fig. 1</a>), alcanzando cifras de 3.5 &plusmn; 0.1 &#967; 10<sup>6</sup> c&eacute;l mL<sup>&#45;1</sup> al final del ensayo (d&iacute;a 13). La densidad celular se increment&oacute; paulatinamente con diferencias significativas (<em>P</em> &lt; 0.05) hasta el d&iacute;a 11 y 12, para luego entrar en fase estacionaria. Los cultivos en el sistema semicontinuo alcanzaron su densidad celular m&aacute;xima al sexto d&iacute;a (2.4 &plusmn; 0.1 &#967; 10<sup>6</sup> c&eacute;l mL<sup>&#45;1</sup>), a partir del cual la densidad disminuy&oacute; como producto de las diluciones, para luego incrementarse ligeramente y mantenerse con poca fluctuaci&oacute;n (entre 1.8 y 2.2 &#967; 10<sup>6</sup> c&eacute;l mL<sup>&#45;1</sup>) y sin diferencias significativas (<em>P</em> &gt; 0.05) durante los d&iacute;as 10&#45;13, lo cual indica la fase de equilibrio o estabilizaci&oacute;n.</font></p> 	    <p align="center"><a name="f1"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/ciemar/v32n3/a11f1.jpg"></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tama&ntilde;o celular de la microalga no mostr&oacute; diferencias significativas <i>(P</i> &gt; 0.05) entre los dos sistemas de cultivo, observ&aacute;ndose un ancho y un largo medios de 5.3 &plusmn; 1.2 &#956;m y 7.5 &plusmn; 0.3 &#956;m respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Composici&oacute;n bioqu&iacute;mica</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Prote&iacute;nas</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las prote&iacute;nas celulares disminuyeron significativamente (<em>P</em> &lt; 0.05) en los cultivos discontinuos desde 21.1 &plusmn; 2 pg c&eacute;l<sup>1</sup> (d&iacute;a 10) hasta 3.5 &plusmn; 0.2 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup> (d&iacute;a 13). En el sistema semicontinuo, las concentraciones de estas macromol&eacute;culas se mantuvieron entre 21 &plusmn; 2 y 23 &plusmn; 2 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup>, sin diferencias significativas (<em>P</em> &gt; 0.05) durante los d&iacute;as de muestreo (<a href="/img/revistas/ciemar/v32n3/a11t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">L&iacute;pidos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los niveles de l&iacute;pidos se incrementaron significativamente (<em>P</em> &lt; 0.05) en los cultivos discontinuos desde 8.5 &plusmn; 0.9 pg c&eacute;l<sup>1</sup> (d&iacute;a 10) hasta 12 &plusmn; 3 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup> (d&iacute;a 13). En los cultivos semicon&#45;tinuos, las concentraciones de l&iacute;pidos fueron mayores que en los discontinuos y mostraron diferencias no significativas <i>(P</i> &gt; 0.05) en todos los muestreos, alcanzando concentraciones medias de 18 &plusmn; 4 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup> (<a href="/img/revistas/ciemar/v32n3/a11t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carbohidratos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los niveles de carbohidratos en los cultivos discontinuos variaron significativamente (<em>P</em> &lt; 0.05) en los diferentes d&iacute;as de muestreo, mostrando una tendencia a la disminuci&oacute;n a medida que el cultivo se desarrollaba, con concentraciones desde 18 &plusmn; 1 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup> (d&iacute;a 10) hasta 4.2 &plusmn; 0.2 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup> (d&iacute;a 13). Por el contrario, en los cultivos semicontinuos estas macromol&eacute;culas mostraron bajas concentraciones (4.2 &plusmn; 0.2 pg c&eacute;l<sup>&#45;1</sup>) y sin  diferencias significativas <i>(P</i> &gt; 0.05) durante la fase de estabilizaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/ciemar/v32n3/a11t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Aacute;cidos grasos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de los &aacute;cidos grasos corresponden al d&iacute;a 12 del cultivo (cuarto d&iacute;a de la fase de equilibrio del sistema semicontinuo). El contenido total de los &aacute;cidos grasos saturados y monoinsaturados fue superior en los cultivos semicontinuos, obteni&eacute;ndose proporciones de 47.5% y 34.8%, respectivamente. Los &aacute;cidos grasos saturados que presentaron mayores concentraciones, en ambos sistemas de cultivo, fueron el C14:0 (mir&iacute;stico) y el C16:0 (palm&iacute;tico), mientras que de los monoinsaturados, el C16:1 n&#45;7 fue el predominante (<a href="#t2">tabla 2</a>).</font></p> 	    <p align="center"><a name="t2" id="t2"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/ciemar/v32n3/a11t2.jpg"></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido total de los &aacute;cidos grasos poliinsaturados fue mayor en el sistema discontinuo (31.4%). Los &aacute;cidos grasos poliinsaturados que mostraron una mayor proporci&oacute;n en ambos sistemas de cultivos, fueron el C20:5 n&#45;3, 16:3 n&#45;4 y C20:4 n&#45;6; en el sistema semicontinuo se observaron menores proporciones de los dos primeros &aacute;cidos grasos, mientras que el C20:4 n&#45;6 presenta una mayor proporci&oacute;n en este sistema (<a href="#t2">tabla 2</a>).</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nuestros resultados muestran que <i>C. muelleri</i> cepa Araya (LAEP&#45;35) puede mantener una producci&oacute;n diaria de biomasa, con una composici&oacute;n bioqu&iacute;mica estable, durante la fase de equilibrio del r&eacute;gimen semicontinuo. Esta estabilidad de las macromol&eacute;culas y de la densidad celular puede deberse a la renovaci&oacute;n de nutrientes, lo cual promueve en los cultivos una fisiolog&iacute;a similar a la registrada durante la fase exponencial (Otero 1994, F&aacute;bregas <i>et al.</i> 1995).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La disminuci&oacute;n de las prote&iacute;nas y los carbohidratos, conjuntamente con el incremento de los l&iacute;pidos en los cultivos  discontinuos pareciera indicar el agotamiento de los nutrientes, principalmente nitrato, que tiene lugar a medida que el cultivo envejece (Brown <i>et al.</i> 1993). Diversos trabajos han reportado que la deficiencia de nitr&oacute;geno, necesario para la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas y &aacute;cidos nucleicos, conduce a una desviaci&oacute;n del carbono fotoasimilado hacia la bios&iacute;ntesis de productos de reserva, preferentemente l&iacute;pidos (Myers 1980). Por el contrario, estas macromol&eacute;culas mostraron, en la fase de equilibrio de los cultivos semicontinuos, concentraciones similares a lo largo del periodo de muestreo, manteniendo el orden de concentraci&oacute;n: prote&iacute;nas &gt; l&iacute;pidos &gt; carbohidratos. Lo anterior puede deberse al suministro diario de medio de cultivo fresco cargado de nutrientes, tal como lo indica Otero (1994) para cultivos semicontinuos de <i>Dunaliella tertiolecta, Chlorella autotrophica, Tetraselmis suecica, Isochrysis galbana</i> y <i>Phaeodactylum tricornutum.</i> Por otra parte, el crecimiento activo de <i>Chaetoceros muelleri</i> cepa Araya con una composici&oacute;n bioqu&iacute;mica estable en el r&eacute;gimen semicontinuo puede deberse a la tasa de diluci&oacute;n empleada (30%), tal como ha sido  se&ntilde;alado por F&aacute;bregas <i>et al.</i> (1995) para <i>D. tertiolecta</i> y Berm&uacute;dez <i>et al.</i> (2004) para <i>Chroomonas</i> sp.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso del r&eacute;gimen semicontinuo se convierte as&iacute; en una herramienta &uacute;til para la producci&oacute;n de <i>Chaetoceros muelleri</i> cepa Araya con una calidad nutricional adecuada para el desarrollo normal de organismos sometidos a cultivo, lo cual se constat&oacute; en los resultados obtenidos por N&uacute;&ntilde;ez <i>et al.</i> (2002) al alimentar con esta microalga larvas del camar&oacute;n <i>Litopenaeus vannamei</i> y obtener una alta tasa de supervivencia (70%). Se sugiere la utilizaci&oacute;n de esta cepa de <i>C. muelleri</i> como alimento de larvas de bivalvos marinos, debido a su f&aacute;cil ingesti&oacute;n por el tama&ntilde;o que poseen (5.25 &#967; 7.55 &#956;m), el cual est&aacute; dentro de los rangos sugeridos por Doroudi <i>et al.</i> (2003); no obstante, falta precisar su digesti&oacute;n y/o asimilaci&oacute;n. De igual forma, el contenido de &aacute;cidos grasos poliinsaturados que muestra esta cepa asegurar&iacute;a una mayor supervivencia larvaria, tal y como lo se&ntilde;alan Izquierdo (1996) y Koven <i>et al.</i> (2001), quienes indicaron que una dieta para larvas de peces que contenga los &aacute;cidos grasos C20:4 n&#45;6 y C20:5 n&#45;3 promover&iacute;a el desarrollo del sistema inmune, disminuyendo as&iacute; las patolog&iacute;as relacionadas con el estr&eacute;s propio de las actividades de cultivo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se recomienda evaluar la potencialidad de esta microalga en el cultivo de larvas de bivalvos y otros organismos cultivables diferentes a los peneidos.</font></p>  	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presente investigaci&oacute;n fue financiada por el Consejo de Investigaci&oacute;n de la Universidad de Oriente a trav&eacute;s del proyecto CI&#45;5&#45;1802&#45;1154/03.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Berm&uacute;dez J, Rosales N, Loreto C, Brice&ntilde;o B, Morales E. 2004. Exopolysaccharide, pigment and protein production by the marine microalga <i>Chroomonas</i> sp. in semicontinuous cultures. World J. Microbiol. Biotechnol. 20(2): 179&#45;183.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896480&pid=S0185-3880200600060001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bligh E, Dyer J. 1959. A rapid method of total lipid extraction and purification. Can. J. Biochem. Physiol. 37: 911&#45;917.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896482&pid=S0185-3880200600060001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brown M, Jeffrey S. 1992. Biochemical composition of microlagae from the green algal classes Chlorophyceae and Prasinophyceae. 1. Amino acids, sugars and pigments. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 161: 91&#45;113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896484&pid=S0185-3880200600060001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brown M, Jeffrey S, Garland C. 1989. Nutritional aspect of microalgae used in mariculture; a literature review. CSIRO Marine Laboratories Rep. 205, 44 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896486&pid=S0185-3880200600060001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brown M, Garland C, Jeffrey S, Jameson I, Leroi J. 1993. The gross and amino acid compositions of batch and semicontinuous cultures of <i>Isocrhrysis</i> sp. (clone T. ISO), <i>Pavlova lutheri</i> and <i>Nannochloropsis oculata.</i> J. Appl. Phycol. 5: 285&#45;296.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896488&pid=S0185-3880200600060001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Doroudi M, Southgate P, Lucas J. 2003. Variation in clearance and ingestion rates by larvae of the black&#45;lip pearl oyster <i>(Pinctada margaritifera,</i> L.) feeding on various microalgae. Aquacult. Nutr. 9: 11&#45;16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896490&pid=S0185-3880200600060001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dubois M, Gillies K, Hamilton J, Rebers P, Smith F. 1956. Colorimetric method for the determination of sugars and related substances. Anal. Chem. 28: 350&#45;356.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896492&pid=S0185-3880200600060001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">F&aacute;bregas J, Abalde J, Herrero C, Cabezas B, Veiga M. 1984. Growth of marine microalgae <i>Tetraselmis suecica</i> in batch cultures with different salinities and nutrient concentrations. Aquaculture 42: 207&#45;245.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896494&pid=S0185-3880200600060001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">F&aacute;bregas J, Pati&ntilde;o M, Arredondo&#45;Vega B, Tobar J, Otero A. 1995. Renewal rate and nutrient concentration as tools to modify productivity and biochemical composition of cyclostat cultures of the marine microalga <i>Dunaliella tertiolecta.</i> Appl. Microbiol.  Biotechnol. 44: 287&#45;292.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896496&pid=S0185-3880200600060001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Herbert D, Phipps P, Stronce P. 1971. Chemical analyses of microbial cells. In: Norris J, Ribbons D (eds.), Methods in Microbiology. Academic Press (5B), pp. 209&#45;344.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896498&pid=S0185-3880200600060001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Izquierdo M. 1996. Essential fatty acid requirements of cultured marine fish larvae. Aquacult. Nutr. 2: 183&#45;191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896500&pid=S0185-3880200600060001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Koven W, Barr Y, Lutzky S, Ben&#45;Atia I, Weiss R, Harel M, Behrens P, Tandler A. 2001. The effect of dietary arachidonic acid (20:4 n&#45;6) on growth, survival and resistance to handling stress in gilthead seabream <i>(Sparus aurata)</i> larvae. Aquaculture 193: 107&#45;122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896502&pid=S0185-3880200600060001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lowry O, Rosebrough H, Farr A, Randall R. 1951. Protein measurement with the folin&#45;phenol reagent. J. Biol. Biochem. 193: 265&#45;275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896504&pid=S0185-3880200600060001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mallo J, Fenucci J. 2004. Alimentaci&oacute;n de protozoeas del langostino <i>Pleoticus muelleri</i> Bate utilizando diferentes microencapsulados y especies de microalgas. Rev. Biol. Mar. Oceanogr. 39(1): 13&#45;19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896506&pid=S0185-3880200600060001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Marsh J, Weinstein D. 1966. Simple charring method for the determination of lipids. J. Lipid Res. 7: 574&#45;576.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896508&pid=S0185-3880200600060001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Myers J. 1980. On the algae: Thoughts about physiology and measurements of efficiency. In: Falkowski P (ed.), Primary Productivity in the Sea. Plenum Press, New York, pp. 1&#45;16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896510&pid=S0185-3880200600060001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Napolitano G, Ackman R, Ratnayake W. 1990. Fatty acid composition of three cultured algal species <i>(Isochrysis galbana, Chaetoceros gracilis</i> and <i>Chaetoceros calcitrans)</i> used as food for bivalve larvae. J. World Aquacult. Soc. 21(2): 122&#45;130.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896512&pid=S0185-3880200600060001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">N&uacute;&ntilde;ez M, Lodeiros C, De Donato M, Graziani C. 2002. Evaluation of microalgae diets for <i>Litopenaeus vannamei</i> larvae using a simple protocol. Aquacult. Int. 10(3): 177&#45;187.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896514&pid=S0185-3880200600060001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otero A. 1994. Modificaci&oacute;n de la composici&oacute;n bioqu&iacute;mica de microalgas marinas en r&eacute;gimen de ciclostato. Ph.D. Thesis, University of Santiago of Compostela, Spain, 545 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896516&pid=S0185-3880200600060001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sato N, Murata N. 1988. Membrane lipids. Methods Enzimol. 167: 251&#45;259.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896518&pid=S0185-3880200600060001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sokal R, Rohlf F. 1995. Biometry. 3rd ed. WH Freeman, New York, 887 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896520&pid=S0185-3880200600060001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Treece G, Yates M. 1993. Manual de laboratorio para el cultivo de larvas de camar&oacute;n peneido. Texas A &amp; M University, Texas, 83 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1896522&pid=S0185-3880200600060001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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