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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Inducción a la tetraploidía en almeja catarina, Argopecten ventricosus (Sowerby II, 1842)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Induction to tetraploidy by inhibition of the first polar body and first cellular division in fertilized eggs from diploids produced an occasional small percentage of tetraploid D-larvae, but was not successful in multiple experiments with individual or combined spawns in producing juvenile or adult tetraploids. However, when inhibition of the first polar body in eggs from triploids was done, a larger percentage of tetraploids was evidenced by flow cytometry of D-larvae, and viable larvae were obtained in one out of six induced batches. Six individuals survived to pre-adult size, five being tetraploids and one a mosaic (diploid-tetraploid). Based on these results, further efforts in producing tetraploid catarina scallop should be centered on the method involving inhibition of the first polar body in eggs from triploids, fertilized with haploid sperm.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Inducci&oacute;n a la tetraploid&iacute;a en almeja catarina, <i>Argopecten ventricosus</i> (Sowerby II, 1842)</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Induction to tetraploidy in catarina scallop, <i>Argopecten ventricosus</i> (Sowerby II, 1842)</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Rosal&iacute;o Maldonado, Ana M. Ibarra* y Jos&eacute; L. Ram&iacute;rez</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Laboratorio de Gen&eacute;tica Acu&iacute;cola, Centro de Investigaciones Biol&oacute;gicas del Noroeste, S.C., Apartado postal 128, La Paz, CP 23000, Baja California Sur, M&eacute;xico.</i> *E&#45;mail: <a href="mailto:aibarra@cibnor.mx">aibarra@cibnor.mx</a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido en agosto de 2002;    <br> 	aceptado en febrero de 2003.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inducci&oacute;n a la tetraploid&iacute;a por inhibici&oacute;n de la extrusi&oacute;n del primer cuerpo polar en huevos producidos por diploides y fertilizados por esperma haploide produjo un porcentaje reducido de larva&#45;D tetraploide, pero no result&oacute; en la presencia de semilla o adultos tetraploides. La inhibici&oacute;n de la primera divisi&oacute;n celular del cigoto result&oacute; principalmente en larva anormal. Cuando la inducci&oacute;n a la tetraploid&iacute;a se realiz&oacute; inhibiendo el primer cuerpo polar en huevos de triploides fertilizados con esperma haploide, se obtuvo un alto porcentaje de larva&#45;D tetraploide en una de las inducciones. De las progenies tetraploides, seis sobrevivieron hasta talla adulta. El an&aacute;lisis de hemolinfa, por medio de citometr&iacute;a de flujo, de los supervivientes indic&oacute; que cinco eran tetraploides y uno era mosaico (2n y 4n). Con base en estos resultados, los esfuerzos futuros para la producci&oacute;n de tetraploides de almeja catarina deber&aacute;n de centrarse en la utilizaci&oacute;n de ovocitos de triploides (fecundados con esperma haploide), inhibiendo el primer cuerpo polar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> almeja catarina, <i>Argopecten ventricosus,</i> tetraploide, poliploide.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Induction to tetraploidy by inhibition of the first polar body and first cellular division in fertilized eggs from diploids produced an occasional small percentage of tetraploid D&#45;larvae, but was not successful in multiple experiments with individual or combined spawns in producing juvenile or adult tetraploids. However, when inhibition of the first polar body in eggs from triploids was done, a larger percentage of tetraploids was evidenced by flow cytometry of D&#45;larvae, and viable larvae were obtained in one out of six induced batches. Six individuals survived to pre&#45;adult size, five being tetraploids and one a mosaic (diploid&#45;tetraploid). Based on these results, further efforts in producing tetraploid catarina scallop should be centered on the method involving inhibition of the first polar body in eggs from triploids, fertilized with haploid sperm.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> scallop, <i>Argopecten ventricosus,</i> tetraploid, polyploid.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inducci&oacute;n a la poliploid&iacute;a en moluscos es una realidad en nuestros d&iacute;as, especialmente cuando se considera a la triploid&iacute;a. Los moluscos triploides se caracterizan por presentar un mejor crecimiento o calidad de carne que los diploides. Esto se debe principalmente a que la condici&oacute;n del triploide resulta en una esterilidad parcial o total, de tal forma que la energ&iacute;a disponible para la formaci&oacute;n de gametos y la maduraci&oacute;n de los mismos puede ser utilizada en el crecimiento (Allen y Downing, 1986). Uno de los problemas de esta tecnolog&iacute;a es que, para la producci&oacute;n de triploides, se tienen que utilizar m&eacute;todos de inducci&oacute;n ya sean qu&iacute;micos o f&iacute;sicos, los cuales resultan, ambos, en una mortandad alta de los huevos sometidos a estos tratamientos. Una alternativa para obtener organismos triploides para la producci&oacute;n de moluscos en cultivos es por medio de la utilizaci&oacute;n de apareamientos "naturales" entre organismos tetraploides y diploides (Guo <i>et al.,</i> 1996). Debido a que los organismos tetraploides no existen en forma natural entre los moluscos, tienen que ser producidos primero de manera artificial.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La producci&oacute;n de tetraploides ha demostrado ser dif&iacute;cil, aunque algunos se han producido en forma accidental al inhibir la extrusi&oacute;n del primer cuerpo polar en huevos de diploides (Stephens y Downing, 1988; Diter y Dufy, 1990; Gendreau y Grizel, 1990; Guo <i>et al.,</i> 1992; Scarpa <i>et al.,</i> 1993; Allen <i>et al.,</i> 1994; Cai y Beaumont, 1996; Yang <i>et al.,</i> 2000; Zhang <i>et al.,</i> 2000). La ploid&iacute;a esperada cuando se inhibe el primer cuerpo polar en huevos de diploides fertilizados con esperma haploide es un cigoto triploide. Por ello, cuando se observan tetraploides se suponen consecuencia de un evento aleatorio raro, como la segregaci&oacute;n de los cromosomas en un arreglo tri y unipolar (en contraste con uno bipolar), en donde un juego completo de cromosomas es liberado en el segundo cuerpo polar y tres juegos completos son retenidos. Ocasionalmente, tambi&eacute;n cuando se inhibe el primer cuerpo polar, se han observado progenies pentaploides (Cooper y Guo, 1989; Diter y Dufy, 1990; Scarpa <i>et al.,</i> 1993; Yang <i>et al.,</i> 2000), lo cual es una consecuencia de la inhibici&oacute;n no inducida del segundo cuerpo polar, adicionalmente al primer cuerpo polar inducido.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mientras que en plantas la obtenci&oacute;n de tetraploides provocados por la inhibici&oacute;n de la primera divisi&oacute;n celular con colchicina se ha logrado con &eacute;xito (Norstog y Long, 1976; Klug y Cummings, 1996; Gardner <i>et al.,</i> 1998; Tamarin, 1999), los intentos de producir tetraploides de moluscos por inhibici&oacute;n de la primera divisi&oacute;n celular no han mostrado resultados satisfactorios (Diter y Dufy, 1990; Guo, 1991, citado por Guo y Allen, 1994; Guo <i>et al.,</i> 1994; Yang <i>et al.,</i> 1997). Solamente una metodolog&iacute;a (Guo y Allen, 1994) ha demostrado su factibilidad en la producci&oacute;n de tetraploides viables de osti&oacute;n japon&eacute;s. &Eacute;sta consiste en la utilizaci&oacute;n de huevos producidos por triploides, los cuales son fecundados con esperma haploide, inhibidos en la extrusi&oacute;n del primer cuerpo polar, pero permitiendo la liberaci&oacute;n del segundo cuerpo polar. En huevos de triploides la segregaci&oacute;n de cromosomas en la meiosis I es impar, resultando en aneuploid&iacute;a. Al inhibir la meiosis I, la probabilidad de una segregaci&oacute;n balanceada en la meiosis II se incrementa ya que la divisi&oacute;n que ocurre en la meiosis II es de tipo equitativo, en donde todos los cromosomas duplicados se alinean en la metafase y, al separarse los centr&oacute;meros, una de cada una de las crom&aacute;ticas hermanas segrega al segundo cuerpo polar, reteniendo el ovocito tres juegos completos de cromosomas. Un ovocito que contribuye con tres juegos cromos&oacute;micos cuando es fecundado con un esperma haploide resultar&aacute; en un cigoto tetraploide, como ha sido demostrado que ocurre en el osti&oacute;n japon&eacute;s (Guo y Allen, 1994) y en la ostra perlera asi&aacute;tica (He <i>et al.</i>, 2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la almeja catarina la triploid&iacute;a ha sido inducida en forma exitosa, encontr&aacute;ndose una ventaja significativa en el crecimiento del triploide cuando se compara con el diploide, especialmente cuando se considera la parte comercial de esta especie, esto es, el m&uacute;sculo aductor o callo que, en el triploide fue del doble del observado en el diploide (Ruiz&#45;Verdugo <i>et al.</i>, 2000). Asimismo, se ha observado que la esterilidad en la g&oacute;nada femenina es parcial (Ruiz&#45;Verdugo <i>et al.,</i> 2000), de tal manera que al menos un 20% de los ovocitos en un diploide pueden ser obtenidos en desoves inducidos en triploides (Ruiz&#45;Verdugo <i>et al.,</i> 2001). Estos ovocitos pueden ser utilizados para la evaluaci&oacute;n de la producci&oacute;n de almeja catarina tetraploide, a trav&eacute;s de la utilizaci&oacute;n del m&eacute;todo desarrollado por Guo y Allen (1994) para el osti&oacute;n japon&eacute;s.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio reportamos los resultados sobre la inducci&oacute;n a la tetraploid&iacute;a en almeja catarina <i>Argopecten ventricosus</i> Sowerby II, 1842, utilizando tres m&eacute;todos diferentes: inhibici&oacute;n del primer cuerpo polar e inhibici&oacute;n de la primera divisi&oacute;n celular, en huevos de diploides, as&iacute; como inhibici&oacute;n del primer cuerpo polar en huevos de triploides fecundados con esperma haploide.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Reproductores y recolecci&oacute;n de gametos</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las almejas catarina diploides y triploides, con una longitud aproximada de 7 cm, fueron acondicionadas para el desove siguiendo la metodolog&iacute;a de Ram&iacute;rez <i>et al.</i> (1999). &Eacute;sta consiste en proveer alimentaci&oacute;n continua con un sistema de riego por goteo adaptado para este fin. Las almejas diploides alcanzaron la madurez despu&eacute;s de 15 d&iacute;as, mientras que las triploides tardaron de 20 a 21 d&iacute;as. La madurez fue evaluada por medio de la escala visual de Sastry (1963), en la que se reconocen cuatro estadios: inmaduro, madurez parcial (tanto la secci&oacute;n femenina como masculina son identificadas f&aacute;cilmente por su coloraci&oacute;n, pero la g&oacute;nada a&uacute;n presenta espacios), maduro (la g&oacute;nada se observa "llena", con una coloraci&oacute;n naranja&#45;rojo brillante), y desovado. Los procedimientos de inducci&oacute;n al desove y la recolecci&oacute;n de gametos fueron los mismos para todos los experimentos. El desove se indujo inyectando intramuscularmente 0.2 mL de una soluci&oacute;n de serotonina al 0.5 mM. En esta especie hermafrodita funcional, la serotonina induce la liberaci&oacute;n del esperma primero, seguido por el huevo. Una vez que las almejas iniciaron la liberaci&oacute;n del huevo, &eacute;stas fueron enjuagadas con agua de mar y colocadas en vasos (1 L) individuales para la recolecci&oacute;n del huevo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En todas las inducciones a la poliploid&iacute;a se utiliz&oacute; citocalacina&#45;B (CB) (Sigma C&#45;6762), enjuagando despu&eacute;s del tratamiento con DMSO (dimetil&#45;sulf&oacute;xido a una concentraci&oacute;n igual a la de la CB utilizada en esa inducci&oacute;n) durante 15 min para retirar la CB excedente (Allen <i>et al.,</i> 1989). La concentraci&oacute;n de CB utilizada por litro vari&oacute; entre inducciones y se indica en la descripci&oacute;n de cada experimento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Eventos mei&oacute;ticos evaluados para la inducci&oacute;n a la tetraploid&iacute;a</i></font></p>  	    <blockquote> 		    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&bull; <i>Inhibici&oacute;n del primer cuerpo polar (meiosis I) en huevos de diploides:</i> En este m&eacute;todo, el tratamiento con CB se inici&oacute; de 5 a 6 min despu&eacute;s de la fertilizaci&oacute;n, y se concluy&oacute; cuando los primeros huevos en un grupo control mostraron la extrusi&oacute;n del segundo cuerpo polar (2CP). Esto correspondi&oacute; a cuando el 70% de los huevos en el control mostraron la extrusi&oacute;n del primer cuerpo polar (1CP).</font></p>  		    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&bull; <i>Inhibici&oacute;n de la primera divisi&oacute;n celular (mitosis) en cigotos diploides:</i> El tratamiento se inici&oacute; cuando el 50% de los huevos en el grupo control mostraron la extrusi&oacute;n del 2CP, y se concluy&oacute; cuando 50% de los cigotos en el grupo control estaban en la primera divisi&oacute;n celular (1DC).</font></p>  		    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&bull; <i>Inhibici&oacute;n del primer cuerpo polar en huevos de triploides fertilizados con esperma haploide:</i> El tratamiento se inici&oacute; 5 min despu&eacute;s de la fertilizaci&oacute;n, y se concluy&oacute; cuando del 50% al 70% de los huevos en el grupo control mostraron la extrusi&oacute;n del 1CP.</font></p> 	</blockquote>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Experimentos</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todos los experimentos descritos a continuaci&oacute;n se hicieron utilizando agua de mar filtrada mediante filtros de polipropileno hasta 1 &#181;m, y esterilizada con luz UV (180 W). La salinidad fue de 36 ppm y la temperatura de 21.5&deg;C a 22&deg;C, mantenida utilizando un sistema de enfriamiento comercial que trabaja por recirculaci&oacute;n a una cisterna de 7000 L. El volumen de agua utilizado para los diferentes tratamientos con CB fue siempre de 250 mL, independientemente del n&uacute;mero de huevos obtenido en cada experimento. Este volumen optimiza la cantidad de CB utilizada, y ha sido utilizado previamente con inducciones por individuo en esta especie con resultados satisfactorios (Ruiz&#45;Verdugo <i>et al.,</i> 2001).</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el experimento I, los huevos de siete almejas se mantuvieron en forma individual, conformando siete r&eacute;plicas. Cada r&eacute;plica fue dividida en dos: un grupo control no tratado (aproximadamente 1/3 del total de huevos por hembra), y un grupo para la inhibici&oacute;n de la 1DC (el resto de los huevos obtenidos de cada hembra, aproximadamente 2/3) utilizando 0.5 mg CB L<sup>&#45;1</sup>. El n&uacute;mero de huevos desovado por hembra vari&oacute; de 448,000 a 1,683,000. En aquellas r&eacute;plicas en las que se observ&oacute; larva normal en el grupo control, se estim&oacute; el porcentaje de cada clase de ploid&iacute;a (diploide, triploide, tetraploide, pentaploide) resultante por citometr&iacute;a de flujo, siguiendo los procedimientos descritos por Allen y Bushek (1992). En resumen, las larvas fueron concentradas en una suspensi&oacute;n de agua de mar de 1 mL, centrifugadas y te&ntilde;idas con 0.5 mL de una soluci&oacute;n de DAPI/detergente/DMSO. La concentraci&oacute;n de DAPI en esa soluci&oacute;n fue de 10 &#181;g mL<sup>&#45;1</sup>. Posteriormente, las larvas fueron desagregadas macerando conchas y tejido. La suspensi&oacute;n de c&eacute;lulas obtenida fue filtrada en una malla con abertura diagonal de 30 &#181;m, agregando 1.5 mL de la soluci&oacute;n de DAPI/detergente/DMSO 5 min antes de la lectura por citometr&iacute;a de flujo (Ploidy Analyzer II, Partec, Alemania). Adicionalmente, para estimar el porcentaje de c&eacute;lulas en cada clase de ploid&iacute;a se establecieron l&iacute;mites m&iacute;nimos y m&aacute;ximos para cada clase. El l&iacute;mite m&iacute;nimo se estim&oacute; como la media de esa ploid&iacute;a menos tres desviaciones est&aacute;ndar y, el l&iacute;mite m&aacute;ximo, como la media m&aacute;s tres desviaciones est&aacute;ndar.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el experimento II se evaluaron cuatro repeticiones. Cada repetici&oacute;n se conform&oacute; por el total de los huevos producidos por seis almejas. El prop&oacute;sito de este experimento fue definir si se pod&iacute;a producir almeja catarina tetraploide en forma alterna a la inhibici&oacute;n de la 1DC, esto es, utilizando ahora la inhibici&oacute;n del 1CP y comparando con los resultados obtenidos al inhibir la 1DC. Bas&aacute;ndonos en los datos de n&uacute;mero de huevos desovados por hembra en el primer experimento, que indic&oacute; que &eacute;ste puede ser tan bajo como 450,000, en el experimento II se utiliz&oacute; un <i>pool</i> de huevos, ya que se requerir&iacute;a dividir los huevos en tres grupos. Cada repetici&oacute;n se dividi&oacute; en tres grupos: control (no tratado), inhibici&oacute;n del 1CP (0.75 mg CB L<sup>&#45;1</sup>) e inhibici&oacute;n de la 1DC (0.5 mg CB L<sup>&#45;1</sup>). El n&uacute;mero de huevos vari&oacute; entre repeticiones, dependiendo del n&uacute;mero de huevos desovado por las seis hembras que conformaron cada repetici&oacute;n. En la repetici&oacute;n 1 se obtuvieron un total de 9,334,900 huevos, en la repetici&oacute;n 2, un total de 5,962,000 huevos, en la 3 un total de 4,941,000 huevos, y en la 4 un total de 4,095,000 huevos. En las repeticiones en las que se obtuvo larva normal en los grupos controles, se estimaron los porcentajes de ploid&iacute;a que ocurrieron en cada grupo, analizados como en el experimento I.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el experimento III se evaluaron cinco repeticiones, cada una formada al combinar los huevos de tres a cuatro almejas. El <i>pool</i> se utiliz&oacute; por las mismas razones explicadas para el experimento anterior. El objetivo principal de este experimento fue evaluar si la inhibici&oacute;n del 1CP resultaba en diferencias en la ploid&iacute;a lograda, con respecto a la inhibici&oacute;n del 2CP, cuando en ambos casos se utilizaron 0.5 mg CB L<sup>&#45;1</sup>. Cada repetici&oacute;n se dividi&oacute; en tres grupos: control (no tratado), inhibici&oacute;n del 1CP e inhibici&oacute;n del 2CP. El n&uacute;mero de huevos obtenido por repetici&oacute;n vari&oacute; de 1,145,000 a 3,284,000. Independientemente del n&uacute;mero total de huevos por repetici&oacute;n, aproximadamente 10% de los mismos fueron destinados al control, 45% para inhibici&oacute;n del 1CP y 45% para inhibici&oacute;n de 2CP. La ploid&iacute;a resultante en las repeticiones que presentaron larva normal en los controles se analiz&oacute; por citometr&iacute;a de flujo tanto en larva&#45;D como en algunas de las semillas logradas (repetici&oacute;n 2 de las que presentaron larva normal en el control). Para semilla, el an&aacute;lisis de citometr&iacute;a de flujo se hizo de acuerdo con el m&eacute;todo de Allen (1983) y Allen y Bushek (1992), analizando cada semilla en forma individual. El n&uacute;mero de semillas analizadas fue de 20 para el grupo control, 68 para las inhibidas en el 1CP y 20 para las inhibidas en el 2CP.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento IV se llev&oacute; a cabo para evaluar la inducci&oacute;n a la tetraploid&iacute;a al inhibir el 1CP en huevos de triploides fertilizados con esperma haploide. De 144 almejas triploides, 19 fueron seleccionadas, por observaci&oacute;n macrosc&oacute;pica, por la presencia del mayor n&uacute;mero de huevos en la g&oacute;nada; 6 de las 19 almejas desovaron. El n&uacute;mero de huevos obtenido por almeja triploide fue de 446,000, 382,000, 536,000, 332,000, 244,000 y 526,000 para las almejas 1 a la 6, respectivamente. Los huevos se mantuvieron en forma individual. Cada desove se dividi&oacute; en dos grupos: una muestra de 1/4 del total para un control que permitiera establecer tiempos de eventos mei&oacute;ticos, y el resto (3/4) de los huevos de cada almeja triploide fueron tratados con 0.5 mg CB L<sup>&#45;1</sup>, siguiendo la metodolog&iacute;a de Guo y Allen (1994) para inducir tetraploid&iacute;a en osti&oacute;n, e introduciendo las sugerencias de Eudeline <i>et al.</i> (2000) para incrementar el &eacute;xito. El tratamiento de los huevos con CB se inici&oacute; 5 min despu&eacute;s de la fertilizaci&oacute;n, y se concluy&oacute; cuando del 50% al 70% de los huevos en el grupo control de ese desove mostraron la extrusi&oacute;n del 1CP. La ploid&iacute;a resultante en larva&#45;D de los seis desoves inducidos fue analizada como en los otros experimentos. Para aquellos organismos que alcanzaron tallas mayores (preadultos), la ploid&iacute;a se analiz&oacute; extrayendo de 0.1 a 0.3 mL de hemolinfa del m&uacute;sculo aductor de cada almeja con una jeringa de 1 mL. La repetici&oacute;n 5 fue la &uacute;nica que produjo semilla y preadultos. Las c&eacute;lulas obtenidas se ti&ntilde;eron con 1.5 mL de la misma soluci&oacute;n de DAPI/ detergente/DMSO ya antes mencionada durante 5 min y se analizaron por citometr&iacute;a de flujo.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inhibici&oacute;n de la 1DC result&oacute; en 100% de larva&#45;D anormal, no viable, independientemente del experimento. El uso de desoves individuales en el experimento I no tuvo mayor &eacute;xito que cuando se usaron desoves mezclados en el experimento II, en cuanto a la supervivencia a larva&#45;D, cuando se inhibi&oacute; la 1DC. Asimismo, cuando se inhibi&oacute; el 1CP en ovocitos de diploides, el porcentaje de larva&#45;D anormal fue de 95% a 100%, con una sola excepci&oacute;n en el experimento III en la que se obtuvo solamente un 70% de larva anormal (repetici&oacute;n III.2). La inhibici&oacute;n del 2CP result&oacute; en 50% a 100% de larva&#45;D anormal dependiendo de la repetici&oacute;n. Estas anormalidades en la larva&#45;D se manifiestan principalmente por la forma de la concha, la cual se observa con una forma redondeada m&aacute;s que con la forma normal en <i>D</i> a la que atribuye su nombre.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el experimento I, la supervivencia media hasta el estadio larva&#45;D de los huevos inhibidos en la 1DC, con relaci&oacute;n al control, fue cero. En el experimento II, la supervivencia media de los huevos inhibidos en la 1DC, as&iacute; como en el 1CP fue tambi&eacute;n nula. En el experimento III la supervivencia media hasta larva&#45;D, con relaci&oacute;n al control, fue de 1.3% para los inhibidos en 1CP y de 18.3% para los inhibidos en el 2CP.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Ploid&iacute;a estimada por citometr&iacute;a de flujo</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En larva&#45;D obtenida en los experimentos I a III</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ploid&iacute;a obtenida en estos experimentos se resume en la <a href="/img/revistas/ciemar/v29n2/a7t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>. La inhibici&oacute;n de la 1DC con el prop&oacute;sito de producir tetraploides no tuvo &eacute;xito. Al inhibir la 1DC, las ploid&iacute;as resultantes m&aacute;s comunes fueron diploides y triploides aunque, en forma general, la inhibici&oacute;n de la 1DC result&oacute; en larva hipo y hiperploide, lo cual se evidenci&oacute; por la ausencia de un pico de fluorescencia definitivo durante la citometr&iacute;a de flujo, especialmente cuando se compara con los resultados de citometr&iacute;a observados para el grupo control. La inhibici&oacute;n del 1CP produjo desde larva diploide hasta pentaploide, habiendo obtenido tetraploides en tres de cinco de los desoves inducidos. &Uacute;nicamente se observ&oacute; larva pentaploide cuando se inhibi&oacute; el 1CP. El &eacute;xito en la producci&oacute;n de triploides al inhibir el 1CP fue menor que el alcanzado al inhibir el 2CP.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En semilla obtenida del experimento III</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ploid&iacute;a estimada para la semilla superviviente del tratamiento de inhibici&oacute;n del 1CP fue de 18% de triploides y 82% de diploides. No se detectaron tetraploides a esta edad, a pesar de los que fueron detectados durante el estadio larva&#45;D. Para la semilla superviviente del tratamiento de inhibici&oacute;n del 2CP, la ploid&iacute;a fue de 80% de triploides y 20% de diploides. En el grupo control s&oacute;lo se detectaron diploides.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En larva&#45;D y en la hemolinfa de los adultos producidos en el experimento IV</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ploid&iacute;a resultante al inhibir el 1CP en huevos de triploides se presenta en la <a href="/img/revistas/ciemar/v29n2/a7t2.jpg" target="_blank">tabla 2</a>. Solamente uno de los desoves inducidos (hembra 5) produjo un alto porcentaje de tetraploides (59%), mientras que los otros desoves variaron en el &eacute;xito en la producci&oacute;n de tetraploides (10% a 26%). El desove de la hembra 5 produjo 6000 larvas&#45;D, de las cuales solamente 17 llegaron a semilla. De esas semillas, solamente seis almejas sobrevivieron hasta una talla de preadulto (2.5 cm). El an&aacute;lisis de hemolinfa por citometr&iacute;a de flujo de esas seis almejas indic&oacute; que cinco eran tetraploides y una era mosaico de diploide&#45;tetraploide. Los an&aacute;lisis de citometr&iacute;a de estas almejas se realizaron en forma repetida, separados por ocho d&iacute;as, encontr&aacute;ndose lo mismo en ambas evaluaciones.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nuestros resultados han demostrado que se puede inducir la tetraploid&iacute;a en la almeja catarina, <i>A. ventricosus,</i> utilizando citocalacina&#45;B para inhibir la liberaci&oacute;n del 1CP en huevos de almejas diploides y triploides. Sin embargo, de acuerdo con estudios previos desarrollados en otras especies, los tetraploides producidos al inhibir el 1CP en diploides no alcanzan a sobrevivir hasta la talla de semilla o adulto, mientras que los producidos por la inhibici&oacute;n del 1CP en huevos de triploides son viables hasta tallas adultas. La tecnolog&iacute;a para la producci&oacute;n de moluscos tetraploides utilizando este &uacute;ltimo m&eacute;todo fue desarrollada por Guo y Allen (1994) para el osti&oacute;n japon&eacute;s, <i>Crassostrea gigas,</i> y se ha demostrado que es factible para lograr la producci&oacute;n de larva tetraploide tambi&eacute;n en otra especie, la ostra perlera, <i>Pinctada martensii</i> (He <i>et al.,</i> 2000). Con el presente estudio se ha demostrado que el uso de esta tecnolog&iacute;a es factible en tres especies de moluscos. Su uso permitir&aacute; eliminar la dependencia de m&eacute;todos de inducci&oacute;n (qu&iacute;mica o f&iacute;sica) a la triploid&iacute;a, permitiendo la conformaci&oacute;n de los denominados triploides biol&oacute;gicos de almeja catarina, tal y como como se ha logrado para el osti&oacute;n japon&eacute;s (Guo <i>et al.</i> , 1996), eliminando dos factores de riesgo durante la producci&oacute;n de triploides: alta mortandad por la inducci&oacute;n y bajo &eacute;xito en el porcentaje de triploides logrados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ocurrencia de tetraploides cuando se inhibe el 1CP con el fin de producir triploides (ver introducci&oacute;n) se considera un evento azaroso y, por lo tanto, no es de esperarse la ocurrencia del mismo en todas las inhibiciones del 1CP. Para entender este fen&oacute;meno son necesarios m&aacute;s estudios a nivel citol&oacute;gico y cromos&oacute;mico. Por otro lado, las variaciones en ploid&iacute;a observadas entre las repeticiones de los diferentes experimentos en los que se inhibi&oacute; el 1CP en ovocitos de diploides pueden ser explicadas como un posible efecto de diferencias en las tasas mei&oacute;ticas de los ovocitos utilizados entre repeticiones. El &eacute;xito en la inhibici&oacute;n de eventos mei&oacute;ticos depende de la sincronizaci&oacute;n en el desarrollo de los huevos, la cual depende a su vez de la calidad de los gametos (Gerard <i>et al.,</i> 1999). Esto es, se sabe que la tasa mei&oacute;tica es afectada por la condici&oacute;n de madurez del ovocito utilizado, observ&aacute;ndose una asincron&iacute;a en eventos mei&oacute;ticos entre ovocitos incluso cuando son del mismo origen, pero el m&eacute;todo de obtenci&oacute;n var&iacute;a entre las hembras (Coates y Supan, 2000). La importancia de la calidad del huevo en las inducciones a la poliploid&iacute;a fue denotada primero por Utting y Doyou (1992), quienes demostraron que la existencia de variaci&oacute;n en la calidad del huevo de la almeja Manila, <i>Ruditapes philippinarum,</i> pod&iacute;a afectar el &eacute;xito en obtener la triploid&iacute;a, y que esto es causado por una falta de sincron&iacute;a en las tasas mei&oacute;ticas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En relaci&oacute;n con la falta de &eacute;xito en la producci&oacute;n de tetraploides directamente de diploides, &eacute;sta ha sido reportada para diferentes especies como <i>R. philippinarum</i> (Diter y Duffy, 1990), <i>C. gigas</i> (Guo, 1991, citado por Guo y Allen, 1994; Guo <i>et al.,</i> 1994) y <i>Chlamys azumapecten</i> (Yang <i>et al.,</i> 1997). Guo (1991, citado por Guo y Allen, 1994) propuso que la causa de la inviabilidad de tetraploides producidos directamente de huevos de diploides puede estar asociada con el tama&ntilde;o del huevo y con las reservas energ&eacute;ticas existentes para el desarrollo y multiplicaci&oacute;n de un cigoto diploide en comparaci&oacute;n con un tetraploide, as&iacute; como tambi&eacute;n el tama&ntilde;o del n&uacute;cleo que no es capaz de permitir la alineaci&oacute;n correcta del doble de cromosomas durante la metafase. Esto podr&iacute;a explicar los resultados observados cuando se inhibi&oacute; la 1DC con el fin de producir tetraploides, en donde se observ&oacute; un desarrollo de larvas anormales que, en su mayor parte, no alcanzaron la talla de semilla. En contraste, cuando se inhibi&oacute; el 1CP en huevos de triploides, los organismos tetraploides producidos si fueron viables, aunque en n&uacute;meros reducidos. El tama&ntilde;o del ovocito de un diploide <i>vs</i> el de un triploide de la almeja catarina ha sido documentado previamente para esta especie (Ruiz&#45;Verdugo <i>et al.</i>, 2001). El diploide presenta un ovocito de aproximadamente 38 &micro;m de di&aacute;metro, mientras que el di&aacute;metro del ovocito del triploide es mayor, de 43 &micro;m. Estas diferencias se traducen en que el ovocito del triploide tiene un volumen 55% mayor que el de un diploide, lo cual posiblemente resulta en una mayor cantidad de reservas energ&eacute;ticas. M&aacute;s aun, el tama&ntilde;o del n&uacute;cleo de un ovocito de triploide es 109% mayor que el de un diploide, lo cual permitir&iacute;a la alineaci&oacute;n de todos los cromosomas durante la metafase</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, nuestros resultados reafirman las observa&#45; ciones previas de otros autores acerca de la producci&oacute;n de tetraploides en moluscos, la cual no es factible a partir de diploides, as&iacute; como tambi&eacute;n corroboran la factibilidad de la metodolog&iacute;a desarrollada por Guo y Allen (1994) para la producci&oacute;n de tetraploides a partir de triploides, indicando con ello que los esfuerzos futuros dirigidos a la producci&oacute;n de tetraploides en moluscos deber&aacute;n centrarse en esa metodolog&iacute;a.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta investigaci&oacute;n fue apoyada por CONACYT, al proyecto 28256&#45;B de A.M. Ibarra. Agradecemos el apoyo de Susana &Aacute;vila en los an&aacute;lisis de citometr&iacute;a de flujo, y el apoyo t&eacute;cnico de Gabriel Gonz&aacute;lez y Juan M. Macliz durante el cultivo larvario. El primer autor es estudiante de doctorado, becado por CONACYT y SEP (DECYTM), y los resultados presentados son parte de su tesis.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Allen, S.K. Jr. and Downing, S.L. (1986). Performance of triploid Pacific oysters, <i>Crassostrea gigas</i> (Thunberg). I. Survival, growth, glycogen content, and sexual maturation in yearlings. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 102: 197&#45;208.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865052&pid=S0185-3880200300020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Allen, S.K. Jr. and Bushek, D. (1992). Large&#45;scale production of triploid <i>Crassostrea virginica</i> (Gmelin) using "stripped" gametes. Aquaculture, 103: 241&#45;251.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865054&pid=S0185-3880200300020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Allen, S.K. Jr., Downing, S.L. and Chew, K.K. (1989). Hatchery manual for producing triploid oyster. Univ. Washington Press, 27 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865056&pid=S0185-3880200300020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Allen, S.K., Jr., Shpigel, M., Utting, S. and Spencer, B. (1994). Incidental production of tetraploid Manila clams, <i>Tapes</i> <i>philippinarum</i> (Addams and Reeve). Aquaculture, 128: 13&#45;19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865058&pid=S0185-3880200300020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cai, G. and Beaumont, R. (1996). Tetraploid induction in the mussel <i>Mytilus edulis</i> by application of 6&#45;dimethylaminopurine (6&#45;DMAP) during early development. Tropic Oceanology/Redai Haiyang, 15: 26&#45;30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865060&pid=S0185-3880200300020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Coates, G.M. and Supan, J.E. (2000). Potential triploid production of oysters using second metaphase oocytes. J. Shellfish Res., 19(1): 662.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865062&pid=S0185-3880200300020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cooper, K. and Guo, X. (1989). Polyploid Pacific oyster produced by inhibiting polar body I and II with cytochalasin B. J. Shellfish Res., 8(2): 412 (abstract only).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865064&pid=S0185-3880200300020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Diter, A. and Dufy, C. (1990). Polyploidy in the Manila clam <i>Ruditapes philippinarum.</i> II. Chemical induction of tetraploid embryos. Aquat. Living Resour., 3: 107&#45;112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865066&pid=S0185-3880200300020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Eudeline, B., Allen, S.K. Jr. and Guo, X. (2000). Optimization of tetraploid induction in Pacific oysters, <i>Crassostrea gigas,</i> using first polar body as a natural indicator. Aquaculture, 187: 73&#45;84.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865068&pid=S0185-3880200300020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gardner, E.J., Simmons, M.J. y Snustad, D.P. (1998). Principios de Gen&eacute;tica. 4ta ed. Noriega&#45;Utea editores, M&eacute;xico, D.F., 649 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865070&pid=S0185-3880200300020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gendreau, S. and Grizel, H. (1990). Induced triploidy and tetraploidy in the European flat oyster <i>Ostrea edulis</i> L. Aquaculture, 90: 229&#45;238.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865072&pid=S0185-3880200300020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">G&eacute;rard, A., Ledu, C., Ph&eacute;lipot, P. and Naciri&#45;Graven, Y. (1999). The induction of MI and MII triploids in the Pacific oyster <i>Crassostrea</i> <i>gigas</i> with 6&#45;DMAP or CB. Aquaculture, 174: 229&#45;242.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865074&pid=S0185-3880200300020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guo, X. and Allen, S.K. Jr. (1994). Viable tetraploids in the Pacific oyster <i>(Crassostrea gigas</i> Thunberg) produced by inhibiting polar body 1 in eggs from triploids. Mol. Mar. Biol. Biotech., 3: 42&#45;50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865076&pid=S0185-3880200300020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guo, X., Cooper, K., Hershberger, W. and Chew, K. (1992). Genetic consequences of blocking polar body I with cytochalasin B in fertilized eggs of the Pacific oyster, <i>Crassostrea gigas.</i> I. Ploidy of resultant embryos. Biol. Bull., 183: 381&#45;386.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865078&pid=S0185-3880200300020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guo, X., Hershberger, W.K., Cooper, K. and Chew, K.K. (1994). Tetraploid induction with mitosis I inhibition and cell fusion in the Pacific oyster <i>(Crassostrea gigas</i> Thunberg). J. Shellfish Res., 13(1): 193&#45;198.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865080&pid=S0185-3880200300020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guo, X., DeBrosse, G.A. and Allen, S.K. Jr. (1996). All&#45;triploid Pacific oysters <i>(Crassostrea gigas</i> Thunberg) produced by mating tetraploids and diploids. Aquaculture, 142: 149&#45;161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865082&pid=S0185-3880200300020000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">He, M., Lin, Y., Shen, Q., Hu, J. and Jiang, W. (2000). Production of tetraploid pearl oyster <i>(Pinctada martensii</i> Dunker) by inhibiting the first polar body in eggs from triploids. J. Shellfish Res., 19: 147&#45;151.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865084&pid=S0185-3880200300020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Klug, W.S. and Cummings, M.R. (1996). Essentials of Genetics. 2nd ed. Prentice Hall, New Jersey, 559 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865086&pid=S0185-3880200300020000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Norstog, K. and Long, R.W. (1976). Plant Biology. W.B. Saunders, Philadelphia, 585 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865088&pid=S0185-3880200300020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ram&iacute;rez, J.L., Avila, S. and Ibarra, A.M. (1999). Optimization of forage in two food&#45;filtering organisms with the use of a continuous, low&#45;food concentration, agricultural drip system. Aquacult. Eng., 20: 175&#45;189.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865090&pid=S0185-3880200300020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ruiz&#45;Verdugo, C.A., Ram&iacute;rez, J.L., Allen, S.K. Jr. and Ibarra, A.M. (2000). Triploid catarina scallop <i>(Argopecten ventricosus</i> Sowerby II, 1842): Growth, gametogenesis, and suppression of functional hermaphroditism. Aquaculture, 186: 13&#45;32.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865092&pid=S0185-3880200300020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ruiz&#45;Verdugo, C.A., Allen, S.K. Jr. and Ibarra, A.M. (2001). Family differences in success of triploid induction and effects of triploidy on fecundity of catarina scallop <i>(Argopecten ventricosus).</i> Aquaculture, 201: 19&#45;33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865094&pid=S0185-3880200300020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sastry, A.N. (1963). Reproduction of the bay scallop, <i>Aequipecten irradians</i> Lamarck. Influence of temperature on maturation and spawning. Biol. Bull., 125: 146&#45;153.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865096&pid=S0185-3880200300020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Scarpa, J., Wada, K.T. and Komaru, A. (1993). Induction of tetraploidy in mussels by suppression of polar body formation. Nippon Suisan Gakkaishi, 59: 2017&#45;2023.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865098&pid=S0185-3880200300020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stephens, L.B. and Downing, S.L. (1988). Inhibiting first polar body formation in <i>Crassostrea gigas</i> produces tetraploids, not meiotic I triploids. J. Shellfish Res., 7: 550&#45;551.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865100&pid=S0185-3880200300020000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tamarin, R.H. (1999). Principles of Genetics. 6th ed. WCB McGraw&#45;Hill, New York, 686 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865102&pid=S0185-3880200300020000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Utting, S.D. and Doyou, J. (1992). The increased utilization of egg lipid reserves following induction of triploidy in the Manila clam <i>(Tapes philippinarum).</i> Aquaculture, 103: 17&#45;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865104&pid=S0185-3880200300020000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yang, H., Wang, R., Guo, X. and Yu, Y. (1997). Tetraploid induction with cytochalasin B treatment in scallop <i>Chlamys azumapecten</i> F. 11th International Pectinid Workshop, La Paz, BCS, Mexico, 10 to 15 April 1997. Book of Abstracts, pp. 187&#45;188.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865106&pid=S0185-3880200300020000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yang, H., Zhang, F. and Guo, X. (2000). Triploid and tetraploid zhikong scallop, <i>Chlamys farreri</i> Jones et Preston, produced by inhibiting polar body I. Mar. Biotechnol., 2: 466&#45;475.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865108&pid=S0185-3880200300020000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhang, G., Wang, Z., Chang, Y., Song, J., Ding, J., Zhao, S. and Guo, X. (2000). Tetraploid induction in the Pacific abalone <i>Haliotis discus hannai</i> Ino with 6&#45;DMAP and CB. J. Shellfish Res., 19: 540&#45;541.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1865110&pid=S0185-3880200300020000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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