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Serotonergic function is a key mediator of mood states, impulsiveness, and addictive behavior, including alcohol consumption. Several studies have noted alterations in the serotonergic system in alcoholics (as demonstrated by an increase in the shooting frequency of raphe nuclei serotonergic neurons, an increase in serotonin levels in the accumbens nuclei, and a loss in serotonergic neurons in the raphe nuclei) and depressed patients (decreases in the density of serotonin reuptake transporter [5-HTT] and serotonin levels [5-HT]). Clinical studies have documented that excessive alcohol intake reduces 5-HT levels and that this condition potentiates psychiatric disorders, such as anxiety, major depression, and alcohol dependence. These data demonstrate an association between alcoholism, psychiatric disorders, and alcohol dependence. By molecular biology techniques, genetic risk factors have been identified and candidate genes, such as 5-HTT, have been selected. This gene is associated with a greater susceptibility to onset of alcohol-dependence and major depression. The 5-HTT gene lies in the SLC6A4 locus of 1 7q1 1.1-q12 and encodes a 600-amino-acid integral membrane protein. This transporter regulates serotonergic neurotransmission through removal of 5-HT from the synaptic space. Pharmacological research has shown that selective reuptake inhibitors (5-HTT blockers) reduce alcohol intake in alcohol-dependent and major depression patients. Serotonergic system receptors, such as 5-HTT, 5-HT1, and 5-HT2, are expressed in nervous system and immune system cells; thus it is likely that both systems have functional similarities. Due to this property, peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) can be used to research neurodegenerative, psychiatric, and alcohol dependence disorders. The aim of this study was to assess 5-HTT expression levels in the PBMCs from alcohol-dependent patients and patients with comorbid alcohol-dependence and major depression disorder. Materials and methods The Outpatient Consultative Service from the Centro de Ayuda a Alcohólicos y Familiares (CAAF) and the Centro de Alcohólicos y Drogadictos <<Carrasco&gt;&gt; screened 70 patients from February to November 2008. Twenty patients who met the criteria of alcohol dependence, according to the Spanish version of the Mini International Neuropsychiatric Interview (MINI), were accepted. Alcohol dependence was based on the Alcohol Dependence Scale (EDA) that was adapted to the Mexican population. Healthy volunteers (n = 12) were selected concurrently from the general population of Mexico City with the start of patient enrollment. A psychiatrist evaluated the mental health of these patients using MINI. Clinical and laboratory trials demonstrated normal standard reference values. Patients were included based on INPRFNC092318.1 research protocol procedures, which were approved by the Ethics Committee of the Instituto Nacional de Psiquiatría Ramón de la Fuente. All participants were given a detailed explanation concerning the study objectives and gave their signed informed consent. The patients for this study were men and women, aged 18 years and older who presented a diagnosis of alcohol dependence. Patients were grouped as follows: Group A: diagnosed alcohol dependence (n=12) and Group B: diagnosed alcohol dependence depressed patients (n=12). All patients arrived to the clinical laboratory from 8:00 to 9:00 a.m. to undergo a peripheral blood test. Blood was drawn by venous puncture and placed into anticoagulant-coated tubes. The blood was then diluted in an isotonic saline solution (SSI) (1:1, v/v) and transferred to a tube that contained Ficoll-Histopaque solution (1:2, v/v) to form a density gradient. The sample was centrifuged at 1600 rpm for 30 minutes at 4°C. The gradient interphase, which contained the mononuclear cells, was collected, SSI cells were washed, and Trizol was added. RNA isolation and RT-PCR RNA extraction from the PBMCs was performed using Trizol, wherein a monophase phenol solution and guanidine isothiocyanate were used to lyse cells and dividing the sample into 2 phases: aqueous and organic. The aqueous phase was separated with chloroform, and RNA was precipitated with isopropanol. Genetic material was washed with alcohol and allowed to dry. RNA was resuspended with RNase- and DNase-free water. The index of purity of the RNA samples ranged between 1.8 and 2.0. RNA samples were treated with DNase 1 (Invitrogen Life Technologies, CA, USA) to eliminate DNA contamination. Total RNA was used for the generation of cDNA and was performed from 1 |Ig of total RNA in a reaction volume of 20 (xL containing 5X Buffer 5|lL Retro-Transcriptase (Promega, WI, USA), 15 mM MgCl2, 1.25 ul 10 mM dNTP mix (Promega, WI, USA), 200 U M-MLV reverse transcriptase (Promega, WI, USA) and 1 |xL of 10 mM OligodT (GE, UK). The reaction mixture was incubated for 60 minutes at 42°C in a thermocycler (Thermocycler Gradient, Eppendorf, Germany) and applied a final cycle of 90°C for 5 minutes. The reverse-transcribed product (cDNA) was amplified by PCR in a final reaction volume of 25 |xL containing 2 |xL of cDNA, 1 mM deoxyribonucleotide dNTP Mix (Promega, WI, USA), 0.75 mM MgCl2, 2.5 mM oligonucleotide GoTaq and 1.25 units DNA polymerase (Promega, WI, USA). PCR was performed for 25 cycles, using a cycling program of 94°C for 1 minute, 60°C for 1 minute and 72°C for 1.30 minutes in a thermocycler for the amplification of 5-HTT and GAPDH. The oligo-nucleotides used for 5-HTT were: sense 5'-GAACTCCTGGAACAC TGGCAAC-3' and antisense 5'-ATGACAAATCCCGAAACGAAGC-3' (534 base pairs, [bp] product). In the case of GAPDH sequences of oligonucleotides used were: sense 5'-TGGGGAAGGTGAAGGTC GGAGTC-3' and antisense 5'-GACTTCAACAGCGACACCCACTC-3' (874 bp product). The amplicons were separated on an agarose gel and stained with ethidium bromide. The bands were analyzed by computerized densitometry. The optical density values for 5-HTT were calculated as the quotient between the values for 5-HTT and GADPH, expressed as the mean ± standard deviation. Statistic analysis was performed using the Shapiro-Wilk homogeneity test and nonparametric Mann-Whitney test. Differences were considered statistically significant when &#8804; p 0.05 Results 5-HTT levels were nondetectable (ND) in patient with comorbid alcohol-dependence and major depressive disorder. By Shapiro Wilk test, healthy volunteers and alcohol-dependent patients did not differ. Healthy volunteers expressed higher levels of 5-HTT gene (0.5012 ± 0.1349) compared with alcohol-dependent patients (0.3150 ± 0.1836) (p < 0.0036, Mann-Whitney). Discussion Our PCR method allowed us to determine that 5-HTT expression is lower in the two groups of patients compared with healthy volunteers. These results are consistent with studies that have reported that 5-HTT expression declines in lymphocytes from major depression disorder patients compared with healthy volunteers. The lack of detection of 5-HTT in alcohol- dependence depressed patients suggests that this comorbidity leads to alterations in the expression of this 5-HTT. Finally, our work is the first preliminary study that characterizes 5-HTT expression in the Mexican population, comparing alcohol dependence patients and patients with comorbid alcohol-dependence and major depression.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La Encuesta Nacional de Adicciones 2008 reportó que en México existen 39 millones de personas que consumen alcohol y 4.8 millones presentan dependencia. A nivel mundial varios estudios indican que los pacientes con dependencia al alcohol (40 a 50%) presentan comorbilidad con algún tipo de padecimiento psiquiátrico. La función serotoninérgica es un mediador clave en los estados de ánimo, la impulsividad y las conductas adictivas, entre ellas el consumo de alcohol. Se ha reportado que el consumo excesivo de alcohol etílico disminuye los niveles de serotonina, aumenta la frecuencia de disparo de las neuronas serotoninérgicas en el núcleo del rafé y aumenta los niveles de serotonina en el núcleo accumbens. Las técnicas de biología molecular han permitido identificar factores de riesgo genético y se han seleccionado genes candidatos del sistema serotoninérgico, siendo uno de ellos el gen para el transportador de serotonina (5-HTT), el cual se ha demostrado que se encuentra asociado tanto a una mayor susceptibilidad para el establecimiento de la dependencia al alcohol como a la depresión mayor. Los receptores del sistema serotoninérgico como el 5-HTT, el 5-HT1 y el 5-HT2 se expresan tanto en las células del Sistema Nervioso como en las células del sistema inmunológico, lo que sugiere una similitud funcional de ambos sistemas. Es por ello que las células mononucleares de sangre periférica (PBMC) han sido utilizadas como un modelo de estudio en los trastornos de dependencia al alcohol y en los psiquiátricos. El objetivo de este estudio fue evaluar los niveles de expresión del gen 5-HTT en células mononucleares de sangre periférica de pacientes con dependencia al alcohol con y sin depresión mayor comórbida. En el Servicio de Consulta Externa del Centro de Ayuda a Alcohólicos y Familiares (CAAF) y en el Centro de Alcohólicos y Drogadictos <<Carrasco&gt;&gt; se evaluaron 70 pacientes durante el periodo comprendido entre febrero y noviembre de 2008. De entre éstos se incluyeron 24 que cumplieron con los criterios diagnósticos para la dependencia al alcohol de acuerdo al DSM-IV por medio de la entrevista estructurada Mini International Neuropsychiatric Interview (MINI) en su versión en español. Cumplieron además con los siguientes criterios de inclusión: a) Que fueran pacientes de nuevo ingreso, b) Mayores de 18 años, c) De sexo femenino o masculino, d) Libres de tratamiento farmacológico tres semanas antes de incluirlos al estudio y e) Firmar carta de consentimiento informado para participar en el estudio. Se incluyeron para comparación voluntarios sanos (n = 12) los cuales fueron seleccionados de la población abierta de la Ciudad de México en el periodo de febrero a noviembre de 2008 y que cumplieran con los siguientes criterios: a) No tener algún diagnóstico psiquiátrico, para lo cual se aplicó el MINI, b) Mayores de 1 8 años, c) Sexo femenino o masculino, d) Libres de tratamiento farmacológico tres semanas antes de incluirlos en el estudio y e) Firmar carta de consentimiento informado para participar en el estudio. Todos los participantes asistieron de 8:00 hs. a 9:00 hs. al laboratorio clínico del Instituto Nacional de Psiquiatría Ramón de la Fuente para la obtención de la muestra de sangre periférica de la cual se obtuvieron las PBMC. Se realizó la extracción del material genético (RNA) de las muestras de PBMC con el reactivo de Trizol®. Aislamiento del RNA y RT-PCR Las muestras de RNA fueron tratadas con DNasa 1 (Invitrogen Life Technologies; CA, USA) para eliminar la contaminación con DNA. La síntesis de cDNA (DNA copia) fue equivalente para todos los casos y se realizó a partir de 1 |Xg de RNA total en un volumen de reacción de 20|lLque contenía 5¡lLde Buffer 5x para Retro-Transcriptasa (Promega; WI, USA), 15 mM de MgCl2, 1.25 |xl 10 mM de la mezcla dNTP (Promega; WI, USA), 200 U M-MLV transcriptasa reversa (Promega; WI, USA) y 1 |xL de 10 mM OligodT (GE, UK). La mezcla de reacción se incubó durante 60 minutos a 42°C en un termociclador (Gradient Thermocycler; Eppendorf, Germany) y se aplicó un ciclo final de 90°C por cinco minutos. La amplificación para el 5-HTT se realizó en un volumen final de reacción de 25 (xL que contenía 2 (xL de cDNA, 1 mM de desoxiribonucleotidos Mix dNTP (Promega; WI, USA), 0.75 mM de MgCl2, 2.5 mM de oligonucleótidos y 1.25 unidades de GoTaq DNA Polimerasa (Promega; WI, USA) con una fase de desnaturalización de 94°C/1 minuto, una fase de alineación de 60°C/1 minuto y una fase de extensión de 72°C/1.30 minutos, durante 35 ciclos. Los oligonucleótidos utilizados para el 5-HTT fueron los siguientes: sentido (5'-GAACTCCTGGAACACTGGCAAC-3') y el antisentido (5'- ATGACAAATCCCGAAACGAAGC-3') con un peso de 534 pares de bases (pb). En el caso del GAPDH las secuencias de oligonucléotidos utilizadas fueron: sentido (5'-TGGGGAAGGTGAAGG TCGGAGTC-3') y antisentido (5 '-GACTTCAACAGCGACACCCACTC-3') con un peso de 874 pb. Los productos de amplificación se separaron en geles de agarosa al 2% y se tiñeron con bromuro de etidio. El análisis se realizó por densitometría computarizada (QuantityOne, Bio-Rad 2008). Los voluntarios sanos presentaron una mayor expresión del gen (0.5012±0.1349) comparados con los pacientes con dependencia al alcohol (0.3150±0.1836), esta diferencia fue significativa (p<0.0036, Mann-Whitney). Los niveles de expresión del gen 5-HTT para los pacientes con dependencia al alcohol con depresión mayor comórbida fueron significativamente reducidos (no detectables). Con la técnica del PCR se determinó que la expresión del gen 5-HTT está disminuida en los dos grupos de pacientes comparados con los voluntarios sanos. Estos resultados coinciden con los estudios que han reportado que la expresión del gen 5-HTT en linfocitos de pacientes con trastorno depresivo mayor es menor comparada con los sujetos sanos. La no detección del mensaje genético del 5-HTT en los pacientes dependientes al alcohol con depresión mayor comórbida sugiere que la comorbilidad puede potenciar la reducción en la expresión del 5-HTT.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culo original</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Estudio preliminar de la expresi&oacute;n del mensaje gen&eacute;tico del transportador de serotonina en c&eacute;lulas mononucleares de sangre perif&eacute;rica en pacientes con dependencia al alcohol con y sin depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Preliminary study of the genetic message expression of serotonin transporter in peripheral blood mononuclear cells in patients with alcohol dependence with and without comorbid major depression</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Enrique Becerril&#150;Villanueva,<sup>1</sup> Julia Moreno&#150;Aguilar,<sup>2</sup> Danelia Mendieta&#150;Cabrera,<sup>2</sup> Denia Gonz&aacute;lez&#150;Cruz,<sup>2 </sup>Guillermina Natera&#150;Rey,<sup>3</sup> Lenin Pav&oacute;n&#150;Romero,<sup>1</sup> Mar&iacute;a Eugenia Hern&aacute;ndez&#150;Guti&eacute;rrez<sup>1</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Laboratorio de Psicoinmunolog&iacute;a de la Direcci&oacute;n de Investigaciones en Neurociencias, Instituto Nacional de Psiquiatr&iacute;a Ram&oacute;n de la Fuente, INPRF.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Direcci&oacute;n de Servicios Cl&iacute;nicos, INPRF.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Direcci&oacute;n de Investigaciones Epidemiol&oacute;gicas y Psicosociales, INPRF.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia:</b>     <br>   Dra. Mar&iacute;a Eugenia Hern&aacute;ndez&#150;Guti&eacute;rrez.     <br>   Laboratorio de Psicoinmunolog&iacute;a.     <br>   Direcci&oacute;n de Investigaciones en Neurociencias.     <br>   Instituto Nacional de Psiquiatr&iacute;a Ram&oacute;n de la Fuente.     <br>   Calzada M&eacute;xico&#150;Xochimilco 101, San Lorenzo Huipulco,     <br>   Tlalpan, 14370, M&eacute;xico DF.     <br>   Tel: 4160 5083 Fax: 5655 9980.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   E&#150;mail: <a href="mailto:droso200@imp.edu.mx">droso200@imp.edu.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Recibido primera revisi&oacute;n: 28 de julio de 2010.     <br> Segunda versi&oacute;n: 27 de octubre de 2010.     <br> Tercera versi&oacute;n: 21 de enero de 2011.     <br> Aceptado: 2 de febrero de 2011.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> The 2008 National Addiction Survey demonstrated the existence of 39 million alcohol drinkers, of whom 4.2 million are excessive drinkers and 4.8 million are alcohol dependents. No reports of the comorbidity of psychiatric disorders in alcohol consumers in our country exist. Nevertheless, 40% to 50% of alcohol&#150;dependent patients from other countries have some sort of psychiatric disorder, such as major depression.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Serotonergic function is a key mediator of mood states, impulsiveness, and addictive behavior, including alcohol consumption. Several studies have noted alterations in the serotonergic system in alcoholics (as demonstrated by an increase in the shooting frequency of raphe nuclei serotonergic neurons, an increase in serotonin levels in the <i>accumbens </i>nuclei, and a loss in serotonergic neurons in the raphe nuclei) and depressed patients (decreases in the density of serotonin reuptake transporter &#91;5&#150;HTT&#93; and serotonin levels &#91;5&#150;HT&#93;).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Clinical studies have documented that excessive alcohol intake reduces 5&#150;HT levels and that this condition potentiates psychiatric disorders, such as anxiety, major depression, and alcohol dependence. These data demonstrate an association between alcoholism, psychiatric disorders, and alcohol dependence.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> By molecular biology techniques, genetic risk factors have been identified and candidate genes, such as 5&#150;HTT, have been selected. This gene is associated with a greater susceptibility to onset of alcohol&#150;dependence and major depression.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> The 5&#150;HTT gene lies in the SLC6A4 locus of 1 7q1 1.1&#150;q12 and encodes a 600&#150;amino&#150;acid integral membrane protein. This transporter regulates serotonergic neurotransmission through removal of 5&#150;HT from the synaptic space. Pharmacological research has shown that selective reuptake inhibitors (5&#150;HTT blockers) reduce alcohol intake in alcohol&#150;dependent and major depression patients.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Serotonergic system receptors, such as 5&#150;HTT, 5&#150;HT<sub>1</sub>, and 5&#150;HT<sub>2</sub>, are expressed in nervous system and immune system cells; thus it is likely that both systems have functional similarities. Due to this property, peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) can be used to research neurodegenerative, psychiatric, and alcohol dependence disorders.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> The aim of this study was to assess 5&#150;HTT expression levels in the PBMCs from alcohol&#150;dependent patients and patients with comorbid alcohol&#150;dependence and major depression disorder.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Materials and  methods</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> The Outpatient Consultative Service from the <i>Centro de Ayuda a Alcoh&oacute;licos y Familiares </i>(CAAF) and the <i>Centro de Alcoh&oacute;licos y Drogadictos &lt;&lt;Carrasco&gt;&gt; </i>screened 70 patients from February to November 2008. Twenty patients who met the criteria of alcohol dependence, according to the Spanish version of the Mini International Neuropsychiatric Interview (MINI), were accepted. Alcohol dependence was based on the Alcohol Dependence Scale (EDA) that was adapted to the Mexican population.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Healthy volunteers (n = 12) were selected concurrently from the general population of Mexico City with the start of patient enrollment. A psychiatrist evaluated the mental health of these patients using MINI. Clinical and laboratory trials demonstrated normal standard reference values.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Patients were included based on INPRFNC092318.1 research protocol procedures, which were approved by the Ethics Committee of the <i>Instituto Nacional de Psiquiatr&iacute;a Ram&oacute;n de la Fuente.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> All participants were given a detailed explanation concerning the study objectives and gave their signed informed consent.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> The patients for this study were men and women, aged 18 years and older who presented a diagnosis of alcohol dependence. Patients were grouped as follows: Group A: diagnosed alcohol dependence (n=12) and Group B: diagnosed alcohol dependence depressed patients (n=12).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> All patients arrived to the clinical laboratory from 8:00 to 9:00 a.m. to undergo a peripheral blood test. Blood was drawn by venous puncture and placed into anticoagulant&#150;coated tubes. The blood was then diluted in an isotonic saline solution (SSI) (1:1, v/v) and transferred to a tube that contained Ficoll&#150;Histopaque solution (1:2, v/v) to form a density gradient. The sample was centrifuged at 1600 rpm for 30 minutes at 4&deg;C. The gradient interphase, which contained the mononuclear cells, was collected, SSI cells were washed, and Trizol was added.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>RNA isolation and  RT&#150;PCR</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> RNA extraction from the PBMCs was performed using Trizol, wherein a monophase phenol solution and guanidine isothiocyanate were used to lyse cells and dividing the sample into 2 phases: aqueous and organic. The aqueous phase was separated with chloroform, and RNA was precipitated with isopropanol. Genetic material was washed with alcohol and allowed to dry. RNA was resuspended with RNase&#150; and DNase&#150;free water. The index of purity of the RNA samples ranged between 1.8 and 2.0.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> RNA samples were treated with DNase 1 (Invitrogen Life Technologies, CA, USA) to eliminate DNA contamination. Total RNA was used for the generation of cDNA and was performed from 1 &#124;Ig of total RNA in a reaction volume of 20 (xL containing 5X Buffer 5&#124;lL Retro&#150;Transcriptase (Promega, WI, USA), 15 mM MgCl<sub>2</sub>, 1.25 ul 10 mM dNTP mix (Promega, WI, USA), 200 U M&#150;MLV reverse transcriptase (Promega, WI, USA) and 1 &#124;xL of 10 mM OligodT (GE, UK). The reaction mixture was incubated for 60 minutes at 42&deg;C in a thermocycler (Thermocycler Gradient, Eppendorf, Germany) and applied a final cycle of 90&deg;C for 5 minutes.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> The reverse&#150;transcribed product (cDNA) was amplified by PCR in a final reaction volume of 25 &#124;xL containing 2 &#124;xL of cDNA, 1 mM deoxyribonucleotide dNTP Mix (Promega, WI, USA), 0.75 mM MgCl<sub>2</sub>, 2.5 mM oligonucleotide GoTaq and 1.25 units DNA polymerase (Promega, WI, USA). PCR was performed for 25 cycles, using a cycling program of 94&deg;C for 1 minute, 60&deg;C for 1 minute and 72&deg;C for 1.30 minutes in a thermocycler for the amplification of 5&#150;HTT and GAPDH. The oligo&#150;nucleotides used for 5&#150;HTT were: sense 5'&#150;GAACTCCTGGAACAC TGGCAAC&#150;3' and antisense 5'&#150;ATGACAAATCCCGAAACGAAGC&#150;3' (534 base pairs, &#91;bp&#93; product). In the case of GAPDH sequences of oligonucleotides used were: sense 5'&#150;TGGGGAAGGTGAAGGTC GGAGTC&#150;3' and antisense 5'&#150;GACTTCAACAGCGACACCCACTC&#150;3' (874 bp product). The amplicons were separated on an agarose gel and stained with ethidium bromide. The bands were analyzed by computerized densitometry. The optical density values for 5&#150;HTT were calculated as the quotient between the values for 5&#150;HTT and GADPH, expressed as the mean &plusmn; standard deviation.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Statistic analysis was performed using the Shapiro&#150;Wilk homogeneity test and nonparametric Mann&#150;Whitney test. Differences were considered statistically significant when &le; p 0.05 </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Results</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 5&#150;HTT levels were nondetectable (ND) in patient with comorbid alcohol&#150;dependence and major depressive disorder. By Shapiro Wilk test, healthy volunteers and alcohol&#150;dependent patients did not differ. Healthy volunteers expressed higher levels of 5&#150;HTT gene (0.5012 &plusmn; 0.1349) compared with alcohol&#150;dependent patients (0.3150 &plusmn; 0.1836) (p &lt; 0.0036, Mann&#150;Whitney).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Discussion</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Our PCR method allowed us to determine that 5&#150;HTT expression is lower in the two groups of patients compared with healthy volunteers. These results are consistent with studies that have reported that 5&#150;HTT expression declines in lymphocytes from major depression disorder patients compared with healthy volunteers. The lack of detection of 5&#150;HTT in alcohol&#150; dependence depressed patients suggests that this comorbidity leads to alterations in the expression of this 5&#150;HTT.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Finally, our work is the first preliminary study that characterizes 5&#150;HTT expression in the Mexican population, comparing alcohol dependence patients and patients with comorbid alcohol&#150;dependence and major depression.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Key words:</b> Alcohol&#150;dependent, major depressive disorder, 5&#150;TT, PBMC, RT&#150;PCR.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La Encuesta Nacional de Adicciones 2008 report&oacute; que en M&eacute;xico existen 39 millones de personas que consumen alcohol y 4.8 millones presentan dependencia. A nivel mundial varios estudios indican que los pacientes con dependencia al alcohol (40 a 50%) presentan comorbilidad con alg&uacute;n tipo de padecimiento psiqui&aacute;trico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La funci&oacute;n serotonin&eacute;rgica es un mediador clave en los estados de &aacute;nimo, la impulsividad y las conductas adictivas, entre ellas el consumo de alcohol. Se ha reportado que el consumo excesivo de alcohol et&iacute;lico disminuye los niveles de serotonina, aumenta la frecuencia de disparo de las neuronas serotonin&eacute;rgicas en el n&uacute;cleo del raf&eacute; y aumenta los niveles de serotonina en el n&uacute;cleo <i>accumbens.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Las t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular han permitido identificar factores de riesgo gen&eacute;tico y se han seleccionado genes candidatos del sistema serotonin&eacute;rgico, siendo uno de ellos el gen para el transportador de serotonina (5&#150;HTT), el cual se ha demostrado que se encuentra asociado tanto a una mayor susceptibilidad para el establecimiento de la dependencia al alcohol como a la depresi&oacute;n mayor.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los receptores del sistema serotonin&eacute;rgico como el 5&#150;HTT, el 5&#150;HT<sub>1</sub> y el 5&#150;HT<sub>2</sub> se expresan tanto en las c&eacute;lulas del Sistema Nervioso como en las c&eacute;lulas del sistema inmunol&oacute;gico, lo que sugiere una similitud funcional de ambos sistemas. Es por ello que las c&eacute;lulas mononucleares de sangre perif&eacute;rica (PBMC) han sido utilizadas como un modelo de estudio en los trastornos de dependencia al alcohol y en los psiqui&aacute;tricos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El objetivo de este estudio fue evaluar los niveles de expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT en c&eacute;lulas mononucleares de sangre perif&eacute;rica de pacientes con dependencia al alcohol con y sin depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> En el Servicio de Consulta Externa del Centro de Ayuda a Alcoh&oacute;licos y Familiares (CAAF) y en el Centro de Alcoh&oacute;licos y Drogadictos &lt;&lt;Carrasco&gt;&gt; se evaluaron 70 pacientes durante el periodo comprendido entre febrero y noviembre de 2008. De entre &eacute;stos se incluyeron 24 que cumplieron con los criterios diagn&oacute;sticos para la dependencia al alcohol de acuerdo al DSM&#150;IV por medio de la entrevista estructurada Mini International Neuropsychiatric Interview (MINI) en su versi&oacute;n en espa&ntilde;ol. Cumplieron adem&aacute;s con los siguientes criterios de inclusi&oacute;n: a) Que fueran pacientes de nuevo ingreso, b) Mayores de 18 a&ntilde;os, c) De sexo femenino o masculino, d) Libres de tratamiento farmacol&oacute;gico tres semanas antes de incluirlos al estudio y e) Firmar carta de consentimiento informado para participar en el estudio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Se incluyeron para comparaci&oacute;n voluntarios sanos (n = 12) los cuales fueron seleccionados de la poblaci&oacute;n abierta de la Ciudad de M&eacute;xico en el periodo de febrero a noviembre de 2008 y que cumplieran con los siguientes criterios: a) No tener alg&uacute;n diagn&oacute;stico psiqui&aacute;trico, para lo cual se aplic&oacute; el MINI, b) Mayores de 1 8 a&ntilde;os, c) Sexo femenino o masculino, d) Libres de tratamiento farmacol&oacute;gico tres semanas antes de incluirlos en el estudio y e) Firmar carta de consentimiento informado para participar en el estudio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Todos los participantes asistieron de 8:00 hs. a 9:00 hs. al laboratorio cl&iacute;nico del Instituto Nacional de Psiquiatr&iacute;a Ram&oacute;n de la Fuente para la obtenci&oacute;n de la muestra de sangre perif&eacute;rica de la cual se obtuvieron las PBMC. Se realiz&oacute; la extracci&oacute;n del material gen&eacute;tico (RNA) de las muestras de PBMC con el reactivo de Trizol&reg;.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Aislamiento del  RNA y RT&#150;PCR</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Las muestras de RNA fueron tratadas con DNasa 1 (Invitrogen Life Technologies; CA, USA) para eliminar la contaminaci&oacute;n con DNA. La s&iacute;ntesis de cDNA (DNA copia) fue equivalente para todos los casos y se realiz&oacute; a partir de 1 &#124;Xg de RNA total en un volumen de reacci&oacute;n de 20&#124;lLque conten&iacute;a 5&iexcl;lLde Buffer 5x para Retro&#150;Transcriptasa (Promega; WI, USA), 15 mM de MgCl<sub>2</sub>, 1.25 &#124;xl 10 mM de la mezcla dNTP (Promega; WI, USA), 200 U M&#150;MLV transcriptasa reversa (Promega; WI, USA) y 1 &#124;xL de 10 mM OligodT (GE, UK). La mezcla de reacci&oacute;n se incub&oacute; durante 60 minutos a 42&deg;C en un termociclador (Gradient Thermocycler; Eppendorf, Germany) y se aplic&oacute; un ciclo final de 90&deg;C por cinco minutos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La amplificaci&oacute;n para el 5&#150;HTT se realiz&oacute; en un volumen final de reacci&oacute;n de 25 (xL que conten&iacute;a 2 (xL de cDNA, 1 mM de desoxiribonucleotidos Mix dNTP (Promega; WI, USA), 0.75 mM de MgCl<sub>2</sub>, 2.5 mM de oligonucle&oacute;tidos y 1.25 unidades de GoTaq DNA Polimerasa (Promega; WI, USA) con una fase de desnaturalizaci&oacute;n de 94&deg;C/1 minuto, una fase de alineaci&oacute;n de 60&deg;C/1 minuto y una fase de extensi&oacute;n de 72&deg;C/1.30 minutos, durante 35 ciclos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los oligonucle&oacute;tidos utilizados para el 5&#150;HTT fueron los siguientes: sentido (5'&#150;GAACTCCTGGAACACTGGCAAC&#150;3') y el antisentido (5'&#150; ATGACAAATCCCGAAACGAAGC&#150;3') con un peso de 534 pares de bases (pb). En el caso del GAPDH las secuencias de oligonucl&eacute;otidos utilizadas fueron: sentido (5'&#150;TGGGGAAGGTGAAGG TCGGAGTC&#150;3') y antisentido (5 '&#150;GACTTCAACAGCGACACCCACTC&#150;3') con un peso de 874 pb. Los productos de amplificaci&oacute;n se separaron en geles de agarosa al 2% y se ti&ntilde;eron con bromuro de etidio. El an&aacute;lisis se realiz&oacute; por densitometr&iacute;a computarizada (QuantityOne, Bio&#150;Rad 2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los voluntarios sanos presentaron una mayor expresi&oacute;n del gen (0.5012&plusmn;0.1349) comparados con los pacientes con dependencia al alcohol (0.3150&plusmn;0.1836), esta diferencia fue significativa (p&lt;0.0036, Mann&#150;Whitney). Los niveles de expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT para los pacientes con dependencia al alcohol con depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida fueron significativamente reducidos (no detectables).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Con la t&eacute;cnica del PCR se determin&oacute; que la expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT est&aacute; disminuida en los dos grupos de pacientes comparados con los voluntarios sanos. Estos resultados coinciden con los estudios que han reportado que la expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT en linfocitos de pacientes con trastorno depresivo mayor es menor comparada con los sujetos sanos. La no detecci&oacute;n del mensaje gen&eacute;tico del 5&#150;HTT en los pacientes dependientes al alcohol con depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida sugiere que la comorbilidad puede potenciar la reducci&oacute;n en la expresi&oacute;n del 5&#150;HTT.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Palabras clave: </b>Dependencia al alcohol, depresi&oacute;n mayor, 5&#150;HTT, PBMC, RT&#150;PCR.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (OMS) define al alcoholismo con el t&eacute;rmino &lt;&lt;s&iacute;ndrome de dependencia al alcohol (SDA)&gt;&gt; y lo describe como un trastorno de conducta cr&oacute;nico, manifestado por un estado ps&iacute;quico y f&iacute;sico que conduce compulsivamente a la ingesta excesiva de alcohol.<sup>1 </sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El alcohol et&iacute;lico es la sustancia psicoactiva de mayor consumo y su dependencia est&aacute; asociada de manera directa o indirecta con las diez principales causas de mortalidad en la poblaci&oacute;n general.<sup>2</sup> La Encuesta Nacional de Adicciones 2008 report&oacute; que en M&eacute;xico existen 39 millones de personas que consumen alcohol, de las cuales 4.2 millones presentan abuso en su ingesta y 4.8 millones muestran dependencia.<sup>3</sup> Actualmente, en nuestro pa&iacute;s no existen estudios epidemiol&oacute;gicos sobre los individuos que consumen alcohol con trastorno psiqui&aacute;trico com&oacute;rbido, sin embargo en otros pa&iacute;ses se ha reportado que un 40 a 50% de los pacientes con dependencia al alcohol presentan alg&uacute;n padecimiento psiqui&aacute;trico, entre ellos la depresi&oacute;n mayor.<sup>4</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Estos datos indican una relaci&oacute;n entre la dependencia al alcohol y los trastornos psiqui&aacute;tricos, de tal manera que estos pacientes com&oacute;rbidos constituyen una parte compleja de la poblaci&oacute;n y representan un problema de salud prioritario. Por esto se requieren investigaciones neurobiol&oacute;gicas que permitan conocer los mecanismos que subyacen al establecimiento y mantenimiento de estos trastornos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El sistema serotonin&eacute;rgico del Sistema Nervioso Central (SNC) es un mediador fundamental en los estados del &aacute;nimo, la impulsividad y las conductas adictivas, incluido el consumo de alcohol. Su importancia se debe a que las v&iacute;as serotonin&eacute;rgicas procedentes de los n&uacute;cleos del raf&eacute; se proyectan hacia la corteza, el hipocampo y las estructuras subcorticales, de tal manera que su funci&oacute;n en el comportamiento del consumo de alcohol puede ser de manera directa, modulando los efectos de reforzamiento, o indirecta, como mediador en el control de los impulsos y del estado afectivo.<sup>5,6</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Varios estudios reportan anormalidades en el sistema serotonin&eacute;rgico de los pacientes con dependencia al alcohol y depresi&oacute;n mayor sin comorbilidad. Los pacientes dependientes al alcohol presentan un aumento en la frecuencia de disparo de las neuronas serotonin&eacute;rgicas del n&uacute;cleo del raf&eacute;, un aumento en los niveles de serotonina (5&#150;HT) en el n&uacute;cleo <i>accumbens, </i>uni&oacute;n del alcohol con los receptores serotonin&eacute;rgicos y p&eacute;rdida de neuronas serotonin&eacute;rgicas en el n&uacute;cleo del raf&eacute; en pacientes dependientes al alcohol con consumo cr&oacute;nico.<sup>6&#150;8</sup> Adem&aacute;s, se ha observado que los individuos con un consumo excesivo del alcohol presentan una disminuci&oacute;n de la 5&#150;HT y esta condici&oacute;n participa en el establecimiento de trastornos psiqui&aacute;tricos como la ansiedad, la depresi&oacute;n mayor y el desarrollo de la dependencia al alcohol.<sup>9,10</sup> Por otra parte, en los pacientes con trastorno depresivo mayor se ha observado una disminuci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de la 5&#150;HT as&iacute; como una disminuci&oacute;n en la densidad del transportador de recaptura de la serotonina (5&#150;HTT) en el SNC, lo que conduce a un d&eacute;ficit en la neurotransmisi&oacute;n serotonin&eacute;rgica.<sup>11</sup> Finalmente, estudios cl&iacute;nicos en pacientes con dependencia al alcohol con depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida detectaron una disminuci&oacute;n en los niveles del catabolito de la 5&#150;HT (&aacute;cido 5&#150;hidroxi&#150;indolac&eacute;tico &#91;5&#150;HIIA&#93;), en el l&iacute;quido cefalorraqu&iacute;deo, lo cual indica una disfunci&oacute;n serotonin&eacute;rgica.<sup>12,13</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El diagn&oacute;stico doble de dependencia al alcohol y trastorno depresivo mayor es una entidad con una etiolog&iacute;a multifactorial donde convergen factores biol&oacute;gicos, psicosociales y ambientales.<sup>14</sup> Con respecto a los factores biol&oacute;gicos, los estudios familiares utilizados para evaluar la contribuci&oacute;n de los factores gen&eacute;ticos en la etiolog&iacute;a de la dependencia al alcohol y de la depresi&oacute;n mayor<sup>15</sup> han determinado un porcentaje de heredabilidad (proporci&oacute;n de las variaciones en el fenotipo debidas a los genes y expresada en porcentaje) para el abuso del alcohol de un 50 a 60%<sup>16,17</sup> y para la depresi&oacute;n mayor de un 40%.<sup>18</sup> Sin embargo cabe se&ntilde;alar que esta susceptibilidad gen&eacute;tica requiere, para la manifestaci&oacute;n de ambas enfermedades, de condiciones ambientales favorables y de una exposici&oacute;n precisa.<sup>19</sup>,<sup>20</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los estudios de gen&eacute;tica y las t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular han permitido identificar genes candidatos como factores de riesgo o susceptibilidad para desarrollar la dependencia al alcohol y la depresi&oacute;n mayor; uno de estos genes es el que codifica para el transportador de recaptura de la serotonina (5&#150;HTT).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El gen del 5&#150;HTT est&aacute; ubicado en el locus SLC6A4 del cromosoma 17q11.1&#150;q12 y su expresi&oacute;n da como resultado una prote&iacute;na integral de membrana de 600 amino&aacute;cidos. Este transportador regula la neurotransmisi&oacute;n serotonin&eacute;rgica a trav&eacute;s de la remoci&oacute;n de la 5&#150;HT del espacio sin&aacute;ptico. Estudios cl&iacute;nicos en pacientes con dependencia al alcohol y depresi&oacute;n mayor reportan una disminuci&oacute;n en la densidad y funcionalidad en el 5&#150;HTT.<sup>21</sup> Por otra parte, estudios realizados en modelos animales tipo <i>&lt;&lt;knockouts&gt;&gt; </i>para el transportador 5&#150;HTT revelan que la p&eacute;rdida de la funci&oacute;n del gen 5&#150;HTT altera los efectos neurales y conductuales inducidos por el alcohol.<sup>22</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La administraci&oacute;n de inhibidores selectivos de la recaptura de serotonina (ISRS, bloqueadores del 5&#150;HTT) a pacientes con dependencia al alcohol, de ingesta intensa, y a pacientes con dependencia al alcohol y trastorno depresivo mayor com&oacute;rbido inducen una reducci&oacute;n en el consumo de alcohol.<sup>23&#150;28</sup> Estas evidencias indican que el 5&#150;HTT presenta una reducci&oacute;n anormal que conlleva a un d&eacute;ficit en la transmisi&oacute;n serotonin&eacute;rgica en el SNC. Sin embargo este transportador y otros receptores del sistema serotonin&eacute;rgico tambi&eacute;n se expresan en varios tejidos a nivel perif&eacute;rico, lo que puede ser &uacute;til para el estudio de la expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT en los pacientes con tratamiento farmacol&oacute;gico. Se ha demostrado que el 5&#150;HTT tiene una secuencia de amino&aacute;cidos id&eacute;ntica y una misma sensibilidad farmacol&oacute;gica en el tejido cerebral y en los linfocitos.<sup>5,29</sup> Adem&aacute;s se han reportado analog&iacute;as estructurales y funcionales entre las neuronas y los linfocitos. En ambos casos, los procesos de activaci&oacute;n, transmisi&oacute;n de se&ntilde;ales y terminaci&oacute;n de las sinapsis neuronal e inmunol&oacute;gica est&aacute;n regulados en el espacio y en el tiempo. La regulaci&oacute;n espacial se debe a la estabilizaci&oacute;n de las mol&eacute;culas implicadas en la se&ntilde;alizaci&oacute;n celular en localizaciones espec&iacute;ficas (por ejemplo, los anillos conc&eacute;ntricos observados en la sinapsis inmune, o la espina dendr&iacute;tica en la sinapsis neuronal). La concentraci&oacute;n de estos intermediarios de la se&ntilde;alizaci&oacute;n y su jerarqu&iacute;a temporal produce un efecto amplificador de la se&ntilde;al.<sup>5,30,31</sup> Adem&aacute;s, los linfocitos expresan receptores para varios neurotransmisores considerados como pertenecientes &uacute;nicamente a las neuronas, entre ellos los del sistema serotonin&eacute;rgico.<sup>32</sup> Al respecto, Faraj et al. han reportado que los linfocitos de pacientes con dependencia al alcohol recuperados y con periodos prolongados de abstinencia presentan una mayor captura de serotonina y que este evento es independiente del periodo de abstinencia, sugiriendo un rasgo hereditario m&aacute;s que el abuso cr&oacute;nico del alcohol.<sup>33</sup> Adicionalmente, Rausch et al. determinaron una mayor captura de serotonina en sujetos con historia familiar de dependencia al alcohol (padres alcoh&oacute;licos) <i>versus </i>sujetos sin historia familiar de dependencia al alcohol; este hallazgo podr&iacute;a indicar un factor biol&oacute;gico asociado al riesgo en el consumo de alcohol.<sup>34</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Con base en las evidencias anteriores el linfocito ya se propone como un modelo perif&eacute;rico para el estudio del sistema serotonin&eacute;rgico de varias enfermedades de tipo psiqui&aacute;trico como la depresi&oacute;n mayor y la dependencia al alcohol. El objetivo de nuestro estudio fue evaluar los niveles del gen 5&#150;HTT en c&eacute;lulas mononucleares de sangre perif&eacute;rica, en pacientes con dependencia al alcohol con y sin depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida, como una primera aproximaci&oacute;n para la determinaci&oacute;n de la existencia o no de una expresi&oacute;n an&oacute;mala del 5&#150;HTT en este tipo de pacientes en la poblaci&oacute;n mexicana.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Dise&ntilde;o del estudio</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El estudio fue un procedimiento anal&iacute;tico, observacional de tipo transversal.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Participantes</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Pacientes</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> En el Servicio de Consulta Externa del Centro de Ayuda al Alcoh&oacute;lico y a sus Familiares (CAAF) y el Centro de Alcoh&oacute;licos y Drogadictos &lt;&lt;Carrasco&gt;&gt; se evaluaron 70 pacientes durante el periodo que va de febrero a noviembre de 2008. De entre &eacute;stos se incluyeron 24 que cumplieron con los criterios diagn&oacute;sticos para la dependencia al alcohol de acuerdo al DSM&#150;IV por medio de la entrevista estructurada Mini International Neuropsychiatric Interview (MINI) en su versi&oacute;n en espa&ntilde;ol.<sup>35</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los pacientes cumplieron con los siguientes criterios de inclusi&oacute;n: a) Que fueran pacientes de nuevo ingreso, b) Mayores de 18 a&ntilde;os, c) De sexo femenino o masculino, d) Libres de tratamiento farmacol&oacute;gico tres semanas antes de incluirlos al estudio y e) Firmar la carta de consentimiento informado para participar en el estudio.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los pacientes se agruparon de acuerdo a su diagn&oacute;stico en pacientes con dependencia al alcohol con depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida (n=12) y sin ella (n=12).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Voluntarios sanos</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Se incluyeron voluntarios sanos (n=12) los cuales fueron seleccionados de la poblaci&oacute;n abierta de la Ciudad de M&eacute;xico en el periodo comprendido entre febrero y noviembre de 2008, que cumplieran con los siguientes criterios: a) No tener alg&uacute;n diagn&oacute;stico psiqui&aacute;trico, bas&aacute;ndose en la aplicaci&oacute;n del MINI, b) Mayores de 18 a&ntilde;os, c) Sexo femenino o masculino, d) Libres de tratamiento farmacol&oacute;gico tres semanas antes de incluirlos en el estudio y e) Firmar la carta de consentimiento informado para participar en el estudio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Procedimiento</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> A todos los participantes, tanto pacientes como voluntarios sanos, que cumplieron con los criterios de inclusi&oacute;n, se les explic&oacute; la naturaleza del estudio y se les invit&oacute; a participar. Si estuvieron de acuerdo firmaron la carta de consentimiento informado. La captaci&oacute;n de pacientes se realiz&oacute; de acuerdo a los procedimientos del protocolo de investigaci&oacute;n INPRFNC092318.1 aprobado por el Comit&eacute; de &eacute;tica del Instituto Nacional de Psiquiatr&iacute;a Ram&oacute;n de la Fuente Mu&ntilde;iz.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los pacientes y los voluntarios sanos fueron evaluados con la escala MINI. Los pacientes se agruparon de acuerdo a su diagn&oacute;stico en pacientes con dependencia al alcohol con depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida (n=12) y sin ella (n=12). Todos los pacientes fueron evaluados con la Escala de Dependencia al Alcohol (EDA) para medir el nivel de dependencia al alcohol (<a href="#c1">cuadro 1</a>).<sup>36</sup></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/sm/v34n2/a7c1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los participantes asistieron de 8:00 hs. a 9:00 hs. al laboratorio cl&iacute;nico del Instituto Nacional de Psiquiatr&iacute;a Ram&oacute;n de la Fuente para la obtenci&oacute;n de la muestra de sangre perif&eacute;rica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Obtenci&oacute;n de las c&eacute;lulas mononucleares de sangre perif&eacute;rica (PBMC)</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La muestra de sangre perif&eacute;rica de los participantes se colect&oacute; en tubos con anticoagulante (Vacutainer&#150;Becton &amp; Dickinson; NJ, USA) por punci&oacute;n venosa en el horario de 8:00 hs. a 9:00 hs. La sangre (5mL) se diluy&oacute; con soluci&oacute;n salina isot&oacute;nica (SSI) (1:1, v/v) y se deposit&oacute; en un tubo con una soluci&oacute;n de Ficoll&#150;Histopaque (1:2, v/v) (Sigma&#150;Aldrich; St Louis, USA) para formar un gradiente de densidad. La muestra se centrifug&oacute; a 1600 rpm durante 30 minutos a 4&deg;C y se aislaron las c&eacute;lulas mononucleares de la interfase del gradiente. Finalmente las PBMC se lavaron con SSI y se les adicion&oacute; el reactivo de Trizol&reg;.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Extracci&oacute;n del RNA</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La extracci&oacute;n del &aacute;cido ribonucleico (RNA, por sus siglas en ingl&eacute;s) total fue aislado de las PBMC de los voluntarios sanos y pacientes con el reactivo de Trizol&reg; (Invitrogen Life Technologies; CA, USA). Se utiliz&oacute; una soluci&oacute;n monof&aacute;sica de fenol e isotiocinato de guanidina para la lisis de las c&eacute;lulas y la separaci&oacute;n de la muestra en dos fases (acuosa y org&aacute;nica). Despu&eacute;s se adicionaron 200 &#124;iL de cloroformo y se centrifug&oacute; 10000 rpm por 10 min a 4&deg;C para separar la fase acuosa. La precipitaci&oacute;n del RNA se realiz&oacute; con isopropanol y el material gen&eacute;tico se lav&oacute; con alcohol al 75%. Finalmente la muestra se dej&oacute; secar durante cinco minutos a temperatura ambiente y se resuspendi&oacute; con agua libre de RNasas y DNasas (Gibco; NY, USA). La cantidad y calidad del RNA obtenido se determin&oacute; con un espectrofot&oacute;metro (BioPhotometer; Eppendorf, Germany) en un rango de 260&#150;280 nm y se almacen&oacute; a &#150;80&deg;C. El &iacute;ndice de pureza de las muestras de RNA fue de 1.8 y 2.0.<sup>37</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Obtenci&oacute;n de la expresi&oacute;n del gen GADPH y 5&#150;HTT</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La enzima gliceraldeh&iacute;do&#150;3&#150;fosfato deshidrogenasa (GADPH), al ser una enzima indispensable para la respiraci&oacute;n celular, su expresi&oacute;n es constitutiva y ha sido seleccionada la expresi&oacute;n de su gen como un control end&oacute;geno (gen constitutivo o gen de normalizaci&oacute;n) para las t&eacute;cnicas de biolog&iacute;a molecular como el RT&#150;PCR porque se ha demostrado que mantiene un nivel de expresi&oacute;n constante, aun en diferentes estados fisiol&oacute;gicos de la c&eacute;lula y en respuesta a los tratamientos experimentales.<sup>38,39</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Amplificaci&oacute;n mediante RT&#150;PCR</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Las muestras de RNA fueron tratadas con DNasa 1 (Invitrogen Life Technologies; CA, USA) para eliminar la contaminaci&oacute;n con DNA (Huang Z, 1996). La s&iacute;ntesis de cDNA (DNA copia) fue equivalente para todos los casos y se realiz&oacute; a partir de 1 &#124;ig de RNA total en un volumen de reacci&oacute;n de 2O&#124;J,L que conten&iacute;a 5&#124;J,L de Buffer 5x para Retro&#150;Transcriptasa (Promega; WI, USA), 15 mM de MgCl<sub>2</sub>,1.25 <i>&#91;&uacute; </i>10 mM de la mezcla dNTP (Promega; WI, USA), 200 U M&#150;MLV transcriptasa reversa (Promega; WI, USA) y 1 &#124;J,L de 10 mM OligodT (GE, UK). La mezcla de reacci&oacute;n se incub&oacute; durante 60 minutos a 42&deg;C en un termociclador (Gradient Thermocycler; Eppendorf, Germany) y se aplic&oacute; un ciclo final de 90&deg;C por cinco minutos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La amplificaci&oacute;n para el 5&#150;HTT se realiz&oacute; en un volumen final de reacci&oacute;n de 25 &#124;J,L que conten&iacute;a 2 &#124;J,L de cDNA, 1 mM de desoxiribonucle&oacute;tidos Mix dNTP (Promega; WI, USA), 0.75 mM de MgCl<sub>2</sub>, 2.5 mM de oligonucle&oacute;tidos y 1.25 unidades de GoTaq DNA Polimerasa (Promega; WI, USA) con una fase de desnaturalizaci&oacute;n de 94&deg;C/1 minutos, una fase de alineaci&oacute;n de 60&deg;C/1 minuto y una fase de extensi&oacute;n de 72&deg;C/1.30 minutos, durante 35 ciclos.<sup>40</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los oligonucle&oacute;tidos utilizados para el 5&#150;HTT fueron los siguientes: sentido (5'&#150;GAACTCCTGGAACACTGGCAAC&#150;3') y el antisentido (5'&#150; ATGACAAATCCCGAAACGAAGC&#150;3') con un peso de 534 pares de bases (pb).<sup>41</sup> En el caso del GAPDH las secuencias de oligonucl&eacute;otidos utilizadas fueron: sentido (5'&#150;TGGGGAAGGTGAAGGTCGGAGTC&#150;3') y antisentido (5'&#150;GACTTCAACAGCGACACCCACTC&#150;3') con un peso de 874 pb. Los productos de amplificaci&oacute;n se separaron en geles de agarosa al 2% y se ti&ntilde;eron con bromuro de etidio. El an&aacute;lisis se realiz&oacute; por densitometr&iacute;a computarizada (QuantityOne, Bio&#150;Rad 2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los valores de expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT fueron obtenidos con la siguiente f&oacute;rmula:</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"> <img src="/img/revistas/sm/v34n2/a7f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Y fueron expresados como la media aritm&eacute;tica. Los datos de los voluntarios sanos y los de los pacientes fueron analizados con la prueba de homogeneidad de Shapiro&#150;Wilk. Se aplic&oacute; la prueba no param&eacute;trica de Mann&#150;Whitney para obtener las diferencias en la expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT entre voluntarios sanos y pacientes. Los an&aacute;lisis se realizaron con el programa estad&iacute;stico Graph Pad 5.0 (San Diego, CA, USA). Las diferencias fueron consideradas estad&iacute;sticamente significativas cuando la probabilidad del error tipo I fue p&lt;0.05.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>RESULTADOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Par&aacute;metros cl&iacute;nicos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los voluntarios sanos presentaron valores de biometr&iacute;a hem&aacute;tica dentro de los rangos de referencia normales. Los pacientes mostraron anormalidades en sus eritrocitos (tama&ntilde;o y forma) as&iacute; como en el contenido de hemoglobina. Asimismo, en el grupo de dependencia al alcohol se detectaron dos pacientes, uno con consumo moderado y otro con consumo intenso asociado a plaquetopenia. En el grupo de dependencia al alcohol con depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida se detectaron dos pacientes con anormalidades hematol&oacute;gicas, ambos con un consumo sustancial de alcohol; el primero de ellos present&oacute; trombocitosis y el segundo anemia microc&iacute;tica&#150;hipocr&oacute;mica, trombocitopenia y monocitosis.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los pacientes con alteraciones hematol&oacute;gicas recibieron la recomendaci&oacute;n de asistir a una consulta m&eacute;dica especializada. Estos hallazgos cl&iacute;nicos detectados en los eritrocitos no interfirieron con la evaluaci&oacute;n de la expresi&oacute;n del mensaje gen&eacute;tico porque a) los eritrocitos no contienen n&uacute;cleo y b) s&oacute;lo se utilizaron c&eacute;lulas mononucleares (PBMC).<sup>42</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>Expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los pacientes con dependencia al alcohol y depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida presentaron niveles de expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT disminuidos de manera significativa y se reportaron como No Detectado (ND). La prueba de homogeneidad de Shapiro Wilks no fue significativa para la expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT en las poblaciones de los voluntarios sanos y los pacientes con dependencia al alcohol. Los voluntarios sanos presentaron una mayor expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT (0.5012&plusmn;0.1349) comparados con los pacientes con dependencia al alcohol (0.3150&plusmn;0.1836) y esta diferencia fue significativa (p&lt;0.0036, Mann&#150;Whitney) (<a href="#f1">figura 1</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/sm/v34n2/a7f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El alcohol produce alteraciones en el sistema hematopoy&eacute;tico e induce una agranulocitosis t&oacute;xica que conlleva a cuadros de anemia, leucopenia y trombocitopenia, disminuyendo la agregaci&oacute;n plaquetaria.<sup>42</sup> Las pruebas de biometr&iacute;a hem&aacute;tica de algunos pacientes mostraron &iacute;ndices de trombocitopenia y plaquetopenia; sin embargo estas anormalidades no afectaron la cantidad y calidad de la muestra de RNA porque la extracci&oacute;n se realiz&oacute; a partir de las PBMC.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La t&eacute;cnica del RT&#150;PCR nos permiti&oacute; determinar que la expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT est&aacute; disminuida en los dos grupos de pacientes comparados con los voluntarios sanos. Los pacientes con dependencia al alcohol mostraron una disminuci&oacute;n en los niveles de expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT. A la fecha no existe ning&uacute;n estudio con el que podamos comparar este hallazgo. Sin embargo, a partir de la hip&oacute;tesis de que las neuronas comparten una gran similitud funcional con las c&eacute;lulas de la respuesta inmunol&oacute;gica, y que el 5&#150;HTT tanto en cerebro como en los linfocitos presenta una secuencia de amino&aacute;cidos id&eacute;ntica y una misma sensibilidad farmacol&oacute;gica, podr&iacute;amos sugerir que los estudios mediante tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de fot&oacute;n &uacute;nico (SPECT, por sus siglas en ingl&eacute;s) en pacientes alcoh&oacute;licos que reportan una reducci&oacute;n significativa del 5&#150;HTT en el tallo cerebral, comparado con sujetos sanos y nuestros resultados en linfocitos podr&iacute;an ser una aproximaci&oacute;n similar al hallazgo obtenido por el SPECT.<sup>43</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Por otra parte, en los pacientes con dependencia al alcohol y depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida la expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT fue significativamente menor comparada con los otros grupos. Nuestros resultados coinciden parcialmente con los estudios que muestran una expresi&oacute;n disminuida del gen 5&#150;HTT en pacientes con trastorno depresivo mayor comparados con voluntarios sanos.<sup>29,44</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> La coincidencia parcial de nuestros resultados en los pacientes con dependencia al alcohol se debe a que los estudios de otros grupos de investigaci&oacute;n se han enfocado a identificar las variaciones al&eacute;licas en el polimorfismo funcional del gen 5&#150;HTT (5&#150;HTTTLPR).<sup>45</sup>&#150;<sup>47</sup> Cabe se&ntilde;alar que los resultados de estos reportes no son concluyentes probablemente por las caracter&iacute;sticas demogr&aacute;ficas de las poblaciones de estudio (sexo, edad, grupo &eacute;tnico, subtipos de dependencia al alcohol y comorbilidad con otras adicciones y enfermedades psiqui&aacute;tricas).<sup>48</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Una valoraci&oacute;n indirecta de la densidad y funcionalidad del 5&#150;HTT proviene de los estudios de captura de serotonina marcada radioactivamente. En estas cuantificaciones se establece la constante de disociaci&oacute;n (Kd) y la velocidad m&aacute;xima (Vmax) de la uni&oacute;n ligando&#150;receptor (serotonina&#150; transportador 5&#150;HTT). En relaci&oacute;n con este tipo de estudios, Faraj et al. reportan que los pacientes alcoh&oacute;licos, recuperados y con periodos de abstinencia, presentan mayor captura de serotonina, lo cual podr&iacute;a sugerir un aumento en la densidad del 5&#150;HTT.<sup>33</sup> Por otra parte, en el estudio de Javors et al. se seleccionaron pacientes que cumplieron con el criterio de dependencia al alcohol pero realizaron una selecci&oacute;n por subcategor&iacute;as que se bas&oacute; en consumidores tempranos &lt; 25 a&ntilde;os y consumidores tard&iacute;os &gt; 25 a&ntilde;os y observaron una mayor captura de serotonina (&#91;<sup>3</sup>H&#93;&#150;5&#150;HT) en los consumidores tempranos <i>versus </i>los consumidores tard&iacute;os, lo cual indicar&iacute;a que los criterios de selecci&oacute;n de los pacientes con dependencia al alcohol deben estar bien delimitados para interpretar correctamente los resultados.<sup>49</sup> Dado que estos datos de captura indican una disminuci&oacute;n del 5&#150;HTT es posible suponer que nuestros datos del 5&#150;HTT en los pacientes con dependencia al alcohol coinciden con lo reportado por estos autores.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>CONCLUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Los pacientes con dependencia al alcohol con y sin depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida presentan una disminuci&oacute;n en la transcripci&oacute;n del 5&#150;HTT, as&iacute; que la expresi&oacute;n m&iacute;nima del mensaje gen&eacute;tico del 5&#150;HTT detectado en nuestros pacientes con dependencia al alcohol y depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida sugiere que esta asociaci&oacute;n puede inducir una mayor reducci&oacute;n en la transcripci&oacute;n del gen 5&#150;HTT y dar como resultado niveles m&iacute;nimos de expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Nuestro estudio se realiz&oacute; con un n&uacute;mero reducido de voluntarios sanos y pacientes, por lo que nuestros datos son preliminares y no se pueden extrapolar directamente para determinar el significado biol&oacute;gico del d&eacute;ficit en la expresi&oacute;n del gen 5&#150;HTT en la patofisiolog&iacute;a de los pacientes con dependencia al alcohol con y sin depresi&oacute;n mayor com&oacute;rbida.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> El trabajo fue realizado con el financiamiento del ICyTDF (2007) y del INPRF proyecto NC092318.1. Agradecemos al ingeniero Jos&eacute; Francisco Cort&eacute;s Sotres, Jefe de Apoyo Acad&eacute;mico, su asesor&iacute;a para la elaboraci&oacute;n de este manuscrito.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>ABREVIATURAS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 5&#150;HT: Serotonina; 5&#150;HT1: Receptor de Serotonina tipo 1; 5&#150;HT<sub>2</sub>: Receptor de Serotonina tipo 2; 5&#150;HTT: Transportador de Serotonina; 5&#150;HIIA: &aacute;cido 5&#150;hidroxi&#150;indolac&eacute;tico; PBMC: Periferical Blood Mononuclear Cells (C&eacute;lulas Mononucleares de Sangre Perif&eacute;rica); SSI: Soluci&oacute;n Salina Isot&oacute;nica; GADPH: Gliceraldhe&iacute;do 3&#150;fosfato Deshidrogenasa; cDNA: DNA complementario; DNA: &Aacute;cido Desoxirribonucleico; RNA: &Aacute;cido Ribonucleico; PCR: Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa; RT&#150;PCR: Retro&#150;Transcriptasa Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 1. World Health Organization. Global Status Report on Alcohol 2004. Switzerland: Singapore Press; 2004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057708&pid=S0185-3325201100020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 2. Fleiz C, Borges G, Rojas E, Benjet C et al. Uso de alcohol, tabaco y drogas en poblaci&oacute;n mexicana, un estudio de cohortes. Salud Mental 2007;30:63&#150;73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057710&pid=S0185-3325201100020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 3. Consejo Nacional Contra las Adicciones, Instituto Nacional de Psiquiatr&iacute;a Ram&oacute;n de la Fuente, Instituto Nacional de Salud P&uacute;blica, Fundaci&oacute;n Gonzalo del Rio Aronte IAP. Encuesta Nacional de Adicciones 2008. M&eacute;xico; 2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057712&pid=S0185-3325201100020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 4. Yaldizli O, Kuhl HC, Graf M, Wiesbeck GA et al. Risk factors for suicide attempts in patients with alcohol dependence or abuse and a history of depressive symptoms: a subgroup analysis from the WHO/ISBRA study. Drug Alcohol Rev 2010;29:64&#150;74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057714&pid=S0185-3325201100020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 5. Kandel ER, Schwartz JH, Jessell TM. Principles of neural science. Cuatra edici&oacute;n. USA: United Satates of America Press; 2000.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057716&pid=S0185-3325201100020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 6. Vengeliene V, Bilbao A, Molander A, Spanagel R. Neuropharmacology of alcohol addiction. Br J Pharmacol 2008; 154:299&#150;315.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057718&pid=S0185-3325201100020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 7. Heinz A, Goldman D, Gallinat J, Schumann G et al. Pharmacogenetic insights to monoaminergic dysfunction in alcohol dependence. Psychopharmacology (Berl) 2004;174:561&#150;570.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057720&pid=S0185-3325201100020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 8. Johnson BA. Role of the serotonergic system in the neurobiology of alcoholism: implications for treatment. CNS Drugs 2004;18:1105&#150;1118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057722&pid=S0185-3325201100020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 9. Naranjo CA, Chu AY, Tremblay LK. Neurodevelopmental liabilities in alcohol dependence: central serotonin and dopamine dysfunction. Neurotox Res 2002;4:343&#150;361.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057724&pid=S0185-3325201100020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 10. Pivac N, Muck&#150;Seler D, Mustapic M, Nenadic&#150;Sviglin K et al. Platelet serotonin concentration in alcoholic subjects. Life Sci 2004;76:521&#150;531.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057726&pid=S0185-3325201100020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 11. Nemeroff CB, Owens MJ. Treatment of mood disorders. Nat Neurosci 2002;5(Suppl):1068&#150;1070.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057728&pid=S0185-3325201100020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 12. Roy A, Bissette G, Nemeroff CB, DeJong J et al Cerebrospinal fluid thyrotropin&#150;releasing hormone concentrations in alcoholics and normal controls. Biol Psychiatry 1990;28:767&#150;772.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057730&pid=S0185-3325201100020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 13. Williams W, Reimold M, Kerich M, Hommer D et al Glucose utilization in the medial prefrontal cortex correlates with serotonin turnover rate and clinical depression in alcoholics. Psychiatry Res 2004;132:219&#150;224.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057732&pid=S0185-3325201100020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 14. Uher R, McGuffin P. The moderation by the serotonin transporter gene of environmental adversity in the aetiology of mental illness: review and methodological analysis. Mol Psychiatry 2008;13:131&#150;146.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057734&pid=S0185-3325201100020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 15. Moussas G, Christodoulou C, Douzenis A. A short review on the aetiology and pathophysiology of alcoholism. Ann Gen Psychiatry 2009;8:10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057736&pid=S0185-3325201100020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 16. Ehlers CL, Gizer IR, Vieten C, Gilder A et al Age at regular drinking, clinical course, and heritability of alcohol dependence in the San Francisco family study: a gender analysis. Am J Addict 2010;19:101&#150;110.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057738&pid=S0185-3325201100020000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 17. Stacey D, Clarke TK, Schumann G. The genetics of alcoholism. Curr Psychiatry Rep 2009;11:364&#150;369.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057740&pid=S0185-3325201100020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 18. Wurtman RJ. Genes, stress, and depression. Metabolism 2005;54:16&#150;19.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057742&pid=S0185-3325201100020000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 19. Kuzelova H, Ptacek R, Macek M. The serotonin transporter gene (5&#150;HTT) variant and psychiatric disorders: review of current literature. Neuro Endocrinol Lett 2010;31:4&#150;10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057744&pid=S0185-3325201100020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 20. Teicher MH, Andersen SL, Polcari A, Anderson CM et al. The neurobiological consequences of early stress and childhood maltreatment. Neurosci Biobehav Rev 2003;27:33&#150;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057746&pid=S0185-3325201100020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 21. Hariri AR, Holmes A. Genetics of emotional regulation: the role of the serotonin transporter in neural function. Trends Cogn Sci 2006;10:182&#150;191.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057748&pid=S0185-3325201100020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 22. Boyce&#150;Rustay JM, Wiedholz LM, Millstein RA, Carroll J et al. Ethanolrelated behaviors in serotonin transporter knockout mice. Alcohol Clin Exp Res 2006;30:1957&#150;1965.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057750&pid=S0185-3325201100020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 23. Cornelius JR, Salloum IM, Ehler JG, Jarrett PJ et al. Fluoxetine in depressed alcoholics. A double&#150;blind, placebo&#150;controlled trial. Arch Gen Psychiatry 1997;54:700&#150;705.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057752&pid=S0185-3325201100020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 24. Moak DH, Anton RF, Latham PK, Voronin KE et al. Sertraline and cognitive behavioral therapy for depressed alcoholics: results of a placebo&#150;controlled trial. J Clin Psychopharmacol 2003;23:553&#150;562.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057754&pid=S0185-3325201100020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 25. Naranjo CA, Sellers EM, Sullivan JT, Woodley DV et al. The serotonin uptake inhibitor citalopram attenuates ethanol intake. Clin Pharmacol Ther 1987;41:266&#150;274.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057756&pid=S0185-3325201100020000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 26. Naranjo CA, Kadlec KE, Sanhueza P, Woodley&#150;Remus D et al. Fluoxetine differentially alters alcohol intake and other consummatory behaviors in problem drinkers. Clin Pharmacol Ther 1990;47:490&#150;498.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057758&pid=S0185-3325201100020000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 27. Naranjo CA, Poulos CX, Bremner KE, Lanctot KL. Citalopram decreases desirability, liking, and consumption of alcohol in alcohol&#150;dependent drinkers. Clin Pharmacol Ther 1992;51:729&#150;739.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057760&pid=S0185-3325201100020000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 28. Roy&#150;Byrne PP, Pages KP, Russo JE, Jaffe C et al. Nefazodone treatment of major depression in alcohol&#150;dependent patients: a double&#150;blind, placebo&#150;controlled trial. J Clin Psychopharmacol 2000;20:129&#150;136.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057762&pid=S0185-3325201100020000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 29. Lima L, Urbina M. Serotonin transporter modulation in blood lymphocytes from patients with major depression. Cell Mol Neurobiol 2002;22:797&#150;804.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057764&pid=S0185-3325201100020000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 30. Sheng M, Kim MJ. Postsynaptic signaling and plasticity machanisms. Science 2002;298:797&#150;780.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057766&pid=S0185-3325201100020000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 31. Vicente&#150;Manzanares M, S&aacute;nchez&#150;Madrid F. Role of the cytoskeleton during leucocyte responses. Nat Rev Immuol 2004;4:110&#150;122.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057768&pid=S0185-3325201100020000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 32. Levite M. Neurotransmitters activate T&#150;cells and elicit crucial functions via neurotransmitter receptors. Curr Opin Pharmacol 2008;8:460&#150;471.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057770&pid=S0185-3325201100020000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 33. Faraj BA, Olkowski ZL, Jackso RT. Prevalence of high serotonin uptakein in limphocytes of abstinent alcoholics. Biochem Pharmacol 1997;53:53&#150;57.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057772&pid=S0185-3325201100020000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 34. Rausch JL, Monteiro MG, Schuckit MA. Platelet serotonin uptake in men with family histories of alcoholism. Neuropsychopharmacology 1991;4:83&#150;86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9057774&pid=S0185-3325201100020000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> 35. Heinze G. 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