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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección de Virus que Afectan al Cultivo de Chile (Capsicum annuum L.) en Chihuahua, México]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of the present work was to determine the incidence of 12 viruses present in the two pepper-producing regions of the State of Chihuahua. A total of 203 symptomatic leaf samples were collected in 10 sites of the South-Central and North regions and tested by DAS-ELISA, using virus-specific polyclonal antibodies. The incidence and severity of the viral infections were higher in the North region. CMV, TMV, AMV, TEV, TBSV, PMMoV, PVY and PepMV were detected in the South-Central region, while in the North region TRSV, TBSV, INSV, TEV, CMV, TMV PVY, TSWV and ToRSV were detected. Five of the detected viruses were common in both regions. CMV and TMV were predominant in the South-Central region, while TRSV and TBSV were the most frequent in the North region. Over 44% and 78% of the positive samples in the South-Central and the North regions respectively consisted of mixed infections. This is the first study that reports 12 viruses and multiple infections in pepper of Chihuahua State and the first in reporting TBSV in pepper in Mexico.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Detecci&oacute;n de Virus que Afectan al Cultivo de Chile <i>(Capsicum annuum</i> L.) en Chihuahua, M&eacute;xico</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Detection of Virus Affecting Chilli Pepper Crop <i>(Capsicum annuum</i> L.)</b> <b>in Chihuahua, Mexico</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Ana Cecilia Gonz&aacute;lez Franco<sup>1</sup>, Emma Monserrath Gill Langarica<sup>1</sup>, Loreto Robles Hern&aacute;ndez<sup>1</sup>, Abelardo N&uacute;&ntilde;ez Barrios<sup>1</sup>, Ramona P&eacute;rez Leal<sup>1</sup>, Ofelia Adriana Hern&aacute;ndez Rodr&iacute;guez<sup>1</sup>, Luis P&eacute;rez Moreno<sup>2</sup></b><sup></sup></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Facultad de Ciencias Agrotecnol&oacute;gicas, Universidad Aut&oacute;noma de Chihuahua, Ciudad Universitaria s/n Campus 1, Chihuahua, Chihuahua, CP 31310, M&eacute;xico. </i>Correspondencia: <a href="mailto:lrobles@uach.mx">lrobles@uach.mx</a></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Divisi&oacute;n de Ciencias de la Vida, Campus Irapuato&#45;Salamanca, Universidad de Guanajuato. Apartado Postal 311, Irapuato, Gto., CP 36500, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Julio 29, 2014    <br> Aceptado: Septiembre 26, 2014</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo del presente trabajo fue determinar la incidencia de 12 virus presentes en las dos regiones productoras de chile en el estado de Chihuahua. Se colectaron 203 muestras foliares sintom&aacute;ticas en 10 localidades de las regiones centro&#45;sur y norte del Estado y se analizaron mediante la t&eacute;cnica DAS&#45;ELISA, utilizando anticuerpos policlonales espec&iacute;ficos. La incidencia y severidad de infecciones de tipo viral fueron superiores en la zona norte. CMV, TMV, AMV, TEV, TBSV, PMMoV, PVY y PepMV se detectaron en la regi&oacute;n centro&#45;sur, mientras que en la regi&oacute;n norte se identificaron TRSV, TBSV, INSV, TEV, CMV, TMV PVY, TSWV y ToRSV. Cinco de los virus detectados fueron comunes en las dos regiones. CMV y TMV fueron predominantes en la regi&oacute;n centro&#45;sur, y TRSV y TBSV lo fueron en la regi&oacute;n norte. El 44% de las muestras positivas para la regi&oacute;n centro&#45;sur fueron infecciones mixtas, mientras que para la norte fueron el 78%. Este es el primer estudio que reporta la presencia de 12 especies de virus e infecciones m&uacute;ltiples en el cultivo de chile del estado de Chihuahua y el primero en reportar al TBSV en el cultivo de chile en M&eacute;xico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave adicionales</b>: DAS&#45;ELISA, CMV, TMV, AMV, TRSV, TBSV, INSV.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The objective of the present work was to determine the incidence of 12 viruses present in the two pepper&#45;producing regions of the State of Chihuahua. A total of 203 symptomatic leaf samples were collected in 10 sites of the South&#45;Central and North regions and tested by DAS&#45;ELISA, using virus&#45;specific polyclonal antibodies. The incidence and severity of the viral infections were higher in the North region. CMV, TMV, AMV, TEV, TBSV, PMMoV, PVY and PepMV were detected in the South&#45;Central region, while in the North region TRSV, TBSV, INSV, TEV, CMV, TMV PVY, TSWV and ToRSV were detected. Five of the detected viruses were common in both regions. CMV and TMV were predominant in the South&#45;Central region, while TRSV and TBSV were the most frequent in the North region. Over 44% and 78% of the positive samples in the South&#45;Central and the North regions respectively consisted of mixed infections. This is the first study that reports 12 viruses and multiple infections in pepper of Chihuahua State and the first in reporting TBSV in pepper in Mexico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Additional keywords</b>: DAS&#45;ELISA, CMV, TMV, AMV, TRSV, TBSV, INSV.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">M&eacute;xico ocupa el primer lugar en producci&oacute;n de chile verde <i>(Capsicum annuum</i> L.) a nivel mundial con una superficie sembrada de 138,188.21 ha y una producci&oacute;n de 2,379,735.80 t (SAGARPA, 2012). Este cultivo es uno de los m&aacute;s importantes en M&eacute;xico por su rentabilidad y alta demanda de mano de obra (P&eacute;rez y Rico, 2004). A nivel nacional, Chihuahua ocupa el primer lugar en producci&oacute;n con 562,166.53 t y el tercer lugar en valor de la producci&oacute;n con una aportaci&oacute;n de casi dos billones de pesos. En Chihuahua la producci&oacute;n de chile se centra en las regiones centro&#45;sur y norte. En la zona norte se sembraron 13,098.36 ha en el 2012, con una producci&oacute;n de 195,988.7 t y un valor de producci&oacute;n por arriba de 817 millones de pesos, equivalente a un 41.7% del total de la aportaci&oacute;n estatal. Los principales municipios que conforman esta zona son Ascensi&oacute;n, Buenaventura, Galeana, Janos, Constituci&oacute;n y Nuevo Casas Grandes. En la regi&oacute;n centro&#45;sur se sembraron 9,588.52 ha, con una producci&oacute;n de 371,521.41 t y un valor de producci&oacute;n superior a un bill&oacute;n de pesos, equivalente a un 57.5% del total de la aportaci&oacute;n en el Estado, en el 2012. Esta zona est&aacute; constituida principalmente por los municipios de Allende, Camargo, Delicias, Jim&eacute;nez, Julimes, Meoqui y Rosales (SAGARPA, 2012). En el cultivo de chile, las enfermedades representan uno de los factores de riesgo para su rentabilidad por lo que resulta necesario protegerlo del ataque de los diferentes pat&oacute;genos. En los &uacute;ltimos a&ntilde;os las enfermedades causadas por virus han ocasionado p&eacute;rdidas econ&oacute;micas importantes debido a la reducci&oacute;n en la producci&oacute;n de diferentes cultivos hort&iacute;colas en M&eacute;xico (Astier <i>et al.,</i> 2007). Estas p&eacute;rdidas var&iacute;an cada a&ntilde;o, y han estado en funci&oacute;n del manejo del cultivo y las condiciones clim&aacute;ticas, alcanzando en algunos casos p&eacute;rdidas hasta de un 100% (Vidales y Alcantar, 1989). Las plantas infectadas por virus tienen un ciclo vegetativo m&aacute;s corto y los s&iacute;ntomas m&aacute;s comunes son ampollamiento, enanismo, mosaicos, moteados, necrosis, clorosis y deformaciones (Murphy y Warren, 2003; Agrios, 2005; Astier <i>et al.,</i> 2007). Estas enfermedades se han incrementado en casi todas las regiones de M&eacute;xico, convirti&eacute;ndose en uno de los problemas de mayor importancia en los cultivos hort&iacute;colas (P&eacute;rez y Rico, 2004). Para realizar un control eficiente de una enfermedad es importante identificar el agente causal, ya que una buena identificaci&oacute;n de &eacute;ste garantiza el &eacute;xito en las medidas de su control (Gonz&aacute;lez y Delgadillo, 1989). En el caso espec&iacute;fico de las enfermedades de tipo viral, no es suficiente el reconocimiento de los s&iacute;ntomas, ya que los s&iacute;ntomas causados por los diferentes virus a veces son similares (P&eacute;rez&#45;Moreno <i>et al.,</i> 2004), o se confunden con da&ntilde;os por herbicidas o por desbalances nutricionales. Adem&aacute;s, las plantas pueden estar infectadas simult&aacute;neamente por m&aacute;s de un virus, por lo que es importante utilizar t&eacute;cnicas de diagn&oacute;stico especializadas que permitan la identificaci&oacute;n plena de los agentes virales (Harris, 1994). Entre estas t&eacute;cnicas, la prueba de ELISA (Enzyme Linked Immunosorbent Assay, por sus siglas en ingl&eacute;s) ha sido una de las m&aacute;s utilizadas en detecci&oacute;n de virus en plantas (Cruz y Fr&iacute;as, 1997). A nivel nacional se han reportado hasta 13 especies de virus con genomas de ARN asociados con enfermedades en el cultivo de chile (N&uacute;&ntilde;ez <i>et al.,</i> 1996; P&eacute;rez y Rico, 2004; Robles <i>et al.,</i> 2010); sin embargo, ninguna de estas especies se ha descrito en el estado de Chihuahua. Por lo anterior, el objetivo del presente trabajo fue determinar la incidencia de las especies virales presentes en el cultivo de chile de las dos principales regiones productoras de este cultivo en el estado de Chihuahua. En ambas regiones productoras de chile se determinaron las variables incidencia y severidad de la virosis en campo, detecci&oacute;n de especies virales, proporci&oacute;n de virus detectados por localidad y an&aacute;lisis de infecciones m&uacute;ltiples.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de la incidencia y severidad.</b> Se realizaron recorridos de campo en la etapa de desarrollo y fructificaci&oacute;n del cultivo para determinar la incidencia y severidad en plantas de chile que presentaban s&iacute;ntomas caracter&iacute;sticos de una probable enfermedad de tipo viral en cuatro localidades de la regi&oacute;n centro&#45;sur y en seis localidades de la regi&oacute;n norte del estado de Chihuahua (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). En cada localidad se seleccionaron tres predios para su evaluaci&oacute;n. Para medir la incidencia se seleccion&oacute; el 10% del total de surcos distribuidos a lo largo y ancho de cada predio. Se hizo el conteo de plantas aparentemente sanas y plantas que presentaban s&iacute;ntomas caracter&iacute;sticos de enfermedades virales, tales como mosaicos, moteado, deformaci&oacute;n de hojas, clorosis, ampollamiento y enanismo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La incidencia se calcul&oacute; con base en la proporci&oacute;n de las plantas sintom&aacute;ticas con respecto al total de plantas en cada sitio muestreado. La severidad se determin&oacute; en cada predio mediante una escala arbitraria de 5 categor&iacute;as, donde 0 = plantas sanas, 1 = 1&#45;25% de da&ntilde;o, 2 = 25.1&#45;50% de da&ntilde;o, 3 = 50.1&#45;75% de da&ntilde;o y 4 = 75.1&#45;100% de da&ntilde;o. El &iacute;ndice de severidad se estim&oacute; por medio de la siguiente f&oacute;rmula:</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">IS= (2n.v/5N)*100</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde IS = &Iacute;ndice de Severidad, n = n&uacute;mero de plantas por cada categor&iacute;a, v = valor num&eacute;rico de cada categor&iacute;a y N=N&uacute;mero total de plantas por localidad (Escalona, 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Colecta de muestras en campo.</b> La colecta de muestras foliares con sintomatolog&iacute;a caracter&iacute;stica de enfermedades virales en chile se realiz&oacute; de acuerdo a la metodolog&iacute;a de Hern&aacute;ndez <i>et al.</i> (1998) durante los meses de junio, julio y agosto de 2008 en la regi&oacute;n centro&#45;sur y en julio y agosto de 2009 en la regi&oacute;n norte. En la primera regi&oacute;n se obtuvieron 129 muestras distribuidas por cada localidad (CS1, n=43; CS2, n=9; CS3, n=54; CS4, n=23) y en la regi&oacute;n norte 74 muestras (N1, n=20; N2, n=9; N3, n=7; N4, n=18; N5, n=12; N6, n=8). Las muestras se colectaron en bolsas de pl&aacute;stico y se colocaron en una hielera acondicionada a 4&deg;C para su transporte al laboratorio, en donde se almacenaron temporalmente a &#45;20&deg;C hasta su procesamiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Procesamiento de las muestras.</b> Las muestras se procesaron en el laboratorio de Fitopatolog&iacute;a de la Divisi&oacute;n de Ciencias de la Vida (DICIVA&#45;CIS&#45;UG) y en el laboratorio de Microbiolog&iacute;a Aplicada, Fitopatolog&iacute;a y Fisiolog&iacute;a Poscosecha de la Facultad de Ciencias Agrotecnol&oacute;gicas, UACH. Para la detecci&oacute;n de los virus se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de inmunoadsorci&oacute;n enzim&aacute;tica en fase s&oacute;lida tipo s&aacute;ndwich (DAS&#45;ELISA) seg&uacute;n las recomendaciones del fabricante (Agdia Inc., 2008 y 2009), la cual se realiza en dos d&iacute;as (Clark y Adams, 1977; Cruz y Fr&iacute;as, 1997). En los ensayos se utilizaron los anticuerpos policlonales espec&iacute;ficos para la detecci&oacute;n de los virus TEV <i>(Tobacco etch virus),</i> CMV <i>(Cucumber mosaic virus),</i> PVY <i>(Potato virus Y),</i> TMV <i>(Tobacco mosaic virus),</i> PMMoV <i>(Pepper mild mottle virus),</i> PepMV <i>(Pepper mottle virus),</i> AMV <i>(Alfalfa mosaic virus),</i> TRSV <i>(Tobacco ring spot virus),</i> TBSV <i>(Tomato bushy stunt virus),</i> ToRSV <i>(Tomato ring spot virus),</i> INSV <i>(Impatient necrotic spot virus)</i> y TSWV <i>(Tomato spotted wilt virus).</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Origen de los antisueros.</b> Los anticuerpos se obtuvieron de la compa&ntilde;&iacute;a Agdia Inc., USA en 2008 y 2009, los cuales se preservaron de acuerdo a las recomendaciones del fabricante hasta el momento de realizar los bioensayos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n de lecturas.</b> Las lecturas de absorbancia se obtuvieron utilizando un lector de microplacas marca BioRad, modelo 3550&#45;UV a una longitud de onda de 405 nm, ya que en el sistema de detecci&oacute;n de los virus estudiados se utiliz&oacute; la enzima fosfatasa alcalina.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n del l&iacute;mite de detecci&oacute;n.</b> El l&iacute;mite de detecci&oacute;n se determin&oacute; considerando como positivas todas las muestras que tuvieron un valor de absorbancia dos veces mayor al promedio del valor de la absorbancia del control negativo; por lo que todo valor de absorbancia obtenido de las muestras que estuviera por arriba de este l&iacute;mite, se consider&oacute; positivo.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Incidencia y severidad de la virosis.</b> La incidencia y severidad se determin&oacute; en plantas de chile que presentaban s&iacute;ntomas caracter&iacute;sticos de infecciones de tipo viral. En la regi&oacute;n centro&#45;sur, se observ&oacute; una mayor incidencia e &iacute;ndice de severidad en la localidad CS4 con valores de 15.9% y 5.4%, respectivamente, siendo mayor la categor&iacute;a 1 en la escala de severidad. Lo anterior muestra que aunque se tienen menor cantidad de plantas en la categor&iacute;a 4, el avance de la enfermedad es muy importante, lo cual podr&iacute;a incrementar la diseminaci&oacute;n de las enfermedades virales, causar la p&eacute;rdida de plantas y reducir de manera importante la producci&oacute;n de chile. Por otro lado, las localidades CS1, CS2 y CS3 fueron similares en las variables de incidencia (3.9%, 3.7% y 4.3%, respectivamente) e &iacute;ndice de severidad (1.3%, 1.7% y 1.7%, respectivamente) (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). En la regi&oacute;n norte, las localidades N1 y N3 presentaron la mayor incidencia de plantas con s&iacute;ntomas de tipo viral con valores de 23 y 25%, respectivamente, mientras que los valores m&aacute;s bajos de &eacute;sta variable se presentaron en la localidad N6; sin embargo, esta &uacute;ltima localidad present&oacute; el &iacute;ndice de severidad m&aacute;s alto con un 47.7%, predominando la categor&iacute;a 4 en la escala de severidad (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Detecci&oacute;n de virus.</b> De las regiones evaluadas, se detectaron ocho virus en la centro&#45;sur y nueve virus en la norte; obteni&eacute;ndose cinco virus en com&uacute;n: TMV, CMV, TBSV, TEV y PVY. De 129 muestras foliares con sintomatolog&iacute;a de tipo viral procedentes de la regi&oacute;n centro&#45;sur, 89 fueron positivas para al menos un tipo de virus. En esta regi&oacute;n se detectaron los virus CMV, TMV, AMV, TBSV, PMMoV, TEV, PVY y PepMV; los dos primeros presentaron la mayor frecuencia con valores de 36% y 20% respectivamente. Los virus menos frecuentes fueron PVY (5%) y PepMV (1%). Por otro lado, 42 de 74 muestras foliares procedentes de la regi&oacute;n norte resultaron positivas para al menos alguno de los siguientes virus: TRSV, TBSV, INSV, TEV, CMV, TMV, PVY, TSWV y ToRSV; los virus TRSV (53%) y TBSV (42%) fueron los m&aacute;s frecuentes mientras que TSWV (3%), PVY (3%) y ToRSV (1%) se presentaron con la menor frecuencia (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4f4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las 10 localidades de este estudio, tres de la regi&oacute;n centro&#45;sur (CS1, CS2 y CS3) y una de la norte (N4) sobresalieron por presentar siete y ocho de los virus evaluados respectivamente. En la regi&oacute;n centro&#45;sur, los virus TMV, AMV, CMV y PVY se detectaron en las cuatro localidades, present&aacute;ndose los tres primeros en proporciones importantes en al menos dos de ellas, mientras que PVY fue detectado en las cuatro localidades, pero en una baja proporci&oacute;n. Los virus PMMoV y TBSV se encontraron en tres de las cuatro localidades, detect&aacute;ndose en alta proporci&oacute;n en la localidad CS2 (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Por otro lado, en la regi&oacute;n norte, el TRSV se present&oacute; en altas proporciones en cinco de las seis localidades (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). El virus TBSV se detect&oacute; en altas proporciones en las localidades N4, N5 y N6. Finalmente, el INSV s&oacute;lo se present&oacute; en la localidad N4, pero con una proporci&oacute;n alta (0.6) (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Infecciones m&uacute;ltiples.</b> De las muestras positivas analizadas por DAS&#45;ELISA en la regi&oacute;n centro&#45;sur, el 55% de ellas fueron positivas para un solo virus, el 29% para dos tipos virus y 9% para muestras infectadas con tres tipos de virus; tambi&eacute;n se detectaron muestras infectadas con cuatro, cinco y seis virus en un menor porcentaje. Los virus TMV y CMV se presentaron en casi todas las combinaciones (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). En la regi&oacute;n norte, el 21.4% de las muestras fueron positivas para un solo virus; tambi&eacute;n se detectaron combinaciones de dos, tres, cuatro y cinco virus, siendo las dos primeras las m&aacute;s comunes con valores de 40.5% y 19%, respectivamente (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>). El virus TRSV se present&oacute; en todas las combinaciones, mientras que TBSV estuvo presente en casi todas. Los virus INSV, TEV, TMV solo se presentaron en las combinaciones de tres a cinco virus (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente estudio se evalu&oacute; la incidencia y severidad de plantas de chile con sintomatolog&iacute;a caracter&iacute;stica de tipo viral en las regiones centro&#45;sur y norte del estado de Chihuahua. Asimismo, se detect&oacute; la presencia de 12 especies de virus en muestras foliares y con ello se determin&oacute; su frecuencia y complejidad viral.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la regi&oacute;n norte se presentaron los valores mas altos de incidencia e &iacute;ndice de severidad. Esta diferencia podr&iacute;a estar relacionada con el manejo del cultivo, ya que los sistemas de producci&oacute;n en dicha regi&oacute;n son menos tecnificados que en la centro&#45;sur. Sep&uacute;lveda <i>et al.</i> (2005) mediante la instalaci&oacute;n de acolchado y aplicaciones de hierro, obtuvieron un bajo porcentaje de infecci&oacute;n y desarrollo de la virosis hasta en un 8.2% de incidencia, mientras que sin acolchado pero con la aplicaciones de hierro tuvieron una incidencia de un 24.4%. Por otra parte, Guig&oacute;n&#45;L&oacute;pez y Gonz&aacute;lez&#45;Gonz&aacute;lez (1999) encontraron que las combinaciones chile&#45;sorgo y chile&#45;ma&iacute;z disminuyeron la incidencia de la virosis hasta en un 39% y retrasaron el desarrollo de sintomatolog&iacute;a de tipo viral en un 60%. Asimismo, las condiciones clim&aacute;ticas podr&iacute;an jugar un papel importante en el desarrollo de las enfermedades virales. Guig&oacute;n&#45;L&oacute;pez y Gonz&aacute;lez&#45;Gonz&aacute;lez (1999) reportaron que la siembra de abril era mejor que la de mayo, reflej&aacute;ndose en la reducci&oacute;n de la incidencia, la tasa de infecci&oacute;n aparente y el desarrollo de la sintomatolog&iacute;a de tipo viral.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tun&#45;Azul <i>et al.</i> (2004) reportaron una incidencia de la virosis en el cultivo de chile del 87% y un &iacute;ndice de severidad del 3%. En nuestro estudio, la incidencia fue menor pero el &iacute;ndice de severidad fue similar para algunas localidades de la regi&oacute;n centro&#45;sur; sin embargo, el &iacute;ndice de severidad promedio de la regi&oacute;n norte fue superior al reportado por dichos autores.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las dos regiones evaluadas, se detectaron ocho virus en la regi&oacute;n centro&#45;sur y nueve en la norte, de los cuales cinco fueron en com&uacute;n; sin embargo, los virus m&aacute;s abundantes fueron diferentes entre regiones. En la regi&oacute;n centro&#45;sur, los virus que se detectaron con mayor frecuencia fueron CMV, TMV y AMV, los cuales est&aacute;n distribuidos en todo el mundo (Alonso&#45;Prados <i>et al.,</i> 1998; Hull, 2002; Himmel, 2003). El CMV es uno de los virus de mayor importancia debido a su impacto econ&oacute;mico (Alonso&#45;Prados <i>et al.,</i> 1998), a su extensivo rango de hospederos (Hull, 2002) y a su eficiente transmisi&oacute;n de manera no persistente por m&aacute;s de 75 especies de &aacute;fidos, as&iacute; como por su transmisi&oacute;n mec&aacute;nica y por semilla (Murphy, 2003; Astier <i>et al.,</i> 2007); lo anterior, se puede considerar para tomar acciones preventivas en nuestra regi&oacute;n mediante un manejo integrado de plagas, as&iacute; como usar semilla certificada y evitar en lo posible la manipulaci&oacute;n de plantas. El TMV se ha caracterizado por infectar cultivares del g&eacute;nero <i>Capsicum,</i> en donde ocasiona p&eacute;rdidas en la producci&oacute;n de hasta un 70% en cultivares susceptibles. La frecuencia de este virus se incrementa en el cultivo de chile por la manipulaci&oacute;n de pl&aacute;ntulas durante el trasplante o durante el desarrollo de las plantas, ya que este virus se transmite mayormente por contacto y mec&aacute;nicamente (Himmel, 2003). Adem&aacute;s, con frecuencia los trabajadores fuman durante los horarios de trabajo, lo cual es un riesgo de contaminaci&oacute;n para iniciar las infecciones con este virus debido a que el TMV mantiene su estructura y actividad en la ceniza del cigarro cuando el tabaco proviene de un campo infectado con el virus (Hull, 2002). El AMV infecta una amplia gama de cultivos agr&iacute;colas de importancia econ&oacute;mica; es causa de importantes p&eacute;rdidas en los cultivos de chile en pa&iacute;ses como Bulgaria, Hungr&iacute;a, Yugoslavia, M&eacute;xico y Estados Unidos de Norteam&eacute;rica. La frecuencia de este virus se incrementa cuando el cultivo de chile se encuentra cerca de las plantaciones de alfalfa y puede causar p&eacute;rdidas en el rendimiento del cultivo hasta en un 65% (Hull, 2002). Este virus podr&iacute;a ser un riesgo importante en esta regi&oacute;n, ya que por lo general tambi&eacute;n se produce alfalfa y es frecuente encontrar plantaciones de este cultivo cercanas a los campos de chile, favoreciendo el flujo de insectos vectores entre los cultivos y con ello la diseminaci&oacute;n del virus. El AMV es transmitido de manera no persistente por al menos 14 especies de &aacute;fidos, incluyendo el &aacute;fido verde del durazno, el &aacute;fido del ch&iacute;charo y el &aacute;fido azul de la alfalfa (Hull, 2002; Creamer, 2003; Astier <i>et al.,</i> 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, el virus PVY se encontr&oacute; en las cuatro localidades de la regi&oacute;n centro&#45;sur, por lo que es importante conocer su biolog&iacute;a y su distribuci&oacute;n para tomar acciones preventivas de control. El PVY tambi&eacute;n se ha reportado en Puebla, Toluca, Coahuila y Nuevo Le&oacute;n y es considerado uno de los virus m&aacute;s da&ntilde;inos en plantas de chile, tomate y tabaco, ya que causa p&eacute;rdidas econ&oacute;micas importantes en estos cultivos (Luis&#45;Arteaga y Ponz, 2003). Pueden distinguirse muchos grupos de razas de PVY de acuerdo a la severidad de s&iacute;ntomas que causa en chile. Fanigliulo <i>et al.</i> (2005) reportaron una cepa recombinante de PVY (PVY<sup>NNP</sup>) que induce necrosis venal en chile; asimismo, Llave <i>et al.</i> (1999) reportaron los patotipos de PVY 0, PVY 1 y PVY 1&#45;2 en el cultivo de chile. Este virus se transmite por semilla y por &aacute;fidos en forma no persistente; el &aacute;fido <i>Myzus persicae</i> es la especie m&aacute;s eficiente en muchas regiones (Hull, 2002; Luis&#45;Arteaga y Ponz, 2003), el cual deber&iacute;a de monitorearse en esta regi&oacute;n para tomar acciones de control antes de que &eacute;ste represente un riesgo para el cultivo de chile. Aunque los virus INSV, TRSV, ToRSV y TSWV se han reportado en M&eacute;xico afectando el cultivo de chile, no fue posible su detecci&oacute;n en ninguna de las localidades estudiadas en esta regi&oacute;n. Lo anterior sugiere que la regi&oacute;n centro&#45;sur podr&iacute;a estar libre de estos virus y por lo tanto se deber&iacute;an tomar acciones para prevenir su entrada, ya que estos virus en general son de f&aacute;cil transmisi&oacute;n si no se tiene cuidado al momento de seleccionar la semilla o manipular las pl&aacute;ntulas tanto en invernadero como en campo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la regi&oacute;n norte, los virus con mayor frecuencia fueron TRSV, TBSV e INSV. Rodr&iacute;guez <i>et al.</i> (2004) en un estudio de detecci&oacute;n de enfermedades virales en Venezuela, reportaron que el virus TRSV present&oacute; una incidencia del 59%, la cual fue similar a los resultados obtenidos para este virus en la regi&oacute;n norte. Este virus se transmite mec&aacute;nicamente, por semilla y por nematodos (Hull, 2002; Atier <i>et al.,</i> 2007). La diseminaci&oacute;n por nematodos ser&iacute;a poco eficiente debido a la baja movilidad de &eacute;stos a grandes distancias dentro de las plantaciones (Hull, 2002). Su importancia est&aacute; en que podr&iacute;an ser diseminadores de virus a partir de in&oacute;culo primario, b&aacute;sicamente a plantas vecinas o a corta distancia cuando se utiliza riego por surcos y eventualmente pueden ser movidos a grandes distancias con restos de suelo en implementos mecanizados (Rodr&iacute;guez <i>et</i> al., 2004).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El virus TBSV particularmente infecta tomate en invernaderos y &aacute;rboles frutales en varias regiones del mundo (Astier <i>et al.,</i> 2007). Este virus no es com&uacute;n en el cultivo de chile y escasos estudios mencionan la infecci&oacute;n natural de plantas de chile con TBSV (Fischer y Lockhart, 1977); sin embargo, en este estudio el TBSV se present&oacute; en la regi&oacute;n norte y fue uno de los m&aacute;s abundantes, por lo que este podr&iacute;a ser el primer reporte de este virus en el cultivo de chile en M&eacute;xico. El TBSV se transmite en forma mec&aacute;nica, por semilla, por contacto, por propagaci&oacute;n vegetativa y en ocasiones por el hongo <i>Olpidium</i> spp. (Astier <i>et al.,</i> 2007). Lo anterior establece las bases para un estudio posterior sobre la caracterizaci&oacute;n completa de este virus y su manejo en el estado de Chihuahua.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El virus INSV se encuentra distribuido a nivel mundial (Kuo <i>et al.,</i> 2014; Elliott <i>et al.,</i> 2009). Este virus es devastador de plantas ornamentales, detectado por primera vez en Nueva Zelanda, y donde se siguen realizando estudios de distribuci&oacute;n del virus en diversos hospederos (Elliott <i>et al.,</i> 2009); su dispersi&oacute;n mundial se le atribuye principalmente a su vector, el trips <i>Frankliniella occidentalis.</i> Aunque el INSV no es muy frecuente en cultivos a cielo abierto, Kuo <i>et al.</i> (2014) reportaron su presencia en cultivos de lechuga en California, EUA con resultados devastadores; Gonz&aacute;lez&#45;Pacheco y SilvaRosales (2013) lo reportaron por primera vez en plantas de tomatillo y de chile en M&eacute;xico a trav&eacute;s de una evaluaci&oacute;n en los estados de Guanajuato y Quer&eacute;taro. En el presente estudio, se detect&oacute; el INSV por primera vez en la regi&oacute;n norte del estado de Chihuahua, con una frecuencia alta.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor diversidad e incidencia de virus se registr&oacute; en las localidades CS2 con siete virus, donde destacan por su incidencia AMV, TMV y PMMoV y N4 con ocho virus, destacando por su incidencia TBSV, TRSV e INSV (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4c1.jpg" target="_blank">Cuadros 1</a> y <a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4c2.jpg" target="_blank">2</a>). Lo anterior convierte a estas localidades en una fuente de dispersi&oacute;n de los virus detectados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Infecciones m&uacute;ltiples.</b> De las dos regiones productoras de chile en el estado de Chihuahua, el 44% de las muestras positivas de la regi&oacute;n centro&#45;sur mostraron infecciones virales mixtas en combinaciones de dos a seis virus (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>); en la regi&oacute;n norte, del total de muestras positivas, el 78% se relaciona con infecciones mixtas con combinaciones de dos a cinco virus (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a4c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>). Garz&oacute;n&#45;Tiznado <i>et al.</i> (2005) encontraron un 49% de infecciones mixtas en chile en la regi&oacute;n centro&#45;norte del pac&iacute;fico mexicano, coincidiendo a lo reportado en este estudio para la regi&oacute;n centro sur; pero con un valor inferior al de la regi&oacute;n norte. Asimismo, estos autores reportaron la combinaci&oacute;n TEV&#45;CMV como la m&aacute;s frecuente, similar a lo detectado en la regi&oacute;n centro&#45;sur de este estudio. Afouda <i>et al.</i> (2013) obtuvieron infecciones mixtas de dos y tres virus, coincidiendo solamente con la mezcla de CMV&#45;TMV de la regi&oacute;n centro&#45;sur, que fue una de las m&aacute;s abundantes. Las combinaciones CMV&#45;TMV y CMV&#45;TRSV fueron detectadas en un trabajo previo en el cultivo de chile en Venezuela (Rodr&iacute;guez <i>et al.,</i> 2004), las cuales coinciden con las combinaciones m&aacute;s abundantes para la regi&oacute;n centro&#45;sur y norte, respectivamente de este estudio. Green (2003) report&oacute; infecciones virales m&uacute;ltiples de PMMoV&#45;TMV y PMMoV&#45;ToMV en cultivos de chile a campo abierto, coincidiendo la primera combinaci&oacute;n con este estudio para la regi&oacute;n centro&#45;sur, pero no fue de las m&aacute;s frecuentes. Otros autores reportan que la mezcla PMMoV&#45;PVY&#45;TEV ocurre frecuentemente en campos cultivados con chile (Hull, 2002; Murphy y Zitter, 2003), pero &eacute;sta no se present&oacute; en ninguna combinaci&oacute;n de tres virus en las dos regiones evaluadas en Chihuahua. El INSV se ha encontrado en infecciones mixtas con el TSWV (Elliott <i>et al.,</i> 2009; Kuo <i>et al.,</i> 2014); pero en este estudio, se detect&oacute; en infecciones triples asociado siempre a TRSV y TBSV y s&oacute;lo en infecciones de cinco virus, el INSV se detect&oacute; con el TSWV.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La incidencia y el &iacute;ndice de severidad de plantas con s&iacute;ntomas de tipo viral en el cultivo de chile fueron mayores en la regi&oacute;n norte. En la regi&oacute;n centro&#45;sur se detectaron los virus CMV, TMV, AMV, TEV, TBSV, PMMoV, PVY y PepMV, y en la regi&oacute;n norte fueron TRSV, TBSV, INSV, TEV, CMV, TMV PVY, TSWV y ToRSV. Los virus CMV, TMV y AMV predominaron en la regi&oacute;n centro&#45;sur y TRSV, TBSV e INSV en la regi&oacute;n norte. Cerca de la mitad de las muestras positivas en la regi&oacute;n centro&#45;sur y la mayor&iacute;a de las de la norte fueron infecciones virales mixtas. En la regi&oacute;n centro&#45;sur se presentaron infecciones de hasta de seis virus, mientras que en la norte hasta de cinco; las infecciones mixtas de dos virus fueron las m&aacute;s abundantes en ambas regiones. El TMV se present&oacute; en casi todas las infecciones mixtas en la regi&oacute;n centro&#45;sur, mientras que en la norte, la asociaci&oacute;n TRSV&#45;TBSV estuvo en casi todas las combinaciones. Este es el primer estudio que reporta la presencia de 12 especies de virus y el primero en mostrar las infecciones mixtas en el estado de Chihuahua. Asimismo, el TBSV se reporta por primera vez en el cultivo de chile en M&eacute;xico. Con lo anterior, es necesario concientizar a los productores de chile para que lleven a cabo un buen manejo del cultivo en todas las etapas del sistema de producci&oacute;n para prevenir infecciones virales. Con este estudio se podr&iacute;an iniciar nuevos trabajos de investigaci&oacute;n relacionados con la caracterizaci&oacute;n de las especies virales detectadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos.</b> Los autores agradecen a la Fundaci&oacute;n Produce&#45;Chihuahua y al Consejo Estatal de Productores de Chile del estado de Chihuahua por financiar esta investigaci&oacute;n, Clave: 08&#45;2007&#45;004.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Afouda LAC, Kotchofa R, Sare R, Zinsou V and Winter S. 2013. Occurence and distribution of viruses infecting tomato and pepper in Alibori in northern Benin. Phytoparasitica 41:271&#45;276.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486261&pid=S0185-3309201400010000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Agrios GN. 2005. Plant pathology. Fifth edition. Academic Press. New York, USA. 922 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486263&pid=S0185-3309201400010000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Alonso&#45;Prados JL, Aranda MA, Malpica JM, Garc&iacute;a&#45;Arenal F and Fraile A. 1998. Satellite RNA of Cucumber mosaic cucumovirus spreads epidemically in natural populations of its helper virus. Phytopathology 88:520&#45;524.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486265&pid=S0185-3309201400010000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Astier S, Albouy J, Maury Y, Robaglia C and Lecoq H. 2007. Principles of plant virology. Science Publishers. Enfield, NH, USA. 472 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486267&pid=S0185-3309201400010000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Clark MF and Adams AN. 1977. Characteristics of the funding this research, Code: 08&#45;2007&#45;004. microplate method of enzyme&#45;linked immunosorbent assay for the detection of plant viruses. Journal of General Virology 34:475&#45;483.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486269&pid=S0185-3309201400010000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Creamer R. 2003. <i>Alfalfa mosaic virus.</i> Compendium of pepper diseases. APS PRESS, p. 24&#45;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486271&pid=S0185-3309201400010000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cruz FM y Fr&iacute;as TGA. 1997. Gu&iacute;a ilustrada de la prueba de Inmunoadsorci&oacute;n con enzimas ligadas para la detecci&oacute;n de fitopat&oacute;genos. Secretar&iacute;a de Agricultura, Ganader&iacute;a y Desarrollo Rural, Subsecretar&iacute;a de Agricultura y Ganader&iacute;a, Comisi&oacute;n Nacional de Sanidad Agropecuaria, Direcci&oacute;n General de Sanidad Vegetal, Centro Nacional de Referencia de Diagn&oacute;stico Fitosanitario. M&eacute;xico, D.F. 23 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486273&pid=S0185-3309201400010000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Elliott DR, Lebas BSM, Ochoa&#45;Corona FM, Tang J and Alexander BJR. 2009. Investigation of <i>Impatiens necrotic spot virus</i> outbreaks in New Zealand. Australian Plant Pathology 38:490&#45;495.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486275&pid=S0185-3309201400010000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Escalona AMA. 2002. Interacci&oacute;n de plantas de caf&eacute; fertilizadas con f&oacute;sforo e inoculadas con hongos micorrizicos arbusculares y <i>Phoma costarricenses</i> Echandi. Tesis de maestr&iacute;a. Universidad de Colima. Colima, M&eacute;xico. 106 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486277&pid=S0185-3309201400010000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fanigliulo A, Comes S, Pacella R, Harrach B, Martin DP and Crescenzi A. 2005. Characterisation of <i>Potato virus Y</i> nnp strain inducing veinal necrosis in pepper: a naturally occurring recombinant strain of PVY. Archives of Virology 150:709&#45;720.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486279&pid=S0185-3309201400010000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fischer HU and Lockhart BEL. 1977. Identification and comparison of two isolates of <i>Tomato bushi stunt virus</i> from pepper and tomato in Morocco. Phytopathology 67:1352&#45;1355.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486281&pid=S0185-3309201400010000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garz&oacute;n&#45;Tiznado A, Celis&#45;Aramburo TJ, Velarde&#45;F&eacute;lix S, Ceballos&#45;Ruiz J, Barbosa&#45;Jasso P, Reyes&#45;Moreno C, Mart&iacute;nez&#45;Carrillo JL, S&aacute;nchez&#45;Pe&ntilde;a P y Hern&aacute;ndez&#45;Verdugo S. 2005. Detecci&oacute;n de virus ftopat&oacute;genos en la regi&oacute;n centro&#45;norte del pac&iacute;fico mexicano. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 23:238&#45;245.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486283&pid=S0185-3309201400010000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez LR y Delgadillo SF. 1989. Inclusiones producidas por algunos virus fitopat&oacute;genos. Memorias del XVI Congreso Nacional de la Sociedad Mexicana de Fitopatolog&iacute;a. Xalapa, Veracruz, M&eacute;xico. Resumen, p. 89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486285&pid=S0185-3309201400010000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#45;Pacheco BE and Silva&#45;Rosales L. 2013. First report of <i>Impatiens necrotic spot virus</i> in Mexico in tomatillo and pepper plants. Plant Disease 97: 1124.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486287&pid=S0185-3309201400010000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Green SK. 2003. <i>Pepper mild mottle virus.</i> Compendium of pepper diseases. APS PRESS, p. 32&#45;33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486289&pid=S0185-3309201400010000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guig&oacute;n&#45;L&oacute;pez C y Gonz&aacute;lez&#45;Gonz&aacute;lez PA. 1999. Manejo integrado de la virosis del chile (Capsicum annuum L.) en el sur de Chihuahua. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 17:8&#45;16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486291&pid=S0185-3309201400010000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Harris M. 1994. Enfermedades virales de la calabacita. pp. 42&#45;43. En: Katie O' Keeffe&#45;Swank, Ana Reho, and Luis Bringas (eds.). Productores de Hortalizas. Willoughby, Ohio, EUA. 70 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486293&pid=S0185-3309201400010000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hern&aacute;ndez S, Fern&aacute;ndez C y Baptista P. 1998. Metodolog&iacute;a de la Investigaci&oacute;n. Segunda Edici&oacute;n. Editorial Mc Graw Hill. M&eacute;xico. 501 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486295&pid=S0185-3309201400010000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Himmel PT. 2003. Tobacco mosaic virus. Compendium of pepper diseases. APS PRESS, p. 38&#45;39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486297&pid=S0185-3309201400010000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hull R. 2002. Mathews' Plant Virology. Fourth edition. Academic Press. San Diego, CA, USA. 1001 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486299&pid=S0185-3309201400010000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kuo YW, Gilbertson RL, Turini T, Brennan EB, Smith RF and Koike ST. 2014. Characterization and Epidemiology of Outbreaks of <i>Impatiens necrotic spot virus</i> on Lettuce in Coastal California. Plant Disease 98:1050&#45;1059.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486301&pid=S0185-3309201400010000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Llave C, Mart&iacute;nez B, D&iacute;az&#45;Ruiz JR and L&oacute;pez&#45;Abella D. 1999. Serological analysis and coat protein sequence determination of <i>Potato virus Y</i> (PVY) pepper pathotypes and differentiation from other PVY strains. European Journal of Plant Pathology 105:847&#45;857.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486303&pid=S0185-3309201400010000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Luis&#45;Arteaga M and Ponz F. 2003. <i>Potato virus Y.</i> Compendium of pepper diseases. APS PRESS, p. 35&#45;36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486305&pid=S0185-3309201400010000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murphy JF and Zitter TA. 2003. Pepper mottle virus. Compendium of pepper diseases. APS PRESS, p. 33&#45;34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486307&pid=S0185-3309201400010000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murphy JF and Warren CE. 2003. Diseases caused by viruses. Compendium of pepper diseases. APS PRESS, p. 23&#45;24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486309&pid=S0185-3309201400010000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murphy JF. 2003. <i>Cucumber mosaic virus.</i> Compendium of pepper diseases. APS PRESS, p. 29&#45;31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486311&pid=S0185-3309201400010000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">N&uacute;&ntilde;ez F, Ortega GR y Costa J. 1996. El cultivo de pimientos, chiles y aj&iacute;es. Editorial Mundi Prensa. Espa&ntilde;a. 607 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486313&pid=S0185-3309201400010000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez ML y Rico JE. 2004. Virus fitopat&oacute;genos en cultivos hort&iacute;colas de importancia econ&oacute;mica en el estado de Guanajuato. Primera edici&oacute;n. Universidad de Guanajuato. 143 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486315&pid=S0185-3309201400010000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez&#45;Moreno L, Rico&#45;Jaramillo E, S&aacute;nchez&#45;Pel&eacute; JR, Ascencio&#45;Ib&aacute;&ntilde;ez JT, D&iacute;az&#45;Plaza R, Rivera&#45;Bustamante RF. 2004. Identificaci&oacute;n de virus fitopat&oacute;genos en cultivos hort&iacute;colas de importancia econ&oacute;mica en el estado de Guanajuato, M&eacute;xico. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 22:187&#45;197.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486317&pid=S0185-3309201400010000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Robles&#45;Hern&aacute;ndez L, Gonz&aacute;lez&#45;Franco AC, Gill&#45;Langarica EM, P&eacute;rez&#45;Moreno L y L&oacute;pez&#45;D&iacute;az JC. 2010. Virus fitopat&oacute;genos que afectan al cultivo de chile en M&eacute;xico y an&aacute;lisis de las t&eacute;cnicas de detecci&oacute;n. Tecnociencia Chihuahua 4:72&#45;86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486319&pid=S0185-3309201400010000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez Y, Rangel E, Centeno F, Mendoza O y Parra A. 2004. Detecci&oacute;n de enfermedades virales afectando al piment&oacute;n en los municipios Iribarren, Jim&eacute;nez y Torres del estado Lara, Venezuela, utilizando la t&eacute;cnica ELISA. Revista de la Facultad de Agronom&iacute;a, Caracas Venezuela 21:1&#45;8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486321&pid=S0185-3309201400010000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAGARPA, Secretar&iacute;a de Agricultura, Ganader&iacute;a, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentaci&oacute;n. 2012. Servicio de informaci&oacute;n agroalimentaria y pesquera. <a href="http://www.siap.sagarpa.gob.mx" target="_blank">www.siap.sagarpa.gob.mx</a> (consulta, junio 2014).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486323&pid=S0185-3309201400010000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sep&uacute;lveda RP, Larra&iacute;n SP, Quiroz EC, Rebufel A y Gra&ntilde;a SF. 2005. Identificaci&oacute;n e incidencia de virus en pimiento en la zona centro norte de chile y su asociaci&oacute;n con vectores. Agricultura T&eacute;cnica 65:235&#45;245.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486325&pid=S0185-3309201400010000400033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tun&#45;Azul JC, Santamar&iacute;a BF y Avil&eacute;s BWI. 2004. Efecto del sombreo sobre el comportamiento de Chile <i>(Capsicum annuum</i> L.) en suelos pedregosos de Yucat&aacute;n. Primera convenci&oacute;n Mundial del Chile. Yucat&aacute;n, M&eacute;xico. p. 211&#45;217.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486327&pid=S0185-3309201400010000400034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vidales FJA y Alcantar RJJ. 1989. Ataque de la virosis durante la floraci&oacute;n y su efecto sobre la producci&oacute;n de mel&oacute;n <i>(Cucumis melo</i> L.). Memorias del XVI Congreso Nacional de la Sociedad Mexicana de Fitopatolog&iacute;a. Xalapa, Veracruz, M&eacute;xico. Resumen, p 67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8486329&pid=S0185-3309201400010000400035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
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