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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de fitopatología]]></journal-title>
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<publisher-name><![CDATA[Sociedad Mexicana de Fitopatología A.C.]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de Paecilomyces lilacinus en Nemátodos de Vida Libre Asociados a la Rizósfera de Papas Cultivadas en la Región del Cofre de Perote, Veracruz, México]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of Paecilomyces lilacinus in Free-Living Nematodes to the Rhizosphere Associates Potatoes Grown in the Cofre of Perote Region, Veracruz, Mexico]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto de Ecología A.C. Red de Biodiversidad y Sistemática ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The mortality of free-living nematodes (FLN) inoculated with a strain of Paecilomyces lilacinus (IE-430) was evaluated. FLN were extracted from soil samples from potato fields. The FLN were picked randomly and inoculated (five repetitions, N=500) with spores suspension of P. lilacinus and the other a control with the same amount. In order to quantify dead nematodes, individuals were observed for 12-120 h. One part of dead nematodes was identified and other placed in an agar-oatmeal culture medium to verify the presence of P. lilacinus. Eight morphotypes of FLN were identified from three trophic groups: bacterial feeders, fungal feeders, and omnivorous-predators. At 48 h significant difference was found between the number of dead nematodes in the P. lilacinus treatment and the control.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="fr"><p><![CDATA[La mortalité des nématodes vivant en liberté (NVL) inoculés avec une souche de Paecilomyces lilacinus (IE-430) a été évaluée. Les nématodes vivant en liberté ont été extraits d'échantillons de sol provenant du champ de culture des pommes de terre. Les NVL ont été choisis au hasard et inoculés (cinq répétitions, N = 500) avec une suspension de spores de P. lilacinus. Pour le contrôle, a été utilisée une quantité similaire de NVL conservés dans de l'eau distillée stérile. Afin de quantifier les nématodes morts, les individus ont été observés entre 12 et 120 heures. Ces nématodes ont été identifiés et placés dans milieu de culture d'agar-avoine pour vérifier la présence de P. lilacinus. Ont été identifié sept morphotypes de NVL de trois groupes trophiques : les bactériophages, les mycophages et les omnivores-prédateurs. À 48 heures ont été trouvées des différences significatives entre le nombre de nématodes morts dans le traitement avec P. lilacinus et le contrôle.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Hongos nematófagos]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Nematofagous fungi]]></kwd>
<kwd lng="fr"><![CDATA[les champignons nématophages]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Notas fitopatol&oacute;gicas</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto de <i>Paecilomyces lilacinus</i> en Nem&aacute;todos de Vida Libre Asociados a la Riz&oacute;sfera de Papas Cultivadas en la Regi&oacute;n del Cofre de Perote, Veracruz, M&eacute;xico</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effect of <i>Paecilomyces lilacinus</i> in Free&#45;Living Nematodes to the Rhizosphere Associates Potatoes Grown in the Cofre of Perote Region, Veracruz, Mexico</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Gloria Carri&oacute;n y Damaris Desgarennes</b> </font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Instituto de Ecolog&iacute;a, A.C., Red de Biodiversidad y Sistem&aacute;tica, Instituto de Ecolog&iacute;a, A.C., km 2.5 Carretera Antigua a Coatepec 351, Congregaci&oacute;n El Haya, Xalapa, Ver., CP 91070, M&eacute;xico.</i> Correspondencia: <a href="mailto:gloria.carrion@inecol.edu.mx">gloria.carrion@inecol.edu.mx</a>.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Agosto 04, 2011     <br>     Aceptado: Octubre 17, 2011</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b> </font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; la mortalidad de nem&aacute;todos de vida libre (NVL) inoculados con una cepa de <i>Paecilomyces lilacinus</i> (IE&#45;430). Se extrajeron nem&aacute;todos de vida libre de muestras de suelo de campos de cultivo de papa. Los NVL fueron escogidos al azar e inoculados (cinco repeticiones, N=500) con una suspensi&oacute;n de esporas de <i>P. lilacinus,</i> igual cantidad de NVL fue utilizada en el testigo mantenidos en agua destilada est&eacute;ril. Con el fin de cuantificar los nem&aacute;todos muertos, los individuos fueron observados entre las 12 y 120 h posteriores a la inoculaci&oacute;n. &Eacute;stos nem&aacute;todos se identificaron y colocados en medio de cultivo agar&#45;avena para verificar la presencia de <i>P. lilacinus.</i> Se identificaron siete morfotipos de NVL de tres grupos tr&oacute;ficos: bacter&iacute;ofagos, mic&oacute;fagos y omn&iacute;voro&#45;depredadores. A las 48 h se encontr&oacute; diferencia significativa entre el n&uacute;mero de nem&aacute;todos muertos en el tratamiento con <i>P. lilacinus</i> y el testigo.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Hongos nemat&oacute;fagos.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b> </font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The mortality of free&#45;living nematodes (FLN) inoculated with a strain of <i>Paecilomyces lilacinus</i> (IE&#45;430) was evaluated. FLN were extracted from soil samples from potato fields. The FLN were picked randomly and inoculated (five repetitions, N=500) with spores suspension of <i>P. lilacinus</i> and the other a control with the same amount. In order to quantify dead nematodes, individuals were observed for 12&#45;120 h. One part of dead nematodes was identified and other placed in an agar&#45;oatmeal culture medium to verify the presence of <i>P. lilacinus.</i> Eight morphotypes of FLN were identified from three trophic groups: bacterial feeders, fungal feeders, and omnivorous&#45;predators. At 48 h significant difference was found between the number of dead nematodes in the <i>P. lilacinus</i> treatment and the control.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> Nematofagous fungi.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>R&eacute;sum&eacute;</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mortalit&eacute; des n&eacute;matodes vivant en libert&eacute; (NVL) inocul&eacute;s avec une souche de <i>Paecilomyces lilacinus</i> (IE&#45;430) a &eacute;t&eacute; &eacute;valu&eacute;e. Les n&eacute;matodes vivant en libert&eacute; ont &eacute;t&eacute; extraits d'&eacute;chantillons de sol provenant du champ de culture des pommes de terre. Les NVL ont &eacute;t&eacute; choisis au hasard et inocul&eacute;s (cinq r&eacute;p&eacute;titions, N = 500) avec une suspension de spores de <i>P. lilacinus.</i> Pour le contr&ocirc;le, a &eacute;t&eacute; utilis&eacute;e une quantit&eacute; similaire de NVL conserv&eacute;s dans de l'eau distill&eacute;e st&eacute;rile. Afin de quantifier les n&eacute;matodes morts, les individus ont &eacute;t&eacute; observ&eacute;s entre 12 et 120 heures. Ces n&eacute;matodes ont &eacute;t&eacute; identifi&eacute;s et plac&eacute;s dans milieu de culture d'agar&#45;avoine pour v&eacute;rifier la pr&eacute;sence de <i>P. lilacinus.</i> Ont &eacute;t&eacute; identifi&eacute; sept morphotypes de NVL de trois groupes trophiques : les bact&eacute;riophages, les mycophages et les omnivores&#45;pr&eacute;dateurs. &Agrave; 48 heures ont &eacute;t&eacute; trouv&eacute;es des diff&eacute;rences significatives entre le nombre de n&eacute;matodes morts dans le traitement avec <i>P. lilacinus</i> et le contr&ocirc;le.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mots cl&eacute;s:</b> les champignons n&eacute;matophages.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los nem&aacute;todos de vida libre (NVL) participan de manera importante en la descomposici&oacute;n, mineralizaci&oacute;n y flujo de nutrientes en el suelo, adem&aacute;s funcionan como reguladores de poblaciones de hongos y bacterias (Yeates y Bonger, 1999; Lavelle y Spain, 2001). Estos nem&aacute;todos pueden funcionar como bioindicadores de la calidad del suelo y ser utilizados para evaluar la restauraci&oacute;n del mismo (Bongers y Ferris, 1999; Yeates, 2003). En M&eacute;xico, los estudios sobre la nematofauna asociada a la riz&oacute;sfera de papas cultivadas en la regi&oacute;n del Cofre de Perote, tiene registrados a ocho bacteri&oacute;fagos, tres mic&oacute;fagos, cuatro omnivoros&#45;predadores y dos fitopar&aacute;sitos (Desgarennes <i>et al.,</i> 2009). Dentro de los fitopar&aacute;sitos registrados, <i>Globodera rostochiensis</i> (Heteroderidae: Nematoda) es el de mayor densidad poblacional y por el cual se est&aacute;n probando hongos nemat&oacute;fagos nativos de M&eacute;xico como <i>Paecilomyces lilacinus</i> para su control. No obstante, poco se sabe sobre el efecto que este hongo pueda tener sobre la nematofauna de vida libre asociada a la riz&oacute;sfera de papas cultivadas. Por lo tanto, el objetivo de este trabajo fue evaluar <i>in vitro</i> la mortalidad de los NVL de la riz&oacute;sfera del cultivo de papa en presencia de una cepa de <i>P. lilacinus.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En suelos cultivados con papa en la localidad de 'Pescados', Municipio de Perote, fue tomada una muestra compuesta de cinco submuestras de 100 g de suelo cada una. El suelo se extrajo a 15 cm de profundidad siguiendo un patr&oacute;n zig&#45;zag (Haydock y Perry, 1998). Los nem&aacute;todos fueron extra&iacute;dos por el m&eacute;todo de tamizado&#45;centrifugado (s'Jacob y van Bezooijen, 1984). De los nem&aacute;todos extra&iacute;dos, se tomaron al azar 100 individuos y se colocaron en cajas Petri (5 cm de di&aacute;metro) con 2 mL de agua destilada (cinco repeticiones, N= 500). Cada caja se inocul&oacute; con 1mL de una suspensi&oacute;n de esporas de <i>P. lilacinus</i> preparada a una alta concentraci&oacute;n de conidios (10<sup>6</sup> mL<sup>&#45;1</sup>) para exponer <i>in vitro</i> directamente a los nem&aacute;todos con el hongo. Se utiliz&oacute; la cepa de <i>P. lilacinus</i> IE&#45;430 nativa del Cofre Perote, aislada de juveniles (J2) de G. <i>rostochiensis,</i> reproducida en placas de agar&#45;avena y depositada en el cepario del Instituto de Ecolog&iacute;a, A. C. En el testigo tambi&eacute;n se colocaron 100 nem&aacute;todos en cajas Petri con 3mL de agua destilada est&eacute;ril (cinco repeticiones, N= 500). Las cajas se mantuvieron a 20&plusmn;2&deg;C y cada caja fue revisada a las 12, 24, 48, 72, 96 y 120 h para cuantificar el n&uacute;mero de nem&aacute;todos vivos y muertos.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A las 24 h una parte de los nem&aacute;todos muertos del tratamiento con <i>P. lilacinus</i> y del testigo, extraidos en cada revisi&oacute;n, se aclar&oacute; y se fij&oacute; para su determinaci&oacute;n a nivel de g&eacute;nero y en algunos casos a nivel de especie. Con base en el estudio previamente realizado por Desgarennes <i>et al.</i> (2009), fueron determinados aquellos individuos cuyos caracteres morfol&oacute;gicos fueron distinguibles al microscopio, por lo cual no fue posible cuantificar el n&uacute;mero de individuos por especie. Se utilizaron claves para los ordenes Dorylaimida (Jairajpuri y Ahmad, 1992), Rhabditida (Andr&aacute;ssy, 1984), Aphelenchida (Hunt, 1993) y Plectida (Holovachov y De Ley, 2006). La otra parte de nem&aacute;todos muertos, fue enjuagada dos veces en agua destilada y colocada en bl&iacute;steres con placas de agar&#45;avena de 1cm de di&aacute;metro (N= 125 nem&aacute;todos por tratamiento), antes de ser colocados fueron enjuagados dos veces en agua destilada. Los nem&aacute;todos se observaron diariamente para detectar sobre ellos el crecimiento de micelio. Se permiti&oacute; la esporulaci&oacute;n de los hongos crecidos sobre los nem&aacute;todos para corroborar la presencia de <i>Paecilomyces lilacinus</i> o determinar, al menos a nivel de g&eacute;nero, cuando se trat&oacute; de otros hongos obtenidos de los testigos. Las claves utilizadas para los hongos fueron las de Booth (1971), Ellis (1976), Sutton (1980), Domsch y Gams (1980).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos de mortalidad obtenidos fueron analizados con la prueba ANOVA de Friedman y el Coeficiente de concordancia de Kendall. Adem&aacute;s, para cada periodo de observaci&oacute;n se realiz&oacute; una prueba de Kruskal&#45;Wallis para determinar diferencias entre los tratamientos para la misma variable. Ambos an&aacute;lisis se realizaron utilizando el paquete estad&iacute;stico Statistica 8, StatSoft. Los valores promedio van acompa&ntilde;ados de su desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (<img src="/img/revistas/rmfi/v30n1/a9i1.jpg">&plusmn;DE).</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El n&uacute;mero de nem&aacute;todos muertos en el tratamiento con <i>P. lilacinus</i> y el testigo a las 12 y 24 h fue similar. Sin embargo, a las 48 h se encontr&oacute; mayor n&uacute;mero de nem&aacute;todos muertos (H<sub>(1,N = 10)</sub> = 5.951250, P = 0.0147) en el tratamiento con <i>P. lilacinus</i> (<a href="#f1">Figura 1</a>) que en el testigo (<a href="#f2">Figura 2</a>). A las 72 h no se encontraron diferencias en la mortalidad promedio de los NVL. Los resultados sugieren que los NVL susceptibles a <i>P. lilacinus</i> mueren en las primeras 48 h de exposici&oacute;n al hongo. Dentro de los nem&aacute;todos muertos encontrados en este tratamiento, se determinaron tres bacteriofagos (<i>Cruznema tripartitum, Eucephalobus oxyuroides</i> y <i>Steinernema</i> sp.) un mic&oacute;fago (<i>Aphelenchoides</i> sp.) y un omn&iacute;voro&#45;depredador (<i>Crassolabium</i> sp.) debido a que en algunos ejemplares los caracteres morfol&oacute;gicos fueron indistinguibles (<a href="#f3">Figura 3 A</a>&#45;<a href="#f3">B</a>). En el grupo testigo se determinaron cinco bacteriofagos (<i>Acrobeles</i> sp., <i>Cruznema tripartitum, Eucephalobus oxyuroides, Plectus</i> sp. y <i>Steinernema</i> sp.) (<a href="#f3">Figura 3</a>) y un mic&oacute;fago (<i>Paraphelenchus</i> sp.). En este experimento se determinaron ocho NVL de los 13 morfotipos de la nematofauna registrada para estas tierras de cultivo (Desgarennes <i>et al.,</i> 2009). &Eacute;sto podr&iacute;a considerarse una muestra representativa de la nematofauna asociada a la riz&oacute;sfera de las papas cultivadas en el sitio de estudio, ya que se encontraron los tres grupos tr&oacute;ficos registrados para &eacute;stos suelos. Aunque &eacute;stos resultados muestran que <i>P. lilacinus</i> no afect&oacute; dr&aacute;sticamente a los NVL durante el desarrollo del experimento, algunos nem&aacute;todos como <i>Steinernema</i> sp. fueron afectados por <i>P. lilacinus</i> ya que en las observaciones de las 48, 96 y 120 h se encontraron muertos en el grupo tratado y no en el testigo. Por ello es posible que cepas de hongos nemat&oacute;fagos al interactuar con sus hospedantes presenten cierto grado de especificidad (Mauchline <i>et al.,</i> 2004).</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v30n1/a9f1.jpg"></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v30n1/a9f2.jpg"></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v30n1/a9f3.jpg"></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los hongos obtenidos de los nem&aacute;todos infectados presentaron micelio y conidi&oacute;foros de <i>P. lilacinus,</i> al cuarto d&iacute;a despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n en el 44.8% de los nem&aacute;todos muertos (56, N=125 nem&aacute;todos) y apenas un 0.8% en el testigo (1, N=125). En el testigo, otros hongos fueron encontrados en 16 nem&aacute;todos (12.8%): <i>Cladosporium oxysporum</i> (2 ejemplares), <i>Aspergillus</i> sp. (1), <i>Fusarium</i> sp. (3), <i>Metarhizium</i> sp. (1), <i>Penicillium</i> sp. (2), <i>Phoma</i> sp. (5) y <i>Trichoderma</i> sp. (2). La presencia de siete hongos en los ejemplares del testigo comparada con el tratamiento con <i>P. lilacinus</i> podr&iacute;a deberse a que &eacute;ste &uacute;ltimo no permite el desarrollo de otros hongos, ya que germina y desarrolla su micelio con mayor rapidez.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La baja mortalidad de NVL en el tratamiento con el hongo sugiere que la aplicaci&oacute;n de cepas de <i>P. lilacinus</i> aisladas de la misma zona de estudio, podr&iacute;a ser usadas como agentes de control biol&oacute;gico del nematodo dorado de la papa sin representar un riesgo para la nematofauna de vida libre, entre otros (Hajek, 2007). Sin embargo, antes de aplicar alg&uacute;n tipo de control contra nem&aacute;todos plaga como G. <i>rostochiensis</i> en campo, es necesario hacer estudios sobre su efecto en la din&aacute;mica de las poblaciones de NVL.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Andr&aacute;ssy I. 1984. Klasse nematoda (Ordnungen Monhysterida, Desmoscolecida, Araeolaimida, Chromadorida, Rhabditida). Akademie&#45;Verlag. Berlin, Germany. 509 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481473&pid=S0185-3309201200010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Booth C. 1971. The genus <i>Fusarium.</i> Commonwealth Mycological Institute. Surrey, United Kingdom. 237 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481475&pid=S0185-3309201200010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bongers T and Ferris H. 1999. Nematode community structure as a bioindicator in environmental monitoring. Trends in Ecology and Evolution 14: 224&#45;228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481477&pid=S0185-3309201200010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Desgarennes D, S&aacute;nchez&#45;Nava P, Pe&ntilde;a&#45;Santiago R y Carri&oacute;n G. 2009. Nematofauna asociada a la riz&oacute;sfera de papas <i>(Solanum tuberosum)</i> cultivadas en la zona productora del Cofre de Perote, Veracruz, M&eacute;xico. Revista Mexicana de Biodiversidad 80: 611&#45;614.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481479&pid=S0185-3309201200010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Domsch KH and Gams W. 1980. Compendium of soil fungi, Volume 1. Academic Press. London, United Kingdom. 859 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481481&pid=S0185-3309201200010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ellis MB. 1976. More Dematiaceous Hyphomycetes. Oxford University Press. Oxford, United Kingdom. 507 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481483&pid=S0185-3309201200010000900006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hajek AE. 2007. Introduction of a fungus into North America for gypsy moth. pp. 53&#45;62. <i>In:</i> Vincent C, Goettel MS and Lazarovits G (eds.). Biological Control, a Global Perspective. CAB International, London, United Kingdom. 428 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481485&pid=S0185-3309201200010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Haydock PP and Perry JN. 1998. The principles and practice of sampling for the detection of potato cyst nematodes. pp. 61&#45;74. <i>In:</i> Marks RJ and Brodie BB (eds.). Potato Cyst Nematodes, Biology, Distribution and Control. CAB International. 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Dorylaimida free&#45;living, predaceous and plant&#45;parasitic nematodes. Brill Academic Publisher. Leiden, The Netherlands. 458 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481493&pid=S0185-3309201200010000900011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>             <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lavelle P and Spain AV. 2001. Soil Ecology. Springer Kluwer Academic. Dordrecht, Germany. 654 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481495&pid=S0185-3309201200010000900012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mauchline TH, Kerry BR and Hirsch PR. 2004. The biocontrol fungus <i>Pochonia chlamydosporia</i> shows nematode host preference at the infraspecific level. Mycological Research 108: 161&#45;169.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481497&pid=S0185-3309201200010000900013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p> 	         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">s'Jacob JJ and van Bezooijen J. 1984. A manual for practical work in nematology. Wageningen University, Wageningen, The Netherlands. 79 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481499&pid=S0185-3309201200010000900014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p> 	         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sosa MC. 1986. Cyst nematodes in Mexico, Central and South America. Nematologica 23: 397&#45;398.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481501&pid=S0185-3309201200010000900015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p> 	         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sutton BC. 1980. The Coelomycetes: Fungi Imperfecti with Pycnidia Acervuli and Stromata. CAB International. United Kingdom. 696 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481503&pid=S0185-3309201200010000900016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p> 	         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yeates GW. 2003. Nematodes as soil indicators: functional and biodiversity aspects. Biology and Fertility of Soils 37: 199&#45;210.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481505&pid=S0185-3309201200010000900017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yeates GW and Bongers T. 1999. Nematode diversity in agroecosystems. Agriculture, Ecosystems and Environment 174: 113&#45;135.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481507&pid=S0185-3309201200010000900018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>          <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yeates GW, Bongers T, De Goede RGM, Freckman DW and Georgieva SS. 1993. Feeding habits in soil nematode families and genera&#151;an outline for soil ecologists. Journal of Nematology 25:315&#45;331.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8481509&pid=S0185-3309201200010000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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