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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Potato commercial yield reduction due to purple top syndrome in northeastern Mexico can reach up to 90% and sometimes losses can be total due to internal staining of the tubercles. A total of 214 genotypes were established during 2006 in Arteaga, Coah., Mexico, in order to evaluate and characterize their tolerance to the syndrome, and select those that had tolerance revealed as no vectors control were performed. The evaluated parameters were: height, foliage coverage, days to onset symptoms, days to plant death, onset of symptoms to death of the plant, total production of tubercles per plant, number of tubercles with internal staining per plant and sprouting of the plant, which were analyzed by multivariate statistical methods. The first three main components explained 76.8% of the total variance, separating first the producing genotypes from those non-producing; and second, the later with a higher coverage and lower thread outbreak from those with opposite characteristics. A total of three groups were identified by the cluster analysis: the first with 114 genotypes that did not produce tubercles, which had the symptoms revealed earlier and died. The second group, with 53 genotypes of greater tolerance, which had the highest average yield of tubercles per plant. The third with 47 genotypes, which had late manifestation of onset symptoms, had a wider range to wilt and a low production. The presence of bacteria, viruses and phytoplasm was detected in the tuber. The genotypes Gigant, Alpha, Norteña, Bayonera, Nieder, Atlantic and the clones 91-29-10, 98-14-01, 94-02-01 and 96-01-01 were selected based on their production or the absence of internal staining, even if the vectors were not controlled.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Evaluaci&oacute;n, Selecci&oacute;n y Caracterizaci&oacute;n de Genotipos de Papa Tolerantes al S&iacute;ndrome de Punta Morada</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Evaluation, Selection and Characterization of Potato Genotypes Tolerant to Purple Top Syndrome</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>V&iacute;ctor Manuel Parga Torres</b><sup><b>1</b></sup><b>,</b> <b>V&iacute;ctor Manuel Zamora Villa</b><sup><b>2</b></sup><b>, Fernando Borrego Escalante</b><sup><b>2</b></sup><b>,</b> <b>Juan Manuel Covarrubias Ram&iacute;rez</b><sup><b>3</b></sup><b>,</b> <b>Alfonso L&oacute;pez Ben&iacute;tez</b><sup><b>4</b></sup> <b>e Isidro Humberto Almeyda Le&oacute;n</b><sup><b>5</b></sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Campo Experimental Saltillo, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (CES&#45;INIFAP), Blvd. Vito Alessio Robles, No. 2565, Col. Nazario Ortiz Garza, Saltillo, Coah., CP 25100, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2 </sup>Universidad Aut&oacute;noma Agraria Antonio Narro (UAAAN), Buenavista, Saltillo, Coah., CP 25315, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> CES&#45;INIFAP.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>4 </sup>UAAAN.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>5 </i></sup><i>Campo Experimental General Ter&aacute;n, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias, Carr. Montemorelos&#45;China km. 31, General Ter&aacute;n, N.L., CP 67400, M&eacute;xico.</i> Correspondencia: <a href="mailto:halmeyda30@hotmail.com">halmeyda30@hotmail.com</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Junio 14, 2010    <br> 	Aceptado: Octubre 23, 2010</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el Noreste de M&eacute;xico, la reducci&oacute;n del rendimiento comercial de papa debido al s&iacute;ndrome de la punta morada puede alcanzar hasta 90% y en ocasiones, debido al manchado interno de los tub&eacute;rculos las p&eacute;rdidas pueden ser totales. En Arteaga, Coah., M&eacute;xico, durante el a&ntilde;o 2006 se establecieron 214 genotipos con el objetivo de evaluarlos y caracterizarlos por su tolerancia al s&iacute;ndrome, y seleccionar aquellos que mostraran tolerancia cuando no se llevara a efecto el control de vectores. Los par&aacute;metros evaluados fueron; altura, cobertura del follaje, d&iacute;as a inicio de s&iacute;ntomas, d&iacute;as a muerte de la planta, inicio de s&iacute;ntomas a muerte de la planta, producci&oacute;n total de tub&eacute;rculo por planta, n&uacute;mero de tub&eacute;rculos por planta, n&uacute;mero de tub&eacute;rculos con manchado interno por planta y brotaci&oacute;n, que se analizaron mediante m&eacute;todos estad&iacute;sticos multivariados. Los primeros tres componentes principales explicaron el 76.8% de la varianza total, separando en primera instancia los genotipos productores de los no productores y en segunda a los m&aacute;s tard&iacute;os, con mayor cobertura y menor brote de hilo de aquellos con caracter&iacute;sticas opuestas. El an&aacute;lisis de conglomerados identific&oacute; tres grupos, el primero con 114 genotipos que no produjeron tub&eacute;rculos, que presentaron m&aacute;s temprano los primeros s&iacute;ntomas y murieron. El segundo grupo, con 53 genotipos de mayor tolerancia, en el que se obtuvo la mayor media de producci&oacute;n de tub&eacute;rculo por planta. </font><font face="verdana" size="2">El tercero con 47 genotipos, present&oacute; tard&iacute;amente los primeros s&iacute;ntomas, tuvo el intervalo m&aacute;s amplio a marchitez y baja producci&oacute;n. En los tub&eacute;rculos se detect&oacute; la presencia de bacterias, virus y fitoplasmas. Los genotipos: Gigant, Alpha, Norte&ntilde;a, Bayonera, Nieder, Atlantic y los clones 91&#45;29&#45;10, 98&#45;14&#45;01, 94&#45;02&#45;01 y 96&#45;01&#45;01, fueron seleccionados con base en su producci&oacute;n o por no presentar manchado interno de tub&eacute;rculo, a&uacute;n y cuando no se controlaron los vectores.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Solanum tuberosum,</i> punta morada, producci&oacute;n, caracter&iacute;sticas agron&oacute;micas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Potato commercial yield reduction due to purple top syndrome in northeastern Mexico can reach up to 90% and sometimes losses can be total due to internal staining of the tubercles. A total of 214 genotypes were established during 2006 in Arteaga, Coah., Mexico, in order to evaluate and characterize their tolerance to the syndrome, and select those that had tolerance revealed as no vectors control were performed. The evaluated parameters were: height, foliage coverage, days to onset symptoms, days to plant death, onset of symptoms to death of the plant, total production of tubercles per plant, number of tubercles with internal staining per plant and sprouting of the plant, which were analyzed by multivariate statistical methods. The first three main components explained 76.8% of the total variance, separating first the producing genotypes from those non&#45;producing; and second, the later with a higher coverage and lower thread outbreak from those with opposite characteristics. A total of three groups were identified by the cluster analysis: the first with 114 genotypes that did not produce tubercles, which had the symptoms revealed earlier and died. The second group, with 53 genotypes of greater tolerance, which had the highest average yield of tubercles per plant. The third with 47 genotypes, which had late manifestation of onset symptoms, had a wider range to wilt and a low production. The presence of bacteria, viruses and phytoplasm was detected in the tuber. The genotypes Gigant, Alpha, Norte&ntilde;a, Bayonera, Nieder, Atlantic and the clones 91&#45;29&#45;10, 98&#45;14&#45;01, 94&#45;02&#45;01 and 96&#45;01&#45;01 were selected based on their production or the absence of internal staining, even if the vectors were not controlled.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i>Solanum tuberosum,</i> purple top, production, agronomical characteristics.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico, la papa <i>Solanum tuberosum</i> L., es un cultivo importante debido a la derrama econ&oacute;mica que genera, ya que representa el 1% del Producto Interno Bruto Total y el 2.6% del Producto Agropecuario del pa&iacute;s (ITESM, 2003). Durante el a&ntilde;o 2007, se sembraron 64,000 ha de papa, con una producci&oacute;n total de 1.7 x10<sup>6</sup> t y un rendimiento promedio de 27.7 t ha<sup>&#45;1</sup> (SIAP, 2010). En los pa&iacute;ses en desarrollo, el consumo de papa por persona aument&oacute; de 10 kg (1961&#45;1963) a 21.5 kg en 2003; sin embargo, sigue siendo bajo en comparaci&oacute;n con el de los pa&iacute;ses desarrollados, cuyo consumo promedio anual es de 93 kg por persona (Bayer, 2008). Debido al auge en el consumo de comidas r&aacute;pidas y de papa frita (hojuela) al inicio de la d&eacute;cada de los 90's, se introdujeron a M&eacute;xico variedades con caracter&iacute;sticas de calidad adecuadas para la industria; sin embargo, las variedades introducidas muestran alta susceptibilidad a las principales enfermedades (tiz&oacute;n tard&iacute;o, tiz&oacute;n temprano, enfermedades de la ra&iacute;z, virosis, etc.) que afectan este cultivo (Parga, 2008). Recientemente, el s&iacute;ndrome de la punta morada fue considerado el principal problema fitopatol&oacute;gico para la producci&oacute;n de papa en la regi&oacute;n noreste de M&eacute;xico; &eacute;ste es ocasionado por diferentes factores bi&oacute;ticos o abi&oacute;ticos, entre los primeros se encuentran los fitoplasmas (Maramorosch, 1988), virus (Salazar, 1995), hongos (Garza, 1999) y recientemente la bacteria <i>Candidatus</i> Liberibacter solanacearum, pat&oacute;geno que causa enfermedades en especies de la familia solanaceae, como el tomate <i>Solanum lycopersicum</i> L. y la papa; esta bacteria es transmitida por el psilido <i>Bactericera cockerelli</i> (Sulc) (Hansen <i>et al.,</i> 2008). Entre los factores abi&oacute;ticos se encuentran las deficiencias de nutrici&oacute;n (Rubio, 1998) y la alta temperatura y sequ&iacute;a (Davis, 1998). A finales de la d&eacute;cada de los 90's, en el noreste de M&eacute;xico, se reportaron p&eacute;rdidas del 35% en la calidad del producto, destinado tanto al mercado fresco como a la industria por el manchado interno del tub&eacute;rculo debido al s&iacute;ndrome de la punta morada (Parga, 2000). En el ciclo agr&iacute;cola 2004, los da&ntilde;os por punta morada provocaron m&aacute;s del 50% de p&eacute;rdidas en producci&oacute;n y hasta el 100 % en calidad (Flores <i>et al.,</i> 2008). En la actualidad, para producir papa en el Noreste de M&eacute;xico, se requieren de 30 a 50 aplicaciones de insecticidas para el control de los principales virus y fitoplasmas. El uso intensivo de los agroqu&iacute;micos representa hasta el 35% del costo del cultivo. Lo anterior es preocupante por el riesgo que representa para los productores, trabajadores consumidores y el ecosistema (Parga, 2008). Por otra parte el principal objetivo que tiene el programa de mejoramiento gen&eacute;tico de la papa en nuestro pa&iacute;s, es la generaci&oacute;n de germoplasma con resistencia al tiz&oacute;n tard&iacute;o de la papa <i>(Phytophthora infestans);</i> este programa es l&iacute;der a nivel mundial. Debido al incremento del problema de punta morada actualmente se est&aacute;n realizando evaluaciones para determinar y detectar fuentes de resistencias contra el s&iacute;ndrome de la punta morada (Rivera, 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variedades comerciales utilizadas en M&eacute;xico, tienen un parentesco cercano, con un intervalo de endogamia de 0.062 a 0.125, ya que provienen principalmente de Holanda. Los cultivares multiplicados en Europa est&aacute;n estrechamente interrelacionados ya que no se ha hecho mayor esfuerzo t&eacute;cnico importante encaminado a ampliar su base gen&eacute;tica. Es conocido que cuando se usan estos cultivares en el mejoramiento gen&eacute;tico la progenie resultante tendr&aacute; alg&uacute;n grado de endogamia debido al parentesco entre sus progenitores, lo que podr&aacute; reducir su rendimiento y estabilidad (Estrada, 1999), esta situaci&oacute;n ha ocasionado fuerte dependencia hacia el uso de agroqu&iacute;micos, debido a la falta de resistencia a las enfermedades y a la falta de adaptaci&oacute;n de los cultivares a las condiciones adversas (Spiertz <i>et al.,</i> 1996). La sociedad actual demanda que la producci&oacute;n agr&iacute;cola sea inocua para el humano y el ambiente, debido a lo cual se requiere seleccionar genotipos con tolerancia que coadyuven en la reducci&oacute;n del uso de agroqu&iacute;micos, por lo que es necesario que genetistas y mejoradores estudien las caracter&iacute;sticas de tolerancia y sus m&uacute;ltiples relaciones para su comprensi&oacute;n y hacer m&aacute;s eficiente el proceso de mejoramiento por resistencia m&uacute;ltiple al s&iacute;ndrome de la punta morada. Los m&eacute;todos multivariados constituyen una herramienta que permite identificar las relaciones entre variables, agrupar y caracterizar genotipos, ofreciendo al fitomejorador una gu&iacute;a m&aacute;s objetiva en la selecci&oacute;n (Ye <i>et al.,</i> 2001). El objetivo de este estudio fue: evaluar y caracterizar preliminarmente genotipos de papa tolerantes al s&iacute;ndrome de la punta morada.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante el ciclo primavera&#45;verano 2006, se evaluaron 214 genotipos bajo condiciones de riego en el Campo Experimental Saltillo ubicado en el Ejido Emiliano Zapata, municipio de Arteaga, Coah. M&eacute;xico, que se localiza a 25&deg; 14' LN y 100&deg; 35' LO, a una altitud de 2200 msnm. El clima es templado subh&uacute;medo con precipitaciones todo el a&ntilde;o (Garc&iacute;a, 1988). El germoplasma provino del Programa Nacional de Papa de M&eacute;xico (INIFAP) con 200 genotipos; del Programa Nacional de Cuba (Cubanita e Ibis); Estados Unidos de Norteam&eacute;rica (FL&#45;1867, Russet Burbank, Early Valley y Atlantic) y Holanda (Gigant, Vivaldi, Felsina, Granola, Escort, Platina, Liseta y Alpha). Se utilizaron mini&#45;tub&eacute;rculos provenientes de invernadero para asegurar el uso de semilla libre de virus y bacteria, lo cual fue corroborado mediante an&aacute;lisis ELISA y PCR. Se estableci&oacute; un tub&eacute;rculo por genotipo, debido a que los clones est&aacute;n en proceso de formaci&oacute;n (etapas tempranas de evaluaci&oacute;n) y por lo tanto no se dispuso de semilla&#45;tub&eacute;rculo suficiente para evaluar en mayor cantidad. Cada tub&eacute;rculo&#45;semilla se coloc&oacute; a 20 cm entre planta y 92 cm entre surcos. Durante el desarrollo del cultivo se monitore&oacute; semanalmente la presencia de los vectores en la parcela: paratrioza <i>(Bactericera cockerelli</i> Sulc), pulgones <i>(Myzus</i> spp) y chicharritas <i>(Empoasca</i> spp), mediante trampas amarillas pegajosas que se colocaron orientadas de norte a sur, a la altura del &aacute;pice de la planta (Zavala&#45;Quintana, 2002). Entre el per&iacute;odo de emergencia a desvare no se realizaron aplicaciones de insecticidas y las aplicaciones de fungicidas preventivos para el tiz&oacute;n tard&iacute;o, se realizaron semanalmente despu&eacute;s de emergencia. El manejo del cultivo se realiz&oacute; de acuerdo con las recomendaciones del Campo Experimental Saltillo (Parga <i>et al.,</i> 2005). Las variables evaluadas fueron: Altura de Planta (AP; cm), desde la superficie del suelo hasta el &aacute;pice al momento del desvare o muerte de la planta. La Cobertura de la planta (COB; cm); se consider&oacute; el di&aacute;metro del follaje de la planta a los 80 d&iacute;as despu&eacute;s de emergencia o a la muerte de planta. D&iacute;as a Inicio de S&iacute;ntomas (DIS); consider&oacute; los d&iacute;as desde la emergencia hasta la aparici&oacute;n de los primeros s&iacute;ntomas del s&iacute;ndrome de punta morada (decoloraci&oacute;n o enrollamiento de las hojas). D&iacute;as a Muerte de Planta (DMP); d&iacute;as transcurridos desde la emergencia hasta la muerte de la planta. Inicio de S&iacute;ntomas a Muerte de planta (ISM); d&iacute;as transcurridos que se observaron los primeros s&iacute;ntomas hasta que ocurri&oacute; la muerte de la planta. Producci&oacute;n total por planta (PT) expresada en g/planta. N&uacute;mero de Tub&eacute;rculos por planta (NT) y Manchado Interno del Tub&eacute;rculo (MIT); para estas variables se contabiliz&oacute; el n&uacute;mero de tub&eacute;rculos por planta, de los cuales aleatoriamente tres fueron partidos para evaluar el porcentaje de manchado o pardeamiento interno y se expres&oacute; en porcentaje. De aquellos genotipos que produjeron mayor n&uacute;mero de tub&eacute;rculos, Brotaci&oacute;n (B); los tub&eacute;rculos sobrantes se almacenaron por seis meses con el objeto de evaluar la presencia de Brote de Hilo (BH) y la falta de brotaci&oacute;n o Sin Brotes (SB) (Cadena&#45;Hinojosa <i>et al.,</i> 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el objeto de determinar la incidencia poblacional de fitoplasmas, virus y bacterias en el lote de evaluaci&oacute;n se colect&oacute; al azar un tub&eacute;rculo de cada uno de los 35 genotipos que produjeron tub&eacute;rculos y se enviaron para su an&aacute;lisis al Laboratorio de diagn&oacute;stico Fitopatol&oacute;gico del Campo Experimental Valle de Culiac&aacute;n del INIFAP. La detecci&oacute;n de fitoplasmas y bacteria <i>(Xilella fastidiosa</i> Wells), fue mediante la t&eacute;cnica de la Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa (PCR) (Almeyda&#45;Le&oacute;n <i>et.al.,</i> 2001, Mart&iacute;nez&#45;Soriano <i>et al,</i> 1999). Para detectar a los virus PLRV y PVY se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de ELISA (Enzyme&#45;Linked Inmunosorbent Assay) (Salazar, 1995). Con el fin de analizar los datos poblacionales, reducir la dimensionalidad de los datos, establecer la relaci&oacute;n entre las variables y agrupar individuos semejantes (Manly, 1986; Jhonson y Wichern, 1988), se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica de An&aacute;lisis de Componentes Principales (ACP) y un An&aacute;lisis de Conglomerados (AC).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Solamente el 46.7% de los genotipos evaluados produjo tub&eacute;rculos; el resto present&oacute; los s&iacute;ntomas caracter&iacute;sticos del s&iacute;ndrome de la punta morada y muri&oacute; sin llegar a producci&oacute;n. El an&aacute;lisis de componentes principales (ACP), explic&oacute;76.8% de la varianza total con los primeros tres componentes principales (<a href="#c1">Cuadro 1</a>). El primer componente contuvo 40.59% de dicha varianza, e indic&oacute; asociaci&oacute;n positiva entre todas las variables estudiadas; en este Cp1 resaltaron caracter&iacute;sticas como d&iacute;as a inicio de primeros s&iacute;ntomas y d&iacute;as a muerte, producci&oacute;n por planta y n&uacute;mero de tub&eacute;rculos por planta con valores superiores a 0.7, por lo que se puede llamar "Componente de producci&oacute;n o tolerancia", ya que tiende a separar los genotipos productores de los no productores (<a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v29n1/a2c1.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v29n1/a2f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El segundo componente principal explic&oacute; la asociaci&oacute;n negativa entre los d&iacute;as a inicio de primeros s&iacute;ntomas (ISM), d&iacute;as a muerte (DMP) y cobertura (COB), que presentaron valores superiores a &#45;0.5, con el n&uacute;mero de tub&eacute;rculos por planta (NT), porciento de manchado de tub&eacute;rculos (MIT) y brote de hilo (BH), que presentaron asociaci&oacute;n positiva entre s&iacute; con valores superiores a 0.5. Estos valores en las caracter&iacute;sticas agron&oacute;micas y de tub&eacute;rculos, son s&iacute;ntomas de alta susceptibilidad al s&iacute;ndrome de la punta morada (Maramorosch, 1988; Salazar, 1995; Cadena 1996; Flores <i>et al.,</i> 2008), por lo cual este componente puede denominarse de "Susceptibilidad al s&iacute;ndrome de la punta morada", ya que tiende a agrupar variables asociadas a los s&iacute;ntomas de este s&iacute;ndrome (<a href="#f1">Figura 1</a>). Para el tercer componente principal, los valores significativos pero opuestos fueron; para caracter&iacute;sticas de brotaci&oacute;n de tub&eacute;rculo brote de hilo (BH) &#45;0.615 y sin brote (SB) 0.637, por lo que este CP3 que incide en la calidad de la semilla&#45;tub&eacute;rculo puede denominarse "Componente de viabilidad de semilla" (Cadena&#45;Hinojosa <i>et al.,</i> 2003).</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los s&iacute;ntomas de de BH y SB, son caracter&iacute;sticos del da&ntilde;o por el virus potato leaf roll (PLRV) independiente y en asociaci&oacute;n con el potato virus Y (PVY) y fitoplasmas presentan un da&ntilde;o m&aacute;s severo (Bokx, 1980), siendo de los principales pat&oacute;genos que favorecen la degeneraci&oacute;n acelerada de la semilla. Actualmente los fitoplasmas han sido se&ntilde;alados como pat&oacute;genos de gran peligrosidad en las zonas productoras de papa comercial o como semilla, debido a que pueden pasar desapercibidos al estar presentes en tub&eacute;rculos&#45;semillas con brotaci&oacute;n normal (Mart&iacute;nez&#45;Soriano <i>et al.,</i> 1999). En la <a href="#f1">Figura 1</a>, se aprecia lo expresado para los componentes principales que explicaron la mayor cantidad de variaci&oacute;n, sugiriendo una clasificaci&oacute;n preliminar de los genotipos evaluados por su susceptibilidad al s&iacute;ndrome de la punta morada, as&iacute; la l&iacute;nea trazada en el punto cero del CP1 de la <a href="/img/revistas/rmfi/v29n1/a2f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>, separa a los genotipos productores a la izquierda de la l&iacute;nea y a los no productores a la derecha. El CP2 separ&oacute; los genotipos m&aacute;s productores, con mayor n&uacute;mero de tub&eacute;rculos y mayor porcentaje de manchado, menor altura y cobertura, menor inicio y muerte as&iacute; como intervalo de inicio a muerte, de aquellos genotipos m&aacute;s altos, de mayor cobertura, tard&iacute;os, menos productores y con menor n&uacute;mero de tub&eacute;rculos. Para confirmar las clasificaciones anteriores, se procedi&oacute; a realizar un an&aacute;lisis de conglomerados mediante la metodolog&iacute;a de Ward (1963), la cual identific&oacute; hasta tres grupos cuyos valores medios y n&uacute;mero de integrantes aparecen en el <a href="#c2">Cuadro 2</a>. Al comparar tales grupos se detect&oacute; alta significancia entre la mayor&iacute;a de las variables, excepto para altura de planta entre el Grupo I y II. El Grupo I estuvo conformado por 114 genotipos que se caracterizaron por no producir tub&eacute;rculo y porque sus caracter&iacute;sticas agron&oacute;micas obtuvieron los valores m&aacute;s bajos, debido posiblemente a la susceptibilidad mostrada al s&iacute;ndrome de punta morada. Los genotipos que conformaron el Grupo II (53), fueron los de mayor tolerancia al s&iacute;ndrome, ya que presentaron la mayor media de producci&oacute;n por planta (49.77 g planta<sup>&#45;1</sup>) y sobrevivieron, de inicio de s&iacute;ntomas a marchitez, 17 d&iacute;as. En este grupo probablemente ocurri&oacute; la m&aacute;s r&aacute;pida translocaci&oacute;n de fotosintatos para el llenado de tub&eacute;rculo antes de que el floema fuera afectado por hipertrofia, hiperplasia y proliferaci&oacute;n o necrosis de c&eacute;lulas y acumulaci&oacute;n anormal de callosa en las paredes o por la tasa de translocaci&oacute;n del virus o fitoplasma, que depende del ritmo de multiplicaci&oacute;n y para la cual se ha reportado que difieren las variedades como lo se&ntilde;alan Bokx (1980) y Ploaie (1981). El Grupo III sobresale por presentar m&aacute;s tarde los primeros s&iacute;ntomas (56 d&iacute;as), as&iacute; como el intervalo m&aacute;s amplio a marchitez (23.08), lo que sugiri&oacute; lento desarrollo de la enfermedad o presencia de caracter&iacute;sticas que las hacen poco atractivas para los vectores. La media de producci&oacute;n de este grupo fue muy baja (6.531 planta<sup>&#45;1</sup>). Esta baja producci&oacute;n pudo deberse a la reducci&oacute;n en la translocaci&oacute;n de los hidratos de carbono del follaje a los tub&eacute;rculos y que da como resultado la acumulaci&oacute;n de almid&oacute;n en las hojas, abultamiento del tallo en los lugares de inserci&oacute;n de las hojas y formaci&oacute;n de tub&eacute;rculos a&eacute;reos como sugieren Ames (1980) y Maramorosch (1988). Los bajos valores promedios de producci&oacute;n por planta que se obtuvieron en este estudio probablemente fueron debidos a la presencia de altas poblaciones de vectores ya que no se realizaron aplicaciones de insecticidas para su control, consecuentemente la transmisi&oacute;n de la enfermedad fue mayor, los pulgones presentaron mayor poblaci&oacute;n con relaci&oacute;n a la paratrioza y chicharrita desde la emergencia la que se uniformiz&oacute; a los 21 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra (<a href="/img/revistas/rmfi/v29n1/a2f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). La sintomatolog&iacute;a del s&iacute;ndrome de punta morada en planta y tub&eacute;rculo, puede ser causada por virus y fitoplasmas (Bokx, 1980; Mart&iacute;nez&#45;Soriano <i>et al.,</i> 1999), as&iacute; como por la bacteria <i>Xilella fastidiosa</i> (Wells); esta &uacute;ltima tambi&eacute;n es reportada como inductora de los s&iacute;ntomas caracter&iacute;sticos de esa enfermedad (Secor <i>et al.,</i> 2006). Es posible que tambi&eacute;n estuviera presente la bacteria <i>Candidatus</i> Liberibacter solanacearum, especie que solo afecta a especies de la familia solanaceae como el tomate y la papa y es transmitida por <i>Bactericera cockerelli</i> (Sulc) (Hansen <i>et al.,</i> 2008). Lo anterior hace dif&iacute;cil dilucidar la importancia de cada una de ellas, ya que en las muestras que se analizaron, se encontraron los virus PLRV y PVY, fitoplasma y la bacteria <i>Xilella fastidiosa</i> (Wells). El fitoplasma fue detectado en 80% de las muestras, seguido del PVY y PLRV con 31 y 28.6% respectivamente. En cuanto a las combinaciones detectadas, la m&aacute;s frecuente fue PVY y fitoplasma (28.6%). Como la trasmisi&oacute;n de estos pat&oacute;genos se realiza a trav&eacute;s de vectores y se utiliz&oacute; semilla sana (minitub&eacute;rculos provenientes de invernadero y analizados contra la presencia de virus y fitoplasmas), se asume que los pat&oacute;genos fueron adquiridos a trav&eacute;s de los vectores. Para la bacteria <i>Candidatus</i> Liberibacter solanacearum no se realiz&oacute; an&aacute;lisis; sin embargo, la presencia de su principal vector <i>(Bactericera cockerelli</i> Sulc) y otros hospederos alternos de la bacteria como la correhuela <i>(Ipomoea</i> spp.) y el cilindrillo <i>(Licium berlandieri)</i> hace suponer su presencia en el sitio de evaluaci&oacute;n. En virtud de lo complejo del problema del s&iacute;ndrome de la punta morada debido al gran n&uacute;mero de agentes causales, es importante seleccionar aquellos genotipos menos susceptibles y utilizar el m&eacute;todo m&aacute;s adecuado para controlar la enfermedad. En la Figura 4, se observa el agrupamiento de genotipos que lograron producir (Grupo II), as&iacute; como los que alcanzaron baja producci&oacute;n (Grupo III) y nula producci&oacute;n (Grupo I); con base en esto, el componente CP1 separ&oacute; los genotipos con y sin producci&oacute;n. De acuerdo con estos resultados, el Grupo II es de mayor impo    rtancia para iniciar un programa de mejoramiento, al tener mayor tasa de translocaci&oacute;n de fotoasimilados o mayor resistencia a la afectaci&oacute;n del floema, compar&aacute;ndolo con el Grupo I en el que fue nula la producci&oacute;n de tub&eacute;rculo y m&aacute;s temprano el inicio de s&iacute;ntomas y muerte de planta, y con el Grupo III, que mostr&oacute; m&aacute;s tard&iacute;o el inicio de s&iacute;ntomas y muerte de la planta y baja producci&oacute;n, por lo que son necesarios estudios m&aacute;s precisos para determinar las causas de su comportamiento. En el <a href="/img/revistas/rmfi/v29n1/a2c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>; aparecen los genotipos del Grupo II que superaron a la media de producci&oacute;n por planta; en dicho grupo quedaron incluidas las principales variedades comerciales (Alpha, Atlantic y Gigant), as&iacute; como las nuevas variedades liberadas por el INIFAP (Nieder y Bayonera) y algunos clones promisorios del mismo Instituto. Los genotipos Alpha, Gigant, 91&#45;29&#45;10 y CIP&#45;30, son relevantes porque no presentaron manchado interno de tub&eacute;rculo y los clones 94&#45;02&#45;01, 98&#45;14&#45;01 y 96&#45;01&#45;01 fueron tolerantes para este s&iacute;ntoma con 25, 18 y 25% respectivamente. Para los cultivares, Alpha y Gigant, existen informes de resistencia al manchado (Cadena, 1996; Cazares <i>et al.,</i> 2003), &eacute;stos genotipos al igual que el clon 9129&#45;10 pudieran ser utilizados como progenitores en un programa de mejoramiento por resistencia al manchado.</font></p>     	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v29n1/a2c2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dentro de los grupos generados, el Grupo II conformado por 53 genotipos result&oacute; m&aacute;s tolerante al s&iacute;ndrome de la punta morada, destacando en &eacute;l los genotipos Gigant, Alpha, Norte&ntilde;a, Bayonera, Nieder, Atlantic, 91&#45;2910, 98&#45;14&#45;01, 94&#45;02&#45;01 y 96&#45;01&#45;01, por su mayor producci&oacute;n y menor manchado del tub&eacute;rculo cuando no se controlan vectores de la enfermedad por medios qu&iacute;micos. Estos materiales se constituyen como alternativas para ser utilizados en programas de mejoramiento gen&eacute;tico, orientados a la b&uacute;squeda de resistencia o tolerancia al s&iacute;ndrome de punta morada de la papa.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Almeyda, L.I.H., Rocha, P.M.A., Pi&ntilde;a, R.J., Mart&iacute;nez, S.J.P. 2001. The use of polymerase chain reaction and molecular hybridization for detection of <i>Phytoplasma</i> sp. in different plant species in Mexico. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 19:1&#45;9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478011&pid=S0185-3309201100010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ames, T.I. 1980. Compendio de enfermedades de la papa. Centro Internacional de la Papa. Lima, Per&uacute;. Pp: 25&#45;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478013&pid=S0185-3309201100010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bayer, 2008. Manual del tiz&oacute;n tard&iacute;o <i>(Phytophthora</i> <i>infestans).</i> Informaci&oacute;n T&eacute;cnica. Bayer de M&eacute;xico, S. A. de C.V. 45p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478015&pid=S0185-3309201100010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bokx, J.A. 1980. Viruses of potatoes and seed&#45;potato production. Centre for Agricultural Publishing and Documentation, Wageningen, The Netherlands. 291p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478017&pid=S0185-3309201100010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cadena, H. &#924;. A. 1996. La punta morada de papa en M&eacute;xico: II Efecto de cubiertas flotantes, cultivares y productos qu&iacute;micos. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a. 14:20&#45;24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478019&pid=S0185-3309201100010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cadena&#45;Hinojosa, &#924;. A., Guzm&aacute;n&#45;Plazola, R., D&iacute;az&#45;Valasis, &#924;., Zavala&#45;Quintana T.E., Maga&ntilde;a, T.O.S., Almeyda&#45;Le&oacute;n. I.H., L&oacute;pez&#45;Delgado, H., Rivera&#45;Pe&ntilde;a. A. y Rubio&#45;Covarrubias, O. 2003. Distribuci&oacute;n, incidencia y severidad del pardeamiento y la brotaci&oacute;n anormal en los tub&eacute;rculos de papa en Valles Altos y Sierras de los estados de M&eacute;xico, Tlaxcala y el Distrito Federal, M&eacute;xico. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a. 21:248&#45;259.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478021&pid=S0185-3309201100010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cazares, M.I.G., de la Jara, A. F., Rodr&iacute;guez, D.A.M. y Cadena, H.M.A. 2003. Comparaci&oacute;n de patrones electrofor&eacute;ticos de prote&iacute;nas e isoenzimas en tub&eacute;rculos sanos y con s&iacute;ntomas de punta morada de siete variedades de papa <i>(Solanum tuberosum</i> L.). Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a. 21:102&#45;108.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478023&pid=S0185-3309201100010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Davis, H.V. 1998. Physiological mechanisms associated with the development of internal necrotic disorders of potato. American. Journal ofPotato Research. 75:37&#45;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478025&pid=S0185-3309201100010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estrada, R.N. 1999. La biodiversidad en el mejoramiento gen&eacute;tico de la papa. Ed. Centro de Informaci&oacute;n para el desarrollo. Centro Internacional de la Papa. Libro T&eacute;cnico. La Paz Bolivia. Pp:17&#45; 63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478027&pid=S0185-3309201100010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Flores, O.A., Alem&aacute;n, N.I.A. y Notario, Z.M.I. 2008. Alternativas para el manejo de la punta morada de la papa. Pp. 66&#45;89. In: Flores Olivas, A. y Lira Saldivar, R.H. (eds). Detecci&oacute;n, Diagn&oacute;stico y Manejo de la Enfermedad Punta Morada de la Papa. Ed. Parnaso. M&aacute;laga, Espa&ntilde;a.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478029&pid=S0185-3309201100010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garc&iacute;a, E. 1988. Modificaciones al sistema de clasificaci&oacute;n clim&aacute;tica de K&ouml;pen (para adaptarlo a las condiciones de la Rep&uacute;blica Mexicana). 4a. ed. Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, Instituto de Geograf&iacute;a. M&eacute;xico, D. F. 217 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478031&pid=S0185-3309201100010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garza, L.J.C. 1999. Control de la marchitez de la planta y necrosis interna del tub&eacute;rculo en papa en Coahuila y Nuevo Le&oacute;n. Campo Experimental Saltillo, INIFAP. Folleto T&eacute;cnico No. 1. 11p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478033&pid=S0185-3309201100010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hansen, A.K., Trumble, J.T., Stouthamer, R. and Paine, T.D. 2008. A new Huanglonbing (HLB) species, <i>"Candidatus</i> Liberibacter psyllaurous," found to infect tomato and potato, is vectored by psyllid <i>Bactericera cockerelli</i> (Sulc). Applied Environmental Microbiology 74:5862&#45;5865.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478035&pid=S0185-3309201100010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ITESM. 2003. Informe del Foro Cadena Agroalimentaria de Papa (Alta Tecnolog&iacute;a). Instituto Tecnol&oacute;gico de Estudios Superiores de Monterrey Campus Saltillo. Saltillo, Coah., M&eacute;xico. 35p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478037&pid=S0185-3309201100010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Johnson, R.A. and Wichern, D.W. 1988. Applied Multivariate Statistical Analysis. 2<sup>nd</sup> ed. Prentice&#45;Hall. Englewood Cliffs, NJ, USA. 607p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478039&pid=S0185-3309201100010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Manly, B.F.J. 1986. Multivariate Statistical Methods: A Primer. Ed. Chapman and Hall. London. 160p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478041&pid=S0185-3309201100010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez&#45;Soriano, J.P., Leyva&#45;L&oacute;pez, N.E., Zavala&#45;Soto, M.E., Beres, &#924;. y Leal&#45;Klevezas, D.S. 1999. Detecci&oacute;n molecular del agente causal de la "bola de hilo" de la papa en semillas infectadas y asintom&aacute;ticas. Biotecnolog&iacute;a Aplicada 16:93&#45;96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478043&pid=S0185-3309201100010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mendoza, H.A. 1997. Development ofpotatoes with multiple resistances to biotic and abiotic stresess. Advances in Potato Pest. Biology and Management. APS Press. Pp:627&#45;642.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478045&pid=S0185-3309201100010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maramorosch, K. 1988. Potato purple top wilt. Entomology Department, Cook College, Rutgers&#45;The State University. NJ, USA. 456p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478047&pid=S0185-3309201100010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Parga, T.V.M. 2000. Devoran a la Papa: Plaga y Altos costos. Nota period&iacute;stica publicada el 23 de octubre del 2000 en el peri&oacute;dico la PALABRA. Saltillo Coah. M&eacute;xico.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Parga, T.V.M. 2008. Mejoramiento gen&eacute;tico por resistencia a punta morada de la papa <i>(Solanum tuberosum</i> L.). Pp:49&#45;56. <i>In:</i> Flores Olivas, A. y Lira Saldivar, R.H. (eds). Detecci&oacute;n, Diagn&oacute;stico y Manejo de la Enfermedad Punta Morada de la Papa. Ed. Parnaso. M&aacute;laga, Espa&ntilde;a.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478050&pid=S0185-3309201100010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Parga, T.V.M., Garc&iacute;a, G.S.J., Villavicencio, G.E.E., S&aacute;nchez, S.J.A., Contreras, de la R.F.J., Arellano, G.M.A., Covarrubias, R.J.M., Rubio, C.O.A. y Fern&aacute;ndez E.J. 2005. Tecnolog&iacute;a para producir papa en Coahuila y Nuevo Le&oacute;n. Campo Experimental Saltillo, INIFAP. Folleto T&eacute;cnico No. 5. Saltillo, Coah., M&eacute;xico. 164p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478052&pid=S0185-3309201100010000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ploaie, P.G. 1981. Plant Diseases and Vectors Ecology and Epidemiology. Maramorosch, K. and Harris, K.F. (eds.). Academic Press. NY, USA. 368p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478054&pid=S0185-3309201100010000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rivera, P.A. 2008. Generaci&oacute;n de variedades de papa en M&eacute;xico. Memorias del XII Congreso Nacional de Papa. Los Mochis, Sinaloa, M&eacute;xico. Pp:45&#45;48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478056&pid=S0185-3309201100010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rubio, C.O.A. 1998. Manejo Integrado de la nutrici&oacute;n del cultivo de la papa. Memorias del 2&deg; Simposium Internacional de la Papa. Toluca, M&eacute;xico. Pp:35&#45;42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478058&pid=S0185-3309201100010000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Salazar, L.F. 1995. Los virus de la papa y su control. Centro Internacional de la Papa (CIP), Lima, Per&uacute;. 226p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478060&pid=S0185-3309201100010000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Secor, G., Munyaneza, J. y Ming&#45;Lee, I. 2006. Una nueva enfermedad tipo punta morada causando p&eacute;rdidas en el cultivo de la papa en Norte Am&eacute;rica. <i>En:</i> Mora&#45;Aguilar, R. y H. Lozoya&#45;Salda&ntilde;a. Memorias del XXII Congreso de la Asociaci&oacute;n Latinoamericana de la Papa. Toluca, M&eacute;xico. Pp:2&#45;5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478062&pid=S0185-3309201100010000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Servicio de Informaci&oacute;n Agroalimentaria y Pesquera (SIAP). 2010. Cierre de la producci&oacute;n agr&iacute;cola por cultivo. El cultivo de papa. A&ntilde;o 2009. Informe SIAP. M&eacute;xico, D.F. <a href="http://www.siap.gob.mx/index.php?option=com_wrapper&amp;view=wrapper&amp;Itemid=350" target="_blank">http://www.siap.gob.mx/index.php?option&#61;com&#95;wrapper&amp;view&#61;wrapper&amp;Itemid&#61;350</a>. (consulta, noviembre 2010).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478064&pid=S0185-3309201100010000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ward, J.H.Jr. 1963. Hierarchical grouping to optimize an objective function. Journal of the American Statistical Association 58:236&#45;244.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478066&pid=S0185-3309201100010000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ye, C.W.E., D&iacute;az, S.H., Lozano del R.A.J., Zamora, V.V.M. y Ayala, O.M.J. 2001. Agrupamiento de germoplasma de triticale forrajero por rendimiento, ahijamiento y gustosidad. T&eacute;cnica Pecuaria en M&eacute;xico 39:15&#45;30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478068&pid=S0185-3309201100010000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zavala&#45;Quintana, T.E. 2002. Experiencias en el valle de Toluca sobre punta morada. Memorias del XI Congreso Nacional de la Papa. Le&oacute;n, Guanajuato M&eacute;xico. Pp:81&#45;97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8478070&pid=S0185-3309201100010000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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