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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Tendencia del perfil de sensibilidad antimicrobiana de los aislamientos de sangre en un hospital oncológico (1998-2003)]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Trend of antimicrobial drug-susceptibility of blood isolates at an oncological center (1998-2003)]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Nacional de Cancerología (INCan) Laboratorio de Microbiología ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[OBJECTIVE: To describe the patterns of antimicrobial resistance organisms isolated in blood cultures from patients detected in a tertiary level of care, teaching oncological hospital. MATERIAL AND METHODS: All strains obtained from blood cultures from 1998 to 2003 were included and processed using the Bactec and Microscan system to determinate isolates and susceptibility to antimicrobials. The percent difference (increase or decrease) was obtained by comparing the frequency of resistance at baseline and at the end of the study. RESULTS: A total of 2 071 positive blood cultures were obtained; 59.7% of isolates were Gram negative bacteria, 35.7% Gram-positive bacteria and 4.6% were yeasts. E.coli was the most frequent isolated (18.6%), followed by Staphylococcus. epidermidis (12.7%) and Klebsiella spp (9%). Throughout the study the susceptibility of Gram negative bacteria was stable and over 88% for most of the antimicrobials tested (except for Pseudomonas aeruginosa). Ciprofloxacin susceptibility for Escherichia coli stayed around 50%. Susceptibility to amikacin was higher than that to gentamicin. Staphylococcus aureus susceptibility for oxacillin was 96% and that for vancomycin 100%. S. epidermidis susceptibility for oxacillin was 14% and for vancomycin was 98.6%. No strains of vancomycin-resistant enterococci were found. All Streptococcus pneumoniae strains were penicillin susceptible. CONCLUSIONS: The drug-resistance found in this hospital is the result of the control in the use of antimicrobials, the hospital nosocomial infection program and the use of drug combination in all patients with bacteremia.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="verdana"><b>Tendencia del perfil de sensibilidad antimicrobiana    de los aislamientos de sangre en un hospital oncol&oacute;gico (1998-2003) </b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>Trend of antimicrobial drug-susceptibility    of blood isolates at an oncological center (1998-2003)</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Patricia Cornejo-Ju&aacute;rez, MD<SUP>I</SUP>;    Consuelo Vel&aacute;squez-Acosta, QFB<SUP>II</SUP>; Adriana D&iacute;az-Gonz&aacute;lez,    QFB<SUP>II</SUP>; Patricia Volkow-Fern&aacute;ndez, MD.<SUP>I</SUP></b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><sup>I</sup>Departamento de Infectolog&iacute;a,    Instituto Nacional de Cancerolog&iacute;a (INCan). M&eacute;xico, DF, M&eacute;xico    <br>   <sup>II</sup>Laboratorio de Microbiolog&iacute;a, INCan. M&eacute;xico, DF,    M&eacute;xico</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><B>OBJETIVO:</B> Describir la frecuencia de la    resistencia en microrganismos aislados en cultivos de sangre en pacientes de    un hospital oncol&oacute;gico de tercer nivel.    <br>   <B>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS:</B> De enero de 1998 a diciembre de 2003, en el    Instituto Nacional de Cancerolog&iacute;a se desarroll&oacute; un estudio retrospectivo    en el cual se obtuvieron cepas de cultivos de sangre que fueron incluidas y    procesadas por sistema Bactec y Microscan, para determinar identificaci&oacute;n    y sensibilidad antimicrobiana. Se determin&oacute; la tendencia anual de la    resistencia de cada organismo especificado a los diferentes antibi&oacute;ticos.    Se obtuvo la diferencia porcentual (incremento o decremento) comparando la frecuencia    de resistencia al inicio y al final del estudio.    <br>   <B>RESULTADOS:</B> Se detectaron 2 071 cultivos positivos. Se recuperaron Gram    negativos en 59.7% de las muestras, Gram positivos en 35.7% y levaduras en 4.6%.    <I>Escherichia coli </I>fue el principal germen identificado (18.6%), seguido    de <I>S. epidermidis </I>(12.7%) y <I>Klebsiella spp </I>(9%). Durante el periodo    de estudio la sensibilidad se mantuvo estable y por arriba de 88% (excepto para    <I>Pseudomonas aeruginosa</I>). La sensibilidad de ciprofloxacina para <I>E.    coli</I> se encontr&oacute; alrededor de 50%. Amikacina present&oacute; mayor    sensibilidad que gentamicina. S<I>taphylococcus aureus</I> present&oacute; una    sensibilidad a oxacilina de 96% y a vancomicina de 100%. <I>S.epidermidis </I>de    14% a oxacilina y de 98.6% a vancomicina. No se encontraron cepas de enterococo    resistente a vancomicina. Todas las cepas de <I>S. pneumoniae</I> fueron sensibles    a penicilina.    <br>   <B>CONCLUSIONES:</B> Se considera que los patrones de resistencia encontrados    en este hospital son el resultado del control en el uso de antimicrobianos,    del programa de vigilancia de infecciones nosocomiales y de la utilizaci&oacute;n    de terapia combinada en todos los pacientes con bacteremia. </font> </p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave:</b> resistencia y sensibilidad    antimicrobiana; tendencia; hemocultivos</font></p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><B>OBJECTIVE:</B> To describe the patterns of    antimicrobial resistance organisms isolated in blood cultures from patients    detected in a tertiary level of care, teaching oncological hospital.     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <B>MATERIAL AND METHODS:</B> All strains obtained from blood cultures from    1998 to 2003 were included and processed using the Bactec and Microscan system    to determinate isolates and susceptibility to antimicrobials. The percent difference    (increase or decrease) was obtained by comparing the frequency of resistance    at baseline and at the end of the study.    <br>   <B>RESULTS:</B> A total of 2 071 positive blood cultures were obtained; 59.7%    of isolates were Gram negative bacteria, 35.7% Gram-positive bacteria and 4.6%    were yeasts. <I>E.coli </I>was the most frequent isolated (18.6%), followed    by <I>Staphylococcus. epidermidis</I> (12.7%) and <I>Klebsiella spp</I> (9%).    Throughout the study the susceptibility of Gram negative bacteria was stable    and over 88% for most of the antimicrobials tested (except for <I>Pseudomonas    aeruginosa</I>).  Ciprofloxacin susceptibility for <I>Escherichia coli</I>    stayed around 50%. Susceptibility to amikacin was higher than that to gentamicin.    <I>Staphylococcus aureus</I> susceptibility for oxacillin was 96% and that for    vancomycin 100%. <I>S. epidermidis</I> susceptibility for oxacillin was    14% and for vancomycin was 98.6%. No strains of vancomycin-resistant enterococci    were found. All <I>Streptococcus pneumoniae</I> strains were penicillin susceptible.    <br>   <B>CONCLUSIONS:</B> The drug-resistance found in this hospital is the result    of the control in the use of antimicrobials, the    hospital nosocomial infection program and the use of drug combination in all    patients with bacteremia. </font> </p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Key words:</b> antimicrobial resistance and    susceptibility; trend; blood cultures</font></p> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">El incremento en los patrones de resistencia    antimicrobiana, como resultado de la presi&oacute;n selectiva por el creciente    uso de antibi&oacute;ticos, condiciona fallas en los esquemas antimicrobianos,    aumento en la morbilidad y mortalidad, en la estancia hospitalaria y en los    costos de atenci&oacute;n.<SUP>1-5</SUP> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Por lo anterior, los pacientes oncol&oacute;gicos    presentan factores que elevan el riesgo de adquirir infecciones pues son pacientes    inmunosuprimidos, bajo tratamiento con quimioterapia o radioterapia, sometidos    a cirug&iacute;as extensas, con cat&eacute;teres intravasculares de larga estancia    y otros dispositivos que rompen las barreras naturales.<SUP>6</SUP> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Conocer los patrones de sensibilidad de las    cepas responsables de las infecciones en tales pacientes permite adecuar tratamientos    emp&iacute;ricos tempranos a trav&eacute;s de pol&iacute;ticas espec&iacute;ficas    de prescripci&oacute;n de antibi&oacute;ticos, adem&aacute;s de detectar brotes    en forma oportuna y tomar las medidas necesarias para su control y prevenci&oacute;n.<SUP>7,8</SUP>    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> El objetivo de este estudio fue describir la    tendencia de la resistencia antimicrobiana de los microrganismos aislados en    cultivos de sangre, de enero de 1998 a diciembre de 2003, en el Instituto Nacional    de Cancerolog&iacute;a (INCan). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Material y m&eacute;todos </b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El INCan es un hospital de tercer nivel, centro    de referencia de toda la Rep&uacute;blica Mexicana para pacientes adultos con    c&aacute;ncer, que cuenta con 150 camas y una media de 7 500 egresos hospitalarios/a&ntilde;o    y 3 100 cirug&iacute;as mayores/a&ntilde;o. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se realiz&oacute; un estudio retrospectivo basado    en los informes del laboratorio de microbiolog&iacute;a cl&iacute;nica del INCan,    de enero de 1998 a diciembre de 2003. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se tomaron hemocultivos de pacientes con fiebre    o sospecha de un evento infeccioso. Se tomaron al menos dos muestras con un    intervalo de 20 a 30 minutos entre cada una, con t&eacute;cnica est&eacute;ril    y barrera m&aacute;xima. En pacientes con un cat&eacute;ter venoso central de    larga estancia, se tom&oacute; un cultivo inicial por v&iacute;a perif&eacute;rica    y uno a trav&eacute;s de cada lumen del cat&eacute;ter. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se consideraron como casos los pacientes con    datos cl&iacute;nicos de enfermedad sist&eacute;mica y cultivos de sangre con    crecimiento de bacterias. Se consider&oacute; como contaminante el crecimiento    en un solo hemocultivo de organismos considerados como flora de piel (<I>Staphylococcus    epidermidis, Corynebacterium sp, Bacillus sp</I>), y en el caso de los pacientes    con cat&eacute;ter, cuando el crecimiento se present&oacute; &uacute;nicamente    en el tomado a trav&eacute;s del mismo y no en el de v&iacute;a perif&eacute;rica.    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Las muestras se inocularon en medio enriquecido    Bactec Plus aerobic F (Becton-Dickinson, Sparks, MD, Estados Unidos de Am&eacute;rica    &#91;EUA&#93;), y se procesaron de acuerdo con las instrucciones del fabricante. La    identificaci&oacute;n y sensibilidad antimicrobiana se realizaron por el microm&eacute;todo    MicroScan (Dade-Behring, West Sacramento, CA, EUA). Se incluyeron los resultados    de las cepas aisladas de <I>Escherichia coli, Klebsiella spp, Enterobacter spp,    Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter spp, Enterococcus faecalis, E. faecium,    Staphylococcus aureus, S. epidermidis, Streptococcus pneumoniae, Listeria    monocytogenes</I>, <I>Candida albicans </I>y <I>Candida spp</I>. Solamente se    incluy&oacute; un germen por episodio de bacteremia. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Los antibi&oacute;ticos que se analizaron para    los g&eacute;rmenes Gram negativos fueron: amikacina (AK), gentamicina (GM),    cefazidima (CAZ), trimetroprim/sulfametoxazol (TMP/SMX), ciprofloxacina (CIP)    e imipenem (IMP). Para <I>P. aeruginosa</I> se estudi&oacute;, adem&aacute;s,    pieracilina (PIP) y se excluy&oacute; TMP/SMX. Para <I>Enterococus spp</I> ampicilina    (amp), vancomicina (van) y CIP. Para <I>S. pneumoniae</I> penicilina (PEN),    eritromicina (ERIT) y VAN. Y para <I>Staphylococcus spp</I> oxacilina (OXA),    CIP, VAN Y GM. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se consideraron cepas sensibles o resistentes    de acuerdo con la concentraci&oacute;n m&iacute;nima inhibitoria determinada    y conforme a los par&aacute;metros del National Committee for Clinical Laboratory    Standards (NCCLS).<SUP>9</SUP> Las bacterias que se encontraban en un rango    intermedio se consideraron como resistentes. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Las cepas de <I>S. aureus</I> resistentes a    oxacilina fueron confirmadas en medio de M&uuml;eller Hinton, suplementado con    oxacilina. La susceptibilidad antimicrobiana para <I>S. pneumoniae</I> fue determinada    por m&eacute;todo de Kirby-Bauer. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> Para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico se    determin&oacute; la tendencia anual de la frecuencia de resistencia de cada    uno de los organismos especificados a los diferentes antibi&oacute;ticos. Se    obtuvo la diferencia porcentual (incremento o decremento), comparando la frecuencia    de resistencia al inicio y al final del tiempo de estudio. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Resultados </b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Durante el periodo de estudio se detectaron 2    071 episodios de bacteremia, con una tasa promedio de 43.1/1 000 egresos. Se    recuperaron g&eacute;rmenes Gram negativos en 59.7% de las muestras, Gram positivos    en 35.7% y levaduras en 4.6%. Los principales microrganismos aislados en orden    de frecuencia fueron: <I>E.coli, S. epidermidis, Klebsiella spp, S. aureus</I>    y <I>Enterobacter spp</I>. (<a href="#qdr01">cuadro I</a>). </font></p>     <p><a name="qdr01"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/spm/v47n4/a06qdr01.gif"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I> E. coli</I> se aisl&oacute; en 18.6% del    total de cultivos. Gentamicina present&oacute; un promedio de 16.3% menos en    la sensibilidad al compararla con amikacina. El resto de los antibi&oacute;ticos    estudiados no present&oacute; cambios significativos (<a href="#fig01">figura    1</a>). </font></p>     <p><a name="fig01"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/spm/v47n4/a06fig01.gif"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I> Klebsiella spp</I> se aisl&oacute; en 9%    de los cultivos; la principal especie identificada fue <I>K. pneumoniae</I>.    La sensibilidad de los antibi&oacute;ticos estudiados se encuentra por arriba    del promedio al compararlo con el resto de las enterobacterias (<a href="#fig02">figura    2</a>). </font></p>     <p><a name="fig02"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/spm/v47n4/a06fig02.gif"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I> P. aeruginosa</I> se aisl&oacute; en 5.6%    de las muestras. Durante el periodo de estudio se observ&oacute; un incremento    porcentual en la sensibilidad a ciprofloxacina de 42.8%. Gentamicina se notific&oacute;    con un promedio de 8.2% menos en la sensibilidad al compararlo con amikacina    (<a href="#fig03">figura 3</a>). </font></p>     <p><a name="fig03"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/spm/v47n4/a06fig03.gif"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I> Enterobacter sp</I> se identific&oacute;    en 6.7% de los cultivos. Ceftazidima present&oacute; un aumento de 20% de 1998    a 2003. Ciprofloxina y TMP/SMX se notificaron con un promedio de sensibilidad    de 93.3 y 83.8% respectivamente; TMP/SMX tuvo un aumento en 35.7%. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Entre los a&ntilde;os 2001 y 2002 se aislaron    83 cepas de <I>Acinetobacter lwoffi</I> (10.3% del total de aislamientos y 2.3%    de los hemocultivos tomados), lo cual fue secundario a un brote de bacteremia    asociado a cat&eacute;ter venoso central, donde la fuente de contaminaci&oacute;n    se atribuy&oacute; a la heparina que los pacientes se aplicaban a trav&eacute;s    del cat&eacute;ter en su domicilio. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Respecto a los g&eacute;rmenes Gram positivos,    <I>S. epidermidis</I> se aisl&oacute; en 12.7% de las muestras –segundo microrganismo    m&aacute;s frecuentemente identificado. La sensibilidad a oxacilina se notific&oacute;    en 8% –no hubo ninguna cepa sensible en los &uacute;ltimos cuatro a&ntilde;os–,    mientras que vancomicina se inform&oacute; con una sensibilidad de 98.6% (<a href="#fig04">figura    4</a>). </font></p>     <p><a name="fig04"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/spm/v47n4/a06fig04.gif"></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><I> S. aureus</I> se aisl&oacute; con una frecuencia    de 8.9%, con una sensibilidad promedio a oxacilina de 96% y a vancomicina de    100%. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><I> Enterococcus faecalis </I>y<I> E. faecium    </I>representaron 2.9% de los aislamientos; se notific&oacute; la sensibilidad    a ampicilina de 73.8 y 16% respectivamente, mientras que para vancomicina fue    de 100% en ambas especies. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se identificaron 10 hemocultivos con <I>S. pneumoniae</I>;    todas las cepas fueron sensibles a penicilina. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se identificaron dos cepas de <I>L. monocytogenes</I>    en 1997 y una en el a&ntilde;o 2000. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Las levaduras representaron 4.6% de los aislamientos,    siendo la principal <I>C. albicans</I> (1.2 %). </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Discusi&oacute;n </b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">En los resultados obtenidos destaca que, para    el grupo de las enterobacterias, la sensibilidad de amikacina es mayor que la    informada para gentamicina, por lo cual no se encuentra justificaci&oacute;n    para rotar estos antibi&oacute;ticos, como se ha propuesto en algunos estudios.<SUP>10,11</SUP>    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Por otro lado, <I>E. coli</I> tuvo una sensibilidad    a ciprofloxacina de 50%, por lo que no se recomienda el uso de quinolonas como    parte del tratamiento emp&iacute;rico inicial    en pacientes con bacteremia, al ser &eacute;ste el principal germen aislado    en hemocultivos. Este bajo porcentaje en la sensibilidad puede relacionarse    con el uso indiscriminado de quinolonas en la comunidad. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Los carbapen&eacute;micos contin&uacute;an mostrando    una sensibilidad mayor de 95% para los g&eacute;rmenes estudiados, excepto para    <I>P. aeruginosa</I> (85.7%). Idealmente estos f&aacute;rmacos deben combinarse    con un aminogluc&oacute;sido y limitar su uso en pacientes con sepsis grave,    con infecciones polimicrobianas y para cepas multirresistentes.<SUP>12,13</SUP>    </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><I> S. aureus</I> mantiene un alto porcentaje    de sensibilidad a oxacilina (96%), mucho mayor que lo informado en otros estudios    realizados en M&eacute;xico, en los que var&iacute;a entre 55 y 86%.<SUP>14,15</SUP>    Lo anterior es al contrario de lo que se encontr&oacute; para <I>S. epidermidis</I>,    donde la sensibilidad a oxacilina fue en promedio de 8%, y a diferencia de otros    informes en nuestro pa&iacute;s en los que var&iacute;a entre 44 y 47%.<SUP>14,15</SUP>    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> No se encontraron cepas de enterococo resistentes    a vancomicina. Otros informes de estudios en hospitales mexicanos destacan la    frecuencia de cepas resistentes a vancomicina entre 0 y 14%.<SUP>16,17</SUP>    Por lo tanto, nuevos f&aacute;rmacos con espectro contra enterococo resistente    a vancomicina, como quinupristina/dalfopristina, no son utilizados en este hospital.<SUP>18</SUP>    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Destaca el reducido n&uacute;mero de aislamientos    de <I>L. monocytogenes,</I> tomando en cuenta que gran porcentaje de los pacientes    que son atendidos presenta depleci&oacute;n de linfocitos CD<SUB>4</SUB>, factor    de riesgo para infecciones por este pat&oacute;geno, lo cual hace suponer que    no es un problema de alta prevalencia en M&eacute;xico. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Las levaduras se han mantenido en un promedio    estable en el transcurso del periodo de estudio, y se a&iacute;slan con una    frecuencia similar a lo notificado en hospitales oncol&oacute;gicos y no oncol&oacute;gicos    en EUA.<SUP>19</SUP> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se considera que, en el INCan, las pol&iacute;ticas    de control y restricci&oacute;n de antibi&oacute;ticos de amplio espectro han    contribuido a mantener adecuados porcentajes de sensibilidad para los aminogluc&oacute;sidos,    cefalosporinas de tercera generaci&oacute;n y carbapen&eacute;micos. Estas pol&iacute;ticas    se basan en la restricci&oacute;n de antibi&oacute;ticos y de su consiguiente    disponibilidad en la farmacia del Instituto, la estandarizaci&oacute;n en los    esquemas de profilaxis, la utilizaci&oacute;n de terapia combinada en el tratamiento    emp&iacute;rico de pacientes con sepsis grave nosocomial o neutropenia grave    y fiebre (ceftazidima m&aacute;s amikacina), y uso de vancomicina &uacute;nicamente    en pacientes con infecciones graves por g&eacute;rmenes Gram positivos resistentes    a beta-lact&aacute;micos y en aquellos pacientes con alergia a beta-lact&aacute;micos.<SUP>20,21</SUP></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Referencias</b> </font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">1. Levy S. Multidrug resistance – a sign of the    times. N Engl J Med 1998; 338: 1376-1378. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208424&pid=S0036-3634200500040000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">2. Wise R, Hart T, Cars O, Streulens M, Helmuth    R, Huovinen P <I>et al</I>. Antimicrobial resistance is a major threat to public    health. BMJ 1998; 317: 609-610. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208425&pid=S0036-3634200500040000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">3. Ronald J. Resistance patterns among nosocomial    pathogens*: Trends over the past few years. Chest 2001; 119 suppl 2: S397-S404.    </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208426&pid=S0036-3634200500040000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">4. Gold HS, Moellering RC. Antimicrobial drug    resistance. N Engl J Med 1996: 335: 1445-1453. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208427&pid=S0036-3634200500040000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">5. Acar JF, Goldstein FW. Consequences of increasing    resistance to antimicrobial agents. Clin Infect Dis 1998; 27 (S): 125-130. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208428&pid=S0036-3634200500040000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">6. Patterson JE. Hospital-acquired infections:    Realities of risk and resistance. Chest 2001; 119 suppl 2: S426-S430. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208429&pid=S0036-3634200500040000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">7. Shlaes D, Gerding D, John JF Jr, Craig WA,    Bornstein DL, Duncan RA <I>et al</I>. Society of Healthcare Epidemiology of    America and Infectious Diseases Society of America Joint Committee on the Prevention    of Antimicrobial Resistance: Guidelines for the prevention of antimicrobial    resistance in hospitals. Clin Infect Dis 1997; 25: 584-599. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208430&pid=S0036-3634200500040000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">8. Goldmann DA, Huskins WC. Control of nosocomial    antimicrobial-resistant bacteria: A strategy priority for hospitals worldwide.    Clin Infect Dis 1997; 24 suppl 1: S139-S145. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208431&pid=S0036-3634200500040000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">9. National Committee for Clinical Laboratory    Standards. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing for    bacteria that grow aerobically. (Eleventh Informational Supplement). Wayne (PA):    NCCLS, 2001; Document M100-S11. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208432&pid=S0036-3634200500040000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">10. Raymond DP, Pelletier SJ, Cabtree TD, Gleason    TG, Hamm LL, Pruett TL <I>et al</I>. Impact of a rotating empiric antibiotic    schedule on infectious mortality in an intensive care unit. Crit Care Med 2001;    29: 1101-1108. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208433&pid=S0036-3634200500040000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">11. Landman D, Quale JM, Mayorga D, Adedeji A,    Vangala K, Ravinshankar J <I>et al</I>. Citywide clonal outbreak of multiresistant    <I>Acinetobacter baumanii </I>and <I>Pseudomonas aeruginosa</I> in Brooklyn,    NY. Arch Intern Med 2002; 162: 1515-1520. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208434&pid=S0036-3634200500040000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">12. Goldmann DA, Weinstein RA, Wenzel RP, Tublan    OC, Duma RJ, Gaynes RP <I>et al</I>. Strategies to prevent and control the emergence    and spread of antimicrobial resistant microorganisms in hospitals. A challenge    to hospital leadership. JAMA 1996; 275: 234-240. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208435&pid=S0036-3634200500040000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">13. Carmeli Y, Troillet N, Eliopoulos GM, Samore    MH. Emergence of antibiotic-resistant <I>Pseudomonas aeruginosa</I>: Comparison    of risks associated with different antipseudomonal agents. Antimicrob Agents    Chemother 1999; 43: 1379-1382. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208436&pid=S0036-3634200500040000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">14. Kato-Maeda M, Bautista-Alavez A, Montes de    Oca-Rol&oacute;n AL, Ramos-Hinojosa A, Ponce de Le&oacute;n A, Bobadilla del    Valle M <I>et al</I>. Tendencia en el incremento de la resistencia antimicrobiana    en organismos causantes de bacteremia en un hospital de tercer nivel: 1995-2000.    Rev Invest Clin 2003; 55: 600-605. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208437&pid=S0036-3634200500040000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">15. Calder&oacute;n-Jaimes E, Espinosa de los    Monteros LE, Avila-Beltr&aacute;n R. Epidemiology of drug resistance: The case    of <I>Staphylococcus aureus</I> and coagulase-negative staphylococci infections.    Salud Publica Mex 2002; 44: 108-112. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208438&pid=S0036-3634200500040000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">16. Calder&oacute;n-Jaimes E, Arredondo-Garc&iacute;a    JL, Aguilar-Ituarte F, Garc&iacute;a-Roca P. <I>In vitro</I> antimicrobial susceptibility    in clinical isolates of <I>Enterococcus species</I>. Salud Publica Mex 2003;    45: 96-101. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208439&pid=S0036-3634200500040000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">17. Sifuentes-Osornio J, Ponce de Le&oacute;n    A, Mu&ntilde;oz-Trejo T, Villalobos-Zapata Y, Ontiveros-Rodr&iacute;guez C,    G&oacute;mez-Rold&aacute;n C. Antimicrobial susceptibility patterns and high-level    gentamicin resistance among enterococci isolated in a Mexican tertiary care    center. Rev Invest Clin 1996; 48: 91-96. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208440&pid=S0036-3634200500040000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 18. Linden PK, Moellering RC, Wood CA, Rehm    SJ, Flaherty J, Bompart F <I>et al</I>, for the Synercid emergency-use study    group. Treatment of vancomycin-resistant <I>Enterococcus faecium</I> infections    with quinupristin/ dalfopristin. Clin Infect Dis 2001; 33: 1816-1823. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208441&pid=S0036-3634200500040000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">19. Anaissie E. Opportunistic mycoses in the    immunocompromised host: Experience at a cancer center and review. Clin Infect    Dis 1992; 14 suppl 1: S43-S53. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208442&pid=S0036-3634200500040000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">20. Hughes WT, Armstrong D, Bodey GP, Bow EJ,    Brown AE, Calandra T <I>et al</I>. 2002 Guidelines for the use of antimicrobial    agents in neutropenic patients with cancer. Clin Infect Dis 2002; 34: 730-751.    </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208443&pid=S0036-3634200500040000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">21. Recommendations for preventing the spread    of vancomycin resistance recommendations of the hospital infection control practices    advisory committee (HICPAC): MMWR Morb Mortal Wkly Rep 1995; 44 (RR12): 1-13.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9208444&pid=S0036-3634200500040000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Fecha de recibido: 1 de julio de 2004     <br>   Fecha de aprobado: 11 de mayo de 2005 </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">Solicitud de sobretiros: Dra. Patricia Cornejo    Ju&aacute;rez. Departamento de Infectolog&iacute;a. Instituto Nacional de Cancerolog&iacute;a.    Avenida San Fernando 22, colonia Secci&oacute;n    XVI. Tlalpan 14000. M&eacute;xico, DF, M&eacute;xico. Correo    electr&oacute;nico: <a href="mailto:patcornejo@yahoo.com">patcornejo@yahoo.com</a></font></p>      ]]></body><back>
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