Caracterización, por RAPD-PCR, de aislados de Pseudomonas aeruginosa obtenidos de pacientes con fibrosis quística
RAPD-PCR characterization of Pseudomonas aeruginosa strains obtained from cystic fibrosis patients
Maribel Ortiz-Herrera, QFBI; Armando Gerónimo-Gallegos, QFBI; Francisco Cuevas-Schacht, MDII; Lorenzo Pérez-Fernández, MDII; Rafael Coria-Jiménez, QBP, Dr en C.I
ILaboratorio de Bacteriología Experimental, Instituto Nacional de Pediatría, Secretaría de Salud (SSA), México, DF, México
IIServicio de Neumología y Cirugía de Tórax, Instituto Nacional de Pediatría, SSA, México, DF, México
RESUMEN
OBJETIVO: Caracterizar a las cepas de P aeruginosa aisladas de lavados broncoalveolares de pacientes con fibrosis quística a lo largo de un periodo de tres años.
MATERIAL Y MÉTODOS: Estudio prospectivo, de seguimiento de una población de pacientes con fibrosis quística. Se utilizó la técnica de la amplificación del ADN empleando PCR con bajas condiciones de especificidad (Random amplified polymorphic DNA, RAPD-PCR) para la amplificación del ADN de cepas de P aeruginosa aisladas de lavados broncoalveolares de cinco pacientes con fibrosis quística, provenientes del Servicio de Neumología y Cirugía del Tórax del Instituto Nacional de Pediatría de la Ciudad de México, en el periodo de junio de 1996 a junio de 2002; se establecieron los patrones de amplificación de cada aislamiento, lo que permitió la identificación precisa de todas las cepas aisladas y el estudio de la epidemiología de P aeruginosa en los pacientes seleccionados con dicha enfermedad.
RESULTADOS: Se definieron 18 patrones de amplificación del ADN que permitieron identificar a cada cepa de P aeruginosa aislada en las diferentes muestras de lavado broncoalveolar; no se encontró relación entre el fenotipo de P aeruginosa (mucoide o no mucoide) y el genotipo de cada aislamiento, ya que cepas con fenotipos distintos mostraron patrones de amplificación semejantes; en nuestros pacientes se identificaron cepas con patrones de amplificación distintos a partir de una misma muestra, lo que sugiere la presencia de infecciones simultáneas por más de una cepa de P aeruginosa; se demostró que dos hermanos con la enfermedad compartían cepas con genotipos semejantes, lo que sugiere una contaminación cruzada entre ambos, y se demostró el aislamiento de cepas de P aeruginosa con genotipos semejantes a lo largo de los periodos estudiados.
CONCLUSIONES: La identificación mediante la caracterización genotípica de las cepas de P aeruginosa aisladas de los pacientes con fibrosis quística permite llevar a cabo estudios más precisos de la epidemiología de esta importante relación huésped-parásito. El texto completo en inglés de este artículo está disponible en: http://www.insp.mx/salud/index.html
Palabras clave: Pseudomonas aeruginosa; fibrosis quística; técnica del ADN polimorfo amplificado aleatorio; México
ABSTRACT
OBJECTIVE: To characterize P aeruginosa strains isolated from bronchoalveolar lavage fluid of cystic fibrosis (CF) patients over a 3 year period. ]]>
MATERIAL AND METHODS: A prospective follow-up study was carried out in a population of cystic fibrosis patients. The random amplified polymorphic DNA (RAPD) technique was used to amplify DNA of P aeruginosa strains isolated from bronchoalveolar lavage fluid samples of five CF patients from the Servicio de Neumología y Cirugía del Tórax del Instituto Nacional de Pediatría (Mexico City Chest Clinic of the National Pediatrics Institute) in Mexico City, between June 1996 and June 2002. Amplification patterns were established for each isolate to accurately identify all strains and to carry out an epidemiological analysis of P aeruginosa among the selected CF patients.
RESULTS: Eighteen different DNA amplification patterns were defined and used to identify each P aeruginosa strain isolated from the different bronchoalveolar lavage samples. No correlation was observed between the different P aeruginosa strain genotypes and mucoid or non-mucoid phenotypes, as strains with different phenotypes showed similar amplification patterns. Several strains with different amplification patterns were identified in samples obtained from the same patient, suggesting coinfection with more than one P aeruginosa strain. Two siblings with CF shared similar genotypes, suggesting the occurrence of cross-contamination. Similar genotypes of P aeruginosa strains were isolated throughout the study period.
CONCLUSION: Genotypic characterization of P aeruginosa strains in CF patients allows more accurate epidemiological analyses of this important host-agent relationship. The English version of this paper is available at: http://www.insp.mx/salud/index.html
Key words: Pseudomonas aeruginosa; cystic fibrosis; random amplified polymorphic DNA technique; Mexico
Pseudomonas aeruginosa es una bacteria aeróbica, no formadora de esporas, Gram negativa, móvil, debido a la presencia de flagelos polares, positiva a las pruebas de oxidasa y catalasa, que pertenece al grupo heterogéneo denominado "no fermentadores"; esta bacteria se considera como un microrganismo patógeno oportunista, capaz de desarrollar procesos infecciosos en pacientes inmunocomprometidos o que tienen problemas de fondo en sus mecanismos homeostáticos.1,2
Ha sido descrita ampliamente la estrecha relación entre P aeruginosa y los pacientes con fibrosis quística (FQ) quienes de manera característica presentan procesos infecciosos crónicos por esta bacteria, que finalmente conducen a la muerte del paciente debido a las complicaciones derivadas de la infección bacteriana y a una respuesta exacerbada de los mecanismos de defensa del huésped frente a esta infección crónica.1-5
P aeruginosa posee distintos factores de virulencia y se ha demostrado que las condiciones del medio ambiente como la tensión de O2, la disponibilidad de hierro y la presencia de antibióticos son factores que modulan la síntesis y la función de estos factores bacterianos.4,5
En el caso de la relación de P aeruginosa con el paciente con fq, la bacteria posee receptores que interaccionan de manera específica con la proteína cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR) y es capaz de adaptarse a las condiciones del tracto respiratorio de estos pacientes, condiciones que seleccionan a las clonas bacterianas más eficientes en términos de adaptación frente a este medio ambiente agresivo.
]]> Como respuesta a las condiciones del tracto respiratorio de los pacientes con FQ, P aeruginosa produce una gran cantidad de alginato lo que conduce a la presentación del fenotipo bacteriano mucoide, característico de las cepas asociadas a fq y, adicionalmente, el microrganismo cambia su perfil de proteínas de membrana, pierde flagelos convirtiéndose en inmóvil, modula la síntesis del liposacárido bacteriano (LPS), crece formando biopelículas o microcolonias, modifica su velocidad de crecimiento celular, etcétera.1-5Debido a esta capacidad de adaptación de P aeruginosa, los sistemas habituales empleados en el laboratorio para la identificación y caracterización microbiana no poseen la suficiente sensibilidad y especificidad para establecer con certeza la identidad de un aislado bacteriano, por lo que ha sido necesario desarrollar o adaptar sistemas de caracterización genotípica, que sean capaces de identificar y caracterizar de manera precisa a estos microrganismos a pesar de cualquier modificación en el fenotipo.
A la fecha se han descrito distintos sistemas genotípicos destinados a la caracterización de aislados de P aeruginosa obtenidos de pacientes con FQ; sistemas como la hibridización con sondas específicas y la electroforesis de campos pulsados han demostrado ser sensibles y específicos, sin embargo, presentan como inconvenientes el costo elevado de ambos y el prolongado tiempo de realización.6-17
Un sistema adicional utilizado para la identificación de P aeruginosa es el de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), del que se han descrito distintas metodologías dependiendo de los objetivos y condiciones del ensayo. Una de tales adaptaciones es la amplificación del ADN empleando PCR con bajas condiciones de especificidad (Random amplified polymorphic DNA, RAPD-PCR); en este caso se emplean iniciadores (primers) de baja especificidad que se alinean de manera aleatoria con secuencias presentes a lo largo del genoma bacteriano, una vez estandarizado el sistema RAPD-PCR permite la obtención de patrones de amplificación reproducibles y característicos de cepas o clonas.18,19
La técnica de la amplificación del ADN empleando PCR con bajas condiciones de especificidad (RAPD-PCR, por sus siglas en inglés) ha sido empleada con el propósito de estudiar la relación huésped-parásito entre P aeruginosa y los pacientes con FQ, principalmente en el aspecto epidemiológico para estudio de la prevalencia de las diferentes cepas en familias de éstos, así como para identificar infecciones cruzadas y reinfecciones por esta bacteria.20-26
Con el propósito de caracterizar a los aislados de P aeruginosa obtenidos de pacientes con FQ se utilizó la reacción en cadena de la polimerasa en condiciones de baja especificidad (RAPD-PCR) utilizando dos iniciadores arbitrarios; la utilización de RAPD-PCR nos permitió identificar cepas aisladas de muestras sucesivas de lavado broncoalveolar para el análisis de la epidemiología de P aeruginosa en los enfermos de FQ que acudieron al Servicio de Neumología y Cirugía de Tórax del Instituto Nacional de Pediatría durante el periodo comprendido de septiembre de 1996 a julio de 2000.
Material y métodos
Pacientes con fibrosis quística. Las muestras clínicas a partir de las cuales se aisló P aeruginosa fueron obtenidas de 64 pacientes con FQ del Servicio de Neumología y Cirugía de Tórax del Instituto Nacional de Pediatría (SNCT-INPed).
A partir de 1996 iniciamos un proyecto donde se estudia la asociación entre P aeruginosa y nuestros pacientes con FQ; como parte de tal proyecto se ha evaluado la utilidad del lavado broncoalveolar como un método para la obtención de muestras para el aislamiento bacteriano; en la actualidad el lavado broncoalveolar es parte del tratamiento al cual se somete a estos pacientes con el propósito de descongestionarles el tracto respiratorio y disminuirles las molestias.27 Obtención de la muestra. A los pacientes con FQ se les practicaron lavados broncoalveolares sucesivos; para ello se utilizaron fibrobroncoscopios Olympus 3.5 en los pacientes menores de dos años de edad y de 4.7 mm en el resto; la muestra de aspirado broncoalveolar se tomó llevando la punta del fibrobroncoscopio al lóbulo medio e instilando 5 ml de solución salina fisiológica estéril; el material recuperado se colocó en un frasco estéril y se envió al laboratorio para su procesamiento inmediato. Se consideró que una muestra era adecuada para cultivo bacteriológico cuando tenía un volumen de 4 a 5 ml y era lo suficientemente homogénea y fluida para llevar a cabo cultivos bacterianos cuantitativos.
]]> Poblaciones bacterianas. Para el aislamiento e identificación de las poblaciones bacterianas se empleó la metodología sugerida por la American Society for Microbiology (ASM)1 sin modificaciones: 100 µl de cada una de las muestras de lavado broncoalveolar fueron sembrados por extensión en placas de Petri con agar Mac Conkey, agar gelosa sangre adicionado con sangre de carnero y agar SS e incubadas a 37 ºC durante 48-72 h; posteriormente, se seleccionaron colonias con morfología sugestiva de P aeruginosa que fueron resembradas en medios selectivos y diferenciales. Para la identificación del género y especie bacteriano se realizaron pruebas bioquímicas. En el caso de P aeruginosa, de cada muestra fueron aisladas al menos dos colonias y fueron clasificadas como mucoides o no mucoides (cepas r y cepas m, respectivamente). De acuerdo con su morfología colonial en el primoaislamiento, cada colonia de P aeruginosa con morfología colonial distinta se consideró como una cepa diferente aun cuando fuese aislada de la misma muestra.Obtención del ADN bacteriano. Se realizaron cultivos de P aeruginosa en 250 ml de caldo Mueller Hinton incubados con agitación a 37 ºC durante 18 h; para la obtención del ADN se siguió la metodología sugerida por Schonian y colaboradores, sin modificaciones,28 la biomasa se obtuvo por centrifugación a 3 500 x g durante 10 min a 4 ºC; la pastilla se resuspendió en 3 ml de amortiguador TE (Tris-HCl 10 mM, EDTA 1 mM) y se centrifugó a 1 400 x g durante 10 min a 4 ºC.
Las bacterias resuspendidas se incubaron en baño de hielo y se trataron con las siguientes soluciones: 2 ml de amortiguador de lisis (sacarosa 25%, Tris-HCl 0.5 M, pH=8.0, 500 µl de EDTA 0.5 M, 100 µl de una solución de lisozima a una concentración de 50 mg/ml), 2.5 ml de Triton X 100 a 0.1%, Tris-HCl 0.5 M pH=8.0 y 500 µl de acetato de potasio 5 M, se incubaron durante 30 min con las dos primeras soluciones y 10 min con el acetato de potasio; una vez lisado el cultivo bacteriano fue centrifugado a 15 000 x g durante 60 min y se resuspendió en 3 ml de amortiguador TE.
Se realizaron tres extracciones vol/vol: la primera, con una mezcla de fenol saturado/cloroformo/alcohol isoamílico (25:24:1), la segunda extracción con cloroformo/alcohol isoamílico (24:1) y la tercera con cloroformo; entre cada extracción se mezcló y se centrifugó a 3 500 x g durante 10 min, recuperándose la fase acuosa en cada extracción. El ADN se precipitó con 2.5 volúmenes de etanol absoluto frío y se dejó reposar toda la noche a –20 ºC; posteriormente, se centrifugó durante 20 min a 7 500 x g, se decantó y se adicionó etanol absoluto al 70%; se centrifugó nuevamente durante 10 min a 3 500 x g, se decantó, y la pastilla se deshidrató a temperatura ambiente, se resuspendió en amortiguador TE y se conservó a –20 ºC hasta su utilización.
Con el propósito de obtener al ADN genómico libre de contaminantes los extractos totales de ADN se sometieron a electroforesis en agarosa a 1.0 % y se purificó el ADN genómico empleando el sistema de QIA-GEN (QIAGEN Inc, Valencia CA, EUA) de acuerdo con la metodología propuesta por el fabricante.
Amplificación del ADN bacteriano. Se utilizó la técnica de RAPD-PCR sugerida por Bulkanov y colaboradores, sin modificaciones21 y se seleccionaron los iniciadores 2 162 y 2 163, recomendados por el mismo autor de acuerdo con los criterios de Kersulyte y Mahenthiralingam.22,23
AN-2162:(5'–TGGTGGCCTCGAGCAAGAGAACGGAG- 3')
AN-2163:(5'–GGTTGGGTGAGAATTGC- 3')
Se prepararon mezclas de reacción de 25 µl con la siguiente composición: 30 ng de ADN, 3 mM MgCl2, 20 pmol de iniciador, 1 unidad de Taq polimerasa (GIBCO BRL, USA) y 250 µM de cada dNTP en 10 mM de Tris-HCl, pH=8.3, 50 mM KCl y 0.001 % de gelatina.
Las condiciones de amplificación fueron las siguientes: 45 ciclos de incubación a 94 ºC durante 1 min, seguidos de 1 min a 36 ºC y 72 ºC durante 2 min y, finalmente, una incubación durante 10 min a 72 ºC.21 La amplificación se realizó en un amplificador marca Biometra modelo Biotron (Göttingen, Alemania).
]]> Posteriormente, se tomaron alícuotas de 12 µl y se sometieron a electroforesis en geles de agarosa a 2% que contenía bromuro de etidio (0.5 µg/ml) utilizándose una minicámara submarina modelo EC 370M y una fuente de poder EC 105 (EC Apparatus Corporation, EUA); como marcadores de peso molecular se utilizaron marcadores Bio-Rad Precision (Bio-Rad, Hercules CA, EUA); los geles fueron fotografiados utilizando un equipo Ultralum y, posteriormente, las fotografías fueron escaneadas y registradas empleando los programas ArcSoft Photo Studio 2000 (ArcSoft Inc EUA) y Power Point (Microsoft Corp, EUA).Para la identificación de los patrones de amplificación de ADN se consideraron distintos a los que diferían en la presencia o ausencia de al menos dos bandas de amplificación, sin tomar en cuenta diferencias en las intensidades de tinción con bromuro de etidio. Los patrones de amplificación se realizaron en dos ocasiones para demostrar la reproducibilidad del método; como control positivo se utilizó ADN de una cepa de P aeruginosa aislada de un paciente con FQ de la Asociación Mexicana de Fibrosis Quística y el ensayo se consideraba satisfactorio cuando, a partir del ADN control, se obtenían los patrones de amplificación característicos de la cepa.
Resultados
De septiembre de 1996 a junio de 2002 se estudiaron 163 muestras clínicas obtenidas de 64 pacientes con FQ que acudieron al SNCT-INPed para su diagnóstico y tratamiento; a partir de estas muestras se obtuvieron 165 aislamientos de P aeruginosa, 59 de fenotipo mucoide y 106 de fenotipo no mucoide; es pertinente señalar que en un alto porcentaje de las muestras de lavado broncoalveolar se identificaron y aislaron dos cepas de P aeruginosa mucoides (cepas m) o no mucoides (cepas r) (datos no mostrados).
Del total de pacientes estudiados durante este periodo fueron seleccionados cinco con FQ para el presente proyecto (cuadro I); la edad de éstos varió de los 2 meses a los 22 años; fueron seleccionados pacientes con varias tomas de muestras de lavado broncoalveolar positivas al aislamiento de P aeruginosa y que presentaban diferencias en su fenotipo (mucoide o no mucoide) el periodo de seguimiento varió de los dos meses a los tres años y se incluyó a una pareja de hermanos con FQ.
Se estudiaron 32 aislados de P aeruginosa obtenidos a partir de los cinco pacientes seleccionados; como se observa en el cuadro I se incluyeron 12 aislados de fenotipo mucoide y 20 de fenotipo no mucoide.
Para la amplificación por RAPD-PCR se utilizaron los iniciadores 2 162 y 2 163; se definieron 18 patrones de amplificación por RAPD-PCR, ocho de ellos con el iniciador 2 162 y 10 con el iniciador 2 163, (cuadro I).
En las figuras 1 y 2 se muestran ejemplos de los patrones de amplificación para el caso de los aislados de P aeruginosa provenientes del paciente G.G.L, y en la figura 3 se muestran los patrones de amplificación con el iniciador 2 162 a partir del ADN de P aeruginosa aisladas del paciente C.G.L, hermano del anterior.
]]>
En la figura 1 se observa que cepas bacterianas aisladas de la misma muestra de lavado broncoalveolar mostraron patrones de amplificación distintos, éstos son los casos de las cepas 25 m y 25 r y de las cepas 27m y 27r, pero así también las cepas 25 r y 27 m mostraron el mismo patrón de amplificación (2 162-C).
En la figura 2 se observa que las cepas 41 m y 41 r, que fueron aisladas de la misma muestra clínica, mostraron patrones de amplificación de ADN semejantes y que las cepas 48 m y 48 r mostraron diferencias entre ellas.
Cuando se observan los patrones de amplificación obtenidos del paciente C.G.L. encontramos que las cepas 38 r y 45 m son semejantes (figura 3), pero lo más interesante es que presentan el patrón de amplificación 2 162-C que se observa en la cepa 25 m, aislada del hermano.
Nuestros resultados muestran que, independientemente del fenotipo bacteriano, fue posible establecer la identidad de cada cepa de P aeruginosa, lo que nos permitió obtener evidencias de infecciones cruzadas entre hermanos con FQ, así como demostrar la persistencia de aislamientos de cepas de P aeruginosa con el mismo patrón de amplificación a partir de muestras de hermanos con FQ durante un periodo de tres años o bien a partir de sólo un paciente en muestras sucesivas de lavado broncoalveolar (cuadro I).
Discusión
La estrecha asociación entre P aeruginosa y los pacientes con FQ ha sido descrita por distintos autores;1-5 la colonización del tracto respiratorio de los pacientes con FQ por parte de esta bacteria ocurre a edades tempranas y representa un serio problema que a largo plazo conduce a los individuos infectados a graves problemas de salud y, finalmente, a la muerte.
Los estudios de la epidemiología de P aeruginosa en los enfermos con FQ tienen distintos tipos de problemas, varios de ellos derivados de las variaciones en el fenotipo de los aislados bacterianos a lo largo del periodo de infección.7,8,11
Con los sistemas de identificación fenotípicos ha sido difícil establecer con certeza si un individuo presenta simultáneamente más de una cepa o clona de P aeruginosa colonizando el tracto respiratorio; ha sido difícil definir si un paciente presenta reinfecciones por una misma cepa, si a lo largo del tiempo es infectado sucesivamente por cepas diferentes, o bien si existen diferencias entre las cepas aisladas de acuerdo con el sitio del tracto respiratorio del cual ha sido tomada la muestra para su análisis.
]]> Con los sistemas fenotípicos de identificación bacteriana no ha sido posible estudiar de forma precisa la epidemiología de P aeruginosa en los pacientes y las familias afectadas por FQ, lo que ha conducido al desarrollo de modelos de esta asociación huésped-parásitos que en ocasiones llegan a ser contradictorios entre sí.7,8,11En la actualidad se prefiere el empleo de sistemas de identificación genotípicos los que han demostrado poseer una mayor sensibilidad y especificidad para la caracterización de las diferentes cepas o clonas bacterianas.17
Un sistema de identificación y caracterización genotípica que ha mostrado una gran sensibilidad y especificidad para definir los aislados bacterianos es el sistema de RAPD-PCR en el que se utilizan iniciadores arbitrarios bajo condiciones de baja especificidad; este sistema tiene la ventaja de ser más económico, rápido y fácil de realizar que sistemas análogos, tanto fenotípicos como genotípicos.18,19
Los sistemas como la electroforesis de campos pulsantes y el RAPD-PCR difieren en el tipo de información que se puede derivar de ellos, ya que estudian secuencias diferentes y detectan tipos distintos de variaciones en el ADN del microrganismo; en este caso, RAPD-PCR detecta divergencias a través de todo el genoma bacteriano y no únicamente en secuencias particulares por lo que resulta de utilidad en la caracterización de aislados bacterianos a lo largo de periodos prolongados.14,21
En el caso de las cepas de P aeruginosa asociadas a los pacientes con FQ se ha empleado el RAPD-PCR con éxito22-26 y ello nos llevó a plantearnos su utilización para la identificación de las cepas aisladas de nuestra población de enfermos con FQ, atendidos en el SNCT del INPed.
De la población total de pacientes estudiados durante el periodo de 1996 a 2000 se seleccionaron cinco considerando la presencia de aislamientos múltiples sucesivos lo que nos permitiría realizar un seguimiento de P aeruginosa en nuestros enfermos; seleccionamos una pareja de hermanos con FQ para estudiar la posibilidad de intercambios de cepas bacterianas entre ambos; se seleccionaron a los dos pacientes con edades extremas de nuestro grupo (2 meses y 22 años) lo que nos permitiría estudiar una colonización temprana y una colonización crónica, y un enfermo fue seleccionado debido al número elevado de muestras en un periodo corto.
Es necesario mencionar que las muestras de lavado broncoalveolar de estos pacientes fueron tomadas durante sus visitas al Servicio de Neumología y Cirugía de Tórax (SNCT) y estas visitas obedecían a periodos de exacerbación del cuadro infeccioso, por lo que un mayor número de visitas al SNCT (y por lo tanto un número mayor de muestras para el estudio bacteriológico) refleja, en general, un proceso infeccioso agresivo y un estado de salud más deteriorado.
En nuestra población bacteriana destaca el elevado número de aislamientos de P aeruginosa de fenotipo no mucoide (64% del total) lo que concuerda con los hallazgos de otros autores15,22,23 y que de alguna manera es contrario a la idea de que el fenotipo no mucoide es el que participa en las etapas iniciales de la colonización y que, posteriormente, es reemplazado por cepas de fenotipo mucoide, las que permanecen por periodos prolongados en el huésped, debido a su mayor adaptabilidad y capacidades agresivas.
Una de las explicaciones a nuestro hallazgo es el origen de la muestra analizada, ya que habitualmente el aislamiento de P aeruginosa se lleva a cabo a partir de muestras de expectoración inducida y no de lavado broncoalveolar como en este caso. Las diferencias en el número de aislamientos de cepas con fenotipos distintos de acuerdo con el origen de la muestra clínica podría ser una evidencia de que efectivamente pueden presentarse variaciones en el fenotipo bacteriano, según el sitio del tracto respiratorio, de tal forma que las cepas no mucoides estarían mejor adaptadas a regiones más profundas del árbol respiratorio, mientras que las cepas mucoides colonizarían mejor a las regiones superiores.
Se observó que las diferencias en el fenotipo bacteriano no se relacionan con diferencias en el genotipo, es decir, cepas que en primoaislamiento son mucoides o no mucoides pueden, sin embargo, ser iguales desde el punto de vista de su patrón de amplificación por RAPD-PCR, y viceversa.
]]> En el caso de los hermanos con FQ se observaron variaciones en los genotipos bacterianos a lo largo del periodo de estudio, predominando al final un genotipo bacteriano único; más interesante aún fue el hecho de que con el iniciador 2 162 se obtuvieron evidencias que indican un posible intercambio de poblaciones bacterianas entre ambos pacientes.Los pacientes 3 y 5 (22 años y 2 meses de edad, respectivamente) mostraron poblaciones bacterianas homogéneas desde el punto de vista genotípico; en el caso del paciente 3 posiblemente sea el resultado de una colonización bacteriana prolongada y de una selección de un genotipo más adaptado a las condiciones particulares del huésped, y en el caso del paciente 5 el proceso de selección posiblemente se encuentre en sus etapas iniciales, con una población bacteriana homogénea.
En todos los casos se demostró la persistencia de P aeruginosa a pesar de que los pacientes (excepto el de 2 meses de edad) se encontraban en tratamiento con antibióticos, lo que es una evidencia de los altos niveles de resistencia a los antibióticos de las cepas de P aeruginosa asociadas a los pacientes con FQ.
Resulta preocupante el hecho de que nuestros pacientes con FQ se colonicen por P aeruginosa a edades muy tempranas y que las poblaciones bacterianas permanezcan por periodos prolongados sin ser erradicadas y ocasionando reinfecciones frecuentes, lo que a largo plazo redunda en una menor calidad de vida de nuestros pacientes y en la selección de cepas o clonas más eficientes en su capacidad de permanencia en los huéspedes con FQ.
El presente reporte muestra que la identificación y caracterización mediante técnicas genotípicas de aislados de P aeruginosa en poblaciones de pacientes con FQ seguidas a lo largo de varios años, permite estudiar con mayor precisión la epidemiología de esta bacteria en estos pacientes lo que facilita la evaluación de las medidas profilácticas, terapéuticas y de control de las poblaciones bacterianas.
Agradecimientos
Los autores desean agradecer a la médica especialista Jessica Banegas por su colaboración en la selección y manejo de los pacientes con fibrosis quística, a la Sra. Ofelia Ponce por su asistencia en la parte técnica y a la Dra. Alessandra Carnevale C, por su invaluable apoyo a lo largo de este proyecto.
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]]> Solicitud de sobretiros
Fecha de recibido: 20 de junio de 2003
Fecha de aprobado: 19 de enero de 2004