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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección de anticuerpos IgA y PCR como primeras opciones en el diagnóstico de infección perinatal por el VIH-1]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[OBJECTIVE: To evaluate the sensitivity and specificity of the polymerase chain reaction (PCR), enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and IgA-specific immunoblot assays as ancillary methods to diagnose human immunodeficiency virus (HIV-1) perinatal infection. MATERIAL AND METHODS: A comparative study was conducted between February and October 2001 at the Human Retrovirus Research Unit of Mexico's National University. Ninety infected and 153 non-infected children were included in the study. Viral cultures were the gold standard tests. Standardized PCR for a conserved region of the gag gene and HIV-specific IgA antibody using ELISA and immunoblot were used. Statistical analysis of results was performed with SPSS 10.0. RESULTS: IgA ELISA sensitivity and specificity were 61.1% and 90.8%, respectively. Immunoblot had a sensitivity of 82.2% and a specificity of 95.4%. PCR had an overall sensitivity of 98.3% and a specificity of 100% with only one false negative result. If both assays were run, the sensitivity increased to 100% and the specificity to 96%. CONCLUSIONS: A very high sensitivity and specificity is reached when using together PCR and IgA immunoblot; these assays are useful for perinatal diagnosis of HIV-1.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="verdana"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="verdana"><b>Detecci&oacute;n de anticuerpos IgA y PCR    como primeras opciones en el diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n perinatal    por el VIH-1 </b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="verdana"><b>IgA antibody detection and PCR as first options    in the diagnosis of perinatal HIV-1 infection</b></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Ma del Carmen Basualdo, QFB<sup>I</sup>; Kathya    Moran, QFB<sup>I</sup>; Patricia Alc&aacute;ntara, M en C<sup>I</sup>; Elizabeth    Gonz&aacute;lez, QBP<sup>I</sup>; Esteban Puentes, M en C<sup>II</sup>; Carmen    Soler, M en C<sup>I</sup></b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><sup>I</sup>Unidad de Investigaci&oacute;n en    Retrovirus Humanos. Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico. Instituto    de Diagn&oacute;stico y Referencia Epidemiol&oacute;gicos. Secretar&iacute;a    de Salud, M&eacute;xico    <br>   <sup>II</sup>Direcci&oacute;n General de Informaci&oacute;n y Evaluaci&oacute;n    del Desempe&ntilde;o. Secretar&iacute;a de Salud, M&eacute;xico</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><B>OBJETIVO: </B>Evaluar la sensibilidad y especificidad    de la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa y de las pruebas de ELISA e    inmunoblot para anticuerpos IgA espec&iacute;ficos, como &uacute;nicos m&eacute;todos    en el diagn&oacute;stico de infecci&oacute;n perinatal del VIH-1.    <br>   <B>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS: </B> Estudio de evaluaci&oacute;n comparativa,    efectuado entre febrero y octubre de 2001 en la Unidad de Investigaci&oacute;n    en Retrovirus Humanos de la Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico.    Se incluyeron 90 muestras de ni&ntilde;os infectados y 153 de no infectados.    El cultivo viral fue la prueba de referencia. Se estandarizaron ensayos de ELISA    e inmunoblot y la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa para una regi&oacute;n    conservada del gen gag. Se analizaron los resultados utilizando el paquete inform&aacute;tico    SPSS 10.0.    <br>   <B>RESULTADOS: </B> La sensibilidad y especificidad de la prueba de ELISA fueron    61.1 y 90.8%, respectivamente. En el inmunoblot encontramos 82.2 y 95.4%, respectivamente,    en tanto que la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa demostr&oacute; tener    sensibilidad de 98.3% y especificidad de 100% con s&oacute;lo un falso negativo.    <br>   <B>CONCLUSIONES</B><B>: </B> Los resultados indican que la realizaci&oacute;n    simult&aacute;nea de la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa y el inmunoblot    para IgA logran sensibilidad y especificidad de 100% y 96%, respectivamente,    por lo cual se consideran &uacute;tiles para el diagn&oacute;stico perinatal    de VIH-1. El texto completo en ingl&eacute;s de este art&iacute;culo est&aacute;    disponible en: <a href="http://www.insp.mx/salud/index.html" target="_blank">http://www.insp.mx/salud/index.html</a>    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave:</b> IgA; reacci&oacute;n en    cadena por polimerasa; diagn&oacute;stico perinatal; VIH</font></p> <hr size="1" noshade>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><B>OBJECTIVE</B><B>: </B>To evaluate the sensitivity    and specificity of the polymerase chain reaction (PCR), enzyme-linked immunosorbent    assay (ELISA) and IgA-specific immunoblot assays as ancillary methods to diagnose    human immunodeficiency virus (HIV-1) perinatal infection.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <B>MATERIAL AND METHODS: </B> A comparative study was conducted between February    and October 2001 at the Human Retrovirus Research Unit of Mexico's National    University. Ninety infected and 153 non-infected children were included in the    study. Viral cultures were the gold standard tests. Standardized PCR for a conserved    region of the gag gene and HIV-specific IgA antibody using ELISA and immunoblot    were used. Statistical analysis of results was performed with SPSS 10.0.    <br>   <B>RESULTS: </B> IgA ELISA sensitivity and specificity were 61.1% and 90.8%,    respectively. Immunoblot had a sensitivity of 82.2% and a specificity of 95.4%.    PCR had an overall sensitivity of 98.3% and a specificity of 100% with only    one false negative result. If both assays were run, the sensitivity increased    to 100% and the specificity to 96%.<B>    <br>   CONCLUSIONS</B><B>: </B>A very high sensitivity and specificity is reached when    using together PCR and IgA immunoblot; these assays are useful for perinatal    diagnosis of HIV-1. The English version of this paper is available at: <a href="http://www.insp.mx/salud/index.html" target="_blank">http://www.insp.mx/salud/index.html</a></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Key words:</b> IgA; polymerase chain reaction;    perinatal diagnosis; HIV</font></p> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana">La pandemia provocada por el VIH-1 ha afectado    a todos los grupos socioecon&oacute;micos y de edad en el mundo, incluyendo    a los ni&ntilde;os. </font> </p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La transmisi&oacute;n madre-hijo puede ser intrauterina,    aunque en la mayor&iacute;a de los casos &eacute;sta se da durante el parto    o posterior a &eacute;l a trav&eacute;s de la leche materna.<SUP>1-3</SUP> El    diagn&oacute;stico temprano de la infecci&oacute;n en el reci&eacute;n nacido    es muy importante para el manejo cl&iacute;nico, tanto con terapia antirretroviral    como en la profilaxis de las infecciones oportunistas. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Sin embargo, como los anticuerpos maternos tipo    IgG cruzan la placenta y se mantienen en el beb&eacute; en promedio durante    18 meses<SUP>4,5,6 </SUP>los ensayos rutinarios de diagn&oacute;stico para la    detecci&oacute;n de IgG espec&iacute;fica frente al VIH-1 no resultan &uacute;tiles,    por lo que se ha hecho necesario el uso de otros m&aacute;s complejos como el    cultivo viral, la b&uacute;squeda de genoma viral integrado mediante la reacci&oacute;n    en cadena de la polimerasa (PCR, por sus siglas en ingl&eacute;s), la detecci&oacute;n    de ant&iacute;geno p24 en suero o plasma y de anticuerpos tipo IgA e IgM espec&iacute;ficos    frente al VIH-1. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Aun cuando el aislamiento viral ha sido considerado    el ensayo de referencia en el diagn&oacute;stico perinatal del VIH-1 es un procedimiento    caro y dif&iacute;cil de efectuar en la mayor&iacute;a de los laboratorios de    pa&iacute;ses en desarrollo, y ante la necesidad de lograr un diagn&oacute;stico    certero y r&aacute;pido en ni&ntilde;os hijos de madres seropositivas, analizamos    en este estudio la posibilidad de combinar la b&uacute;squeda de anticuerpos    tipo IgA espec&iacute;ficos para el VIH-1 por ELISA e inmunoblot con la detecci&oacute;n    de genoma viral integrado por la PCR como primera opci&oacute;n en el diagn&oacute;stico    perinatal del VIH.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Material y m&eacute;todos </b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El estudio de evaluaci&oacute;n comparativa de    m&eacute;todos para el diagn&oacute;stico perinatal de VIH-1 se realiz&oacute;    en la Unidad de Investigaci&oacute;n en Retrovirus Humanos de la Universidad    Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, entre febrero y octubre de 2001.    </font></p>     <p><b><font size="2" face="Verdana">Muestras biol&oacute;gicas</font></b></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Se incluyeron en el estudio 243 muestras de sangre    completa de 222 ni&ntilde;os de diferentes estados de la Rep&uacute;blica Mexicana    de entre 0 y 24 meses de edad. Las primeras muestras fueron 179, y 64 fueron    muestras de seguimiento. Todas las muestras se colectaron de forma est&eacute;ril    con EDTA como anticoagulante, se mantuvieron a temperatura ambiente y se enviaron    a nuestro laboratorio para ser procesadas en un tiempo no mayor a 24 hrs. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Las c&eacute;lulas mononucleares perif&eacute;ricas    (PBMC) que se utilizaron para establecer el cultivo viral y para extraer el    DNA para PCR se separaron mediante gradiente de ficoll. Los plasmas se mantuvieron    congelados a –70 &deg;C hasta el momento de realizar los ensayos serol&oacute;gicos.    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se definieron como infectados aquellos ni&ntilde;os    de cuyas muestras se pudo aislar el virus, y como no-infectados aquellos en    los que el cultivo fue negativo lo mismo que la detecci&oacute;n de ant&iacute;geno    p24 en plasma, y en los que durante el seguimiento pudo demostrarse la serorreversi&oacute;n    completa mediante la detecci&oacute;n de anticuerpos tipo IgG por ELISA comercial    (Genelavia Sanofi Pasteur, Marnes-la Coquette, France) e inmunoblot preparado    en nuestro laboratorio. </font></p>     <p><b><font size="2" face="Verdana">Cocultivo viral</font></b></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Se pusieron en cultivo 10 X 10<SUP>6</SUP> PBMC    no infectadas obtenidas de concentrados leucocitarios (proporcionados por el    Banco de Sangre del Hospital de la Mujer de la Secretar&iacute;a de Salud de    M&eacute;xico) con 4-6 X 10<SUP>6</SUP> PBMC del paciente. Las PBMC no infectadas    se activaron previo al cultivo por 48 hrs con fitohemaglutinina (2.5 <font face="symbol">m</font>g/ml)    (Sigma). Se utiliz&oacute; medio RPMI-1 640 (Gibco) suplementado con 15% de    suero fetal bovino (SFB) (Gibco) inactivado, 1% de mezcla de antibi&oacute;ticos-antimic&oacute;ticos    (Gibco) y 10U/ml de IL-2 recombinante (Boehringer Mannheim). Los cocultivos    se mantuvieron por 28 d&iacute;as aliment&aacute;ndose cada siete con 8 x10<SUP>6</SUP>    PBMC activadas no infectadas. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> El seguimiento del cultivo se hizo cada siete    d&iacute;as mediante la detecci&oacute;n de ant&iacute;geno p24 (Genetic systems    HIV 1 Ag EIA Bio-Rad) en el sobrenadante de cultivo. Se consider&oacute; positivo    el aislamiento cuando se demostr&oacute; la presencia de p24 en dos determinaciones    consecutivas y pudo confirmarse la especificidad del ensayo por neutralizaci&oacute;n    del ant&iacute;geno. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"><b>Preparaci&oacute;n del ant&iacute;geno del    VIH </b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El virus prototipo IIIb/LAV se obtuvo del sobrenadante    de cultivo de c&eacute;lulas Molt-4 infectadas y crecidas en medio RPMI 1 640    suplementado con 10% de SFB inactivado y 1% de mezcla de antibi&oacute;ticos-antimic&oacute;ticos.    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Los sobrenadantes de cultivo con el virus se    centrifugaron 15 min a 3 000 rpm (600 g) y se filtraron por una membrana de    0.45 mm para retirar la mayor parte de los desechos celulares. A continuaci&oacute;n    se colect&oacute; el virus por ultracentrifugaci&oacute;n a 20 000 rpm/2 hrs    y se realiz&oacute; una purificaci&oacute;n parcial usando una columna de Sepharosa    4B y posterior ultracentrifugaci&oacute;n a 50 000 rpm por 1 hr.<SUP>7</SUP>    La pastilla viral se resuspendi&oacute; en 500 ml de PBS pH 7.4 y se cuantificaron    prote&iacute;nas por el m&eacute;todo de Bradford; se hicieron al&iacute;cuotas    con  12 mg de proteina/100 ml usando como    diluyente PBS-triton X100 a 0.5%. El ant&iacute;geno se conserv&oacute; a –70    &ordm;C hasta el momento de usarse. </font></p>     <p><b><font size="2" face="Verdana">ELISA para IgA </font></b></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Las placas de ELISA (combiplate 8 Labsystems)    se recubrieron con 100 ng de prote&iacute;na/pozo diluida en PBS pH 7.4 dejando    pegar toda la noche a temperatura ambiente (TA) en c&aacute;mara h&uacute;meda.    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La placa se lav&oacute; una vez con agua destilada    utilizando un lavador autom&aacute;tico y se bloque&oacute; con PBS-Alb&uacute;mina    a 2% por 3 hrs a TA en c&aacute;mara h&uacute;meda. Pasado este tiempo se realizaron    dos lavados con agua destilada y se colocaron en cada pozo 100 <font face="symbol">m</font>l    de muestra diluida 1:200 en buffer de diluci&oacute;n (PBS-alb&uacute;mina 1%    -Tween 20 0.05%). Las muestras de plasma se centrifugaron previamente a 12 000    rpm 1 min. Se incluyeron en cada ensayo tres controles negativos y dos positivos.    Tanto muestras problema como controles se corrieron por duplicado. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La placa se incub&oacute; a TA toda la noche    en c&aacute;mara h&uacute;meda y al d&iacute;a siguiente se hicieron cinco lavados    con agua destilada. La placa se sacudi&oacute; fuertemente para eliminar todo    residuo de agua y se agregaron 100 <font face="symbol">m</font>l a cada pozo    del anticuerpo anti-IgA conjugado con peroxidasa (Dako corporation) diluido    1:2 000 con buffer de diluci&oacute;n y se incub&oacute; 1 hr a 37 &ordm;C en    c&aacute;mara h&uacute;meda. Posteriormente se hicieron cinco lavados y se agregaron    100 <font face="symbol">m</font>l de una soluci&oacute;n de 2 mg/ml de o-fenilen    diamina en buffer de citrofosfatos (Acido c&iacute;trico 0.452 g, fosfato dib&aacute;sico    de sodio 1.53 g en agua destilada pH final 5.5) con 15.8 <font face="symbol">m</font>l    de per&oacute;xido de hidr&oacute;geno de 30 vol. La placa se incub&oacute;    a TA en la oscuridad por 20 min. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La reacci&oacute;n se par&oacute; con 50 <font face="symbol">m</font>l    por pozo de HCl 1N e inmediatamente se ley&oacute; la DO a 492 nm. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> La l&iacute;nea de corte se determin&oacute;    para cada ensayo promediando los valores de DO de los controles negativos y    sumando una desviaci&oacute;n est&aacute;ndar de los propios controles negativos.    Los controles positivos debieron tener valores de densidad &oacute;ptica por    encima de la l&iacute;nea de corte para considerar v&aacute;lido el ensayo.    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Inmunoblot para IgA </b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Las tiras de nitrocelulosa que conten&iacute;an    ant&iacute;geno IIIb/LAV de VIH-1 se incubaron a temperatura ambiente (TA) con    agitaci&oacute;n suave por 2 hrs con los plasmas diluidos 1:10 en buffer de    diluci&oacute;n (PBS pH 7.4, alb&uacute;mina a 1% y de Tween 20 a 0.2%). Se    utilizaron controles positivo y negativo para cada corrida. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Terminado este tiempo, las tiras se lavaron    tres veces durante 5 min cada vez con buffer de lavado (PBS -Tween 20 a 0.2%)    y se incubaron 1 hr a TA con una diluci&oacute;n 1:500 del anticuerpo anti-IgA    conjugado con peroxidasa. Posteriormente se lavaron como se indic&oacute; anteriormente    y se hizo un lavado final con PBS. La reacci&oacute;n se desarroll&oacute; con    una soluci&oacute;n de revelado (33 Diamino benzidina a 0.05%, H<SUB>2</SUB>O<SUB>2</SUB>    a 0.05% y cloruro de cobalto a 0.03% en PBS) agitando suavemente hasta observar    aparici&oacute;n clara de bandas en el control positivo. Se par&oacute; la reacci&oacute;n    lavando con agua corriente. Se consideraron positivas las muestras que presentaran    al menos una de las siguientes bandas virales: gp 160, gp 120, gp 41 o p24.<SUP>8</SUP>    </font></p>     <p><b><font size="2" face="Verdana">Reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa    </font></b></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Se extrajo el DNA total de 4 X 10<SUP>6 </SUP>PBMC    de los pacientes empleando 5.25 ml de buffer de reacci&oacute;n (KCl 500 mM,    Tris-HCl 100 mM pH 8.0), 5.25 ml de Tween 20 a 5% y 0.525 ml de una soluci&oacute;n    inicial de 20 mg/ml de proteinasa K (Gibco-BRL) (concentraci&oacute;n final    175 mg/ml). El volumen se llev&oacute; a 60 ml con PBS pH 7.4. La lisis celular    se realiz&oacute; calentando a 55 &deg;C /45 minutos seguida de inactivaci&oacute;n    de la proteinasa K a 96 &deg;C/10 minutos. Para la amplificaci&oacute;n se    utilizaron los iniciadores SK462 que van del nucle&oacute;tido 1 358 al 1 387    y SK431 que comprende del nucle&oacute;tido 1 473 al 1 497 para definir una    secuencia de 142 pares de bases de una regi&oacute;n altamente conservada del    gen gag.<SUP>9</SUP> La mezcla de amplificaci&oacute;n se prepar&oacute; utilizando    buffer 10X (Boeringer) MgCl<SUB>2</SUB> 5 mM, 1.25 mM de cada uno de los dNTP,    1U/ ml de taq polimerasa (Boeringer), 25 pM de cada uno de los iniciadores y    5 ml del DNA problema en un volumen final de 50 ml. La amplificaci&oacute;n    se llev&oacute; a cabo en un termociclador Perkin Elmer 2 400 bajo las siguientes    condiciones: tres ciclos de 10 seg a 94 &deg;C, 10 seg a 55 &deg;C, 30 seg    a 72 &deg;C seguidos de 32 ciclos de 10 seg a 94 &deg;C, 60 &deg;C y 72 &deg;C,    respectivamente. La amplificaci&oacute;n se complet&oacute; con una extensi&oacute;n    final de 72 &deg;C/5 min. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Se prepararon controles positivos de 10 copias    de DNA viral utilizando PBMC no infectadas y c&eacute;lulas Molt-4 infectadas    con el virus IIIb/LAV, que se sometieron a amplificaci&oacute;n junto con las    muestras con el fin de establecer el l&iacute;mite de detecci&oacute;n. Como    control de la PCR se amplific&oacute; el gen de b-globina cuyo producto de amplificaci&oacute;n    es de 242 pares de bases. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Los productos de amplificaci&oacute;n se visualizaron    en geles de agarosa a 2.5% por tinci&oacute;n con bromuro de etidio. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico </b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">La sensibilidad y la especificidad de las diferentes    pruebas diagn&oacute;sticas se evaluaron mediante los procedimientos tradicionales    utilizando tablas de contingencia de 2 X 2. En todos los casos el ensayo de    referencia fue el cultivo viral realizado bajo los procedimientos anteriormente    descritos. Se evalu&oacute; la sensibilidad y especificidad del uso combinado    del inmunoblot y de la PCR de dos formas alternativas. En primera instancia,    se consider&oacute; positivo a toda aquella muestra que tuviera resultado positivo    en cualquiera de las dos pruebas. La segunda estrategia consisti&oacute; en    evaluar las pruebas por el m&eacute;todo llamado en paralelo. Bajo este esquema    se considera positiva aquella muestra que resulta positiva en el inmunoblot;    los negativos se someten a una segunda prueba. Tambi&eacute;n se calcul&oacute;    el valor de concordancia mediante el estad&iacute;stico <I>kappa de Cohen</I>.    Adem&aacute;s de los valores puntuales de las diferentes estimaciones se calcularon    intervalos de confianza de 95% con el fin de establecer el nivel de incertidumbre    para las estimaciones iniciales.<SUP>10</SUP> Todos los procedimientos estad&iacute;sticos    se realizaron utilizando el paquete inform&aacute;tico SPSS 10.0. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Resultados</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana">Se analizaron 243 muestras de plasma de 222 ni&ntilde;os    de entre 0 y 24 meses de edad, hijos de madres seropositivas. De estas muestras    90 (37%) correspondieron a ni&ntilde;os confirmadamente infectados y 153 muestras    (63%) a ni&ntilde;os definidos como no infectados en vista de que se pudo demostrar    la serorreversi&oacute;n con ausencia total de datos cl&iacute;nicos que sugirieran    infecci&oacute;n, cultivo viral negativo y ant&iacute;geno en plasma negativo.    El 100% de los ni&ntilde;os no infectados incluidos en este estudio hab&iacute;a    serorrevertido a los 15 meses de edad. Las determinaciones de ELISA e inmunoblot    para IgA se realizaron en la muestra completa (243 plasmas), en tanto que por    PCR se ensayaron 210 muestras, 153 negativas y 57 positivas. El problema fundamental    fue que el volumen de sangre recibido era muy poco y se dio prioridad al cultivo.    </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> En el <a href="#qdr01">cuadro I</a> se hace    un resumen de los resultados de sensibilidad y especificidad de los diferentes    ensayos por rangos de edad. Como puede observarse la sensibilidad de la prueba    de ELISA en la muestra total es mucho menor que la del inmunoblot (61.1 <I>vs</I>    82.2%). En ambos ensayos se observa una marcada disminuci&oacute;n de la sensibilidad    en los primeros tres meses de vida. </font></p>     <p><a name="qdr01"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/spm/v46n1/a07qdr01.gif"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Si analizamos los datos de sensibilidad y especificidad    de los tres ensayos excluyendo las muestras de ni&ntilde;os de entre 0 y 3 meses    de edad, dado que m&uacute;ltiples reportes indican la poca sensibilidad de    los ensayos a esta edad, vemos que tanto la prueba de ELISA como el inmunoblot    mejoran aunque no con significancia estad&iacute;stica (<I>p</I> &gt; 0.10).    En tanto que la PCR conserva los par&aacute;metros (<a href="#qdr02">cuadro    II</a>). </font></p>     <p><a name="qdr02"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/spm/v46n1/a07qdr02.gif"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Con el fin de eliminar las variaciones normales    entre ensayos en las pruebas de ELISA se sacaron promedios de los &iacute;ndices    DO/LC en los verdaderos positivos (1.5714), falsos positivos (1.1487), verdaderos    negativos (0.660) y falsos negativos (0.735) observ&aacute;ndose que la diferencia    entre el valor promedio de verdaderos positivos y falsos positivos no es estad&iacute;sticamente    significativo (<I>p</I>= 0.07) quiz&aacute; debido al tama&ntilde;o de la muestra,    sin embargo, nuestros resultados indican que s&oacute;lo una muestra verdadera    negativa tiene un &iacute;ndice DO/LC por encima de 1.35. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> En el <a href="#qdr03">cuadro III</a> se describe    la frecuencia con que aparecen las diferentes bandas en el inmunoblot para IgA    tomando en cuenta la muestra completa. </font></p>     <p><a name="qdr03"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/spm/v46n1/a07qdr03.gif"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Como se puede observar, los anticuerpos a p24    son los m&aacute;s frecuentes, tanto en ni&ntilde;os infectados (77.7%) como    en ni&ntilde;os no infectados (3.2 %) sin embargo, aunque se observa una gran    especificidad (98.7%) en la presencia de anticuerpos frente a las glicoprote&iacute;nas    virales, si se elimina del criterio de positividad la presencia de p24, tendr&iacute;amos    19 muestras diagnosticadas falsamente como negativas, con lo cual la sensibilidad    del ensayo caer&iacute;a a 61.11% </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> De las 16 muestras definidas como infectadas    que fueron totalmente negativas en los ensayos de ELISA e inmunoblot de IgA,    ocho correspondieron a ni&ntilde;os menores de tres meses de edad, por lo que    los reportes anteriores indican que la sensibilidad en la detecci&oacute;n de    anticuerpos tipo IgA espec&iacute;ficos est&aacute; por debajo de 50%.<SUP>11,12</SUP>    En 12 muestras pudo detectarse ant&iacute;geno p24 en plasma y tres fueron negativas    en el Inmunoblot para anticuerpos tipo IgG sugiriendo un importante deterioro    en el sistema inmunol&oacute;gico que impide controlar la infecci&oacute;n y    quiz&aacute; fabricar anticuerpos a niveles detectables. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> El <a href="#qdr04">cuadro IV</a> resume los    datos obtenidos en la PCR, de lo cual se observa una sensibilidad de 98.27%    y una especificidad de 100% con l&iacute;mites de confianza de 95% de (89.53-99,90)    y (96.94-100), respectivamente y Kappa de Cohen de 0.988. S&oacute;lo una muestra    de un ni&ntilde;o de 10 meses de edad result&oacute; falsamente negativa y no    se presentaron falsos resultados positivos. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><a name="qdr04"></a></p>     <p>&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/spm/v46n1/a07qdr04.gif"></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Discusi&oacute;n</b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">El objetivo de este estudio ha sido demostrar    que la detecci&oacute;n de anticuerpos tipo IgA espec&iacute;ficos para VIH-1,    en combinaci&oacute;n con la amplificaci&oacute;n por la PCR de una regi&oacute;n    altamente conservada del gen gag, son pruebas suficientemente sensibles y espec&iacute;ficas    para realizar el diagn&oacute;stico perinatal de infecci&oacute;n por el VIH    sin necesidad de utilizar el cultivo viral que resulta muy costoso y requiere    instalaciones especializadas. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Los datos de sensibilidad y especificidad (61.1    y 90.8%, respectivamente) obtenidos en la prueba de ELISA para anticuerpos tipo    IgA estandarizada en nuestro laboratorio son similares a los obtenidos en estudios    previos.<SUP>8,12,13</SUP> Entre 0 y 3 meses de edad la sensibilidad es muy    baja: 25%,<SUP>4-16</SUP> sin embargo, la especificidad es de 97.9%. Estos datos    concuerdan con estudios previos<SUP>8,11,12,13</SUP> y apoyan que la mayor&iacute;a    de los ni&ntilde;os se infectan durante el parto o en las primeras semanas de    vida,<SUP>3,14</SUP> y que la s&iacute;ntesis <I>de novo </I>de anticuerpos    espec&iacute;ficos frente al VIH-1 inicia aproximadamente en el segundo mes    de vida y alcanza niveles detectables a los seis meses de edad en 75% de los    casos.<SUP>15</SUP> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Analizando los &iacute;ndices DO/LC se puede    observar una diferencia entre reacciones verdaderamente positivas y aquellas    que no lo son. Cuando esta relaci&oacute;n es igual o superior al valor arbitrario    de 1.35 la posibilidad de falsos positivos es casi nula en todos los rangos    de edad (1/153) y permitir&iacute;a utilizar la prueba de ELISA con m&aacute;s    seguridad en cuanto a falsas reacciones positivas en lugares donde no se tenga    la posibilidad de detectar anticuerpos tipo IgA por inmunoblot. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Los datos de sensibilidad y especificidad obtenidos    para el inmunoblot indican que es una prueba moderadamente sensible (89.18%)    y de buena especificidad (96.15%) en ni&ntilde;os mayores de tres meses de edad,    lo cual concuerda con observaciones hechas por otros autores.<SUP>6-16</SUP>    Cabe se&ntilde;alar que las muestras no fueron pre-tratadas para eliminar IgG    materna, pues el inmunoblot utilizado no es comercial y emplea ant&iacute;geno    viral completo, sin embargo la sensibilidad y especificidad del ensayo es mejor    que la reportada por Kline y colaboradores,<SUP>11</SUP> quienes s&oacute;lo    detectan 10/19 ni&ntilde;os infectados para una sensibilidad de 53% En el ensayo    de inmunoblot no se pudo detectar la presencia de anticuerpos espec&iacute;ficos    frente IgA de VIH-1 en 16 ni&ntilde;os confirmadamente infectados, 10 de los    cuales eran menores de seis meses de edad. En lo referente a los anticuerpos    presentes en ni&ntilde;os menores de cuatro meses de edad nosotros pudimos observar    en 10/16 ni&ntilde;os de esta edad anticuerpos a m&aacute;s de tres prote&iacute;nas    virales incluyendo gp160 y p24, lo cual difiere con las observaciones hechas    por Weiblen y colaboradores<SUP>17</SUP> en que s&oacute;lo detectan anticuerpos    a gp160 y/o p24 en ni&ntilde;os menores de cuatro meses de edad. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Los datos de este estudio muestran que la PCR    es muy sensible y muy espec&iacute;fica en el diagn&oacute;stico de VIH-1 en    ni&ntilde;os menores de 24 meses de edad, sin embargo, es muy importante tener    en cuenta que el no poder detectar el virus en las primeras semanas de vida    no excluye la infecci&oacute;n en el ni&ntilde;o, ya que se ha demostrado que    si la infecci&oacute;n se adquiri&oacute; en el momento del parto o despu&eacute;s    del parto el n&uacute;mero de c&eacute;lulas infectadas puede ser muy reducido    y estar por debajo de los l&iacute;mites de detecci&oacute;n, tanto del cultivo    viral como de la PCR.<SUP>11,12, 14-18</SUP> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana"> De igual modo se ha demostrado que un beb&eacute;    no infectado puede haber adquirido de su madre fragmentos no replicativos de    genoma viral que se detectan en la prueba de la PCR.<SUP>17</SUP> En nuestra    experiencia tambi&eacute;n hemos encontrado ni&ntilde;os con la PCR repetidamente    positiva con varios pares de iniciadores que no han seroconvertido ni mostrado    replicaci&oacute;n viral a lo largo de varios a&ntilde;os. Por este motivo se    recomienda no utilizar la PCR como &uacute;nico ensayo diagn&oacute;stico, confirmar    un resultado positivo con una nueva muestra, tener mucho cuidado en la interpretaci&oacute;n    de los resultados en los reci&eacute;n nacidos y evaluar los datos a la luz    de los hallazgos cl&iacute;nicos. Tambi&eacute;n hay reportes de cultivo viral    positivo en ni&ntilde;os muy peque&ntilde;os (menores de 2 semanas de edad)    no infectados<SUP>19</SUP> por lo que es importante volver a intentar el aislamiento    2 &oacute; 3 meses despu&eacute;s, antes de dar por confirmado el diagn&oacute;stico    de infecci&oacute;n. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana"> Con base en los datos obtenidos en este estudio,    podemos concluir que es posible hacer el diagn&oacute;stico perinatal del VIH-1    utilizando la PCR y detecci&oacute;n de anticuerpos IgA espec&iacute;ficos para    el VIH-1 por inmunoblot. Cuando estas dos pruebas se realizaron de modo simult&aacute;neo    la sensibilidad fue de 100% con l&iacute;mites de confianza de 95% (91.11 –    100) y la especificidad de 97.11%, con l&iacute;mites de confianza de 95% (91.18-    99.25) en el diagn&oacute;stico inicial. Sin embargo, es importante hacer notar    que ante resultados discrepantes en los ensayos deben solicitarse nuevas muestras    y repetir las pruebas. No es conveniente dar un diagn&oacute;stico final de    no-infecci&oacute;n mientras no hayan desaparecido los anticuerpos maternos    tipo IgG lo cual ocurre en la mayor&iacute;a de los casos entre los 12 y 18    meses de vida. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">1. Newell ML, Peckham C. Risk factors for vertical    transmission of HIV-1 and early markers of HIV-1 infection in children. AIDS    1993; 7: S591-S597. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233310&pid=S0036-3634200400010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">2. Van de Perre P. Postnatal transmission of    human immunodeficiency virus type 1: The breast-feeding dilemma. Am J Obstet    Gynecol 1995; 173: 483-487. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233311&pid=S0036-3634200400010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">3. Committee on Pediatric AIDS. Human milk, breastfeeding    and transmission of human immunodeficiency virus in the United States. Pediatrics    1995; 96:977-979. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233312&pid=S0036-3634200400010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">4. Sch&uuml;pbach J, Tomasik Z, Jendis J, B&ouml;ni    J, Seger R, Kind Ch <I>et al</I>. IgG, IgM and IgA response to HIV in Infants    born to HIV-1 infected mothers. J Acquir Immune Defic Syndr 1994; 7:421-427.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233313&pid=S0036-3634200400010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana"> 5. European Collaborative Study. Mother-to-child    transmision of HIV infection. Lancet 1988; ii: 1039-1042. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233314&pid=S0036-3634200400010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">6. Moodley D, Bobat RA, Coutsoudis A, Coovadia    HM. Predicting perinatal human immunodeficiency virus infection by antibody    patterns. Pediatr Infect Dis J 1995; 14: 850-852. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233315&pid=S0036-3634200400010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">7. Desrosiers RC. Virus purification, preparation    of infectious virus stock, and virus storage. En: Aldovini A, Walker B, Ed.    Techniques in HIV research. Nueva York (NY): Stockton Press; 1990: 121-127.    </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233316&pid=S0036-3634200400010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">8. Livingston RA, Hutton N, Halsey NA, Kline    RL, Joyner M, QuinnTC. Human immunodeficiency virus-specific IgA in infants    born to human immunodeficiency virus-seropositive women. Arch Pediatr Adolesc    Med 1995; 149: 503-507. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233317&pid=S0036-3634200400010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">9. Clerici M, Levin JM, Kessler HA, Harris A,    Berzofsky JA Landay AL <I>et al</I>. HIV-specific T-helper activity in seronegative    health care workers exposed to contaminated blood. JAMA 1994; 271: 42-46. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233318&pid=S0036-3634200400010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">10. Riegelman RK, Hirsch RP. C&oacute;mo estudiar    un estudio y probar una prueba: lectura cr&iacute;tica de la literatura m&eacute;dica.    2&ordf;. ed. Washington, DC: Organizaci&oacute;n Panamericana de la Salud; 1992;    Publicaci&oacute;n Cient&iacute;fica No. 531: 112-122. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233319&pid=S0036-3634200400010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">11. Kline MW, Lewis DE, Hollinger FB, Reuben    JM, Hanson C, Kozinetz CA <I>et al</I>. A comparative study of human immunodeficiency    virus culture, poymerase chain reaction and anti-human immunodeficiency virus    immunoglobulin A antibody detection in the diagnosis during early infancy of    vertically acquired human immunodeficiency virus infection. Pediatr Infect Dis    J 1994; 13: 90-94. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233320&pid=S0036-3634200400010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">12. Quinn TC, Kline RL, Halsey N, Hutton N, Ruff    A, Butz A <I>et al</I>. Early diagnosis of perinatal HIV infection by detection    of viral-specific IgA antibodies. JAMA 1991; 266: 3439-3442. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233321&pid=S0036-3634200400010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">13. McIntosh K, Comeau AM, Wara D, D&iacute;az    C, Landesman S, Pitt J <I>et al</I>. The utility of IgA antibody to human immunodeficiency    virus type 1 in early diagnosis of vertical transmitted infection. Arch Pediatr    Adolesc Med 1996; 150: 598-602. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233322&pid=S0036-3634200400010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">14. Report of consensus workshop on early diagnosis    of HIV infection in infants: Siena, Italy. J Acquir Immune Defic Syndr 1992,    5:1169-1178. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233323&pid=S0036-3634200400010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">15. Henrard D, Fauvel J, Samson G, Delege M,    Boucher C and Hankins J. Ontogeny of the humoral immune response to human immunodeficiency    virus type 1 in infants. J Infect Dis 1993; 168:288-291. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233324&pid=S0036-3634200400010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">16. Martin NL, Levy JA, Legg H, Weintrub PS,    Cowan MJ, Wara D. Detection of infection with human immunodeficiency virus (HIV)    type 1 in infants by an anti-HIV immunoglobulin A assay using recombinant proteins.    J Pediatr 1991; 118: 354-358. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233325&pid=S0036-3634200400010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">17. Weiblen BJ, Lee FK, Cooper ER, Landesman    S, McIntosh K, Harris JA <I>et al</I>. Early diagnosis of HIV infection in infants    by detection of IgA HIV antibodies. Lancet 1990; 335:988-990. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233326&pid=S0036-3634200400010000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">18. Newell ML, Loveday C, Dunn D, Kaye S, Tedder    R, Peckham C <I>et al</I>. Use of Polymerase chain reaction and quantitative    antibody tests in children born to human immunodeficiency virus-1 infected mothers.    J Med Virol 1995; 47:330-335. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233327&pid=S0036-3634200400010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana">19. Wiznia AA, Lambert G, Dobrosyzcki J, Porricolo    M, Chelyapov N, Israeli V <I>et al</I>. Virologic, immunologic and clinical    evaluation of human immunodeficiency virus antibody status of symptom-free children    born to infected mothers. J Pediatr 1994;125:352-355.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=9233328&pid=S0036-3634200400010000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana"><b>Solicitud de sobretiros</b>    <br>   QFB Ma del Carmen Basualdo Sigales    <br>   Unidad de Servicios y Diagn&oacute;stico en VIH, Instituto de Investigaciones    Biom&eacute;dicas, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico    <br>   Coordinaci&oacute;n del programa de VIH/SIDA, Secretar&iacute;a de Salud del    Distrito Federal, M&eacute;xico    <br>   Benjam&iacute;n Hill 24 colonia Condesa, Delegaci&oacute;n Cuauht&eacute;moc    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   06140 M&eacute;xico, DF, M&eacute;xico    <br>   Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:mcbasualdo@yahoo.com">mcbasualdo@yahoo.com</a></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana">Fecha de recibido: 10 de junio de 2003     <br>   Fecha de aprobado: 17 de noviembre de 2003 </font></p>      ]]></body><back>
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