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<publisher-name><![CDATA[Instituto Nacional de Ciencias Médicas y Nutrición Salvador Zubirán]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Ultraestructura de la retinopatía causada por la hiperoxia en ratas en desarrollo]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Con el propósito de evaluar el efecto de la hiperoxia posnatal sobre la estructura retiniana se analizaron retinas de ratas recién nacidas expuestas a diferentes periodos de oxigenación (80 ±1%), con tres interrupciones de 21% (30 min c/u). Cuatro grupos de ratas fueron expuestas desde su nacimiento hasta el 6to, 9no, 12mo y 14to días de vida y otro grupo fue mantenido en normoxia. Después de este periodo tanto los grupos expuestos a la hiperoxia como los controles permanecieron en normoxia hasta una edad de 30 días para el análisis estructural de la retina. La histología se hizo usando técnicas convencionales para microscopía electrónica de transmisión (MET). En la capa de células ganglionares de la retina de ratas expuestas a nueve días de hiperoxia, se observaron capilares con notables proyecciones hacia la luz, posiblemente como consecuencia de edema celular del endotelio. El daño más intenso fue observado en las ratas expuestas a hiperoxia durante 12 y 14 días, mostrando mitocondrias hinchadas y sin crestas en las áreas circundantes a los capilares, procesos de necrosis y apoptosis, cuerpos densos, células con citoplasmas hinchados y con ruptura de la membrana plasmática. Los resultados sugieren que la hiperoxia posnatal causa graves daños a la retina en las ratas en desarrollo, con una relación directa entre el tiempo de exposición al oxígeno y los daños ultraestructurales.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culo original</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Ultraestructura de la retinopat&iacute;a causada por la hiperoxia en ratas en desarrollo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Ultra structure of retinopathy induced by hyperoxia in developing rats</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Luz Marina Rojas,* Katiuska Ben&iacute;tez,* Sor Maril&uacute; Su&aacute;rez,* Alpidio Boada&#150;Sucre,** Yleana Ram&iacute;rez,* Mar&iacute;a Auxiliadora Romero,*** Gilma Hern&aacute;ndez*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>* Instituto de Investigaciones en Biomedicina y Ciencias Aplicadas, Universidad de Oriente (IIBCA&#150;UDO).</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>** Instituto de Estudios Cient&iacute;ficos y Tecnol&oacute;gicos. Universidad Nacional Experimental Sim&oacute;n Rodr&iacute;guez (IDECYT&#150;UNESR).</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>*** Posgrado en Biolog&iacute;a Aplicada. N&uacute;cleo de Sucre, Universidad de Oriente.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Reimpresos:</b><i>    <br>   </i><i>M. Sc. Luz Marina Rojas<b>    <br>   </b>Instituto de Investigaciones en Biomedicina y Ciencias Aplicadas (IIBCA&#150;UDO).    <br>   Universidad de Oriente. N&uacute;cleo de Sucre,    <br>   IIBCA&#150;UDO, Cerro del Medio, Cuman&aacute;,    <br>   C.P. 6101. Edo. Sucre. Venezuela.    <br>   Fax: 0293&#150;4521297. Tel. Ofic: 0293&#150;4302140.     <br> Apartado de correo 094.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 13 de octubre de 2004.     <br>   Aceptado el 30 de agosto de 2005.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>ABSTRACT</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>In order to evaluate the effect of postnatal hyperoxia on retinal structure, newborn rats were exposed to different oxygenation intervals (80 &plusmn; 1%) with three interruptions of 21% (30 min each). Four groups of rats were exposed from birth to the 6<sup>th</sup>, 9<sup>th</sup>, 12<sup>th</sup> and 14<sup>th</sup> postnatal day, respectively and another group was placed under normoxia. After this period all oxygenated groups and the controls remained under normoxia until they were 30 days old for the structural analysis of retina. Retinal histology was carried out using conventional techniques for transmission electron microscopy (TEM). In the ganglion cell layer of the retina from rats exposed for 9 days to hyperoxia, capillaries with large projections toward the lumen, were observed as a possible consequence of cellular edema of endothelium. The most severe damage was observed in rats exposed to hyperoxia during 12 and 14 days, showing mitochondrias swollen up and without crests in the areas surrounding the capillaries, necrosis and apoptosis processes, dense bodies, cells with swollen cytoplasms and rupture of the plasmatic membrane. The results suggest that postnatal hyperoxia causes severe damages to the retina in developing rats with a direct relationship between the time exposed to oxygen and ultra structural damages.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Key words. </i></b><i>Retina. Retinopathy. Hyperoxia. Ultrastructure. Photoreceptors.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el prop&oacute;sito de evaluar el efecto de la hiperoxia posnatal sobre la estructura retiniana se analizaron retinas de ratas reci&eacute;n nacidas expuestas a diferentes periodos de oxigenaci&oacute;n (80 &plusmn;1%), con tres interrupciones de 21% (30 min c/u). Cuatro grupos de ratas fueron expuestas desde su nacimiento hasta el 6to, 9no, 12mo y 14to d&iacute;as de vida y otro grupo fue mantenido en normoxia. Despu&eacute;s de este periodo tanto los grupos expuestos a la hiperoxia como los controles permanecieron en normoxia hasta una edad de 30 d&iacute;as para el an&aacute;lisis estructural de la retina. La histolog&iacute;a se hizo usando t&eacute;cnicas convencionales para microscop&iacute;a electr&oacute;nica de transmisi&oacute;n (MET). En la capa de c&eacute;lulas ganglionares de la retina de ratas expuestas a nueve d&iacute;as de hiperoxia, se observaron capilares con notables proyecciones hacia la luz, posiblemente como consecuencia de edema celular del endotelio. El da&ntilde;o m&aacute;s intenso fue observado en las ratas expuestas a hiperoxia durante 12 y 14 d&iacute;as, mostrando mitocondrias hinchadas y sin crestas en las &aacute;reas circundantes a los capilares, procesos de necrosis y apoptosis, cuerpos densos, c&eacute;lulas con citoplasmas hinchados y con ruptura de la membrana plasm&aacute;tica. Los resultados sugieren que la hiperoxia posnatal causa graves da&ntilde;os a la retina en las ratas en desarrollo, con una relaci&oacute;n directa entre el tiempo de exposici&oacute;n al ox&iacute;geno y los da&ntilde;os ultraestructurales.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras   clave.   </b>Retina.   Retinopat&iacute;a.   Hiperoxia.   Ultraestructura.  Fotorreceptores.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La retinopat&iacute;a del prematuro (ROP) es una retinopat&iacute;a proliferativa inducida por isquemia, la cual afecta a los ni&ntilde;os prematuros de muy bajo peso.<sup>1 </sup>Esta enfermedad es la principal causa de alteraciones visuales y ceguera en los reci&eacute;n nacidos pret&eacute;rminos, sobre todo de los m&aacute;s inmaduros con un peso entre 750 g y 1 kg.<sup>2,</sup><sup>3</sup> La incidencia de ROP se ha incrementado en los &uacute;ltimos a&ntilde;os debido a los grandes avances para hacer sobrevivir ni&ntilde;os de muy bajo peso al nacer.<sup>2</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El desarrollo de la red sangu&iacute;nea del ojo comienza desde la parte central&#150;posterior hacia la periferia y culmina justo antes de nacer el ni&ntilde;o.<sup>4</sup> Por consiguiente, cuando el ni&ntilde;o nace prematuro, la retina no ha completado a&uacute;n su desarrollo y la periferia del ojo carece de vasos sangu&iacute;neos. La retina inmadura al verse expuesta a la hiperoxia extrauterina, genera una regulaci&oacute;n an&oacute;mala en la producci&oacute;n del factor de crecimiento vascular (VEGF) provocando una disminuci&oacute;n de la vascularizaci&oacute;n normal.<sup>2,5</sup> Esta alteraci&oacute;n en el desarrollo de la vascularizaci&oacute;n de la retina puede llevar a un proceso de proliferaci&oacute;n fibrovascular, el cual ocasiona un desprendimiento parcial o total de la retina con la consiguiente p&eacute;rdida de la agudeza visual. No todos los beb&eacute;s que nacen prematuramente padecen de ROP, pero cuando esto sucede, pueden perder parcial o totalmente la visi&oacute;n.<sup>6</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La retinopat&iacute;a inducida por ox&iacute;geno (OIR), observada en animales reci&eacute;n nacidos (gatos, perros, cerdos, ratas y ratones) expuestos posnatalmente a hiperoxia, imita la ROP humana, debido a que &eacute;stos poseen al nacer una vasculatura retinal rudimentaria muy parecida a los infantes prematuros.<sup>7</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ROP, adem&aacute;s de conducir a un anormal crecimiento de los vasos sangu&iacute;neos retinales, ocasiona tambi&eacute;n deterioro de la funci&oacute;n de los bastones, lo cual puede ser determinado con el electrorretinograma(ERG).<sup>8,</sup><sup>9</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Reducciones graves en la amplitud del ERG fueron reportadas en cerdos reci&eacute;n nacidos expuestos posnatalmente a altos niveles de ox&iacute;geno.<sup>10</sup> Por otra parte, ha sido demostrado que las ratas expuestas a 80% de ox&iacute;geno en los primeros once d&iacute;as de vida, presentan en la siguiente semana una reducci&oacute;n significativa en la sensibilidad de la respuesta de los bastones junto con una atenuaci&oacute;n de uno de los potenciales oscilatorios.<sup>11</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha demostrado que las ratas reci&eacute;n nacidas, expuestas durante los primeros 14 d&iacute;as de vida en un ambiente hiper&oacute;xico desarrollan anomal&iacute;as retinianas, que a nivel estructural se reflejan en una disminuci&oacute;n del grosor de la capa plexiforme externa (CPE) y del n&uacute;mero de c&eacute;lulas horizontales (NCH) y a nivel funcional en una disminuci&oacute;n de la amplitud de la onda <i>b </i>del ERG.<sup>11&#150;</sup><sup>14</sup> Existe una correlaci&oacute;n oxigenodependiente entre la duraci&oacute;n de la exposici&oacute;n al ox&iacute;geno y la disminuci&oacute;n en la amplitud del ERG escot&oacute;pico (en ausencia de luz), as&iacute; como en el decrecimiento del grosor de la CPE y el NCH.<sup>11&#150;</sup><sup>14</sup> La intensidad de estos da&ntilde;os depende, en gran parte, del estado de madurez de la retina al momento de comenzar la hiperoxia, originando un mayor deterioro cuando &eacute;sta comienza en la segunda semana de vida de la rata que si transcurre durante la primera.<sup>13</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recientemente se analiz&oacute; la concentraci&oacute;n de glutati&oacute;n reducido (GSH) en los gl&oacute;bulos rojos y la patolog&iacute;a retiniana y coroidal en ratas en desarrollo sometidas a diferentes periodos de hiperoxia (80% &plusmn; 1 0<sub>2</sub>).<sup>15</sup> Se constat&oacute; una disminuci&oacute;n significativa del GSH indicando que ocurri&oacute; un gran estr&eacute;s oxidativo y da&ntilde;os estructurales graves en la retina y la coroides, posiblemente producto de la hiperoxia.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En vista de la poca informaci&oacute;n existente acerca de los da&ntilde;os estructurales presentados en la retina de individuos con ROP, el presente estudio tiene como objetivo evaluar los efectos de la hiperoxia sobre la ultraestructura retiniana de ratas en desarrollo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron ratas Sprague&#150;Dawley procedentes del Instituto Venezolano de Investigaciones Cient&iacute;ficas (IVIC).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las ratas reci&eacute;n nacidas fueron colocadas en incubadoras. La iluminaci&oacute;n de la caja de las ratas vari&oacute; entre 20&#150;30 cd/m<sup>2</sup>. Estos niveles de luz est&aacute;n por debajo de los que han sido considerados como causantes de degeneraci&oacute;n de la retina en las ratas albinas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Desde el d&iacute;a de su nacimiento, las ratas fueron expuestas diariamente a 80 &plusmn; 1% de ox&iacute;geno con tres interrupciones de 21% de ox&iacute;geno. Cada interrupci&oacute;n tuvo una duraci&oacute;n de 30 min.<sup>12</sup> El nivel de ox&iacute;geno en la incubadora fue mantenido a 80 &plusmn; 1% utilizando un analizador de ox&iacute;geno (7820 Oxygen Monitoring System), el cual fue conectado a la incubadora y calibrado diariamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los ejemplares tratados se sometieron a diferentes reg&iacute;menes de hiperoxia desde el d&iacute;a de su nacimiento al 6to, 9no, 12mo y 14to d&iacute;a de vida. Despu&eacute;s del periodo de oxigenaci&oacute;n, las ratas fueron mantenidas en un ambiente norm&oacute;xico hasta una edad de 30 d&iacute;as. Para evitar las complicaciones pulmonares que con frecuencia son se&ntilde;aladas en las ratas adultas expuestas a la hiperoxia, las madres fueron alternadas cada d&iacute;a con las madres de los individuos control.<sup>12</sup> De esta manera, estos controles, los cuales permanecieron en un ambiente norm&oacute;xico, recibieron las madres de los peque&ntilde;os expuestos al ox&iacute;geno y viceversa.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para los an&aacute;lisis histol&oacute;gicos fueron estudiados cuatro animales por r&eacute;gimen de hiperoxia. La histolog&iacute;a fue realizada de acuerdo con t&eacute;cnicas previamente utilizadas.<sup>15</sup> Inmediatamente despu&eacute;s del sacrificio el ojo fue enucleado, se le hizo una incisi&oacute;n a nivel de la <i>ora serrata </i>y r&aacute;pidamente fue fijado completo durante 30 minutos en glutaraldeh&iacute;do a 3% en tamp&oacute;n fosfato 0.1 M, pH 7.4. Luego la retina, a&uacute;n inmersa en glutaraldeh&iacute;do fue cortada, seleccionando para el estudio el sector central.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar la morfolog&iacute;a se realizaron cortes semifinos con cuchilla de vidrio, los cuales se ti&ntilde;eron con azul de toluidina y se examinaron en un fotomicroscopio Zeiss. Para los an&aacute;lisis ultraestructurales se realizaron cortes finos (60&#150;70 nm) obtenidos con una cuchilla de diamante y fueron contrastados con acetato de uranilo y citrato de plomo. Los cortes fueron observados y fotografiados con un microscopio electr&oacute;nico de transmisi&oacute;n Hitachi H&#150;600.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las ratas expuestas a la hiperoxia los primeros seis y nueve d&iacute;as de vida mostraron algunos da&ntilde;os a nivel de los capilares sangu&iacute;neos y sus zonas aleda&ntilde;as. En la CPE de animales sometidos a seis d&iacute;as de hiperoxia se observaron capilares en aparente buen estado; sin embargo, el tejido circundante a los mismos se encontraba Usado (<a href="#f1">Figura 1</a>). Por otro lado, en la capa de c&eacute;lulas ganglionares (CCG) de animales de nueve d&iacute;as de exposici&oacute;n al ox&iacute;geno, se observa una disminuci&oacute;n del di&aacute;metro de secci&oacute;n de los capilares, posiblemente como consecuencia de edema celular del endotelio (<a href="#f2">Figura 2</a>). En las zonas vecinas al capilar se observan mitocondrias hinchadas y sin crestas. Comparadas con las controles (<a href="#f3">Figura 3</a>), las ratas expuestas a la hiperoxia durante 12 y 14 d&iacute;as mostraron da&ntilde;os ultraestructurales m&aacute;s graves. Se observaron mitocondrias hinchadas y sin crestas en el endotelio capilar de la CPE (<a href="#f4">Figura 4</a>). Adem&aacute;s, en las zonas adyacentes de este mismo capilar se evidenci&oacute; la presencia de un cuerpo denso y procesos de vacuolizaci&oacute;n. En la capa nuclear externa (CNE) se observaron c&eacute;lulas con citoplasmas hinchados y con ruptura de la membrana plasm&aacute;tica conduciendo a una comunicaci&oacute;n inusual entre dos c&eacute;lulas fotorreceptoras vecinas (<a href="#f5">Figura 5</a>). Estas c&eacute;lulas hinchadas presentan un citoplasma electr&oacute;n&#150;transparente comparadas con las c&eacute;lulas normales a su alrededor.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n6/a5f1.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n6/a5f2.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n6/a5f3.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n6/a5f4.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n6/a5f5.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En ratas expuestas a hiperoxia durante 14 d&iacute;as, adem&aacute;s de las anormalidades ya se&ntilde;aladas, se observaron segmentos externos de fotorreceptores tanto con discos de membranas normales, como separados o en desorden (<a href="#f6">Figuras 6A y 6B</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f6"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n6/a5f6.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la CNE se evidenciaron muchos n&uacute;cleos con envolturas nucleares hinchadas (<a href="#f7">Figura 7</a>) y n&uacute;cleo destruido producto, probablemente, de un proceso de necrosis celular (<a href="#f8">Figura 8</a>). En esta misma capa se manifestaron abundantes figuras mielinicas (<a href="#f9">Figura 9</a>) y la presencia de cuerpos apopt&oacute;ticos (<a href="#f10">Figura 10</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f7"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n6/a5f7.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f8"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n6/a5f8.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f9"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n6/a5f9.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f10"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n6/a5f10.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fibrosis, crecimiento del tejido de cicatrizaci&oacute;n provocado por el crecimiento irregular de nuevos vasos sangu&iacute;neos en zonas retinianas sin riego, no fue observada en el tejido analizado. Esto pudo ser debido, en parte, a que s&oacute;lo analiz&oacute; la retina central y la fibrosis se observa en la periferia donde hay proceso de neovascularizaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ultraestructuralmente, se observa una disminuci&oacute;n del di&aacute;metro de secci&oacute;n de los capilares, en la capa de c&eacute;lulas ganglionares (CCG) de la retina de ratas expuestas a nueve d&iacute;as de hiperoxia. La respuesta inicial de la circulaci&oacute;n retinal a las altas concentraciones de ox&iacute;geno en animales de laboratorio, es un da&ntilde;o estructural irreversible sobre el desarrollo del endotelio o revestimiento de los capilares retinales. Esto puede traer como consecuencia que los vasos sangu&iacute;neos m&aacute;s j&oacute;venes sean obliterados regul&aacute;ndose de esta manera el flujo de sangre y la oxigenaci&oacute;n de la retina interna.<sup>8</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando un individuo nace con una madurez incompleta de su vasculatura retinal y es sometido a altas concentraciones de ox&iacute;geno durante sus primeros 14 d&iacute;as de vida, el retorno a ox&iacute;geno normal est&aacute; acompa&ntilde;ado de una retinopat&iacute;a vasoproliferativa severa.<sup>16</sup> El ox&iacute;geno necesario para el desarrollo de la retina externa (epitelio pigmentado, capa fotorreceptora) es suministrado por la coroides. Durante la hiperoxia, la coroides suministra o provee excesivas concentraciones de ox&iacute;geno a la retina, de tal forma que la tensi&oacute;n de ox&iacute;geno est&aacute; aumentada no solamente en la retina externa, sino tambi&eacute;n en la retina interna produciendo vaso&#150;obliteraci&oacute;n retinal.<sup>17</sup> Cuando el individuo es devuelto a un ambiente norm&oacute;xico, la circulaci&oacute;n coroidal es inadecuada produci&eacute;ndose de esta manera hipoxia relativa en la retina interna<sup>3</sup> y tambi&eacute;n puede ocurrir hipoxia relativa de la coroides y fotorrecepto&#150;res.<sup>18</sup> Para recompensar esta hipoxia ocurre una neovascularizaci&oacute;n marcada que es el origen de las consecuencias m&aacute;s severas de la ROP.<sup>19</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El da&ntilde;o neuronal est&aacute; asociado con un incremento de amino&aacute;cidos excitatorios, glutamato y aspartato en el medio extracelular, los cuales podr&iacute;an prolongar la activaci&oacute;n de receptores de membrana y alterar la homeostasis del Ca<sup>2+</sup> intracelular, frecuentemente involucrado en el mecanismo de muerte celular.<sup>20,21</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el prop&oacute;sito de analizar el mecanismo por el cual ocurre la acumulaci&oacute;n extracelular de amino&aacute;cidos end&oacute;genos como aspartato, glutamato, glicina, taurina, alanita y GABA, se utilizaron cultivos de c&eacute;lulas retinianas bajo estr&eacute;s oxidativo inducido por ascorbato/Fe<sup>2+</sup> en comparaci&oacute;n con hipoxia inducida qu&iacute;micamente con oligomicina m&aacute;s cianida o condiciones de isquemia (hipoxia inducida m&aacute;s &aacute;cido iodoac&eacute;tico o deoxiglucosa).<sup>22</sup> Se evalu&oacute; la correlaci&oacute;n entre la liberaci&oacute;n de los amino&aacute;cidos, los cambios en la homeostasis intracelular de Ca<sup>2+</sup>, la depolarizaci&oacute;n de las membranas y la carga de energ&iacute;a de las c&eacute;lulas retinianas, con el objetivo de conocer los mecanismos de muerte celular excitot&oacute;xica. Bajo las tres condiciones experimentadas ocurri&oacute;:</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Una liberaci&oacute;n de los amino&aacute;cidos end&oacute;genos en ausencia de estimulaci&oacute;n, aunque por diferentes mecanismos intracelulares.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Despu&eacute;s del estr&eacute;s oxidativo, la acumulaci&oacute;n de aspartato, glutamato y GABA en el medio extracelular es dependiente del Ca<sup>2+</sup>, mientras que la acumulaci&oacute;n de amino&aacute;cidos que ocurre bajo condiciones de hipoxia o isquemia es un mecanismo principalmente independiente del Ca<sup>2+</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. En condiciones de isquemia se observ&oacute; un descenso en el estatus de energ&iacute;a de las c&eacute;lulas retinianas, lo cual se correlaciona con un incremento en la liberaci&oacute;n de amino&aacute;cidos, especialmente aspartato y glutamato.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La CCG tambi&eacute;n mostr&oacute; mitocondrias hinchadas y sin crestas en las zonas vecinas a los capilares; en ratas expuestas a la hiperoxia durante nueve d&iacute;as. Los efectos t&oacute;xicos de la hiperoxia son m&aacute;s obvios en las mitocondrias,<sup>8</sup> las cuales aparecen hinchadas debido a la entrada de agua y sodio a la c&eacute;lula, ya que el proceso activo de la bomba sodio y potasio se detiene. Periodos de hipoxia relativa producen tambi&eacute;n una alteraci&oacute;n en las mitocondrias frenando la fosforilaci&oacute;n oxidativa y disminuyendo as&iacute; la producci&oacute;n de ATP.<sup>23</sup> La capa fotorreceptora de las ratas expuestas a 14 d&iacute;as de hiperoxia, revel&oacute; discos de membrana separados en los segmentos externos de los bastones. Los fotorreceptores requieren enormes cantidades de energ&iacute;a y ox&iacute;geno para la s&iacute;ntesis y disposici&oacute;n de los discos de los segmentos externos.<sup>24</sup> Con la hipoxia relativa inducida por un cambio de hiperoxia a normoxia, la exigencia de ox&iacute;geno para el desarrollo de los fotorreceptores podr&iacute;a ser recibida incompletamente produci&eacute;ndose de esta manera distrofia hip&oacute;xica que modifica la estructura de los segmentos externos.<sup>1125</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La retina de los animales sometidos a la hiperoxia durante 12 y 14 d&iacute;as, mostr&oacute; &aacute;reas de degeneraci&oacute;n donde se percibe la p&eacute;rdida total de la estructura celular. Tales hallazgos son caracter&iacute;sticos de un mecanismo de muerte celular conocido como necrosis. Tambi&eacute;n se observ&oacute; cierta cantidad de apoptosis en las partes perif&eacute;ricas a la zona da&ntilde;ada. Los primeros signos de degeneraci&oacute;n se observan en las mitocondrias, las cuales se hinchan y su estructura interna tiende a desaparecer. Estas alteraciones son una consecuencia de la p&eacute;rdida del control de la permeabilidad selectiva de la membrana celular que causa edema celular y vesiculaci&oacute;n y que, finalmente, lleva a la ruptura de la membrana plasm&aacute;tica con salida del contenido intracelular.<sup>26</sup> Las figuras miel&iacute;nicas, envolturas nucleares hinchadas y cuerpos densos en la retina de ratas expuestas a 12 y 14 d&iacute;as de oxigenaci&oacute;n son hallazgos caracter&iacute;sticos de lesiones irreversibles a la c&eacute;lula.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las figuras miel&iacute;nicas son pilas de bicapas fosfolip&iacute;dicas en forma de esferas, cilindros y espirales que se desarrollan donde quiera que las c&eacute;lulas son destruidas. Probablemente, cuando la c&eacute;lula muere hay prote&oacute;lisis severa en la membrana celular y el citoesqueleto y los fosfol&iacute;pidos quedan libres.<sup>23</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de envolturas nucleares hinchadas puede estar asociada con alteraciones de prote&iacute;nas nucleares que son degradadas. Se ha determinado que los n&uacute;cleos de los fotorreceptores se da&ntilde;an en retinas expuestas al ox&iacute;geno.<sup>11</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las ratas la exposici&oacute;n a la hiperoxia durante los primeros 14 d&iacute;as de vida repercuten en la reducci&oacute;n paulatina del grosor de la capa plexiforme externa (CPE) y del n&uacute;mero de c&eacute;lulas horizontales (NCH).<sup>13</sup> Dado que la exposici&oacute;n a la hiperoxia puede impedir la formaci&oacute;n de sinapsis en la CPE, la reducci&oacute;n del NCH puede ser consecuencia de procesos degenerativos que se desatan por su incapacidad en establecer conexiones sin&aacute;pticas verdaderas o por su hipersensibilidad al ox&iacute;geno.<sup>13</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estado oxidativo de los gl&oacute;bulos rojos puede ser usado como un &iacute;ndice biol&oacute;gico del da&ntilde;o oxidativo retinal.<sup>27</sup> Existe una alta similitud entre las c&eacute;lulas de la retina humana y los gl&oacute;bulos rojos en lo que respecta a su estructura de membrana (cadenas muy largas de &aacute;cidos grasos polinsaturados, susceptibles a la oxidaci&oacute;n), su metabolismo (alta demanda de glucosa y ox&iacute;geno) y sus mecanismos antioxidantes.<sup>28</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Analizando la concentraci&oacute;n de glutati&oacute;n reducido (GSH) en los gl&oacute;bulos rojos de las ratas sometidas a hiperoxia durante los primeros seis, nueve, 12 y 14 d&iacute;as de vida, se demostr&oacute; que, comparados con el control, los individuos expuestos durante los primeros seis y nueve d&iacute;as presentaron una disminuci&oacute;n significativa (68 y 54%) de los niveles de GSH, respectivamente.<sup>15</sup> Las ratas expuestas durante 12 d&iacute;as, por el contrario, mostraron s&oacute;lo una ligera declinaci&oacute;n en estos niveles (13%). No obstante, en las expuestas durante 14 d&iacute;as, los niveles de GSH superaron las del control en 34%. La disminuci&oacute;n del GSH en los eritrocitos de las ratas expuestas los primeros seis y nueve d&iacute;as de edad pudo deberse a una sobreproducci&oacute;n de radicales libres. Posiblemente durante los primeros nueve d&iacute;as, se activen los mecanismos de defensa provocando una disminuci&oacute;n de los niveles de GSH y esto pudiera ser resultado de la activaci&oacute;n de enzimas, tales como la glutati&oacute;n peroxidasa.<sup>29</sup> A una hiperoxia m&aacute;s prolongada (12 d&iacute;as), los niveles de GSH tienden a ser nivelados, llegando inclusive a superar los controles en el tratamiento de 14 d&iacute;as; esto, probablemente, como un proceso adaptativo del organismo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nuestros resultados sugieren que existe una relaci&oacute;n directa entre el tiempo que dura la hiperoxia y la aparici&oacute;n de una serie de anormalidades ultraestructurales que indican la existencia de un da&ntilde;o severo en la retina de las ratas que posiblemente sea mediado por el gran estr&eacute;s oxidativo al que &eacute;sta ha estado sometida.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTO</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este estudio fue financiado por el Fondo Nacional de Ciencia, Tecnolog&iacute;a e Innovaci&oacute;n (FONACIT), el Consejo de Investigaci&oacute;n del N&uacute;cleo de Sucre de la Universidad de Oriente (CINS&#150;UDO) y el Instituto de Investigaciones en Biomedicina y Ciencias Aplicadas de la Universidad de Oriente (IIBCA&#150;UDO). Los autores agradecen a Jos&eacute; Luis Prin, Antonio G&oacute;mez y Milagro Moreno por su asistencia t&eacute;cnica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Mechoulam H, Pierce E. Retinopathy of prematurity: molecular pathology and therapeutic  strategies. <i>Am J Pharmacogenomic </i>2003;  3:  261&#150;77.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766808&pid=S0034-8376200500060000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Grunauer N, Iriondo M, Serra A, Krauel J, Jim&eacute;nez R. Retinopatia del premature  Casu&iacute;stica de los a&ntilde;os  1995&#150;2001. <i>Annales de Pediatr&iacute;a </i>2003; 58: 471&#150;7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766809&pid=S0034-8376200500060000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Beby F, Burillon C, Putet G, Denis P. Retinopathy of prematurity.  Results  of fundus  examination performed  in 94 preterm infants. <i>J Fran Ophtalmol </i>2004; 27: 337&#150;44.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766810&pid=S0034-8376200500060000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Pierce EA, Foley ED,  Smith LEH.  Regulation of vascular endotelial growth factor by oxygen in a model of retinopathy of prematurity. <i>Arch Ophthalmol  </i>1996;   114:   1219&#150;54.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766811&pid=S0034-8376200500060000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Trese   M.   Retinopathy  of prematurity.   In:   Retina.   Tomo   III. Ryan   (ed.).   Boston:   Blackwell   Scientific   Publications;   1989; pp.   551&#150;63.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766812&pid=S0034-8376200500060000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Reynaud X,  Dorey C.  Extraretinal neovascularization induced by    hypoxic    episodes    in    the    neonatal    rat.    <i>Investigative Ophthalm Vis Scien </i>1994; 35:  3169&#150;77.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766813&pid=S0034-8376200500060000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Garner A. The role of hyperoxia in the etiology of retinopathy of prematurity. <i>Docum Ophthalmologica  </i>1990;  74:   187&#150;93.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766814&pid=S0034-8376200500060000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Reisner D,  Hansen R, Findl O,  Petersen R, Fulton A.  Dark&#150;adapt&#150;ed thresholds in children with histories  of mild retinopathy  of prematurity.   <i>Invest  Ophthalm   Vis  Scien   </i>1997;   38: 1175&#150;83.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766815&pid=S0034-8376200500060000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Penn J, Thum L, Rhem M, Dell S.  Effects of oxygen rearing on  the   electroretinogram   and  GFA&#150;protein  in  the  rat.   <i>Invest Ophthalm Vis Scien </i>1988; 29:   1623&#150;30.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766816&pid=S0034-8376200500060000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10.Reynaud X, Hansen R, Fulton A. Effect of prior oxygen exposure on the electroretinographic responses of infant rats. <i>Invest Ophthalm Vis Scien </i>1995; 36: 2071&#150;9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766817&pid=S0034-8376200500060000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Lachapelle P, Dembinska O, Rojas LM, Benoit J, Almazan G, Chemtop S.  Persistent functional and structural retinal anomalies   in   newborn   rats   exposed  to   hyperoxia.   <i>Canad J Phys Pharmacol </i>1999; 77:  1&#150;8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766818&pid=S0034-8376200500060000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Dembinska O, Rojas LM, Varma D, Chemtob S, Lachapelle P. Graded contribution  of retinal maturation to the  development of  oxygen&#150;induced  retinopathy   in  rats.   <i>Invest  Ophthalm   Vis Scien </i>2001;  42:   1111&#150;18.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766819&pid=S0034-8376200500060000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Dembinska O, Rojas LM, Chemtob S, Lachapelle P. Evidence for a brief period of enhanced oxygen susceptibility in the rat model   of  oxygen&#150;induced   retinopathy.   <i>Invest   Ophthalm   Vis Scien </i>2002;  43:  2481&#150;90.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766820&pid=S0034-8376200500060000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Rojas LM, Su&aacute;rez SM, Lemus M, Ben&iacute;tez K, Ram&iacute;rez Y, Mitchell  M,  Boada&#150;Sucre  A.  Estr&eacute;s  oxidativo  como  posible  causante de retinopat&iacute;a en ratas en desarrollo sometidas a hyperoxia. <i>Interciencia </i>2004; 29:  556&#150;61.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766821&pid=S0034-8376200500060000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Ricci   B.   Effects   of  hyperbaric,   normobaric   and   hypobaric oxygen supplementation on retinal vessels in newborn rats: a preliminary   study.   <i>Experimental   Eye   Research   </i>1987;   44: 459&#150;64.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766822&pid=S0034-8376200500060000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Alder   V,   Ben&#150;Num   J,   Cringle   S.   Profiles   and   oxygen   consumption in cat retina with occluded retinal circulation. <i>Invest Ophthalm Vis Scien  </i>1990; 31:  1029&#150;34.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766823&pid=S0034-8376200500060000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Wolbarsht M,  George  G,  Shearing W,  Kylstra J,  Landers  M. Retinopathy   of prematurity:   A  new   look  at  an   old  disease. <i>Ophthalmic Surg  </i>1983;  14:  919&#150;24.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766824&pid=S0034-8376200500060000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Robbins S, Conaway J, Ford B, Roberto K, Penn J. Detection of vascular endothelial growth factor (VEGF) protein in vascular  and  non&#150;vascular  cells  of the  normal  and  oxygen&#150;injured rat. <i>Growth Factors </i>1997;  14: 229&#150;41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766825&pid=S0034-8376200500060000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Schousboe A, Frandsen A, Wahl P, Krogsgaard&#150;Larsen P. Excitatory amino  acid&#150;induced cytotoxicity in culture neurons:  role if intracellular Ca<sup>2+</sup> homeostasis. In: Glutamate Cell Death and Memory (Ascher P, Choi DW, and Christen Y, Eds.).  Heidelberg:  Springer&#150;Verlag;   1991,  pp.   137&#150;52.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766826&pid=S0034-8376200500060000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Frandsen   A,    Schousboe   A.    Excitatory   amino   acid&#150;mediate cytotoxicity   and   calcium   homeostasis   in   culture   neurons.   <i>J Neuroch   </i>1993;  60:   1202&#150;11.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766827&pid=S0034-8376200500060000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Rego CA,  Santos MS,  Oliveira CR.  Oxidative stress, hipoxia, and  ischemia&#150;like   conditions   increase  the  release   of endogenous amino acids by distinct mechanisms in culture retinal cells. <i>J Neuroch </i>1996; 66: 2506&#150;16.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766828&pid=S0034-8376200500060000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Majno G, Joris I. Cells, tissues and disease: Principles of general pathology. USA: Blackwell Science;  1996, pp. 227.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766829&pid=S0034-8376200500060000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Young   R.   Visual   cells   and  the   concept   of  renewal. <i>Invest Ophthalm Vis Scien </i>1976;  15: 700&#150;25.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766830&pid=S0034-8376200500060000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Fulton A, Reynaud X, Hansen R, Lemere C, Parker C, Williams T.  Rod photoreceptors in infant rats with a history of oxygen exposure. <i>Invest Ophthalm Vis Scien </i>1999; 40:  168&#150;73.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766831&pid=S0034-8376200500060000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Ramirez C, Carracedo J, Moreno C, Guerra F. Apoptosis y enfermedad. <i>Alergol Inmunol Clin </i>1999;  14: 367&#150;74.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766832&pid=S0034-8376200500060000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Thornalley P, McLellan A, Lo T, Sonksen P. Negative association   between   erythrocyte   reduced   glutathione   concentration and diabetic complications. <i>Clin Sci </i>1996; 91: 575&#150;82.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766833&pid=S0034-8376200500060000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. De la Paz M, Zhang J, Fridovich I. Antioxidant enzymes of the human retina: Effect of age on enzyme activity of macula and periphery. <i>Curr Eye Res </i>1996;  15: 273&#150;8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766834&pid=S0034-8376200500060000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Clahsen P, Moison R, Holtzer C, Berger H. Recycling of glutathione during oxidative stress in erythrocytes of the newborn. <i>Pediatr Res  </i>1992; 32: 399&#150;402.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6766835&pid=S0034-8376200500060000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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