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<publisher-name><![CDATA[Instituto Nacional de Ciencias Médicas y Nutrición Salvador Zubirán]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección de Chlamydia trachomatis en orina por LCR: aplicación del método de mezcla de muestras biológicas]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Ligase chain reaction testing of pooled urine specimens to diagnose Chlamydia trachomatis infection]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Nacional de Salud Pública Dirección de Microbiología Médica ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Objetivo. Evaluar la validez y conveniencia de la estrategia de la mezcla de muestras de orinas para el diagnóstico molecular de Chlamydia trachomatis (CT). Material y métodos. A partir de 1,220 muestras de orina recolectadas de jóvenes de uno y otro sexos, se conformaron 305 mezclas con cuatro alícuotas de muestras individuales, previo cálculo del tamaño óptimo de la mezcla. A continuación se determinó la presencia de ácidos nucleicos de clamidia en esas mezclas, mediante el método de reacción en cadena de la ligasa. Las mezclas positivas o en zona gris fueron reanalizadas de manera individual (cuatro pruebas adicionales). El número final de pruebas realizadas se comparó con el total de pruebas que se habrían efectuado individualmente. Resultados. Del total de mezclas analizadas, 230 resultaron negativas, 56 fueron positivas y 19 más se ubicaron en zona gris. Una vez reanalizadas de manera individual las mezclas positivas y las de zona gris, se obtuvieron 59 muestras de orina positivas a clamidia (prevalencia de 4.81%). De esta manera, el número total de pruebas efectuadas fue de 605 en contraste con las 1,220 que tendrían que haberse hecho si se hubieran procesado las muestras individualmente, es decir, que se logró un ahorro de 50.5% del costo directo del reactivo de diagnóstico. Conclusiones. La metodología aplicada mostró ser tanto confiable como conveniente en el entorno mexicano para llevar a cabo vigilancia epidemiológica de la infección por CT. Dado lo anterior, esta metodología podría ser considerada en otros entornos en los que la falta de recursos limita la vigilancia de las infecciones de transmisión sexual.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culo original</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Detecci&oacute;n de <i>Chlamydia trachomatis </i>en orina por LCR: aplicaci&oacute;n del m&eacute;todo de mezcla de muestras biol&oacute;gicas<img src="/img/revistas/ric/v57n4/a8s1.jpg"></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Ligase chain reaction testing of pooled urine specimens to diagnose Chlamydia trachomatis infection</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Miguel &Aacute;ngel S&aacute;nchez&#150;Alem&aacute;n,* Juan Pablo Guti&eacute;rrez,** Stefano Michael Bertozzi,** Maydel&iacute;n Frontela&#150;Noda,*** V&iacute;ctor Guerrero&#150;Lemus,* Carlos Jes&uacute;s Conde&#150;Gonz&aacute;lez*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>*  Centro de Investigaci&oacute;n sobre Enfermedades Infecciosas.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>** Centro de Investigaci&oacute;n en Sistemas de Salud. Instituto Nacional de Salud P&uacute;blica.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>***  Instituto Nacional de Endocrinolog&iacute;a, Cuba.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font><font face="verdana" size="4"><b><img src="/img/revistas/ric/v57n4/a8s1.jpg"> </b><font size="2">Trabajo realizado durante su estancia en el INSP</font> </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Reimpresos:</b><i>    <br>   </i><i>Dr. Carlos Jes&uacute;s Conde&#150;Gonz&aacute;lez<b>    <br>   </b>Direcci&oacute;n de Microbiolog&iacute;a M&eacute;dica    <br>   Instituto Nacional de Salud P&uacute;blica    <br>   Av. Universidad 655    <br>   Col. Santa Mar&iacute;a Ahuacatitl&aacute;n    <br>   62100 Cuernavaca, Mor.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   Tel: (777) 101&#150;29&#150;04 Fax: (777) 317&#150;54&#150;85</i>    <br> Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:cjconde@insp.mx">cjconde@insp.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 11 de junio de 2004.     <br>   Aceptado el 16 de mayo de 2005.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>ABSTRACT</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Objective.</b> The purpose of this study was to assess the utility and validity of pooling urine samples for molecular diagnosis of </i>Chlamydia trachomatis <i>infection.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Material and methods.</b> Of 1,220 urine samples collected from Mexican female and male adolescents, 305 pools were composed of fourth individual samples each, based on a calculation of optimal pool size. These were processed by ligase chain reaction (LCR) for the detection of C. trachomatis. Positive and gray&#150;zone pools were reanalyzed individually. Cost savings were calculated comparing actual costs of testing to the cost that would have been incurred testing all 1,220 samples individually.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Results.</b> Pools results were: 56 positive, 19 gray&#150;zones and 230 negative. Following individual retesting of positive and gray&#150;zone pools, 59 cases of C. trachomatis infection were identified (4.8% prevalence). Thus, a total of 601 LCR tests were performed, for a 50.4% savings considering only the direct cost of the test.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Conclusions.</b> Our experience shows that sample pooling is both a reliable and convenient tool for CT surveillance in our setting. It should be considered in other similar settings where limited resources constraint surveillance of STIs.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Key words. </i></b><i>Sample pooling. </i>C. trachomatis. <i>LCR.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Objetivo.</b> </i>Evaluar la validez y conveniencia de la estrategia de la mezcla de muestras de orinas para el diagn&oacute;stico molecular de <i>Chlamydia trachomatis (CT).</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Material y m&eacute;todos.</b> </i>A partir de 1,220 muestras de orina recolectadas de j&oacute;venes de uno y otro sexos, se conformaron 305 mezclas con cuatro al&iacute;cuotas de muestras individuales, previo c&aacute;lculo del tama&ntilde;o &oacute;ptimo de la mezcla. A continuaci&oacute;n se determin&oacute; la presencia de &aacute;cidos nucleicos de clamidia en esas mezclas, mediante el m&eacute;todo de reacci&oacute;n en cadena de la ligasa. Las mezclas positivas o en zona gris fueron reanalizadas de manera individual (cuatro pruebas adicionales). El n&uacute;mero final de pruebas realizadas se compar&oacute; con el total de pruebas que se habr&iacute;an efectuado individualmente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Resultados.</b> </i>Del total de mezclas analizadas, 230 resultaron negativas, 56 fueron positivas y 19 m&aacute;s se ubicaron en zona gris. Una vez reanalizadas de manera individual las mezclas positivas y las de zona gris, se obtuvieron 59 muestras de orina positivas a clamidia (prevalencia de 4.81%). De esta manera, el n&uacute;mero total de pruebas efectuadas fue de 605 en contraste con las 1,220 que tendr&iacute;an que haberse hecho si se hubieran procesado las muestras individualmente, es decir, que se logr&oacute; un ahorro de 50.5% del costo directo del reactivo de diagn&oacute;stico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><b>Conclusiones.</b> </i>La metodolog&iacute;a aplicada mostr&oacute; ser tanto confiable como conveniente en el entorno mexicano para llevar a cabo vigilancia epidemiol&oacute;gica de la infecci&oacute;n por CT. Dado lo anterior, esta metodolog&iacute;a podr&iacute;a ser considerada en otros entornos en los que la falta de recursos limita la vigilancia de las infecciones de transmisi&oacute;n sexual.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave. </b>Mezcla de muestras. <i>C. trachomatis, </i>LCR.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Chlamydia trachomatis </i>es una bacteria intracelular, que puede transmitirse por contacto sexual.<sup>1 </sup>La clamidiasis, que represent&oacute; 92 millones de casos nuevos alrededor del mundo en 1999,<sup>2</sup> puede originar uretritis en hombres y enfermedad p&eacute;lvica inflamatoria, infertilidad y embarazos ect&oacute;picos en mujeres,<sup>1</sup> adem&aacute;s de ser un factor que facilita la transmisi&oacute;n del VIH.<sup>3</sup> Esta enfermedad generalmente es asintom&aacute;tica (80% en mujeres y 50% en hombres), <sup>4,5</sup> por lo que se requieren programas de tamizaje para controlar la transmisi&oacute;n. Al menos para pa&iacute;ses desarrollados, se ha mostrado que el tamizaje es costo&#150;ahorrador: estudios del CDC, por ejemplo, estimaron que por cada d&oacute;lar invertido en prevenci&oacute;n, se ahorran $12 dls. en el tratamiento de secuelas.<sup>6</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para detectar la infecci&oacute;n se cuenta actualmente con pruebas de amplificaci&oacute;n de &aacute;cidos nucleicos (NAAT, nucleic acid amplification test); estos m&eacute;todos poseen una gran sensibilidad y especificidad, adem&aacute;s de permitir el empleo de muestras obtenidas por procedimientos no invasivos.<sup>7</sup> Una de las pruebas NAAT, la Reacci&oacute;n en Cadena de la Ligasa (LCR, Ligase Chain Reaction) presenta sensibilidades de 94&#150;96.5% y especificidades de 99&#150;100% cuando utiliza muestras de orina.<sup>7</sup> <sup>8</sup> El empleo de muestras cervicales tiene una sensibilidad ligeramente mayor, alrededor de 5%, que al utilizar muestras de orina,<sup>9</sup> sin embargo, las muestras cervicales tienen el inconveniente de ser invasivas, se necesitan aditamentos especiales para colectarla y son molestas; su equivalente en hombres, las muestras uretrales, son poco aceptadas en programas de tamizaje, por lo que las muestras de orina son la mejor opci&oacute;n al tener una sensibilidad similar que las muestras uretrales cuando se emplean NAAT.<sup>10</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, el alto precio de las NAAT ha restringido su uso en los programas de tamizaje.<sup>8,11 </sup>Una opci&oacute;n para abatir costos es la realizaci&oacute;n de mezclas ("pool") de muestras biol&oacute;gicas, este m&eacute;todo se ha empleado para la detecci&oacute;n de anticuerpos contra el VIH, mostrando una alta concordancia entre los sueros individuales que resultaron positivos y las mezclas de 10 sueros donde se encontraban esas muestras.<sup>12</sup> En el mismo sentido, se ha propuesto la utilizaci&oacute;n de mezclas de orina para la detecci&oacute;n de <i>C. trachomatis.<sup>13</sup> </i>El presente trabajo pretende describir y valorar la aplicaci&oacute;n de la estrategia de mezcla de orinas para el diagn&oacute;stico molecular de <i>C. trachomatis </i>en una muestra de j&oacute;venes de poblaci&oacute;n mexicana.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Poblaci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el a&ntilde;o 2003, en el laboratorio de Infecciones de Transmisi&oacute;n Sexual (ITS) del Centro de Investigaciones sobre Enfermedades Infecciosas, se analizaron 1,220 muestras de orina, provenientes de una muestra de adolescentes mexicanos hombres y mujeres entre 15 y 21 a&ntilde;os de edad, que habitaban en &aacute;reas de nivel socioecon&oacute;mico bajo en 204 localidades de entre 2,500 y 50 mil habitantes en 28 entidades federativas, y que fue parte de una encuesta de evaluaci&oacute;n del Programa de Desarrollo Humano Oportunidades.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tama&ntilde;o </b><b>&oacute;ptimo de la mezcla de muestras</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para que la realizaci&oacute;n de la prueba mediante las mezclas resulte m&aacute;s eficiente que las pruebas individuales, el n&uacute;mero total de an&aacute;lisis mediante las mezclas debe ser menor a los que se hubieran necesitado con pruebas individuales. Para ello, es necesario estimar el tama&ntilde;o &oacute;ptimo de la mezcla en t&eacute;rminos de eficiencia, y ajustarlo considerando tambi&eacute;n la diluci&oacute;n m&aacute;xima a la que la prueba puede detectar resultados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para estimar el tama&ntilde;o &oacute;ptimo de la mezcla se utiliz&oacute; la siguiente f&oacute;rmula:<sup>12</sup></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n4/a8s2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En donde CM es el costo por muestra analizada, CP es el costo del reactivo para cada determinaci&oacute;n, TP es el tama&ntilde;o de la mezcla y Prev es la prevalencia esperada. El tama&ntilde;o &oacute;ptimo de la mezcla es el que minimiza el costo por muestra. Esta f&oacute;rmula no incluye el costo adicional de preparar las mezclas debido a que es m&iacute;nimo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el caso del presente documento, se consider&oacute; una prevalencia esperada de entre 5 y 8% (datos no publicados de poblaci&oacute;n femenina Hospital General de Cuernavaca, Mor.) y costo del reactivo <a href="#1">#</a> de $10 dls. El tama&ntilde;o &oacute;ptimo estimado fue de cinco muestras para el l&iacute;mite inferior de prevalencia y cuatro para el l&iacute;mite superior (<a href="#f1">Figura 1</a>), con base en ello se decidi&oacute; el empleo de mezclas con cuatro muestras de orina.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n4/a8f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Prueba de laboratorio</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todas las muestras de orina se mantuvieron a &#150;20 &deg;C hasta su procesamiento. Cada muestra se agit&oacute; durante 30 seg, enseguida se tomaron 250 <i>\&aacute;. </i>El volumen final de 1 mL para procesamiento por LCR seg&aacute;n instrucciones del fabricante (LCx Probe system, Abbott Laboratories), se obtuvo de mezclar las al&iacute;cuotas de cuatro muestras. La prueba de LCx amplifica una secuencia del pl&aacute;smido cr&iacute;ptico de <i>C. trachomatis </i>por medio de la LCR y detecta el ampl&iacute;mero utilizando un sistema fluorescente. Todas las corridas realizadas en el equipo automatizado de detecci&oacute;n (n = 20 mezclas) fueron validadas por los controles internos de la prueba. Cuando esto no fue as&iacute;, se repitieron la totalidad de las corridas correspondientes.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ensayo origina un resultado (S/CO), que es el cociente de la lectura de la muestra (S) dividida por el valor del calibrador (CO), lo que permite determinar muestras positivas (S/CO &gt; 1.0) y aquellas con valores menores se consideran negativas, de acuerdo con las indicaciones del fabricante. Para la mezcla de muestras individuales de orina se ha propuesto una zona gris (ZG) que abarca de 0.2&#150;1.0,<sup>13</sup> por lo que para efectos del presente estudio, las mezclas se clasificaron en negativas, grises y positivas de acuerdo con ese criterio. Las mezclas en ZG y positivas se reanalizaron de manera individual (de cada mezcla, cuatro muestras individuales) para determinar la muestra o muestras positivas, en este segundo an&aacute;lisis se consideraron los valores de corte establecidos por el fabricante.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las 1,220 muestras individuales se obtuvieron 305 mezclas de orina, de las cuales 230 resultaron negativas, 56 mezclas positivas y 19 mezclas en ZG (los valores de S/CO de cada mezcla se encuentran en la <a href="#f2">figura 2</a>). A partir de las mezclas positivas, 41 presentaron una muestra individual positiva, siete tuvieron dos muestras individuales positivas y ocho con las cuatro muestras individuales negativas. De las mezclas en ZG, se identificaron cuatro con una muestra individual positiva y las restantes 15 presentaron muestras individuales negativas, en la <a href="#f2">figura 2</a> se esquematizan los resultados anteriores. El total de muestras individuales positivas fue de 59 y de negativas 1,161, cuatro muestras individuales positivas se detectaron a partir de mezclas en ZG y las restantes a partir de mezclas positivas.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n4/a8f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para las mezclas se emplearon 305 reacciones, para el an&aacute;lisis de muestras individuales se realizaron 300 ensayos (&#91;56 pos + 19 ZG&#93; X 4), por lo que al final se utilizaron 605 pruebas, en lugar de las 1,220 reacciones originales de haberse empleado ensayos individuales desde un inicio, lo que represent&oacute; un ahorro de 50.4%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el <a href="/img/revistas/ric/v57n4/a8c1.jpg" target="_blank">cuadro 1 </a>se presenta una descripci&oacute;n de los adolescentes que proporcionaron las muestras, de los cuales la mayor&iacute;a fueron mujeres. Todos ellos se encontraban aparentemente sanos y en ninguno se registr&oacute; sintomatolog&iacute;a de infecci&oacute;n genital. La edad promedio de los j&oacute;venes fue de 18 a&ntilde;os, y reportaron haber iniciado vida sexual en los dos a&ntilde;os anteriores a la encuesta. La proporci&oacute;n de mujeres fue mayor (78 <i>vs. </i>62%) en el caso del grupo con resultado positivo. Por otra parte, cerca de 6% de los que mencionaron ser sexualmente activos resultaron positivos para <i>C. trachomatis, </i>en tanto que los que dijeron no ser sexualmente activos, poco m&aacute;s de 2% resultaron positivos, la prevalencia general fue de 4.8%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por lo que se refiere a las variaciones en prevalencia, en el <a href="#c2">cuadro 2</a> se presenta el porcentaje de casos positivos encontrados para algunos subgrupos de adolescentes. Las frecuencias m&aacute;s bajas se dan entre los solteros y los casados, en tanto que entre aquellos que viven en uni&oacute;n libre o se han separado se registraron prevalencias superiores (7 y 15%, respectivamente). Asimismo, el porcentaje de positivos entre aquellos que reportaron alg&aacute;n s&iacute;ntoma de ITS fue similar a la prevalencia global, en tanto que para los que reportaron fumar, la frecuencia fue superior (6.3%), finalmente entre aquellos que mencionaron asistir a la escuela, la prevalencia fue menor (3.6%).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ric/v57n4/a8c2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este es el primer estudio en M&eacute;xico que aplica el m&eacute;todo de mezcla de muestras biol&oacute;gicas para el diagn&oacute;stico de <i>C. trachomatis, </i>como una alternativa para ahorrar material y con ello para ampliar el n&uacute;mero de sujetos estudiados. La mezcla de muestras biol&oacute;gicas para <i>C. trachomatis </i>por NAAT ha mostrado tener una alta sensibilidad al compararse con muestras individuales, tal como se observa en el <a href="/img/revistas/ric/v57n4/a8c3.jpg" target="_blank">cuadro 3</a>, donde la sensibilidad var&iacute;a desde 94.2% hasta 100%, dependiendo del n&uacute;mero de muestras por mezcla (4,5, 8, 10) y del tipo de muestra utilizada, cervical u orina. En el presente estudio se detect&oacute; una prevalencia de clamidiasis de 4.8% y se realizaron mezclas de cuatro muestras de orina para el diagn&oacute;stico, de acuerdo con el c&aacute;lculo descrito en material y m&eacute;todos y consistente con lo reportado en la literatura.<sup>13</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mezcla de muestras de orina puede encontrar muestras positivas que no son detectadas con ensayos individuales,<sup>11,16</sup> lo que puede originar una sensibilidad ligeramente mayor.<sup>18</sup> Este aumento en la detecci&oacute;n se debe a que al diluir las muestras individuales en la mezcla, tambi&eacute;n se diluyen los inhibidores potenciales de LCR. Por otra parte, en una misma mezcla de muestras de orina, las muestras individuales negativas pueden tener inhibidores que enmascaren a muestras positivas, sin embargo, tanto la diluci&oacute;n como la baja temperatura a que se mantienen las muestras disminuye considerablemente la posibilidad de inhibici&oacute;n,<sup>19</sup> adem&aacute;s de que la frecuencia de inhibidores de LCR en muestras de orina es baja, s&oacute;lo 3.9% en lo reportado por Mahony<sup>19</sup> y 2.6% en el trabajo de Berg.<sup>20 </sup>En el presente estudio se esperar&iacute;a una baja frecuencia de inhibidores, similar a lo reportado anteriormente, pero para contrarrestar esta potencial fuente de falsos negativos todas las muestras se procesaron diluidas (1:4 en la mezcla de muestras) y se mantuvieron a &#150;20 &deg;C, por lo que se esperar&iacute;a que al menos en 77% de las muestras que tuvieran inhibidores, se contrarrestara su efecto, como se ha reportado.<sup>19</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se detectaron ocho mezclas positivas, que al reana&#150;lizarlas de manera individual dieron resultados negativos, tres de estas mezclas presentaron valores entre 0.8&#150;0.95. Desconocemos si estas muestras presentaban inhibidores a&aacute;n despu&eacute;s del tratamiento a bajas temperaturas, y en dado caso tendr&iacute;amos la presencia de falsos negativos, para lo cual sobre todo en estudios cl&iacute;nicos, se recomienda utilizar otro m&eacute;todo molecular o NAAT, como la Reacci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa (PCR) para confirmar el resultado, o en un momento dado indicarle tratamiento al paciente, el cual no representa mayores complicaciones para eliminar la posible infecci&oacute;n y detener la transmisi&oacute;n en la comunidad. Aunque es necesario aclarar que en la realizaci&oacute;n de pruebas individuales, sin el precedente de la mezcla, estas muestras definitivamente se clasificar&iacute;an como negativas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La creaci&oacute;n de mezclas diluye las muestras, lo que podr&iacute;a impactar en la reactividad del esp&eacute;cimen, por eso se ha propuesto una Zona Gris para solventar la diluci&oacute;n de la muestra. La LCR ha demostrado que su alta sensibilidad y especificidad no se afectan con mezclas de hasta 10 muestras individuales cuando se considera una ZG de 0.2&#150;1.0, en lugar de lo recomendado por el fabricante (S/CO <u>&gt;</u> 1.0).<sup>13</sup> Al analizar en nuestro estudio las mezclas de ZG, 78.9% (15/19) presentaron muestras individuales negativas, sin embargo, cuatro muestras positivas se detectaron a partir de reanalizar estas mezclas, por lo que nuestros resultados apoyan la utilidad de emplear una ZG al usar el m&eacute;todo de mezcla de muestras de orina.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para ilustrar el efecto de la variaci&oacute;n del intervalo de la ZG con respecto a nuestros hallazgos, se podr&iacute;a considerar un primer escenario te&oacute;rico con una ZG de 0.4&#150;1, en lugar de la propuesta inicial de 0.2&#150;1; en este ejercicio, 236 mezclas se clasificar&iacute;an como negativas, 56 mezclas positivas y 13 mezclas en ZG, se emplear&iacute;an 305 reacciones para mezclas y 276 reacciones para muestras individuales. En un segundo escenario te&oacute;rico con una ZG de 0.6&#150;1, se clasificar&iacute;an 242 mezclas como negativas, 56 positivas y siete en ZG, utiliz&aacute;ndose 305 reacciones para mezclas y 252 reacciones para muestras individuales, pero en este segundo caso te&oacute;rico se perder&iacute;a una muestra positiva proveniente de una mezcla que pas&oacute; de ZG a negativa. En el <a href="/img/revistas/ric/v57n4/a8c4.jpg" target="_blank">cuadro 4</a> se presenta el ahorro de reactivos y un resumen de ambos escenarios te&oacute;ricos y del escenario real.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La utilizaci&oacute;n de una ZG de 0.2&#150;1.0 detect&oacute; muestras individuales positivas, pero al disminuir la ZG (0.4&#150;1.0) se tendr&iacute;a la misma sensibilidad, con un ligero aumento en el ahorro de tiempo, material y reactivos. La utilizaci&oacute;n de un valor de ZG de 0.6&#150;1.0 conlleva a un mayor ahorro de reactivos, pero con una menor sensibilidad de la prueba de laboratorio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio, la detecci&oacute;n de <i>C. trachomatis </i>que emple&oacute; mezclas de cuatro muestras individuales de orina, demostr&oacute; un ahorro de 50.4% de reactivos, adem&aacute;s, la utilizaci&oacute;n de una ZG de 0.2&#150;1 aument&oacute; la detecci&oacute;n de muestras positivas. La posibilidad de cambiar el l&iacute;mite inferior de la ZG a 0.4 e inclusive a 0.6 necesita de estudios posteriores, pero la decisi&oacute;n de reanalizar de manera separada las muestras individuales de dichas mezclas, puede estar en funci&oacute;n del n&uacute;mero de mezclas en zona gris, de la cantidad de reactivos que se disponga y tambi&eacute;n del tipo de estudio que se est&eacute; realizando, cl&iacute;nico <i>vs. </i>epidemiol&oacute;gico.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto al abordaje epidemiol&oacute;gico, es de se&ntilde;alarse que la frecuencia de infecci&oacute;n por <i>C. trachomatis </i>en la poblaci&oacute;n joven estudiada (4.8%), es menor a la reportada en mujeres que asisten a cl&iacute;nicas ginecol&oacute;gicas de la frontera norte de M&eacute;xico (9.7%) y en trabajadoras sexuales de la frontera sur del pa&iacute;s (14.4%), ambos estudios emplearon m&eacute;todos de detecci&oacute;n de DNA, pero sin amplificaci&oacute;n del material gen&eacute;tico.<sup>21,22 </sup>Algunos otros estudios en trabajadoras sexuales mexicanas, que emplearon otras t&eacute;cnicas diagn&oacute;sticas como el cultivo celular y la prueba de ELISA directa, han encontrado prevalencias de 11.1 y 12.5%, respectivamente.<sup>23,24</sup> Es interesante notar que entre algunos subgrupos de la poblaci&oacute;n estudiada las prevalencias alcanzan valores cercanos a los reportados para poblaciones con mayor experiencia sexual. En particular llama la atenci&oacute;n la diferencia en prevalencia entre quienes reportaron estar casado (a) s y los que viven en uni&oacute;n libre. <i>C. trachomatis </i>es un agente de ITS presente desde temprana edad en j&oacute;venes mexicanos de uno u otro sexo, dato que no se hab&iacute;a corroborado anteriormente en poblaci&oacute;n mexicana considerada de bajo riesgo, sino hasta el presente reporte, donde tambi&eacute;n por primera vez se utiliz&oacute; un m&eacute;todo NAAT. Esta infecci&oacute;n es generalmente asintom&aacute;tica, tanto en mujeres como en hombres,<sup>4,5</sup>dato que se corrobor&oacute; en el actual trabajo, debido a que ninguno de los participantes infectados reportaron s&iacute;ntomas. Las mujeres j&oacute;venes, como las de nuestro estudio, de acuerdo con la literatura tienen un mayor riesgo de infecci&oacute;n debido a que <i>C. trachomatis </i>tiene preferencia por infectar c&eacute;lulas del epitelio endocervical inmaduras, dichas c&eacute;lulas se encuentran presentes en adolescentes y adultos j&oacute;venes.<sup>25</sup> Por otra parte, el inicio temprano de actividad sexual, 15.8 a&ntilde;os en promedio en los adolescentes de nuestra muestra, se ha asociado con comportamientos sexuales de riesgo, como relaciones con m&aacute;ltiples parejas sexuales, lo que indicar&iacute;a una mayor exposici&oacute;n a adquirir alguna ITS, como <i>C. trachomatis.</i><sup>26</sup> Asimismo, se observ&oacute; una mayor prevalencia entre los que reportaron fumar y una menor entre los que asisten a la escuela, lo que estar&iacute;a sugiriendo una concentraci&oacute;n de comportamientos de riesgo en esos subgrupos, sin que los hechos de fumar o de contar con menor escolaridad por s&iacute; mismos coadyuven a la transmisi&oacute;n de <i>C. trachomatis. </i>Un an&aacute;lisis m&aacute;s detallado y con un mayor tama&ntilde;o de muestra en relaci&oacute;n con la clamidiasis en esta poblaci&oacute;n, ser&aacute; parte de otra comunicaci&oacute;n en la que se definir&aacute;n con precisi&oacute;n los factores asociados a esta infecci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finalmente, los resultados que se presentan en este trabajo en relaci&oacute;n con su objetivo central demuestran que es posible reducir de forma importante los costos de an&aacute;lisis de orina para el diagn&oacute;stico molecular de <i>C. trachomatis, </i>lo cual puede favorecer su detecci&oacute;n y tratamiento oportuno, adem&aacute;s de ofrecer la posibilidad de que esta prueba sea considerada dentro de un esquema de vigilancia de ITS que sea sostenible, el cual detecte casos que de manera rutinaria no se encontrar&iacute;an para ayudar a detener la transmisi&oacute;n y diseminaci&oacute;n de esta ITS.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores manifiestan su agradecimiento al Programa de Desarrollo Humano Oportunidades, que financi&oacute; tanto la recolecci&oacute;n de las muestras como su an&aacute;lisis en el marco de las actividades de evaluaci&oacute;n del Programa. Asimismo, queremos agradecer al Dr. Gustavo Ola&iacute;z y su equipo del Centro de Encuestas del INSP por el trabajo realizado para la recolecci&oacute;n de las muestras de orina en los hogares.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finalmente, nuestro agradecimiento a Abbott Laboratories de M&eacute;xico, S.A. de C.V., por los precios preferenciales que permitieron el uso de sus productos, para el an&aacute;lisis de las muestras.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Schachter J. Biology of <i>Chlamydia trachomatis. </i>In: Holmes KK, Sparling PF, Mardh PA, Lemon SM, Stamm WE, Piot P, Wasser&#150;heit JN (Eds.). Sexually Transmitted Diseases. 3rd. edition. USA: Mc Graw Hill press; 1999, p. 391&#150;406.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763527&pid=S0034-8376200500040000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Research on Reproductive Health at WHO: biennial report 2000&#150;2001.  Chapter 3: Preventing reproductive tract infection, 31&#150;36. World Health Organization 2002.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763528&pid=S0034-8376200500040000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Laga M, Manoka A, Kivuvu M, Malele B, Tuliza M, Nzila N, Goeman J, Behets F, Batter V, Alary M, Heyward WL, Ryder RW, Piot P. Non&#150;ulcerative sexually transmitted diseases as risk factors for HIV&#150;1 transmission in women: results from a cohort study. <i>AIDS </i>1993; 7: 95&#150;102.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763529&pid=S0034-8376200500040000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Gaydos EA, Howell MR, Pare B, et al. <i>Chlamydia trachomatis </i>infections in female military recruits. <i>N Engl J Med </i>1998; 339: 739&#150;44.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763530&pid=S0034-8376200500040000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Zelin JM, Robinson AJ, Ridgway GL, Allason&#150;Jones E, Williams P.  Chlamydial urethritis  in heterosexual men attending a genitourinary medicine clinic: prevalence, symptoms, condom usage and partner change. <i>Int J STD AIDS </i>1995; 6: 27&#150;30.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763531&pid=S0034-8376200500040000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Institute   of   Medicine.    The   hidden   epidemic   &#150;   confronting sexually transmitted diseases.  Washington DC: National Academy Press; 1992, p. 28&#150;68.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763532&pid=S0034-8376200500040000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Watson EJ, Templeton A, Russell I, Paavonen J, Mardh P, Stary A,  Stray Pederson B.  The  accuracy and efficacy of screening tests for <i>Chlamydia trachomatis: </i>a systematic review. <i>J Med Microbiol </i>2002;  51:   1021&#150;31.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763533&pid=S0034-8376200500040000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Black CM.   Current methods  of laboratory  diagnosis  of <i>Chlamydia trachomatis </i>infections. <i>Clin Microbiol Rev </i>1997; 10: 160<b>&#150;</b>84.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763534&pid=S0034-8376200500040000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Black CM, Marrazzo J, Johnson RE, et al. Head&#150;to&#150;Head Multi&#150;center comparison of DNA probe and nucleic acid amplification test for <i>Chlamydia trachomatis  </i>infection  in women performed with  an  improved  reference  standard.  <i>J Clin Microbiol  </i>2002; 40:   3757&#150;63.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763535&pid=S0034-8376200500040000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Center for Disease Control and Prevention. Screening test to detect <i>Chlamydia trachomatis </i>and <i>Neisseria gonorrhoeae </i>infections&#150;2002. <i>MMWR Recommendations  and Reports  </i>2002<b>;   </b>51:   1<b>&#150;</b>27.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763536&pid=S0034-8376200500040000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Krepel J, Patel J,  Sproston A, Hopkins F, Jang D, Mahony J, Chernesky M. The impact on accuracy and cost of Ligase Chain Reaction Testing by Pooling Urine Specimens for the Diagnosis of <i>Chlamydia trachomatis </i>infections. <i>Sex Transm Dis </i>1999; 26: 504&#150;7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763537&pid=S0034-8376200500040000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Behets F, Bertozzi S, Kasali M, Kashamuka M, Atikala L, Brown C, Ryder RW, Quinn TC. Successful use of pooled sera to determine HIV&#150;1  seroprevalence in Zaire with development of cost&#150;efficiency models. <i>AIDS </i>1990; 4: 737&#150;41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763538&pid=S0034-8376200500040000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Kacena KA, Quinn SB, Howell MR, Madico GE, Quinn TC, Gaydos  ChA.  Pooling Urine  Samples  for Ligase  Chain  Reaction Screening    for    Genital <i>Chlamydia   trachomatis    </i>Infection    in Asymptomatic Women. <i>J Clin Microbiol </i>1998; 36(2): 481&#150;5.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763539&pid=S0034-8376200500040000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Lisby G, Scheibel J, Abrahamsson LO, Christensen ES, Paloheimo   S.   Detection  of <i>Chlamydia  trachomatis  </i>in  individual  and pooled endocervical and urethral scrapes by a commercial available polymerase chain reaction. <i>APMIS </i>1994;  102: 797&#150;800.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763540&pid=S0034-8376200500040000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Morr&eacute; SA, Meijer CJJLM, Munk C, Kr&uuml;ger&#150;Kjaer S, Winther JF, Jorgensens HO, Van Den Brule AJC. Pooling of urine specimens for detection for Asymptomatic <i>Chlamydia trachomatis </i>Infections by PCR in a Low&#150;Prevalence Population: Cost&#150;Saving Strategy for Epidemiological Studies and Screening Programs. <i>J Clin Microbiol </i>2000; 38:   1679&#150;80.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763541&pid=S0034-8376200500040000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Kapala J, Copes D, Sproston A, Patel J, Jang D, Petrich A, Mahony J, Biers K, Chernesky. Pooling Cervical Swabs and Testing by Ligase Chain Reaction are Accurate and Cost&#150;Saving Strategies for Diagnosis of <i>Chlamydia trachomatis. J Clin Microbiol </i>2000;  38:  2480&#150;3.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763542&pid=S0034-8376200500040000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Peeling RW, Toye B, Jessamine P, Gemmill I. Pooling of urine specimens for PCR testing: a cost saving strategy for <i>Chlamydia trachomatis </i>control programmes. <i>Sex Transm Infect </i>2001; 77: 76&#150;7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763543&pid=S0034-8376200500040000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Clark AM, Steece R, Crouse K, Campbell J, Zanto S, Kartchner D, Mottice, Pettit D. Multisite Pooling Study Using Ligase Chain Reaction in Screening for Genital <i>Chlamydia trachomatis </i>infections. <i>Sex Transm Dis </i>2001; 28: 565&#150;8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763544&pid=S0034-8376200500040000800018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Mahony J, Chong S, Jang D, et al. Urine specimens from pregnant   and   nonpregnant   women   inhibitory   to   amplification   of <i>Chlamydia trachomatis </i>nucleic acid by PCR, ligase chain reaction,  and transcription&#150;mediated  amplification:   identification  of urinary substances associated with inhibition and removal of inhibitory activity. <i>J Clin Microbiol </i>1998; 36: 3122&#150;6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763545&pid=S0034-8376200500040000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Berg ES, Anestad G, Moi H, Storvold G, Skaug K. False&#150;negative results of a ligase chain reaction assay to detect <i>Chlamydia trachomatis </i>due to inhibitor in urine. <i>Eur J Clin Microbiol Infect Dis </i>1997;  16: 727&#150;31.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763546&pid=S0034-8376200500040000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Giuliano AR, Denman C, Guernsey de Zapien J, et al.  Design and  results   of the  USA&#150;Mexico  border  human  papillomavirus (HPV),   cervical   dysplasia,   and <i>Chlamydia   trachomatis   </i>study. <i>Rev Panam Salud P&uacute;blica </i>2001; 9:  172&#150;81.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763547&pid=S0034-8376200500040000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Uribe&#150;Salas F, Conde&#150;Glez CJ, Ju&aacute;rez&#150;Figueroa L, et al. Sociodemographic  dynamics  and  sexually transmitted infections  in female   sex   workers   at   the   Mexican&#150;Guatemalan   border.   <i>Sex Transm Dis </i>2003; 30: 266&#150;71.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763548&pid=S0034-8376200500040000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Uribe&#150;Salas F, Hern&aacute;ndez&#150;Avila M, Conde&#150;Glez CJ, et al.  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Prevalence of <i>Chlamydia trachomatis </i>infection in registered female sex workers in northern Mexico. <i>Sex Transm Dis </i>2003; 30:   195&#150;8.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6763550&pid=S0034-8376200500040000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Stamm   WE. <i>Chlamydia   trachomatis   </i>infection   of  the   adult. Chapter   29.   In   Sexually   Transmitted   Diseases,   Holmes   KK, Sparling PF, Mardh PA, et al. Editors. Third edition. 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En la actualidad la &aacute;nica prueba NAAT para clamidia disponible en el mercado nacional es AMPLICOR&#150;CT de laboratorios ROCHE, con un costo aproximado por prueba de $15 dls.</font></p>      ]]></body><back>
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