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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias agrícolas]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Secuencias nucleotídicas de la región ITS en familias S1 y PL de maíces poliembriónicos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Polyembryony (PEm) is a rare mutation in maize (Zea mays L.) and is manifested in the formation and development of two or more plants per seed. The mechanisms and causes of PEm are not yet defined. The aim of this study was to determine the similarity of the sequence of the ITS region of mother plants and their progeny PEm obtained by self-fertilization (S1) and open-pollinated (PL). The progeny was obtained from the UA-IMM-BAP (brachitic, high polyembryony) population. Leaf tissue samples of mothers and their progenies from 3 open-pollinated families and 3 families from S1 lines were taken. After extracting DNA, the genomic regions ITS (Internal Transcribed Spacer) were amplified by PCR and the amplified fragments were subsequently sequenced. Comparisons of ITS sequences within each family showed some similarity but were not identical in PL2, PL4, PL5 and S5 families. However, in S3 and S7 families the comparison between the sequence of mother and its progeny (S3m vs S3P22 and S7M vs S7P22) presented 100% similarity. The similarity found between ITS sequences of mother plants and PEm descendants suggest a probable relationship between polyembryony and apomixis.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Secuencias nucleot&iacute;dicas de la regi&oacute;n ITS en familias S<sub>1</sub> y PL de ma&iacute;ces poliembri&oacute;nicos*</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Nucleotide sequences of ITS region in S<sub>1</sub> and PL families of polyembryonic maize</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Marselino Avenda&ntilde;o&#45;Sanchez<sup>1</sup>, Jos&eacute; Espinoza&#45;Vel&aacute;zquez<sup>1</sup>, Alondra Guti&eacute;rrez&#45;L&oacute;pez<sup>1</sup>, Adriana Carolina Flores&#45;Gallegos<sup>2</sup> y Ra&uacute;l Rodr&iacute;guez&#45;Herrera<sup>2&#167;</sup></b><sup></sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Universidad Aut&oacute;noma Agraria Antonio Narro&#45;Departamento de Fitomejoramiento. Blvd. Antonio Narro 1923, Buenavista Saltillo M&eacute;xico.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Universidad Aut&oacute;noma de Coahuila&#45;Departamento de Investigaci&oacute;n en Alimentos, Facultad de Ciencias Qu&iacute;micas. Blvd. V. Carranza e Ing. Jos&eacute; C&aacute;rdenas V. s/n. Col. Rep&uacute;blica Ote. C. P. 25280. Saltillo, Coahuila, M&eacute;xico. Tel: 52 844 4161238, 4169213.</i> <sup>&#167;</sup>Autor para correspondencia: <a href="mailto:rrh961@hotmail.com">rrh961@hotmail.com</a>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: septiembre de 2014    <br> 	Aceptado: febrero de 2015</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Poliembrion&iacute;a (PEm) es una mutaci&oacute;n poco frecuente en ma&iacute;z (<i>Zea mays</i> L.) y se manifiesta en la formaci&oacute;n y desarrollo de dos o m&aacute;s plantas por semilla. Los mecanismos y causas de la PEm no est&aacute;n a&uacute;n definidos. El objetivo del presente trabajo fue determinar la similitud de la secuencia de la regi&oacute;n ITS de plantas madre y su progenie PEm obtenidas por autofecundaci&oacute;n (S<sub>1</sub>) y polinizaci&oacute;n libre (PL). La progenie se obtuvo a partir de la poblaci&oacute;n UA&#45;IMM&#45;BAP (braqu&iacute;ticas, alta poliembrion&iacute;a). Se tomaron muestras de tejido foliar de madres y sus progenies de 3 familias de polinizaci&oacute;n libre y 3 familias de l&iacute;neas S<sub>1</sub>. Despu&eacute;s de extraer ADN, se amplificaron las regiones gen&oacute;micas ITS (Internal Transcribed Spacer) mediante PCR y posteriormente se secuenci&oacute; los fragmentos amplificados. La comparaci&oacute;n de las secuencias ITS dentro de cada familia mostro cierta similitud, pero no fueron id&eacute;nticas en las familias PL2, PL4, PL5 y S5. Sin embargo, en las familias S3 y S7 la comparaci&oacute;n entre la secuencia de la madre y su descendencia (S3m vs S3P22 y S7m vs S7P22) present&oacute; 100 % de similitud. La similitud encontrada entre las secuencias de ITS de plantas madre y descendientes PEm sugieren una probable relaci&oacute;n entre la poliembrion&iacute;a y apomixis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Zea mays</i> L., diversidad nucleot&iacute;dica, ITS, l&iacute;neas S<sub>1</sub>, polinizaci&oacute;n libre, similitud.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Polyembryony (PEm) is a rare mutation in maize (<i>Zea mays</i> L.) and is manifested in the formation and development of two or more plants per seed. The mechanisms and causes of PEm are not yet defined. The aim of this study was to determine the similarity of the sequence of the ITS region of mother plants and their progeny PEm obtained by self&#45;fertilization (S<sub>1</sub>) and open&#45;pollinated (PL). The progeny was obtained from the UA&#45;IMM&#45;BAP (brachitic, high polyembryony) population. Leaf tissue samples of mothers and their progenies from 3 open&#45;pollinated families and 3 families from S<sub>1</sub> lines were taken. After extracting DNA, the genomic regions ITS (Internal Transcribed Spacer) were amplified by PCR and the amplified fragments were subsequently sequenced. Comparisons of ITS sequences within each family showed some similarity but were not identical in PL2, PL4, PL5 and S5 families. However, in S3 and S7 families the comparison between the sequence of mother and its progeny (S3m vs S3P22 and S7M vs S7P22) presented 100% similarity. The similarity found between ITS sequences of mother plants and PEm descendants suggest a probable relationship between polyembryony and apomixis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i>Zea mays</i> L., ITS, nucleotide diversity, open pollinated, S<sub>1</sub> lines, similarity.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La poliembrion&iacute;a (PEm) es una variante gen&eacute;tica en ma&iacute;z, que se refiere a la producci&oacute;n de dos o m&aacute;s pl&aacute;ntulas por semilla, emergiendo simult&aacute;neamente desde el momento de la germinaci&oacute;n (Espinoza <i>et al</i>., 1998). La PEm se ha reportado como una mutaci&oacute;n natural que aparece espor&aacute;dicamente en baja frecuencia (Castro, 1979; Pilu, 2000), aunque tambi&eacute;n se ha reportado como mutaci&oacute;n inducida (Morgan y Rappleye, 1951). El ma&iacute;z poliembri&oacute;nico presenta caracter&iacute;sticas de alto potencial agron&oacute;mico, como son alta calidad proteica (15 a 20% m&aacute;s lisina) y mayor cantidad de grasa cruda en el grano (de 30 a 50%) que la encontrada en ma&iacute;z com&uacute;n (Gonz&aacute;lez <i>et al</i>., 2011). Adem&aacute;s, su capacidad de semilla prol&iacute;fica produce una mayor cantidad de materia seca por semilla de siembra (Castro, 1979). Estos atributos hacen que este fen&oacute;meno haya sido estudiado por diferentes investigadores(as) en los &uacute;ltimos 100 a&ntilde;os (Kempton, 1913; Weatherwax, 1921; Kiesselbach, 1926, Randolph, 1936; Skovested, 1939; Morgan y Rappleye, 1951; Kermicle, 1969, 1971; Pesev <i>et al</i>, 1976; Castro, 1979; Rebolloza <i>et al</i>., 2011; Espinoza <i>et al</i>., 2012).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha propuesto que los embriones adicionales en la semilla pueden resultar de la diferenciaci&oacute;n y desarrollo de varios tejidos maternos que est&aacute;n asociados al saco embrionario. Bhojwani y Bhatnagar (1974) indican que la poliembrion&iacute;a puede surgir en angiospermas por diferentes mecanismos: 1) mediante la formaci&oacute;n de gemelos o tripletes a partir de una c&eacute;lula huevo pro&#45;embrionaria (cleavage); 2) por la formaci&oacute;n de embriones a partir de c&eacute;lulas del saco embrionario diferentes a la ovoc&eacute;lula; 3) por el desarrollo de m&aacute;s de un saco embrionario dentro del mismo &oacute;vulo derivado de la misma c&eacute;lula madre de la megaespora o de c&eacute;lulas de la nucela; y 4) por la activaci&oacute;n de una c&eacute;lula som&aacute;tica o esporof&iacute;tica del &oacute;vulo para formar un embri&oacute;n, en forma natural. Tambi&eacute;n, en forma artificial, se puede inducir con la fitohormona 2&#45;4&#45;D en sacos embrionarios 2 d&iacute;as despu&eacute;s de la polinizaci&oacute;n (Erdelska y Vidovencova, 1992; Erdelska, 1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sin embargo, a la fecha a&uacute;n existen lagunas en el conocimiento de la PE por lo que se han propuesto diferentes mecanismos gen&eacute;ticos que controlan la PE en ma&iacute;z: desde herencia por un gen mendeliano, la interacci&oacute;n de dos genes y control gen&eacute;tico de tipo cuantitativo. Investigaciones iniciales en el Instituto Mexicano del Ma&iacute;z "Dr. Mario E. Castro Gil" (IMM) de la Universidad Aut&oacute;noma Agraria "Antonio Narro" se propuso que la PE se heredaba de manera cuantitativa (heredabilidad de 0.65; Castro, 1979; Espinoza <i>et al</i>., 1998). La primera vez que se observaron ma&iacute;ces PE en poblaciones del IMM&#45;UAAAN fue en una poblaci&oacute;n denominada SSE, base de los ma&iacute;ces s&uacute;per&#45;enanos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Originalmente, la condici&oacute;n de plantas gemelas se present&oacute; en frecuencias de 1 a 2% (Castro, 1979). A partir de esas plantas, en este Instituto se generaron dos poblaciones PE que en la actualidad presentan frecuencias de 55 a 65% del mutante. Estas poblaciones de ma&iacute;z fueron denominadas: UA&#45;IMM&#45;BAP (braqu&iacute;tica de alta frecuencia poliembri&oacute;nica) y UA&#45;IMM&#45;NAP (porte normal de alta frecuencia poliembrion&iacute;a). Conviene se&ntilde;alar que estas dos poblaciones ser&aacute;n referidas en lo sucesivo como BAP y NAP. Estudios posteriores sobre la herencia de la poliembrion&iacute;a en estas poblaciones han permitido determinar y validar un modelo de herencia cualitativa, controlada por dos <i>loci</i> en interacci&oacute;n g&eacute;nica epist&aacute;tica recesiva duplicada del tipo 15:1 en segregaci&oacute;n F<sub>2</sub> y de 12:4 en CP, cruza de prueba, presentando adem&aacute;s el fen&oacute;meno de penetrancia incompleta (PI), por lo que el car&aacute;cter se expresa generalmente de 30 a 70%, aunque es posible que en determinadas combinaciones h&iacute;bridas entre genotipos PE de BAP y NAP con materiales ex&oacute;ticos, las progenies F2 y CP muestren 100% de poliembrion&iacute;a en la proporci&oacute;n esperada de 1/16 o 4/16, respectivamente (Rebolloza <i>et al</i>., 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otros fen&oacute;menos reproductivos tambi&eacute;n se han asociado a la poliembrion&iacute;a. Webber (1940) se&ntilde;alo que muchos casos de formaci&oacute;n de c&eacute;lulas adventicias en angiosperma se refieren realmente a la apomixis y que es muy probable que la PE y la apomixis puedan estar interconectadas. Espinoza y De Le&oacute;n (2005) reportaron que con base en el historial poliembri&oacute;nico y poliploide de las poblaciones de ma&iacute;z BAP y NAP, adem&aacute;s de los trabajos preliminares sobre la conducta reproductiva at&iacute;pica en ma&iacute;z, se puede plantear que estas poblaciones pudieran contener la capacidad de manifestar reproducci&oacute;n asexual por semilla (apomixis). La introducci&oacute;n de la caracter&iacute;stica apomixis en ma&iacute;z se ha intentado mediante retrocruzas convencionales usando como fuente de este fen&oacute;meno reproductivo a especies del g&eacute;nero <i>Tripsacum</i> y se ha podido generar semillas viables de esta hibridaci&oacute;n intergen&eacute;rica. Algunas semillas se produjeron de manera apom&iacute;ctica cuando fueron polinizadas utilizando ma&iacute;z com&uacute;n (Leblanc <i>et al</i>., 1996), lo que sugiere que la fuente de polen tambi&eacute;n puede estar relacionada con apomixis y quiz&aacute;s con PE.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, el rDNA (&aacute;cido desoxirribonucleico ribos&oacute;mico) nuclear tiene muchas copias, que se repiten en t&aacute;ndem; se trata de un sistema complejo que incluye los genes 18S, 28S, 5S y 5.8S. Las secuencias de estos genes est&aacute;n separadas por espaciadores internos ITS (Internal Transcribed Spacer). Estas regiones son f&aacute;ciles de amplificar y alinear, tienen una alta tasa de mutaci&oacute;n, y son relativamente peque&ntilde;as (Baldwin <i>et al</i>., 1995), por lo que son de gran inter&eacute;s en el estudio de identificaci&oacute;n y tipificaci&oacute;n de especies (Rogers y Bendich, 1987). Adem&aacute;s, el an&aacute;lisis de la secuencia de los ITS ha probado ser &uacute;til para establecer relaciones filogen&eacute;ticas en familias de plantas tales como las Poaceae (Hsiao <i>et</i> <i>al</i>., 1995). En el presente trabajo se compararon las secuencias nucleot&iacute;dicas de la regi&oacute;n ITS en familias S<sub>1</sub> y PL de la poblaci&oacute;n BAP, desarrollada por el IMM&#45;UAAAN con la finalidad de establecer la relaci&oacute;n de identidad que existe entre los individuos de cada familia.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Material gen&eacute;tico. Dentro de la poblaci&oacute;n BAP se realizaron 50 autofecundaciones con el fin de seleccionar las mazorcas m&aacute;s sanas y con mayor n&uacute;mero de granos para obtener as&iacute; un total de 20 progenies S<sub>1</sub>. Adem&aacute;s, en la misma poblaci&oacute;n, se dejaron 50 plantas a polinizaci&oacute;n abierta, y se seleccionaron las mazorcas de la forma antes descrita para obtener un total de 20 familias de polinizaci&oacute;n libre (PL). Las familias S<sub>1</sub> y PL fueron obtenidas bajo condiciones de campo en el ciclo primavera&#45;verano 2010 en Buenavista, Saltillo, Coahuila, M&eacute;xico &#91;25&#176; 21&#8217; latitud norte, 101&#176; 02&#8217; longitud oeste, 1 756 msnm (CETENAL, 1975)&#93;. De las plantas adultas poliembri&oacute;nicas en plena floraci&oacute;n que fueron seleccionadas en el campo para generar a las familias S<sub>1</sub> y PL, se colect&oacute; muestras de tejido de la l&aacute;mina foliar, las cuales fueron etiquetadas de forma individual. El material vegetal se almacen&oacute; a &#45;50 &#176;C para la posterior extracci&oacute;n de ADN.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Evaluaci&oacute;n en invernadero. Las semillas de las familias S<sub>1</sub> y PL se sembraron bajo condiciones de invernadero y fueron evaluadas a los 15 d&iacute;as de la siembra por su porcentaje de germinaci&oacute;n, porcentaje de pl&aacute;ntulas anormales y frecuencia de la poliembrion&iacute;a. Cada familia fue representada por 20 semillas, con dos repeticiones, sembradas en charolas de germinaci&oacute;n. El experimento se estableci&oacute; bajo un dise&ntilde;o completamente al azar con dos repeticiones. A los 15 d&iacute;as se recolect&oacute; tejido de la l&aacute;mina foliar de las progenies (plantas individuales y poliembri&oacute;nicas), tanto de las S<sub>1</sub> como de PL. Las muestras de tejido fueron etiquetadas de forma individual. Debido a que a la fecha no se tienen l&iacute;neas de ma&iacute;z que presenten poliembrion&iacute;a en 100% de los granos, una semilla puede producir solo una planta (cuando no se expresa la PE), o bien dos, tres o m&aacute;s plantas por semilla (cuando se expresa la PE); por lo tanto, en el muestreo de cada familia se colect&oacute; tejido vegetal de plantas individuales (provenientes de una sola semilla, y fueron etiquetadas como P1) y de dos plantas, provenientes de una semilla, etiquetando cada planta de forma individual, por ejemplo P2&#45;1 y P2&#45;2 (<a href="#f1">Figura 1</a>). Las muestras de tejido vegetal fueron colocadas en bolsas con cierre herm&eacute;tico y despu&eacute;s almacenadas en congelaci&oacute;n (&#45;50 &#176;C) para realizar posteriormente la extracci&oacute;n de ADN.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v6n3/a6f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Extracci&oacute;n del ADN. Del tejido vegetal congelado tanto de la planta madre como de su descendencia (plantas individuales y poliembri&oacute;nicas), de las familias S<sub>1</sub> y PL, se extrajo ADN seg&uacute;n el protocolo propuesto por Ausubel <i>et al.</i> (1992), con algunas modificaciones. Se pesaron aproximadamente 0.1 g del material vegetal los cuales fueron colocados en nitr&oacute;geno l&iacute;quido. Posteriormente, el material fue macerado hasta obtener un polvo fino, que fue transferido a un tubo de 1.5 ml; aqu&iacute;, se agreg&oacute; 1 ml de buffer de extracci&oacute;n CTAB &#91;1.4 M NaCl (SIGMA&#45;ALDRICH St Louis MO, USA), 100 mM Tris&#45;HCl (SIGMA&#45;ALDRICH St Louis MO, USA) pH= 8, 20 mM EDTA (SIGMA&#45;ALDRICH St Louis MO, USA), 18.2 M CTAB&#93;, y 20 &#181;l de alb&uacute;mina s&eacute;rica bovina (SIGMA&#45;ALDRICH St Louis MO, USA) al 20%.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se mezcl&oacute; ligeramente en vortex y se incub&oacute; a ba&ntilde;o mar&iacute;a a 55&#176; C durante 20 min. Despu&eacute;s de esto, se centrifug&oacute; a 10 625 x g por 5 min y se tomaron 600 &#181;l del sobrenadante a los cuales se le agreg&oacute; un volumen de cloroformo: alcohol isoam&iacute;lico (24:1) (SIGMA&#45;ALDRICH St Louis MO, USA). Se mezcl&oacute; por inversiones suaves durante 1&#45;2 min y se centrifug&oacute; por 10 min a 10 625 x g para recuperar la fase acuosa a la cual se le agregaron 50 &#181;l de acetato de amonio 7.5 M (SIGMA&#45;ALDRICH St Louis MO, USA) y 800 &#181;l de etanol (SIGMA&#45;ALDRICH St Louis MO, USA) fr&iacute;o al 96%. Se mezcl&oacute; por inversiones suaves y se coloc&oacute; en un congelador por 60 min para llevar a cabo la precipitaci&oacute;n del ADN. Posteriormente, se centrifugo a 10 625 x g por 5 min y se descart&oacute; el sobrenadante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La pastilla obtenida fue lavada dos veces con etanol (SIGMA&#45;ALDRICH St Louis MO, USA) al 70% y finalmente se resuspendi&oacute; en 80 &#181;l de NaOH (SIGMA&#45;ALDRICH St Louis MO, USA) 8 Mm y se almacen&oacute; a &#45;20 &#176;C. La integridad del ADN extra&iacute;do fue evaluada mediante electroforesis en un gel de agarosa al 1% (p/v) en buffer SB (Borato de Sodio 5 mM) por 30 min a 90 V y visualizada bajo luz ultravioleta por tinci&oacute;n con bromuro de etidio (0.5 &#181;g<sup>&#45;1</sup>ml). La calidad del ADN extra&iacute;do se estim&oacute; mediante la relaci&oacute;n de las absorbancias a 260 y 280 nm le&iacute;das en un espectrofot&oacute;metro Epoch&#8482; (Bio&#45;Tek) y se cuantific&oacute; mediante la lectura a 320 nm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Amplificaci&oacute;n y secuenciaci&oacute;n de ITS. Para la amplificaci&oacute;n de la regi&oacute;n ITS (Internal Transcribed Spacer) se emplearon los iniciadores N18L (5&#8217;&#45; AAGTCGTAACAAGGTTTCCGTAGGTG&#45;&#8216;3) (Elden&auml;s <i>et al</i>., 1998) y C26 A (5&#8217;&#45;GTTTCTTTTCCTCCGCT&#45;3&#8217;) (Oliveira <i>et al.</i>, 2007). La amplificaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en un volumen de 25 &#181;l que conten&iacute;a: Buffer 1X (Invitrogen, Carlsbad CA), 2 mM MgCl<sub>2</sub> (Invitrogen, Carlsbad CA a), 50 &#181;M dNTPs (Invitrogen, Carlsbad CA.), 0.8 pmol de iniciador N18L y 0.8 pmol de iniciador C26 A, 2.5 U de <i>Taq</i> Platinum (Bioline, London UK); el volumen de ADN se ajust&oacute; para alcanzar una concentraci&oacute;n de 100 ng. La reacci&oacute;n de amplificaci&oacute;n (PCR) se llev&oacute; a cabo en un termociclador P x 2 Thermal cycler<sup>&#174;</sup> con un paso inicial de desnaturalizaci&oacute;n a 95 &#176;C por 5 min, seguido de 35 ciclos (desnaturalizaci&oacute;n a 94 &#176;C por 1 min, alineamiento a 50.3 &#176;C por 1 min y extensi&oacute;n a 72 &#176;C por 1 min), y por ultimo una extensi&oacute;n final a 72 &#176;C por 5 min.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los productos de PCR fueron resueltos en un gel de agarosa al 1% (p/v) en buffer SB (Borato de Sodio 5 mM) por 30 min a 90 V y visualizados bajo luz ultravioleta por tinci&oacute;n con bromuro de etidio (0.5 &#181;g/ml). El tama&ntilde;o de los amplicones se estim&oacute; mediante la comparaci&oacute;n con un marcador de peso molecular de 100 bp DNA molecular Ladder (Invitrogen Carlsbad CA. USA). Los productos de PCR fueron secuenciados en un equipo Perkin Elmer de Applied Biosystems Modelo 3730 por el m&eacute;todo de terminadores fluorescentes (Taq FS Dye Terminator Cycle Sequencing Fluorescence&#45;Based Sequencing).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la secuenciaci&oacute;n de las regiones ITS se seleccionaron al azar tres familias S<sub>1</sub> (S3, S5 y S7) y tres PL (PL2, PL4 y PL5), donde se incluy&oacute; en cada familia, la planta madre (v.g. S3), una planta individual (proveniente de una sola semilla&#45; v.g. S3P1) y plantas dobles (dos plantas provenientes de una sola semilla, v.g. S3P21 y S3P22), las cuales en el resto del documento ser&aacute;n mencionadas con su clave respectiva.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">An&aacute;lisis de polimorfismo de secuencias. Las secuencias obtenidas se compararon mediante la herramienta Basic Local Aligment Search Tool (BLAST) de la base de datos del NCBI, optimizando para las secuencias altamente similares para verificar que correspondieran a la regi&oacute;n ITS. Posteriormente, las secuencias fueron alineadas mediante el programa MAFFT v6 (<a href="http://mafft.cbrc.jp/alignment/software" target="_blank">http://mafft.cbrc.jp/alignment/software</a>) utilizando los par&aacute;metros pre&#45;establecidos, y el alineamiento obtenido se visualiz&oacute; con el editor de secuencias BioEdit v7.13. En estos alineamientos se compararon las secuencias de la madre y su descendencia (plantas individuales y poliembri&oacute;nicas). Para el an&aacute;lisis de polimorfismo en las secuencias nucleot&iacute;dicas se utiliz&oacute; el programa DnaSP DNA Sequence Polymorphism versi&oacute;n 5.10.01 (Librado y Rozas, 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Poliembrionia en familias PL y S</b><sub>1</sub></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las progenies de las familias (F<sub>1</sub> de PL y las S<sub>1</sub> de autofecundaci&oacute;n) generadas, los porcentajes de germinaci&oacute;n fueron superiores al 90%, condici&oacute;n deseable en materiales derivados de una poblaci&oacute;n poliembri&oacute;nica y m&aacute;s a&uacute;n en l&iacute;neas poliembri&oacute;nicas S<sub>1</sub>, debido al proceso de endogamia, que influye para deprimir la expresi&oacute;n fenot&iacute;pica. Se encontr&oacute; una frecuencia de plantas PE de entre 55 y 68% (<a href="/img/revistas/remexca/v6n3/a6c1.jpg" target="_blank">Cuadros 1</a> y <a href="/img/revistas/remexca/v6n3/a6c2.jpg" target="_blank">2</a>) lo cual coincide con las proporciones esperadas en estas poblaciones poliembri&oacute;nicas del IMM&#45;UAAAN (Espinoza <i>et al</i>., 1998). De hecho, la PE en algunas familias S<sub>1</sub> fue de 100%, lo cual es poco usual en casos previos de la misma condici&oacute;n endog&aacute;mica (Rebolloza <i>et al</i>., 2011). Esto podr&iacute;a deberse a que el proceso de uniformidad gen&eacute;tica que se involucra en autofecundaciones conduce a poner en homocigosis a los genes que influyen en la poliembrion&iacute;a, pero tambi&eacute;n a los genes que la obstruyen, lo cual causa la penetrancia incompleta del car&aacute;cter (Rebolloza <i>et al</i>., 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este sentido, las familias S<sub>1</sub> presentan una expresi&oacute;n variable y err&aacute;tica de la PE y en muchos casos el porcentaje de PE es inusualmente bajo o alto. En este estudio el rango de porcentajes de PE fue m&aacute;s amplio en las familias S<sub>1</sub> que en las familias PL; los porcentajes de PE observados en estas &uacute;ltimas familias se ajustaron m&aacute;s a los valores t&iacute;picos de la poblaci&oacute;n de origen UA&#45;IMM&#45;BAP (Espinoza y Vega, 2000). El n&uacute;mero de pl&aacute;ntulas anormales fue menor que aquellos valores (15&#45;32%) reportados por Rebolloza <i>et al</i>. (2011) en poblaciones F<sub>2</sub>. Estos autores sugieren que la naturaleza de la poliembrion&iacute;a produce anormalidades en las pl&aacute;ntulas, lo cual obstruye su desarrollo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Comparaci&oacute;n de las secuencias nucleot&iacute;dicas de regiones ITS en familias S</b><sub>1</sub> <b>y PL</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se seleccionaron tres familias S<sub>1</sub> (S3, S5 y S7) y tres PL (PL2, PL4 y PL5), de las cuales se tom&oacute; tejido vegetal de la planta madre y de sus descendientes (una planta proveniente de una semilla y dos plantas gemelas provenientes de una semilla). Despu&eacute;s de la amplificaci&oacute;n y secuenciaci&oacute;n de la regi&oacute;n ITS, se compar&oacute; la similitud de los sitios invariables (monom&oacute;rficos), sitios variables (polim&oacute;rficos) y la diversidad nucleot&iacute;dica entre todos los individuos de las familias seleccionadas (<a href="/img/revistas/remexca/v6n3/a6c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de sitios invariables (monom&oacute;rficos) en la familia PL2, generada por PL se encontr&oacute; en un rango de 78% a 90%, indicando que tanto las secuencias de la madre como las de los hijos son de alto parecido gen&eacute;tico pero no son id&eacute;nticas (<a href="/img/revistas/remexca/v6n3/a6c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). Esto podr&iacute;a atribuirse a que los sitios polim&oacute;rficos est&eacute;n dados por la complementariedad de los genes aportados por la variada fuente de polinizadores, aunado a que la madre es gen&eacute;ticamente parcialmente homog&eacute;nea, ya que proviene de una familia de medios hermanos, por lo que tambi&eacute;n puede ser fuente de variabilidad. Dado el manejo reproductivo del grupo de PL donde no existi&oacute; un control de los polinizadores, la procedencia del progenitor masculino fue desconocida, lo que indica que la proporci&oacute;n de similitud entre las secuencias de ADN de la madre e hijas se ajustan a la dotaci&oacute;n gen&eacute;tica que por la v&iacute;a de gameto femenino otorg&oacute; la madre a cada una de las hijas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En esta familia se observ&oacute; que entre los cuatro genotipos (madre y tres hijas) ning&uacute;n par comparado fue id&eacute;ntico, a&uacute;n entre las plantas dobles PE generadas de la misma semilla que, aunque mostraron una similitud de 90%, no fueron id&eacute;nticas. Estos resultados sugieren que el origen gen&eacute;tico de cada una de las platas doble es diferente, siendo las plantas dobles m&aacute;s parecidas a la planta madre que la planta individual. Por lo tanto, la relaci&oacute;n entre la planta hija del tipo individual con las hermanas PE debe ser tal que refleje la diferencia del polen fecundante, por lo que se esperar&iacute;an diferencias gen&eacute;ticas entre las plantas hermanas. El promedio general de sitios monom&oacute;rficos para la familia fue 86% con desviaci&oacute;n est&aacute;ndar de &#177; 4.5. En estas comparaciones se emplearon secuencias con una longitud de 261 a 297 nucle&oacute;tidos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la familia PL4 y PL5 los porcentajes de similitud fueron de 76 a 92% y de 82 a 90%, respectivamente (<a href="/img/revistas/remexca/v6n3/a6c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>), y se apreci&oacute; que las plantas PE hermanas provenientes de la misma semilla, en la familia PL4 presentan el parecido m&aacute;s alto; sin embargo, no son id&eacute;nticas lo que sugiere que los embriones contempor&aacute;neos que les dan origen tienen una base gen&eacute;tica distinta. Si las plantas gemelas provinieran del mismo embri&oacute;n deber&iacute;an ser id&eacute;nticas (100% de similitud), mientras que cuando tienen origen muy diferente, sea de c&eacute;lula gam&eacute;tica o som&aacute;tica la similitud ser&aacute; menor a 100%. En ambas familias PL4 y PL5 la similitud entre la madre y las plantas hijas (individual y doble) fue igual. Las secuencias de ADN que se compararon en la familia PL4 tuvieron una longitud de 282 a 299 nucle&oacute;tidos, mientras que las secuencias de ADN que se compararon en la familia PL5 fueron en un rango de 288 a 299 nucle&oacute;tidos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el grupo de familias procedente de autofecundaciones (<a href="/img/revistas/remexca/v6n3/a6c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>), la familia S3 present&oacute; sitios invariables que van de 62 a 100% de similitud, resaltando que la comparaci&oacute;n de la secuencia madre contra una hija poliembri&oacute;nica (S3 vs S3P22) present&oacute; 100% de similitud. Esto podr&iacute;a explicarse por: 1) la planta hija poliembri&oacute;nica 2 se origin&oacute; de una c&eacute;lula som&aacute;tica, probablemente de la nucela, que se desarroll&oacute; como embri&oacute;n adventicio diploide, de la misma naturaleza genot&iacute;pica que el tejido som&aacute;tico de la madre; &oacute; 2) de dos pl&aacute;ntulas hermanas PE, la poliembri&oacute;nica 1 se origin&oacute; por la v&iacute;a de la doble fecundaci&oacute;n (embri&oacute;n 2n y endospermo3n) mientras que la planta&#45;hija poliembri&oacute;nica 2 se origin&oacute; de manera at&iacute;pica en el saco embrionario, a partir de una c&eacute;lula germinal no&#45;reducida, de dotaci&oacute;n 2n, id&eacute;ntica a la madre. Por otro lado, la comparaci&oacute;n madre&#45;planta doble 1 (S3 vs S3P21) present&oacute; el valor m&aacute;s bajo (62%). Igualmente que en los casos anteriores, las plantas dobles fueron diferentes entre s&iacute;.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la familia S5 los sitios monom&oacute;rficos se encontraron en un intervalo de 85 a 91% (<a href="/img/revistas/remexca/v6n3/a6c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>), en donde la comparaci&oacute;n entre las secuencias de las plantas dobles mostr&oacute; un mayor porcentaje de sitios polim&oacute;rficos (15%), que las comparaciones de la secuencias de la planta individual con cualquiera de las plantas dobles v. g. planta individual con la planta doble&#45;1 (91%, S5P1 vs S5 P21). Como en el caso S3, en la familia S7 existe una consistencia en la proporci&oacute;n de semejanza presentando una similitud de 100% entre la madre y una de las hijas PE (S7m vs S7P22), mientras que con la otra hija PE s&oacute;lo presenta una semejanza de baja proporci&oacute;n; el intervalo de similitud para esta familia fluctu&oacute; en un rango de 72 a 100%.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La selecci&oacute;n recurrente practicada en el manejo reproductivo en la poblaci&oacute;n BAP ha permitido concentrar una alta frecuencia de los alelos recesivos que determinan la manifestaci&oacute;n de la poliembrion&iacute;a, de acuerdo al modelo de herencia propuesto por Rebolloza <i>et al</i>. (2011). Sin embargo, la catalogaci&oacute;n hasta ahora de la frecuencia de PE en una familia determinada, dada una generaci&oacute;n, ha sido solamente fenot&iacute;pica, ya que la clasificaci&oacute;n de las semillas de las que germinan simult&aacute;neamente dos y hasta siete pl&aacute;ntulas, es s&oacute;lo por observaci&oacute;n visual cuidadosa y experimentada. As&iacute;, este es el primer estudio de las secuencias gen&oacute;micas para determinar la identidad entre plantas poliembri&oacute;nicas y uno de sus progenitores. Adicionalmente a la manifestaci&oacute;n de la PE, una proporci&oacute;n menor, aunque notable, de casos de pl&aacute;ntulas m&uacute;ltiples presentan tambi&eacute;n rad&iacute;culas m&uacute;ltiples (Espinoza <i>et al</i>., 2011). Cualquiera que fuera el significado en la modificaci&oacute;n del sistema radical seminal, los genes de la poliembrion&iacute;a parecieran tener un efecto pleiotr&oacute;pico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La propuesta de Erldeska (1996) sobre el origen de semillas poliembri&oacute;nicas en ma&iacute;z incluye la formaci&oacute;n de gemelos o tripletes a partir de una c&eacute;lula huevo pro&#45;embrionaria, originados por la divisi&oacute;n de la c&eacute;lula huevo de manera espont&aacute;nea o despu&eacute;s de alguna inducci&oacute;n, los cuales comparten un suspensor com&uacute;n, parte del escutelo y capas superficiales de rad&iacute;cula. Por ello, los embriones germinan con pl&uacute;mulas separadas pero con un solo complejo radicular, lo que sugiere que las plantas gemelas ser&iacute;an gen&eacute;ticamente id&eacute;nticas. Aunque este tipo de origen es uno entre varios de los que se han observado fenot&iacute;picamente en la poblaci&oacute;n BAP (Espinoza <i>et al</i>., 1998; Espinoza <i>et al</i>., 2008; Espinoza <i>et al</i>., 2012), en este estudio en ningunas de las familias se pudo comprobar que las plantas gemelas fueran id&eacute;nticas en sus secuencias nucleot&iacute;dicas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El otro tipo de origen son los casos de gemelos o tripletes que provienen de c&eacute;lulas huevo individual del saco embrionario o de c&eacute;lulas con capacidades multi&#45;huevo que est&aacute;n estrechamente adheridas, pero separados por capas epid&eacute;rmicas, con un endospermo en com&uacute;n; las pl&uacute;mulas y rad&iacute;culas son independientes. En poca proporci&oacute;n, este tipo de surgimiento de pl&aacute;ntulas se puede ver en las poblaciones poliembri&oacute;nicas en estudio. Esta hip&oacute;tesis tiene m&aacute;s relaci&oacute;n con los resultados de las comparaciones de secuencias nucleot&iacute;dicas obtenidos en el presente trabajo. Tambi&eacute;n la PE puede originarse por embriones gemelos de sacos multi&#45;embrionarios que com&uacute;nmente est&aacute;n ubicados en lados opuestos, o a distancia en el grano, los cuales carecen de tejidos comunes y germinan independientemente. Es poco com&uacute;n encontrar este tipo de origen en las poblaciones poliembri&oacute;nicas bajo investigaci&oacute;n pero existen, en proporciones muy bajas. Por otra parte, se ha reportado que los niveles de polimorfismo se incrementan a medida que el contenido de GC aumenta, al menos en secuencias gen&oacute;micas cortas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sachidanandam <i>et al</i>. (2001) reportaron que contenidos de GC entre 45 a 55% tienen una correlaci&oacute;n positiva con la diversidad nucleot&iacute;dica. Sin embargo, en este estudio se encontr&oacute; una correlaci&oacute;n negativa de &#45;0.52 (<i>p</i>&lt; 0.05) entre el contenido de GC y la diversidad nucleot&iacute;dica en las familias PL, con un contenido de GC entre 64 y 69%. En las familias S<sub>1</sub> no se apreci&oacute; una correlaci&oacute;n estad&iacute;sticamente significativa entre las variables antes descritas, a pesar de que el contenido de GC fue muy similar al de las familias PL (63 a 69%).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la poblaci&oacute;n de ma&iacute;z poliembri&oacute;nico evaluada se comprob&oacute; mediante el an&aacute;lisis de secuencias de la regi&oacute;n ITS que, en algunos casos, la secuencia de una pl&aacute;ntula doble (dos plantas provenientes de una sola semilla) ten&iacute;an 100% de similitud a la planta madre. Por otra parte, tambi&eacute;n se apreci&oacute; que plantas dobles (provenientes de una sola semilla) no necesariamente tienen el mismo origen, dado que difieren en su secuencia ITS. En algunas familias una de las plantas dobles, mostr&oacute; mayor similitud con la planta individual (provenientes de una sola semilla) que con su planta gemela.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este proyecto fue financiado por la Universidad aut&oacute;noma Agraria Antonio Narro y la Universidad Aut&oacute;noma de Coahuila. M A S, A G L, y A C F G agradecen al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACyT), por el apoyo econ&oacute;mico proporcionado en forma de beca para sus estudios de postgrado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ausubel, T. M.; Brent, R.; Kingston, R. E.; Moore, D. D.; Seidman, J. G.; Smith, J. A. and Struhl, K. 1992.&#160;Short protocols in molecular biology<i>&#160;</i>(a compendium of methods from current protocols in molecular biology). Section II: electrophoretic separation of proteins. Second Edition. John Willey &amp; Sons. 917 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832286&pid=S2007-0934201500030000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Baldwin, B. G.; Sanderson, M. J.; Porter, J. M.; Wojciechowski, M. F.; Campbell, C. S. and Donoghue, M. J. 1995. The ITS region of nuclear ribosomal DNA: a valuable source of evidence on angiosperm phylogeny.&#160;Ann. Missouri Bot. Garden.&#160;82:247&#45;277.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832288&pid=S2007-0934201500030000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bhojwani, S. and Bhatnagar, S. 1974. The embryology of angiosperms. Vikas Publishing House PVT LTD. India. 355 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832290&pid=S2007-0934201500030000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castro, G. M. E. 1979. Estudio sobre herencias y valores nutritivos de semillas con doble embri&oacute;n, Avances de investigaci&oacute;n en ma&iacute;z. Universidad Aut&oacute;noma Agraria Antonio Narro (UAAAN). Buenavista. Coahuila. M&eacute;xico. 24&#45;25 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832292&pid=S2007-0934201500030000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CETENAL (Centro de Estudios del Territorio Nacional). 1975. Carta topogr&aacute;fica G14C33, escala 1:50 000. Saltillo, Coahuila. Secretar&iacute;a de Programaci&oacute;n y Presupuesto (SPP) del Gobierno Federal de los Estados Unidos Mexicanos. M&eacute;xico, D. F. 1 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832294&pid=S2007-0934201500030000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Eldenas, P.; Anderberg, A. A. and Kallersjo, M. 1998. Molecular phylogenetics of the tribe Inuleae s. str. (Asteraceae) based on ITS sequences of nuclear ribosomal DNA. Plant System. Evol. 210:159&#45;173.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832296&pid=S2007-0934201500030000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Erdelska, O. 1996.&#160;Polyembryony in maize&#45;histological analysis. Acta Soc. Bot. Pol. 65:123&#45;125.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832298&pid=S2007-0934201500030000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Erdelska, O. and Vidovencova, Z. 1992.&#160;Cleavage polyembryony in maize. Sex. Plant Reprod. 5:224&#45;226.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832300&pid=S2007-0934201500030000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref -->&#160;</font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espinoza, J.; Vega, M. C.; Navarro, E. y Burciaga, G. 1998. Poliembrion&iacute;a en ma&iacute;ces de porte normal y enano. Agron. Mesoam. 9(2):83&#45;88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832302&pid=S2007-0934201500030000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espinoza, V. J. y Vega, S. M. C. 2000. Ma&iacute;ces de alta frecuencia poliembri&oacute;nica. <i>In</i>: Zavala, G. F.; Ortega, P. R.; Mej&iacute;a, C. J. A.; Ben&iacute;tez, R. I. y Guill&eacute;n, A. H. (Eds.). <i>In</i>: Memorias del XVIII Congreso Nacional de Fitogen&eacute;tica: notas cient&iacute;ficas. SOMEFI. Chapingo, M&eacute;xico. 4 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832304&pid=S2007-0934201500030000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espinoza, V. y de Le&oacute;n, H. 2005. Apomixis, &#191;un fen&oacute;meno en proceso de adopci&oacute;n natural en ma&iacute;z? <i>In</i>: Valdez, R. J. 2005. Resultados de proyectos de investigaci&oacute;n 2004. 245&#45;252 pp. Direcci&oacute;n de investigaci&oacute;n, Universidad Aut&oacute;noma Agraria Antonio Narro (UAAAN). Buenavista, Saltillo, Coahuila, M&eacute;xico. 245&#45;252 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832306&pid=S2007-0934201500030000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espinoza, V. J. L.; Vald&eacute;z&#45; L. V. M.; Gonz&aacute;lez, V. N.; Musit&oacute;, R.; Gallegos, S. J. E; Villarreal, C. J. A. y Alcal&aacute;, R. M. 2008. Estudios gen&eacute;ticos sobre la poliembrion&iacute;a en ma&iacute;z. An&aacute;lisis retrospectivo. <i>In</i>: Libro cient&iacute;fico anual de ganader&iacute;a, agricultura y ciencia forestal "resultados de investigaci&oacute;n 2006". Universidad aut&oacute;noma Agraria Antonio Narro (UAAAN). Buenavista, Saltillo, Coahuila, M&eacute;xico. 5&#45;11 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832308&pid=S2007-0934201500030000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espinoza, V. J.; Vald&eacute;s, R. J. y Alcal&aacute;, R. J. 2012. Morfolog&iacute;a y anatom&iacute;a de rad&iacute;culas m&uacute;ltiples en pl&aacute;ntulas de ma&iacute;z derivadas de cari&oacute;psis con poliembrion&iacute;a. Polibot&aacute;nica. 33(1):207&#45;221.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832310&pid=S2007-0934201500030000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez, V. V. M.; Espinoza, V. J.; Mendoza, V. R.; De Le&oacute;n, C. H. y Torres T. M. A. 2011. Caracterizaci&oacute;n de germoplasma de ma&iacute;z que combina alto contenido de aceite y poliembrion&iacute;a. Universidad y Ciencia. 27(2):1&#45;11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832312&pid=S2007-0934201500030000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kempton, J. H. 1913. Floral abnormalities in maize. Bull. U.S. Bur. Pl. Ind. N&uacute;m. 278.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832314&pid=S2007-0934201500030000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kieselbach, T. A. 1926. False polyembryony in maize. Am. J. Bot. 13:33&#45;36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832316&pid=S2007-0934201500030000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Leblanc, O.; Grimanelli, D.; Islam&#45;Faridi, N.; Berthaud, J. and Savidan, Y. 1996. Reproductive behavior in maize&#45;tripsacum polyhaploid plants: implications for the transfer of apomixis into maize. J. Heredity. 87:108&#45;111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832318&pid=S2007-0934201500030000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Librado, P. and Rozas, J. 2009. DnaSP v5: a software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics 25:1451&#45;1452.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832320&pid=S2007-0934201500030000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Oliveira, L. O.; Huck, R. B.; Gitzendanner, M. A.; Judd, W. S.; Soltis, D. E. and Soltis, P. S. 2007. Molecular phylogeny, biogeography, and systematics of <i>Dicerandra</i> (Lamiaceae), a genus endemic to the Southeastern United States. Am. J. Bot. 94(6):1017&#45;1027.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832322&pid=S2007-0934201500030000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pilu, R. 2000. The twin trait in maize. Maize Genetics Corporation Newsletter. 74:51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832324&pid=S2007-0934201500030000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Randolph, L. F. 1936. Developmental morphology of the caryopsis in maize. J. Agric. Res. 53:881&#45;916.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832326&pid=S2007-0934201500030000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rebolloza, H. H.; Espinoza, V. J.; S&aacute;mano, G. D. y Zamora, V. V. M. 2011. Herencia de la poliembrion&iacute;a en dos poblaciones experimentales de ma&iacute;z. Rev. Fitotec. Mex. 34(1):27&#45;33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832328&pid=S2007-0934201500030000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Skovsted, A. 1939. Cytological studies in twin plants. Comp. Rend. Lab. Carlsberg (Copenhague). Ser. Phys. 22:427&#45;446.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832330&pid=S2007-0934201500030000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Weatherwax, P. 1921. Anomalies in maize and its relatives&#45;I. Bulletin of the Torrey Botanical Club. 48(9):253&#45;255.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832332&pid=S2007-0934201500030000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Webber, J. M. 1940. Polyembryony, Botany Review. 6(11):575&#45;598.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832334&pid=S2007-0934201500030000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Weingartner, U.; Kaeser, O.; Long, M. and Stamp, P. 2002. Combining cytoplasmic male sterility and xenia increases grain yield of maize hybrids. Crop Sci. 42:1848&#45;1856.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7832336&pid=S2007-0934201500030000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
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