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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias agrícolas]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Composición del medio de cultivo y la incubación para enraizar brotes de Agave]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In Oaxaca the Agave Americana var. oaxacensis is found wild and small plantations. The objective of the study was to evaluate the concentration of indole butyric acid (IBA) and the inorganic salts in the culture medium, thus as the incubation temperature, its effect on the rooting of Agave shoots and plant characteristics. The worked was conducted in the laboratory of plant tissue culture and in a greenhouse from the Technological Institute of Oaxaca Valley in 2011-2012. Stem tissues cultured in vitro formed clusters of 4 to 10 adventitious shoots. Shoots with 4-4.5 cm were separated individually and to induce rooted, were transferred to containers of 145 cm³ with 20 mL of different culture medium. The total sprouts on each culture medium were separated into two groups for incubation during 60 days under different conditions of laboratory or greenhouse. All sprouts formed adventitious roots even in culture mediums without auxin but the shoots in culture medium with 0.5 or 1 mg L-1 IBA formed more roots and the plants were larger. The culture medium containing inorganic salts to 66%, gave better condition, than the salts to 100%, for shoots producing more roots. The plants obtained in vitro cultures incubated in greenhouse and laboratory had on average 7.1 and 6.5 leaves, 7 and 6.5 mm in stem diameter, 170 and 150 mg of total dry weight, respectively.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Composici&oacute;n del medio de cultivo y la incubaci&oacute;n para enraizar brotes de <i>Agave*</i></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Composition of the culture medium and incubation for rooting shoots of <i>Agave</i></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Maura Elisama Miguel Luna<sup>1</sup>, Jos&eacute; Raymundo Enr&iacute;quez&#45;del Valle<sup>1&sect;</sup>, Vicente Arturo Velasco Velasco<sup>1</sup>, Yuri Villegas Aparicio<sup>1</sup>, Jos&eacute; Cruz Carrillo Rodr&iacute;guez<sup>1</sup> y Gerardo Rodr&iacute;guez Ort&iacute;z<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1 </i></sup><i>Instituto Tecnol&oacute;gico del Valle de Oaxaca. Ex&#45;Hacienda de Nazareno Xoxocotl&aacute;n, Oaxaca, M&eacute;xico. C. P. 71230. Tel. y Fax: (01951) 5170788, 5170444. </i>(<a href="mailto:lunitastar.mar@hotmail.com">lunitastar.mar@hotmail.com</a>; <a href="mailto:vicvel5@hotmail.com">vicvel5@hotmail.com</a>; <a href="mailto:yurivil37@yahoo.com">yurivil37@yahoo.com</a>; <a href="mailto:jcarrillo_rodriguez@hotmail.com">jcarrillo_rodriguez@hotmail.com</a>; <a href="mailto:grodriguezortiz@hotmail.com">grodriguezortiz@hotmail.com</a>). </font><font face="verdana" size="2">&sect; Autor para correspondencia: <a href="mailto:jenriquezdelvalle@yahoo.com">jenriquezdelvalle@yahoo.com</a>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: octubre de 2012.    <br> 	Aceptado: febrero de 2013.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Oaxaca el <i>Agave americana</i> variedad oaxacensis se encuentra en estado silvestre y peque&ntilde;as plantaciones. El objetivo de la investigaci&oacute;n fue evaluar la concentraci&oacute;n del &aacute;cido indolbut&iacute;rico (AIB) y las sales inorg&aacute;nicas en el medio de cultivo, as&iacute; como el ambiente de incubaci&oacute;n, en su efecto sobre el enraizado de brotes de <i>Agave</i> y caracter&iacute;sticas de las plantas. Se trabaj&oacute; en el laboratorio de cultivo de tejidos vegetales y un invernadero del Instituto Tecnol&oacute;gico del Valle de Oaxaca en el periodo 2011&#45;2012. Tejidos de tallo cultivados <i>in vitro</i> formaron racimos de 4 a 10 brotes adventicios. Los brotes con 4&#45;4.5 cm se separaron individualmente y para inducir su enraizado, se transfirieron a recipientes de 145 cm<sup>3</sup> con 20 mL de diferentes medios de cultivo. El total de brotes en cada medio de cultivo se separaron en dos grupos para incubarlos durante 60 d&iacute;as en condiciones diferentes: laboratorio o invernadero. Todos los brotes formaron ra&iacute;ces adventicias aun en medios de cultivo sin auxina, pero los brotes en los medios de cultivo con 0.5 &oacute; 1 mg L<sup>&#45;1</sup>AIB formaron m&aacute;s ra&iacute;ces y las plantas fueron m&aacute;s grandes. El medio de cultivo con las sales inorg&aacute;nicas a 66% fue mejor condici&oacute;n que las sales a 100% para que los brotes formaran m&aacute;s ra&iacute;ces. Las plantas obtenidas de cultivos <i>in vitro</i> incubados en invernadero y laboratorio tuvieron en promedio 7.1 y 6.5 hojas, 7 y 6.5 mm de di&aacute;metro de tallo 170 y 150 mg de peso seco total, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Agave americana</i>, auxina, micropropagaci&oacute;n, ra&iacute;ces adventicias.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">In Oaxaca the <i>Agave Americana</i> var. oaxacensis is found wild and small plantations. The objective of the study was to evaluate the concentration of indole butyric acid (IBA) and the inorganic salts in the culture medium, thus as the incubation temperature, its effect on the rooting of Agave shoots and plant characteristics. The worked was conducted in the laboratory of plant tissue culture and in a greenhouse from the Technological Institute of Oaxaca Valley in 2011&#45;2012. Stem tissues cultured <i>in vitro</i> formed clusters of 4 to 10 adventitious shoots. Shoots with 4&#45;4.5 cm were separated individually and to induce rooted, were transferred to containers of 145 cm<sup>3</sup> with 20 mL of different culture medium. The total sprouts on each culture medium were separated into two groups for incubation during 60 days under different conditions of laboratory or greenhouse. All sprouts formed adventitious roots even in culture mediums without auxin but the shoots in culture medium with 0.5 or 1 mg L<sup>&#45;1</sup> IBA formed more roots and the plants were larger. The culture medium containing inorganic salts to 66%, gave better condition, than the salts to 100%, for shoots producing more roots. The plants obtained <i>in vitro</i> cultures incubated in greenhouse and laboratory had on average 7.1 and 6.5 leaves, 7 and 6.5 mm in stem diameter, 170 and 150 mg of total dry weight, respectively.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Agave americana,</i> auxin, micropropagation, adventitious roots.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico, diversas especies de agaves se han usado ampliamente para delimitar terrenos, elaborar art&iacute;culos de fibra, obtenci&oacute;n de az&uacute;cares y la elaboraci&oacute;n de bebidas fermentadas y destiladas (Bautista&#45;Justo <i>et al.,</i> 2001). En Oaxaca, M&eacute;xico durante 2006 exist&iacute;an m&aacute;s de 11 000 ha de plantaciones en las que se utiliz&oacute; preferentemente el <i>A. angustifolia</i> Haw (Bravo <i>et al.,</i> 2007) que al compararla con el <i>A. americana</i> variedad oaxacensis se tiene que: 1) la parte central de la roseta llamada pi&ntilde;a de plantas adultas de ambas especies contienen similar cantidad de az&uacute;cares, por unidad de peso; 2) la pi&ntilde;a de la primer especie pesa de 70 a 110 kg y la del <i>A. americana</i> variedad oaxacensis es ligeramente m&aacute;s grande; y 3) los individuos de la primer especie tardan de 7 a 9 a&ntilde;os en llegar a la madurez, mientras que la segunda tarda de 18 a 20 a&ntilde;os y esta ha sido una causa de que se privilegie establecer plantaciones con la primer especie, mientras que a la segunda se le propaga y cultiva en reducidas extensiones (Guillot y Meer, 2004; Valenzuela, 2003). Sin embargo, diversos grupos de agricultores muestran inter&eacute;s para que el <i>A. americana</i> variedad oaxacensis sea propagado y establecerlo en plantaciones, por lo que se propone la micropropagaci&oacute;n <i>in vitro</i> para obtener gran cantidad de plantas en un corto plazo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cultivo <i>in vitro</i> de c&eacute;lulas y tejidos vegetales se puede usar para el rescate y la conservaci&oacute;n de especies amenazadas y tambi&eacute;n para la multiplicaci&oacute;n a gran escala de genotipos superiores, y obtener grandes poblaciones clonales a partir de plantas seleccionadas. Se ha realizado la micropropagaci&oacute;n de <i>Agave fourcroydes</i> (Madrigal <i>et al.,</i> 1990), <i>A.cocui</i> Trelease (Salazar <i>et al.,</i> 2009); <i>A. karwinskii,</i> y <i>A. potatorum</i> (Dom&iacute;nguez <i>et al.,</i> 2008). En Oaxaca, M&eacute;xico, durante el periodo 1988 a 2005 el <i>A. angustifolia</i> se propag&oacute; mediante el cultivo de tejidos, las plantas obtenidas se aclimatizaron en invernadero durante 70 d&iacute;as, crecieron durante 10 a 12 meses en vivero y m&aacute;s de 100 mil plantas se establecieron en campo (Enr&iacute;quez del Valle, 2008; Enr&iacute;quez del Valle <i>et al.,</i> 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es posible hacer modificaciones en cada una de las etapas de un procedimiento de propagaci&oacute;n <i>in vitro</i> para incrementar la eficiencia de &eacute;ste y la calidad de las plantas, por lo que es conveniente evaluar el efecto de variar la concentraci&oacute;n de los componentes de un medio de cultivo como las sales minerales de Murashige y Skoog (1962) y la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena de reguladores de crecimiento en que se incluyen las auxinas, como los &aacute;cidos indol&#45;3&#45;ac&eacute;tico (AIA), &aacute;cido naftalenac&eacute;tico (ANA) y acido indolbut&iacute;rico (AIB) que inducen en los brotes de gran n&uacute;mero de especies la formaci&oacute;n de ra&iacute;ces adventicias, as&iacute; como mayor tama&ntilde;o de los brotes mediante el crecimiento de las c&eacute;lulas (Gilroy y Trewavas, 2001; Soto <i>et al.,</i> 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Enr&iacute;quez del Valle <i>et al.</i> (2005), mostraron que brotes de <i>Agave angustifolia</i> establecidos en medios de cultivo con 0.75 y 1 mg L<sup>&#45;1</sup> de AIB formaron 6.8 y 7.6 ra&iacute;ces adventicias en promedio, adem&aacute;s, los brotes formaron m&aacute;s ra&iacute;ces adventicias y m&aacute;s largas conforme se disminuy&oacute; de 100 a 50% la concentraci&oacute;n de sales inorg&aacute;nicas en el medio de cultivo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En algunos esquemas de micropropagaci&oacute;n de banano <i>Musa,</i> se ha propuesto que los cultivos <i>in vitro</i> en la etapa de enraizado de brotes para su preparaci&oacute;n para trasplante a suelo, se coloquen durante un mes en condiciones de invernadero, esto como un procedimiento de pre adaptaci&oacute;n en que las plantas obtenidas desarrollan mayor vigor, pigmentaci&oacute;n, actividad fotosint&eacute;tica, desarrollo de la cut&iacute;cula cerosa, caracter&iacute;sticas que capacitan a las plantas para adaptarse mejor que las plantas de cultivos <i>in vitro</i> incubados todo el tiempo en ambiente de laboratorio, cuando se trasfieren de <i>in vitro</i> a contenedores con sustrato (Teixeira da Silva <i>et al.,</i> 2005). Por lo anterior, el objetivo del presente estudio fue evaluar la concentraci&oacute;n del &aacute;cido indolbut&iacute;rico (AIB) y de las sales inorg&aacute;nicas en el medio de cultivo, as&iacute; como el ambiente de incubaci&oacute;n, en su efecto sobre la formaci&oacute;n de ra&iacute;ces adventicias en brotes y las caracter&iacute;sticas de las plantas de <i>Agave americana</i> variedad oaxacensis.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La investigaci&oacute;n se realiz&oacute; en el laboratorio de cultivos de tejidos vegetales y un invernadero del Instituto Tecnol&oacute;gico del Valle de Oaxaca, en Xoxocotl&aacute;n, Oaxaca, en las coordenadas geogr&aacute;ficas de 17&deg; 04' de latitud norte, 96&deg; 46' de longitud oeste y 1550 msnm (INEGI, 2005), con material vegetal colectado en la Comunidad de Santa Catarina Minas Ocotl&aacute;n, ubicada en los Valles Centrales, del estado de Oaxaca.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Explantos de tejido de tallo de <i>A. americana</i> var. oaxacensis se establecieron en frascos de 145 cm<sup>3</sup> que conten&iacute;an 20 mL de medio de cultivo con consistencia de gel, preparado con las sales minerales de Murashige y Skoog (1962) (MS), 0.4 mg L<sup>&#45;1</sup> de tiamina, 100 mg L<sup>&#45;1</sup> de myo&#45; inositol, 30 g L<sup>&#45;1</sup> de sacarosa y 1 mg L<sup>&#45;1</sup> de benciladenina. El pH se ajust&oacute; a 5.8 antes de agregar 5.4 g L<sup>&#45;1</sup> de agar. Los cultivos se incubaron durante ocho semanas baj o luz fluorescente blanca a 100 um m<sup>.2</sup> s<sup>1</sup> de intensidad, fotoperiodos de 16 h y 8 h de oscuridad, temperatura en el rango de 22&#45;28 &deg;C. En el transcurso de ocho semanas de incubaci&oacute;n se formaron racimos de 4 a 10 brotes adventicios en cada explanto. Para la multiplicaci&oacute;n de prop&aacute;gulos, los racimos de brotes que se formaron en cada explante se separaban en racimos de dos a tres brotes y se transfirieron a un medio de cultivo y condiciones de incubaci&oacute;n similares que en el subcultivo anterior.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al t&eacute;rmino de un ciclo de multiplicaci&oacute;n de prop&aacute;gulos se formaron racimos de 4 a 10 nuevos brotes heterog&eacute;neos en tama&ntilde;o. De &eacute;stos racimos de brotes se seleccionaron aquellos brotes que ten&iacute;an de 4 a 4.5 cm de longitud, los que se separaron individualmente y transfirieron a frascos de 160 cm<sup>3</sup>que conten&iacute;an 25 mL de medio de cultivo para inducir su enraizado. Los diversos medios de cultivo se prepararon con: 1) agua destilada, 0.4 mg L<sup>&#45;1</sup> de tiamina, 100 mg L<sup>&#45;1</sup> de myoinositol, 25 g L<sup>&#45;1</sup> de sacarosa; 2) sales minerales de Murashige y Skoog (1962) en tres concentraciones diferentes (33, 66 y 100%); y 3) auxina &aacute;cido indolbut&iacute;rico (AIB) en cinco concentraciones diferentes (0, 0.5, 1.0, 1.5 y 2 mg L<sup>&#45;1</sup>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El total de brotes en frascos con cada medio de cultivo se separaron en dos grupos para incubarlos durante 60 d&iacute;as en condiciones diferentes: 1) de laboratorio (iluminaci&oacute;n fluorescente blanca, a 100 &micro;mol m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup>, fotoperiodos de 16 h y 8 h de oscuridad, temperatura de 22&#45;28 &deg;C) y 2) en invernadero, donde los cultivos estuvieron expuestos a radiaci&oacute;n solar disminuida 50% mediante malla sombra.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se estableci&oacute; de acuerdo a un dise&ntilde;o completamente al azar, con arreglo factorial 3 x 5 x 2 (concentraci&oacute;n de sales inorg&aacute;nicas, concentraci&oacute;n de AIB, ambiente de incubaci&oacute;n) por lo que se tuvieron 30 tratamientos. La unidad experimental fue un brote en cada frasco de cultivo y se tuvieron 12 repeticiones por tratamiento. Al t&eacute;rmino del periodo de incubaci&oacute;n, se tomaron al azar ocho unidades experimentales de cada tratamiento para cuantificar n&uacute;mero de hojas, &aacute;rea foliar (cm<sup>2</sup>) altura de la planta (cm), di&aacute;metro de tallo (mm), n&uacute;mero de ra&iacute;ces, longitud de la ra&iacute;z m&aacute;s larga (cm), volumen de la ra&iacute;z (cm<sup>3</sup>), materia seca total de la planta (mg). Los datos se sometieron a an&aacute;lisis de varianza y comparaci&oacute;n de medias (Tukey, a= 0.05).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los brotes establecidos en diversos medios de cultivo que variaban en concentraci&oacute;n de sales inorg&aacute;nicas y AIB, se incubaron en condiciones de laboratorio y otros se incubaron en invernadero; transcurridos 12 d&iacute;as de incubaci&oacute;n todos los brotes ya presentaban ra&iacute;ces adventicias. Enr&iacute;quez del Valle <i>et al.</i> (2005) indican que se han utilizado medios de cultivo con bajas concentraciones de sales inorg&aacute;nicas (MS) y &aacute;cido indolbut&iacute;rico (AIB) para propiciar la formaci&oacute;n de ra&iacute;ces adventicias en diferentes especies de agave cultivadas <i>in vitro.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Transcurridos 60 d&iacute;as de que los brotes de <i>Agave americana</i> se establecieran en las diferentes condiciones de cultivo, los an&aacute;lisis de varianza mostraron que las concentraciones de sales minerales en el medio de cultivo tuvieron diferencias significativas (<i>p</i>&le; 0.01) de efecto en n&uacute;mero de ra&iacute;ces adventicias que formaron los brotes, longitud de la ra&iacute;z y volumen de ra&iacute;z, as&iacute; como en el n&uacute;mero de hojas que tuvieron estas plantas. Las distintas concentraciones de la auxina AIB en el medio de cultivo tuvieron diferencias significativas (<i>p</i>&le; 0.01) de efecto en todas las variables (<a href="#c1">Cuadros 1</a> y <a href="#c2">2</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v4nspe6/a7c1.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remexca/v4nspe6/a7c2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La interacci&oacute;n de las sales minerales y &aacute;cido indolbut&iacute;rico tuvo efecto significativo (<i>p</i>&le; 0.01) en todas las variables. Los ambientes de incubaci&oacute;n tuvieron diferencias significativas (<i>p</i>&le; 0.01) de efecto en altura de la planta, n&uacute;mero de hojas, di&aacute;metro de tallo, &aacute;rea foliar, volumen de ra&iacute;z y efecto significativo (<i>p</i>&le; 0.05) en peso seco total (<a href="#c1">Cuadros 1</a> y <a href="#c2">2</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La interacci&oacute;n entre el ambiente de incubaci&oacute;n y las dosis de &aacute;cido indolbut&iacute;rico en el medio de cultivo tuvo efecto altamente significativo (<i>p</i>&le; 0.01) en el &aacute;rea foliar, peso seco total, longitud de la ra&iacute;z y volumen de la ra&iacute;z, y efecto significativo (<i>p</i>&le; 0.05) para el n&uacute;mero de hojas y n&uacute;mero de ra&iacute;ces. La interacci&oacute;n entre la concentraci&oacute;n de sales minerales en el medio de cultivo y ambiente de incubaci&oacute;n tuvo efecto altamente significativo (<i>p</i>&le; 0.01) en el &aacute;rea foliar y volumen de ra&iacute;z. La interacci&oacute;n entre el ambiente de incubaci&oacute;n, la concentraci&oacute;n de sales minerales y la concentraci&oacute;n de &aacute;cido indolbut&iacute;rico en el medio de cultivo, tuvo efectos altamente significativos <i>(p</i>&le; 0.01) en n&uacute;mero de hojas, di&aacute;metro de tallo, &aacute;rea foliar, n&uacute;mero de ra&iacute;ces, volumen de la ra&iacute;z, y longitud de la ra&iacute;z, siendo significativo (<i>p</i>&le; 0.05) para peso seco total (<a href="#c1">Cuadro 1</a> y <a href="#c2">2</a>).</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los medios de cultivo con 1 &oacute; 2 mg L<sup>&#45;1</sup> de &aacute;cido indolbut&iacute;rico influyeron para que los brotes dieran origen a plantas que alcanzaron mayor altura, n&uacute;mero de hojas y &aacute;rea foliar. Mientras que para las variables di&aacute;metro de tallo y volumen de ra&iacute;z fue &uacute;nicamente la concentraci&oacute;n de 1 mg L<sup>&#45;1</sup> de AIB. Todos los brotes formaron ra&iacute;ces adventicias, incluso aquellos establecidos en medios sin auxina, los cuales tuvieron 7.1 ra&iacute;ces. As&iacute; tambi&eacute;n Blanco y Valverde (2004) mencionan que brotes de <i>Philodendron</i> spp. no requirieron la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena de reguladores de crecimiento para que formaran ra&iacute;ces adventicias (<a href="/img/revistas/remexca/v4nspe6/a7c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). Lo anterior pudo ocurrir, debido a que en las hojas ocurre la s&iacute;ntesis de auxinas (Raven <i>et al.,</i> 1999; Azc&oacute;n&#45;Bieto y Tal&oacute;n, 2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los brotes establecidos en medios de cultivo sin AIB formaron la menor cantidad (7.1) de ra&iacute;ces adventicias, que tuvieron 0.47 cm<sup>3</sup> de volumen y la mayor longitud (9.5 cm). Conforme se aplicaron concentraciones crecientes de AIB hasta 0.5 mg L<sup>&#45;1</sup> los brotes formaron significativamente (Tukey, 0.05) la mayor cantidad de ra&iacute;ces (8.2). Los brotes establecidos en medios con concentraciones de AIB superior a 0.5 mg L<sup>&#45;1</sup> mostraron la tendencia a formar menor cantidad de ra&iacute;ces adventicias y significativamente (Tukey, 0.05) m&aacute;s cortas (<a href="/img/revistas/remexca/v4nspe6/a7c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los brotes establecidos en medio de cultivo con las sales minerales a 66% de concentraci&oacute;n formaron 7.9 ra&iacute;ces adventicias, cantidad 15% superior y significativamente (Tukey, 0.05) diferente a la cantidad de ra&iacute;ces que formaron los brotes en medios de cultivo con las sales inorg&aacute;nicas a 100%. Por su parte Enr&iacute;quez del Valle <i>et al.</i> (2005) indican que brotes de <i>Agave angustifolia</i> formaron 4.7 ra&iacute;ces adventicias en el medio de cultivo con las sales inorg&aacute;nicas al 50% de concentraci&oacute;n y sin fitohormonas aunque al incorporarles 1 mg L <sup>&#45;1</sup> de AIB en el medio de cultivo los brotes formaron 8.5 ra&iacute;ces (<a href="/img/revistas/remexca/v4nspe6/a7c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas originadas de brotes incubados en laboratorio alcanzaron en promedio significativamente (Tukey, 0.05) mayor altura en comparaci&oacute;n a las plantas incubadas en el invernadero. Mientras que las plantas originadas de los brotes incubados en invernadero tuvieron significativamente (Tukey, 0.05) mayor cantidad de hojas, di&aacute;metro de tallo, peso seco de tallo y volumen de ra&iacute;z, que las plantas originadas en laboratorio (<a href="/img/revistas/remexca/v4nspe6/a7c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>), esto se explica con lo investigado por Papaphotiou <i>et al.</i> (2003) en plantas de <i>Callistemon</i> sp. micropropagadas y aclimatizadas en condiciones de invernadero con 50% sombra e indican que el nivel de irradiancia fue un factor ambiental importante que influy&oacute; en el fenotipo de las plantas. Posp&iacute;&scaron;ilov&aacute; <i>et al.</i> (2007) mencionan que durante la aclimataci&oacute;n en invernadero de plantas micropropagadas se usan niveles de irradiancia en el rango de 50&#45;350 &micro;mol m<sup>2</sup> s<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto significativo de las interacciones sobre la formaci&oacute;n de ra&iacute;ces en los brotes se podr&iacute;a interpretar en que, aun cuando la auxina desempe&ntilde;a un papel importante para inducir la formaci&oacute;n de ra&iacute;ces adventicias, otras condiciones ambientales, tales como la concentraci&oacute;n de sales en el medio de cultivo y la calidad e intensidad de iluminaci&oacute;n influyen en la capacidad de respuesta del material vegetal al est&iacute;mulo del regulador de crecimiento. De tal manera que el medio de cultivo con 66% sales inorg&aacute;nicas, 0.5 mg L<sup>&#45;1</sup> de AIB y ambiente de incubaci&oacute;n en invernadero fue una condici&oacute;n apropiada para el enraizado de los brotes de <i>Agave</i> y su preparaci&oacute;n para trasplante a suelo. Las plantas obtenidas en dicha condici&oacute;n tuvieron 10.2 cm de altura, 7.2 hojas, 307.43 cm<sup>2</sup> de &aacute;rea foliar, su tallo de 0.7037 cm de di&aacute;metro, 10.2 ra&iacute;ces adventicias de 7.8 cm de longitud y 0.737 cm<sup>3</sup> de volumen; su peso seco total fue de 160.87 mg.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">De manera similar a la formaci&oacute;n de ra&iacute;ces en los brotes de <i>A. americana</i> var. oaxacensis, se ha comprobado que brotes de <i>Paulownia elongata</i> (Castellanos <i>et al.,</i> 2006) formaron ra&iacute;ces adventicias cuando se establecieron en medio de cultivo sin auxina, y ya que se conoce que las auxinas son reguladores de crecimiento que inducen la formaci&oacute;n de ra&iacute;ces adventicias, lo anterior sugiere que en los brotes ocurri&oacute; la s&iacute;ntesis de esta sustancia. Pero los brotes que se establecieron en medios con las dosis menores de auxina formaron mayor cantidad de ra&iacute;ces y en menor tiempo, lo cual sugiere que la auxina ex&oacute;gena fue complementaria a la auxina end&oacute;gena para estimular una respuesta de formaci&oacute;n de ra&iacute;ces cercana al &oacute;ptimo. As&iacute; tambi&eacute;n las dosis mayores de auxina ex&oacute;gena superaron el nivel necesario para la respuesta &oacute;ptima y causaron inhibici&oacute;n parcial.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas provenientes de cultivos <i>in vitro</i> incubadas en invernadero contrastaron en diversas caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas, respecto a las plantas originadas de cultivos <i>in vitro</i> incubadas en laboratorio. Es necesario conocer si las caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas que presentaron estas plantas micropropagadas corresponden a una condici&oacute;n de pre&#45;aclimataci&oacute;n que sea conveniente para incrementar el porcentaje de plantas que sobrevivan en el trasplante a condiciones <i>ex vitro</i> y su crecimiento en invernadero o campo (Debergh y Read, 1991; Cui <i>et al.,</i> 2000; Posp&iacute;&scaron;ilov&aacute; <i>et al.,</i> 2000).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;cido indolbut&iacute;rico en concentraciones de 0.5 &oacute; 1 mg L<sup>&#45;1</sup> en el medio de cultivo estimul&oacute; en los brotes la formaci&oacute;n de mayor cantidad de ra&iacute;ces adventicias y altura de la planta, en comparaci&oacute;n a brotes establecidos en medios sin AIB. En el medio de cultivo las sales inorg&aacute;nicas MS al 66% de concentraci&oacute;n fue una condici&oacute;n que se complement&oacute; con la auxina en su efecto para que los brotes formaran mayor cantidad de ra&iacute;ces adventicias. Los brotes incubados en ambiente de invernadero desarrollaron m&aacute;s hojas, tallos de di&aacute;metro mayor y acumularon m&aacute;s materia seca total, pero similar cantidad de ra&iacute;ces que los brotes incubados en ambiente de laboratorio.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Azc&oacute;n&#45;Bieto, J. y Tal&oacute;n, M. 2000. Fundamentos de fisiolog&iacute;a vegetal. Mc. Graw&#45;Hill Interamericana, Madrid, Espa&ntilde;a. 522 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801281&pid=S2007-0934201300100000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bautista&#45;Justo, M.; Garc&iacute;a&#45;Oropeza, L.; Barboza&#45;Corona, J. E. y Parra&#45;Negrete, L. A. 2001(b). El <i>Agave tequilana</i> Weber y la producci&oacute;n de tequila. Acta Universitaria. 11(2):26&#45;34.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801283&pid=S2007-0934201300100000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Blanco, M. y Valverde R. 2004. Micropropagacion de <i>Philodendro</i> sp. Agronom&iacute;a Costarricense. Universidad de Costa Rica, San Jos&eacute; Costa Rica 28(1):39&#45; 46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801285&pid=S2007-0934201300100000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bravo, M. E.; Arredondo, C. y Espinosa, H. 2007. Tecnolog&iacute;a para la producci&oacute;n de maguey mezcalero en Oaxaca. Instituto Nacional de Investigaciones ForestalesAgr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP). Libro t&eacute;cnico 7:160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801287&pid=S2007-0934201300100000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castellanos, H. O.A.; Rodr&iacute;guez, S.A.; Rodr&iacute;guez, D. J. M. y Rodr&iacute;guez, G. B. 2006. Organog&eacute;nesis indirecta y enraizamiento <i>in vitro</i> de <i>Paulowniaelongata.</i> e&#45;Gnosis 4(15):1&#45;12 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801289&pid=S2007-0934201300100000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cui, Y.; Hahn, E.; Kozai, T. and Paek, K. 2000. Number of air exchanges, sucrose concentration. Photosynthetic photon flux, and differences in photoperiod and dark period temperatures affect growth of Rehmanniaglutinosa plantlets <i>in vitro.</i> Plant Cell Tissue Organ Cult. 62:219&#45;226.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801291&pid=S2007-0934201300100000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Debergh, P. C. and Read, P. E. 1991. Micropropagati&oacute;n. <i>In:</i> micropropagati&oacute;n technology and application. Debergh, P. C. and R. H. Zimmerman. (Eds.). Kluwer Academic Publisher. USA. 1&#45;13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801293&pid=S2007-0934201300100000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dom&iacute;nguez, R. M. S.; Gonz&aacute;lez, J. M. L.; Rosales, G. C.; Quillo&ntilde;es, V. C.; Delgadillo, D. L. S.; Mireles, O. J. y P&eacute;rez, M. B. E. 2008 (a). El cultivo <i>in vitro</i> como herramienta para el aprovechamiento, mejoramiento y conservaci&oacute;n de especies del genero Agave. Investigaci&oacute;n y Ciencia de la Universidad Aut&oacute;noma de Aguascalientes (UAA). Aguascalientes, M&eacute;xico. 16(41 ):53&#45;62.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801295&pid=S2007-0934201300100000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Enr&iacute;quez del Valle, J. R.; Carrillo&#45;Casta&ntilde;eda, G. y Rodr&iacute;guez de la O, J. 2005. Sales inorg&aacute;nicas y &aacute;cido indolbut&iacute;rico en el enraizamiento <i>in vitro</i> de brotes de <i>Agave angustifolia.</i> Rev. Fitotec. Mex. 28:175&#45;178.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801297&pid=S2007-0934201300100000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Enr&iacute;quez del Valle, J. R. 2008. La propagaci&oacute;n y crecimiento de Agaves. Fundaci&oacute;n Produce Oaxaca A. C. Instituto Tecnol&oacute;gico del Valle de Oaxaca. M&eacute;xico. 46 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801299&pid=S2007-0934201300100000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Enr&iacute;quez del Valle, J. R.; Velasco, V. A.; Campos, G. V.; Hern&aacute;ndez&#45; Gallardo, A. E. and Rodr&iacute;guez&#45;Mendoza, M. N. 2009. <i>Agave</i> <i>angustifolia</i> plants grow with different fertigation doses and organic substrates. Acta Hort. 843:49&#45;55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801301&pid=S2007-0934201300100000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gilroy, S. and Trewavas, A. J. 2001. Signal processing and transduction in plant cells: the end of the beginning?Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2:307&#45;314.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801303&pid=S2007-0934201300100000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Guillot&#45;Ortiz, D. and Meer, P. V. D. 2004. <i>Agave americana</i> var. oaxacensisand the icono of Valentini (1719). Bot. Complut. 28:101&#45;103.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801305&pid=S2007-0934201300100000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Instituto Nacional de Estad&iacute;stica, Geograf&iacute;a e Inform&aacute;tica (INEGI). 2005. Principales resultados por localidad. II conteo de poblaci&oacute;n y vivienda. World wide Web Electr&oacute;nica publicaci&oacute;n. <a href="http://www.inegi.gob.mx/est/contenidos/esmand/conteo2005/iter2005/selentcampo.aspx" target="_blank">http://www.inegi.gob.mx/est/contenidos/esmand/conteo2005/iter2005/selentcampo.aspx</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801307&pid=S2007-0934201300100000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Madrigal L. R.; Pineda, F. E. and Rodr&iacute;guez de la O, J. L. 1990. Agave. <i>In</i>: handbook of plant cell culture. Ammirato, P. V.; Evans, D. A.; Sharp, W. R. and Bajaj, Y. P. S. (Eds.) McGraw&#45;Hill Publishing Company. New York, USA. (5):206&#45; 227.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801309&pid=S2007-0934201300100000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murashige, T. and Skoog, F. 1962. A revised m&eacute;dium for rapid growth and bioassays with Tobacco Tissue cultures. Physiol. Plant 15:473&#45; 497.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801311&pid=S2007-0934201300100000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pierick, R. L. M. 1990. Cultivo <i>in vitro</i> de plantas superiores. Ed. Mundi&#45;Prensa. Madrid. 325 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801313&pid=S2007-0934201300100000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Papaphotiou, M.; Hatzilazarou, S.; Syros, T.; Economou, A. and Sovatzoglou, G. 2003. Acclimatization of <i>Callistemo</i>n sp. microplants in fog as influenced by shading. Acta Hort. 616:151&#45;155.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801315&pid=S2007-0934201300100000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Posp&iacute;&#353;ilov&aacute;, J., Haisel, D., Synkov&aacute;, H., Catsky, J., Wilhelmov&aacute;, N., Plz&aacute;kov&aacute;, S., Proch&aacute;zkov&aacute;, D., and Sr&aacute;mek, F. 2000. Photosynthetic pigments and gas exchange during <i>ex vitro</i> acclimation of tobacco plants as affected by CO<sub>2</sub> supply and abscisic acid. Plant Cell Tissue Organ Cult. 61:125&#45;133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801317&pid=S2007-0934201300100000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Posp&iacute;&#353;ilov&aacute;, J.; Synkov&aacute;, H.; Haisel, D. and Semor&aacute;dov&aacute;, S. 2007. Acclimation of plantlets to ex vitro conditions: effects of air humidity, irradiance, CO<sub>2</sub> concentration and abscisic acid (a Review). Acta Hort. 748:29&#45;3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801319&pid=S2007-0934201300100000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Raven, P. H.; Evert, R. F.and Eichhorn, S. E. 1999. Biology of plants. 6<sup>a</sup> (Ed). Freedman, W. H. and company worth Publishers. 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J.; Vargas, H. J. J.; Gonz&aacute;lez, R. H. y Cetina, A. V. M. 2006. Efecto de diferentes dosis de AIB sobre el enraizamiento de <i>Ficus benjamina L.</i> endiferentes &eacute;pocas del a&ntilde;o. Rev. Sociedad, Cultura y Desarrollo Sustentable. 2(3):795&#45;814.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801325&pid=S2007-0934201300100000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Teixeira da Silva, J. A., Dam, D. T. G. and Tanaka, M. 2005. <i>In vitro</i> acclimatizaci&oacute;n of banana and <i>Cymbidium.</i> International J. Bot. 1(1):41&#45;49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801327&pid=S2007-0934201300100000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Valenzuela, Z. A. G. 2003. El Agave tequilero, cultivo e industria de M&eacute;xico. 3<sup>a</sup> (Ed.). Mundi&#45;Prensa. M&eacute;xico. D. F. 215 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7801329&pid=S2007-0934201300100000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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