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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Cambios en la composición de almidón, pectinas y hemicelulosas durante la maduración de mango (Mangifera indica cv. Kent)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Changes in some polysaccharides during postharvest ripening of 'Kent' mangoes were evaluated in the present study. Fruit at physiological maturity stage were stored to simulate marketing conditions (20 ± 2 °C, 85 % relative humidity) until reaching the ripening stages 2, 3, 4 and 5 (according to the standards of Empacadoras de Mango de Exportación, A. C.). Changes in firmness, starch, pectin, hemicellulose and cellulose were determined. Polysaccharides were obtained from the alcohol-insoluble fraction of the mango flesh. Fruit showed a total firmness loss of 93 % from the ripening stage 2 to 5, which was progressively reduced in 40, 44 and 9 % when the fruit reached the stages 3, 4, and 5, respectively. In that order, the rate of softening was defined as initial, intermediate, and late. During the initial fruit softening, the content of starch was reduced by 90 % and the total sugars by 44 %, while the total uronic acids increased by 39 %. The total concentration of arabinose was maintained without significant changes in the different ripening stages at levels of 250 mg·100 g-1 fresh weight; however, a reduction of 50 % in glucose and galactose occurred during the initial softening. The water soluble-fraction was the prevalent pectin fraction with a composition near to 2:1 in the uronide:sugar ratio. During the softening of 'Kent' mangoes, changes in solubility and polymerization degree of pectin and hemicellulosic polysaccharides were observed.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Cambios en la composici&oacute;n de almid&oacute;n, pectinas y hemicelulosas durante la maduraci&oacute;n de mango (<i>Mangifera indica</i> cv. Kent)</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Changes in the composition of starch, pectins and hemicelluloses during the ripening stage of mango (<i>Mangifera indica</i> cv. Kent)</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Wendy Guadalupe C&aacute;rdenas&#45;Coronel; Rosabel Velez&#45;de la Rocha; Jorge Humberto Siller&#45;Cepeda; Tom&aacute;s Osuna&#45;Enciso; Mar&iacute;a Dolores Muy&#45;Rangel; J. Adriana Sa&ntilde;udo&#45;Barajas<sup>*</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Centro de Investigaci&oacute;n en Alimentaci&oacute;n y Desarrollo, A.C. Coordinaci&oacute;n Culiac&aacute;n. Apartado postal 32&#150;A, Culiac&aacute;n, Sinaloa. M&Eacute;XICO. C. P. 80129. Correo&#150;e:</i> <a href="mailto:adriana@ciad.edu.mx">adriana@ciad.edu.mx</a> <i>(*Autor para correspondencia)</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 23 de septiembre, 2010.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 	Aceptado: 16 de diciembre, 2011.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio se evaluaron los cambios en algunos polisac&aacute;ridos durante la maduraci&oacute;n poscosecha de mango 'Kent'. Se almacenaron frutos en madurez fisiol&oacute;gica a condiciones simuladas de mercadeo (20 &plusmn; 2 &deg;C, 85 % de humedad relativa), hasta alcanzar los estados de madurez 2, 3, 4 y 5 (de acuerdo a la norma de Empacadoras de Mango de Exportaci&oacute;n, A. C.). Se determinaron los cambios en firmeza, almid&oacute;n, pectinas, hemicelulosas y celulosa. Los polisac&aacute;ridos se obtuvieron a partir de la fracci&oacute;n insoluble en alcohol (FIA) de la pulpa. Los frutos presentaron una p&eacute;rdida total del 93 % de la firmeza desde la madurez 2 a la 5, la cual se redujo progresivamente en 40, 44 y 9 % al alcanzar la madurez 3, 4 y 5, respectivamente. En ese orden, el grado de ablandamiento se defini&oacute; como inicial, intermedio y tard&iacute;o. Durante el ablandamiento inicial de los frutos se redujo el contenido de almid&oacute;n en un 90 % y el contenido de az&uacute;cares totales en un 44 %, mientras que los &aacute;cidos ur&oacute;nicos totales aumentaron en un 39 %. La concentraci&oacute;n total de arabinosa no mostr&oacute; cambios significativos y se mantuvo en valores cercanos a los 250 mg&middot;100 g<sup>&#150;1</sup> peso fresco (pf) en los distintos estados de madurez; sin embargo, la disminuci&oacute;n de glucosa y galactosa fue de 50 % durante el ablandamiento inicial. La fracci&oacute;n p&eacute;ctica predominante fue la hidrosoluble, que present&oacute; una relaci&oacute;n ur&oacute;nicos:az&uacute;cares cercana a 2:1, y el az&uacute;car neutro de mayor concentraci&oacute;n fue arabinosa. Durante el ablandamiento de los frutos de mango 'Kent', se presentaron cambios en la solubilidad y grado de polimerizaci&oacute;n de polisac&aacute;ridos p&eacute;cticos y hemicelul&oacute;sicos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras claves:</b> Ablandamiento, solubilizaci&oacute;n, despolimerizaci&oacute;n, az&uacute;cares neutros.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Changes in some polysaccharides during postharvest ripening of 'Kent' mangoes were evaluated in the present study. Fruit at physiological maturity stage were stored to simulate marketing conditions (20 &plusmn; 2 &deg;C, 85 % relative humidity) until reaching the ripening stages 2, 3, 4 and 5 (according to the standards of Empacadoras de Mango de Exportaci&oacute;n, A. C.). Changes in firmness, starch, pectin, hemicellulose and cellulose were determined. Polysaccharides were obtained from the alcohol&#150;insoluble fraction of the mango flesh. Fruit showed a total firmness loss of 93 % from the ripening stage 2 to 5, which was progressively reduced in 40, 44 and 9 % when the fruit reached the stages 3, 4, and 5, respectively. In that order, the rate of softening was defined as initial, intermediate, and late. During the initial fruit softening, the content of starch was reduced by 90 % and the total sugars by 44 %, while the total uronic acids increased by 39 %. The total concentration of arabinose was maintained without significant changes in the different ripening stages at levels of 250 mg&middot;100 g<sup>&#150;1</sup> fresh weight; however, a reduction of 50 % in glucose and galactose occurred during the initial softening. The water soluble&#150;fraction was the prevalent pectin fraction with a composition near to 2:1 in the uronide:sugar ratio. During the softening of 'Kent' mangoes, changes in solubility and polymerization degree of pectin and hemicellulosic polysaccharides were observed.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> Softening, solubilization, depolymerization, neutral sugars.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mango <i>(Mangifera indica)</i> es considerado un fruto tropical de importancia comercial por su alta demanda mundial como producto fresco y procesado (Tharanathan <i>et al.,</i> 2006). M&eacute;xico es el mayor exportador de mango en el mundo y concentra la mayor producci&oacute;n en los estados de Guerrero, Sinaloa, Veracruz, Nayarit y Chiapas. Entre las variedades de mango cultivadas en Sinaloa, el cultivar Kent se considera el mejor del grupo de maduraci&oacute;n intermedia, en parte por su alta productividad y su amplia aceptaci&oacute;n en mercados nacionales e internacionales (Ireta y Guzm&aacute;n, 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La maduraci&oacute;n del mango se caracteriza por un ablandamiento de la pulpa, el cual se asocia con cambios progresivos en la composici&oacute;n de hemicelulosas, pectinas, celulosa y almid&oacute;n (Muda <i>et al.,</i> 1995; Yashoda <i>et al.,</i> 2006). En frutos climat&eacute;ricos, la p&eacute;rdida de interconexi&oacute;n de pectinas y hemicelulosas por efectos de solubilizaci&oacute;n y despolimerizaci&oacute;n enzim&aacute;tica conduce a una interconversi&oacute;n de polisac&aacute;ridos altamente interconectados a estructuras de baja asociaci&oacute;n fibrilar (Prasanna <i>et al.,</i> 2003; Brummell, 2006). Para definir los cambios en solubilidad, los polisac&aacute;ridos se extraen secuencialmente con agentes qu&iacute;micos. El agua extrae pectinas ligadas o d&eacute;bilmente asociadas a la matriz fibrilar; agentes quelantes como el EDTA solubilizan pectinas quelatadas o ligadas mediante enlace i&oacute;nico; el Na<sub>2</sub>CO<sub>3</sub> extrae pectinas unidas covalentemente; y las soluciones concentradas de &aacute;lcalis se usan para extraer hemicelulosas de bajo y alto grado de asociaci&oacute;n con la celulosa (Brummell y Harpster, 2001). En mangos de diversas variedades se reporta la conversi&oacute;n de protopectina a pectina soluble en agua, as&iacute; como cambios en la composici&oacute;n de az&uacute;cares neutros, solubilizaci&oacute;n y despolimerizaci&oacute;n de pectinas y hemicelulosas (Roe y Bruemmer, 1981; Mitcham y McDonald, 1992; Muda <i>et al.,</i> 1995; Oll&eacute; <i>et al.,</i> 1996; Varanyanond <i>et al.,</i> 1999; Yashoda <i>et al.,</i> 2006). Sin embargo, dichos reportes difieren en el patr&oacute;n y magnitud de cambios en la pared celular entre variedades de mango, algunas veces por la presencia de gran proporci&oacute;n de almid&oacute;n en el fruto (Muda <i>et al.,</i> 1995; Oll&eacute; <i>et al.,</i> 1996). En mango 'Keitt' y 'Tommy Atkins' se report&oacute; una reducci&oacute;n en residuos de arabinosa, galactosa, xilosa y ramnosa, lo cual sugiere la participaci&oacute;n de hidrolasas como la &#946;&#150;galactosidasa y &#946;&#150;xilosidasa (Mitcham y McDonald, 1992; Muda <i>et al.,</i> 1995). Posteriormente, la &#946;&#150;galactosidasa en mango 'Harumanis' y 'Alfonso' se consider&oacute; asociada a la degradaci&oacute;n de galactanos en las fracciones p&eacute;cticas (Ali <i>et al.,</i> 1995; Prasanna <i>et al.,</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mango 'Alfonso', cultivar de la India catalogado como de alta calidad, ha sido el mayormente explorado en aspectos de la pared celular. Yashoda <i>et al.</i> (2006) han estudiado las implicaciones del metabolismo de pectinas y almid&oacute;n sobre los cambios ultraestructurales del fruto, as&iacute; como la asociaci&oacute;n de la reducci&oacute;n en la concentraci&oacute;n de celulosa, hemicelulosa, pectina y almid&oacute;n durante la maduraci&oacute;n. Sin embargo, en la variedad Kent, que ha sido referida como aceptable por su exquisito sabor, olor y su bajo contenido de fibras (Gal&aacute;n&#150;Sa&uacute;co, 1999), los reportes son m&aacute;s limitados. En la presente investigaci&oacute;n el objetivo fue evaluar los cambios en la composici&oacute;n de algunos polisac&aacute;ridos durante la maduraci&oacute;n de frutos de mango 'Kent'.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material de estudio</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se cosecharon frutos de mango 'Kent' en estado de madurez fisiol&oacute;gica en un huerto de San Pedro, Navolato, Sinaloa. Se seleccionaron frutos sin da&ntilde;o aparente y se almacenaron a condiciones simuladas de mercadeo (20 &plusmn; 2 &deg;C y 80 &plusmn; 5 % de humedad relativa).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Firmeza</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cuatro puntos de la zona ecuatorial de cada uno de tres frutos, sin c&aacute;scara, se registr&oacute; la fuerza de oposici&oacute;n del tejido a la penetraci&oacute;n de un punz&oacute;n de 8 mm de di&aacute;metro, el cual se insert&oacute; a una profundidad de 1.5 cm a velocidad de 5.3 mm&middot;s<sup>&#150;1</sup>. Esta variable se evalu&oacute; cada tres d&iacute;as con un penetr&oacute;metro digital marca Chatill&oacute;n, modelo DFGS&#150;100, adaptado a una base autom&aacute;tica modelo TCD 200.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Obtenci&oacute;n de la fracci&oacute;n insoluble en alcohol (FIA)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se obtuvieron secciones longitudinales de la pulpa de cuatro frutos; se retir&oacute; la c&aacute;scara y se agruparon las secciones de pulpa en una sola unidad experimental de 100 g para cada estado de madurez. La pulpa se pic&oacute; finamente y se hirvi&oacute; por 30 min en 250 ml de etanol al 80 %; se homogeneiz&oacute; durante 40 s a 13,500 rpm con un procesador Ultraturrax (modelo T25); se realizaron filtraciones con papel de fibra de vidrio (GF/A) y lavados consecutivos durante 20 min en agitaci&oacute;n magn&eacute;tica con etanol al 80 % (dos veces), metanol&#150;cloroformo (1:1) y acetona hasta obtener un polvo de color blanco (Rose <i>et al.,</i> 1998). El residuo se sec&oacute; a peso constante en una estufa a 40 &deg;C, se registr&oacute; el peso, se redujo el tama&ntilde;o de part&iacute;cula a malla 40 (molino Thomas Scientific, modelo 3383&#150;L10) y se almacen&oacute; en desecador. Dicho residuo constituy&oacute; la FIA y se utiliz&oacute; para las evaluaciones posteriores.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de &aacute;cidos ur&oacute;nicos, az&uacute;cares totales y almid&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido total de &aacute;cidos ur&oacute;nicos y az&uacute;cares totales en los frutos de mango se determin&oacute; a partir de la hidr&oacute;lisis de 2 mg de FIA con H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> concentrado. Se colocaron los tubos con la FIA y se adicion&oacute; 1 ml de H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>; a intervalos de 10 min se a&ntilde;adi&oacute; 1 mL de H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub>, 1 ml de H<sub>2</sub>O y finalmente 7 ml de H<sub>2</sub>O. La hidr&oacute;lisis se condujo en condiciones de agitaci&oacute;n constante y ba&ntilde;o de hielo. Los &aacute;cidos ur&oacute;nicos totales se determinaron por el m&eacute;todo simplificado de Ahmed y Labavitch (1977), que consisti&oacute; en lo siguiente: a 200 &#181;L del hidrolizado se adicionaron 1.2 ml de borato de sodio (12.5 mM) en H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> concentrado, y la mezcla se mantuvo por 5 min en ba&ntilde;o de agua a 100 &deg;C. La coloraci&oacute;n se produjo al a&ntilde;adir 20 &#181;L de <i>m</i>&#150;fenil fenol (0.15 %) en NaOH (0.5 %), y la absorbancia se registr&oacute; a 520 nm con un espectrofot&oacute;metro Cary UV&#150;Vis 1&#150;E (Varian Inc.). Se utiliz&oacute; &aacute;cido galactur&oacute;nico como patr&oacute;n de calibraci&oacute;n. Los az&uacute;cares totales se determinaron por el m&eacute;todo de antrona (Yemm y Willis, 1954), de la siguiente manera. A 100 &#181;L del hidrolizado se a&ntilde;adieron 400 &#181;L de H<sub>2</sub>O destilada y 1 ml de antrona (0.2 %) en H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> concentrado; se calent&oacute; por 10 min en ba&ntilde;o de agua a 100 &deg;C; se enfri&oacute; y se midi&oacute; la absorbancia a 620 nm con un espectrofot&oacute;metro Cary UV&#150;Vis 1&#150;E (Varian Inc.). La concentraci&oacute;n se calcul&oacute; a partir de una curva de calibraci&oacute;n con glucosa. Los est&aacute;ndares utilizados fueron de la marca SIGMA&reg;.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El almid&oacute;n total digerible se determin&oacute; en 250 mg de FIA, a los cuales se a&ntilde;adieron 300 U de &#945;&#150;amilasa termostable y 3 ml de amortiguador MOPS (50 mM, pH 7.0) y se hidrolizaron durante 45 min en ba&ntilde;o de agua a ebullici&oacute;n. Posteriormente, se agregaron 100 U de amiloglucosidasa y 4 ml de acetato de sodio (200 mM, pH 4.5); la mezcla se incub&oacute; durante 45 min a 50 &deg;C, se enfri&oacute; y se centrifug&oacute; hasta sedimentaci&oacute;n de los s&oacute;lidos insolubles. Se tomaron al&iacute;cuotas de 0.1 ml del sobrenadante por triplicado y se mezclaron con el reactivo enzim&aacute;tico glucosa oxidasa/ peroxidasa; se incub&oacute; por 10 min a 50 &deg;C y se midi&oacute; la absorbancia a 510 nm en un espectrofot&oacute;metro Cary 1E&#150;UV. Los c&aacute;lculos de concentraci&oacute;n se realizaron a partir del est&aacute;ndar de glucosa. Todos los reactivos fueron del kit enzim&aacute;tico comercial Megazyme<sup>&reg;</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cambio en la composici&oacute;n de az&uacute;cares neutros y celulosa</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los az&uacute;cares neutros se hidrolizaron a monosac&aacute;ridos y se derivatizaron a acetatos de alditol para su an&aacute;lisis por cromatograf&iacute;a de gases (Albersheim <i>et al.,</i> 1967). Dos mg de la FIA se hidrolizaron con 500 &#181;L de &aacute;cido trifluoroac&eacute;tico (2 N conteniendo 200 &#181;g de <i>mio</i>&#150;inositol como est&aacute;ndar interno) durante 1 h a 121 &deg;C. La mezcla se separ&oacute; por centrifugaci&oacute;n y el residuo se consider&oacute; celulosa; el sobrenadante se someti&oacute; a una reducci&oacute;n con 150 &#181;L de NaBH<sub>4</sub> (20 mg&middot;ml<sup>&#45;1</sup> en NH<sub>4</sub>OH 1N) y una posterior acetilaci&oacute;n con 200 &#181;L de anh&iacute;drido ac&eacute;tico y 20 &#181;L de 1&#150;metilimidazol como catalizador. El material derivatizado se resuspendi&oacute; en 2 ml de agua y 3 ml de cloroformo. Se recuper&oacute; la fase clorof&oacute;rmica; se evapor&oacute;, y los acetatos de alditol se resuspendieron en acetona para su inyecci&oacute;n en un cromat&oacute;grafo de gases Varian CP&#150;3800 con detector FID (250 &deg;C), con columna capilar DB&#150;23 de 30 m x 0.25 mm (210 &deg;C) y helio como gas acarreador (flujo constante de 3 ml&middot;min<sup>&#150;1</sup>). La integraci&oacute;n de &aacute;reas se realiz&oacute; con el software MS Workstation (Varian Inc.) versi&oacute;n 6.5 (SP1), y los c&aacute;lculos se realizaron a partir de curvas de est&aacute;ndares de ramnosa, fucosa, arabinosa, xilosa, manosa, galactosa y glucosa. Los est&aacute;ndares utilizados fueron de la marca SIGMA<sup>&reg;</sup>. La celulosa se hidroliz&oacute; durante 4 h con H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> (67 %), y se determin&oacute; el contenido de az&uacute;cares totales por el m&eacute;todo de Yemm y Willis (1954) descrito previamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Solubilidad de pectinas y hemicelulosas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; por triplicado la extracci&oacute;n qu&iacute;mica secuencial de pectinas y hemicelulosas a partir de la FIA, siguiendo la metodolog&iacute;a de Rose <i>et al.</i> (1998). La FIA hidrolizada para almid&oacute;n se mezcl&oacute; con cuatro vol&uacute;menes de etanol; se dej&oacute; reposar toda la noche y el sedimento se lav&oacute; cuatro veces con etanol. Los polisac&aacute;ridos p&eacute;cticos y hemicelul&oacute;sicos se obtuvieron secuencialmente solubilizando el sedimento en H<sub>2</sub>O, EDTA (50 mM en acetato de sodio 50 mM, pH 6.5), Na<sub>2</sub>CO<sub>3</sub> (50 mM), KOH 4 % y KOH 24 %; a las tres &uacute;ltimas soluciones se les a&ntilde;adi&oacute; el agente reductor NaBH<sub>4</sub> (20 mM), y la fracci&oacute;n KOH al 4 % se descart&oacute; por baja recuperaci&oacute;n. Cada fracci&oacute;n se obtuvo mediante la agitaci&oacute;n del sedimento por 12 h a temperatura ambiente, primero de un volumen de 20 ml de la soluci&oacute;n extractora, seguido de la separaci&oacute;n del material solubilizado (sobrenadante) por centrifugaci&oacute;n (8,500 x <i>g</i>) y una segunda extracci&oacute;n con 10 ml. Los sobrenadantes se mezclaron y la pastilla (sedimento) se utiliz&oacute; para las subsiguientes extracciones siguiendo el mismo procedimiento. Finalmente, todas las fracciones, excepto la soluble en agua, se neutralizaron con &aacute;cido ac&eacute;tico y se dializaron con membrana de celulosa de corte molecular en 6000 &#150; 8000 Daltons (Sigma<sup>&reg;</sup>) contra agua destilada. Las fracciones dializadas se filtraron con papel de fibra de vidrio (GF/A) y se almacenaron hasta su uso en la determinaci&oacute;n de &aacute;cidos ur&oacute;nicos, az&uacute;cares totales, az&uacute;cares neutros y masa molecular aparente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Despolimerizaci&oacute;n de pectinas y hemicelulosas</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La masa molecular aparente, pectinas y hemicelulosas se determinaron por cromatograf&iacute;a de exclusi&oacute;n molecular (CEM) con la metodolog&iacute;a de Rose <i>et al.</i> (1998), con algunas modificaciones. Se inyect&oacute; una cantidad equivalente a 1 mg de &aacute;cidos ur&oacute;nicos en una columna (60 x 1.5 cm) de agarosa CL&#150;6B. La muestra se eluy&oacute; a flujo constante (33.3 ml&middot;h<sup>&#150;1</sup>) con acetato de amonio 0.2 M (pH de 5.2). El volumen eluido se colect&oacute; en un fraccionador BioRad (modelo 2110) a vol&uacute;menes de 1.9 ml y se determin&oacute; el contenido de &aacute;cidos ur&oacute;nicos (Ahmed y Labavitch, 1977) de cada fracci&oacute;n para obtener el perfil de eluci&oacute;n y dispersi&oacute;n. El volumen muerto y volumen total de eluci&oacute;n de la columna se determinaron inyectando glucosa y un dextrano de 2'000,000 Daltones (Sigma&reg;).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de datos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar, considerando como tratamientos los niveles del estado de madurez descritos m&aacute;s adelante. En las variables de composici&oacute;n y firmeza de los frutos se realizaron an&aacute;lisis de varianza (Minitab versi&oacute;n 15); en caso de valores P&lt;0.05, se hizo una comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias por la prueba de Tukey (<i>P</i><u>&lt;</u>0.05). El tama&ntilde;o molecular se presenta en perfiles de eluci&oacute;n y se compara subjetivamente con base en la distribuci&oacute;n de ur&oacute;nidos o az&uacute;cares.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los estados de madurez en que se realizaron las evaluaciones de las variables de respuesta, se determinaron de manera subjetiva (Baez, 1998). Los frutos se cortaron longitudinalmente de ambos lados cuidando seguir la trayectoria del hueso desde el &aacute;pice hasta el &aacute;rea de inserci&oacute;n del ped&uacute;nculo. Se estim&oacute; el porcentaje de desarrollo de color (de crema a naranja) sobre la superficie total de la pulpa y se asignaron los estados de madurez seg&uacute;n se indica en el <a href="#c1">Cuadro 1</a>.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v18n1/a1c1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Firmeza</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La reducci&oacute;n total de la firmeza (<a href="#f1">Figura 1</a>) se distribuy&oacute; en un 40 % en la maduraci&oacute;n de estado de madurez 2 al 3 (ablandamiento inicial); un 44 % en el cambio del estado de madurez 3 al 4 (ablandamiento intermedio); y, finalmente, de un 9 % entre el estado de madurez 4 y el 5 (ablandamiento final). La maduraci&oacute;n progresiva y el ablandamiento de la pulpa indicaron una maduraci&oacute;n distintiva en los frutos de mango 'Kent' (Siller&#150;Cepeda <i>et al.,</i> 2009). Para los fines de esta investigaci&oacute;n, el periodo de ablandamiento se defini&oacute; como etapa inicial (de la madurez 2 a 3), intermedia (de madurez 3 a 4) y tard&iacute;a (de madurez 4 a 5), encontrando la mayor velocidad de p&eacute;rdida de firmeza en los tres primeros estados de madurez.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v18n1/a1f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de &aacute;cidos ur&oacute;nicos, az&uacute;cares totales, almid&oacute;n y celulosa</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los frutos de mango presentaron variaciones significativas en los contenidos de &aacute;cidos ur&oacute;nicos, az&uacute;cares totales, almid&oacute;n y celulosa (<a href="#c2">Cuadro 2</a>). La concentraci&oacute;n de almid&oacute;n se redujo en un 99.1 % del estado 2 al 5, evento que ocurri&oacute; principalmente en el periodo de ablandamiento inicial, donde se degrad&oacute; el 90 % de este polisac&aacute;rido. El almid&oacute;n fue el polisac&aacute;rido de mayor abundancia en los frutos en madurez 2, y su reducci&oacute;n significativa durante la fase inicial del ablandamiento sugiere una posible contribuci&oacute;n en esa etapa; sin embargo, en las etapas intermedia y tard&iacute;a, la concentraci&oacute;n de almid&oacute;n fue baja y no present&oacute; cambios significativos. La acumulaci&oacute;n de &aacute;cidos ur&oacute;nicos en la etapa de ablandamiento inicial coincide con lo reportado en mango 'Tommy Atkins' (Muda <i>et al.,</i> 1995), y sugiere una s&iacute;ntesis de pectinas posiblemente a partir de la interconversi&oacute;n de az&uacute;cares de reserva. La reducci&oacute;n en az&uacute;cares totales, almid&oacute;n y celulosa durante la maduraci&oacute;n de los frutos de mango 'Kent' indic&oacute; cambios cuantitativos en los pol&iacute;meros insolubles en alcohol, mismos que son convertidos a oligosac&aacute;ridos y monosac&aacute;ridos que imparten las caracter&iacute;sticas de textura y sabor del fruto (Yashoda <i>et al.,</i> 2006). Dicha conversi&oacute;n se induce mediante el est&iacute;mulo hormonal del etileno, el cual activa la expresi&oacute;n g&eacute;nica de hidrolasas de carbohidratos estructurales y de reserva, entre otros genes de la maduraci&oacute;n (Roe y Bruemmer, 1981; Sen <i>et al.,</i> 1985; Prasanna <i>et al.,</i> 2003).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v18n1/a1c2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cambio en la composici&oacute;n de az&uacute;cares neutros totales</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La glucosa represent&oacute; el 82.5 % del total de az&uacute;cares neutros de la FIA y se perdieron cerca de 1,500 mg&middot;100 g<sup>&#150;1</sup> peso fresco (pf) entre las etapas de madurez 2 y 3 (<a href="/img/revistas/rcsh/v18n1/a1c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). En el estado 4 se perdieron 1,234 mg&middot;100 g<sup>&#150;1</sup> pf, y los contenidos de glucosa en los estados 4 y 5 no fueron significativamente diferentes. Despu&eacute;s de la glucosa, la galactosa y la arabinosa fueron los segundos en abundancia con una proporci&oacute;n cercana al 7 % cada uno. La galactosa redujo en un 49 % su concentraci&oacute;n en el cambio de la madurez 2 a la 3, mientras que la arabinosa no present&oacute; cambios significativos. El resto de los az&uacute;cares mantuvieron valores bajos y relativamente constantes. El ablandamiento inicial se caracteriz&oacute; por una reducci&oacute;n en el contenido de glucosa y galactosa; mientras que, durante el ablandamiento intermedio y final, la p&eacute;rdida de ambos monosac&aacute;ridos fue progresiva, pero en menor grado. El incremento en las concentraciones de ramnosa y xilosa en la madurez 3, coincidi&oacute; con el aumento en &aacute;cidos ur&oacute;nicos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Solubilidad de pectinas y hemicelulosas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La extracci&oacute;n qu&iacute;mica secuencial de los polisac&aacute;ridos de la pared celular revel&oacute; cambios importantes tanto en la matriz p&eacute;ctica como en la hemicelul&oacute;sica. Los rendimientos en az&uacute;cares totales y en &aacute;cidos ur&oacute;nicos de las pectinas solubilizadas en H<sub>2</sub>O, CDTA y Na<sub>2</sub>CO<sub>3</sub>, se muestran en el <a href="#c4">Cuadro 4</a>. La fracci&oacute;n H<sub>2</sub>O represent&oacute; m&aacute;s del 80 % de los &aacute;cidos ur&oacute;nicos extra&iacute;dos, seguida de la fracci&oacute;n EDTA.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v18n1/a1c4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de los cambios en az&uacute;cares neutros de las fracciones p&eacute;cticas se muestran en el <a href="/img/revistas/rcsh/v18n1/a1c5.jpg" target="_blank">Cuadro 5</a>. La acumulaci&oacute;n de az&uacute;cares totales en las pectinas solubles en H<sub>2</sub>O en la madurez 3 coincidi&oacute; con un aumento significativo en el contenido de arabinosa, la cual represent&oacute; m&aacute;s del 65 % de esa fracci&oacute;n. La ramnosa, aunque presente en bajas concentraciones, tambi&eacute;n aument&oacute; significativamente en la madurez 3, en contraste con la reducci&oacute;n que presentaron los residuos de glucosa, manosa, xilosa y fucosa. La acumulaci&oacute;n de &aacute;cidos ur&oacute;nicos totales en los frutos de mango 'Kent' en estado de madurez 3 coincidi&oacute; con el aumento de ur&oacute;nicos en la fracci&oacute;n EDTA, lo cual sugiere la posible acumulaci&oacute;n de pectinas con asociaci&oacute;n tipo i&oacute;nica; sin embargo, en la fracci&oacute;n p&eacute;ctica hidrosoluble tambi&eacute;n se present&oacute; un ligero aumento en ur&oacute;nicos, aunque &eacute;ste no fue significativo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s, las pectinas hidrosolubles presentaron en la madurez 3 una acumulaci&oacute;n significativa de az&uacute;cares totales que cromatogr&aacute;ficamente se identific&oacute; en la concentraci&oacute;n de arabinosa. Simult&aacute;neo al comportamiento anterior, en las pectinas unidas covalentemente se redujo el contenido de arabinosa, lo cual sugiere un posible desmantelamiento de esas estructuras. La acumulaci&oacute;n de pectinas solubles en agua ha sido reportada durante la maduraci&oacute;n temprana de mango 'Tommy Atkins' y 'Keitt' (Mitcham y MacDonald, 1992; Muda <i>et al.,</i> 1995). La glucosa, xilosa, manosa y fucosa en las pectinas solubles en agua redujeron progresivamente su concentraci&oacute;n por efecto de la maduraci&oacute;n de los frutos; sin embargo, la glucosa tambi&eacute;n puede estar asociada a la presencia de dextrinas de mediano y alto peso molecular (derivadas de la hidr&oacute;lisis incompleta de almid&oacute;n), las cuales son solubles en agua (Sen <i>et al.,</i> 1985). En todas las fracciones p&eacute;cticas, el contenido de arabinosa fue representativo y present&oacute; una reducci&oacute;n progresiva hacia los estados 4 y 5. El alto contenido de arabinosa en las fracciones p&eacute;cticas y su p&eacute;rdida a trav&eacute;s de la maduraci&oacute;n fue reportada en frutos de mango 'Keitt', 'Tommy Atkins' y 'Alfonso' (Mitcham y MacDonald, 1992; Muda <i>et al.,</i> 1995; Yashoda <i>et al.,</i> 2006). Prasanna <i>et al.</i> (2003, 2005) reportaron el aislamiento y caracterizaci&oacute;n de arabinogalactanos en mango 'Alfonso', los cuales presentaron una proporci&oacute;n 1:3 en el contenido de arabinosa:galactosa, y redujeron extensivamente la masa molecular con la maduraci&oacute;n del fruto posiblemente por la acci&oacute;n de tres isoformas de &#946;&#150;galactosidasas. Sin embargo, en el presente estudio se muestra que la relaci&oacute;n de arabinosa con respecto a galactosa fue mayor en todas las fracciones p&eacute;cticas, lo cual indica la presencia de polisac&aacute;ridos p&eacute;cticos con alta ramificaci&oacute;n de arabinosa. Es importante mencionar que las estructuras de arabinanos y arabinogalactanos se relacionan con funciones de restricci&oacute;n de la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica de pectinas a trav&eacute;s de obstrucciones en la formaci&oacute;n de enlaces i&oacute;nicos entre homogalacturonanos, llegando incluso a influir en la capacidad de retenci&oacute;n de agua en el apoplasto (Jones <i>et al.,</i> 2003; Moore <i>et al.,</i> 2008). En la fracci&oacute;n hemicelul&oacute;sica, la reducci&oacute;n m&aacute;s significativa de glucosa ocurri&oacute; en la etapa tard&iacute;a del ablandamiento; adem&aacute;s, la concentraci&oacute;n glucosa:xilosa se present&oacute; en una proporci&oacute;n 1.6:1 en la madurez 2 y se modific&oacute; gradualmente hasta 1.1:1 en la madurez 5. Lo anterior sugiere un metabolismo activo sobre polisac&aacute;ridos del tipo xiloglucano, en los cuales la estructura central de &#946;&#150;D (1&#150;4)&#150;glucano es similar a la celulosa, pero con sustituciones de &#945;&#150;D&#150;xilosa a intervalos regulares de 3 residuos de glucosa (Brummell y Harpster, 2001).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Despolimerizaci&oacute;n de pectinas y hemicelulosas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La distribuci&oacute;n de la masa molecular aparente de las pectinas solubles en H<sub>2</sub>O y EDTA de los frutos en madurez 2 y 5, se muestra en la <a href="#f2">Figura 2</a>. En la madurez 5, las pectinas hidrosolubles eluyeron en un perfil de mayor polidispersi&oacute;n en comparaci&oacute;n con el perfil de la madurez 2 (<a href="#f2">Figura 2A</a>). El perfil de eluci&oacute;n de las pectinas solubles en EDTA present&oacute; un cambio en la distribuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de ur&oacute;nicos, el cual es caracter&iacute;stico de la despolimerizaci&oacute;n de pectinas (<a href="#f2">Figura 2B</a>); en la madurez 2, la mayor concentraci&oacute;n eluy&oacute; entre los 70 y 120 ml; mientras que, en la madurez 5 la concentraci&oacute;n de poliur&oacute;nidos se desplaz&oacute; hacia el rango de 90 a 150 ml de eluci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v18n1/a1f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los polisac&aacute;ridos hemicelul&oacute;sicos de la fracci&oacute;n KOH 24 % presentaron un tama&ntilde;o molecular mayor al de las pectinas solubles en H<sub>2</sub>O y EDTA (<a href="/img/revistas/rcsh/v18n1/a1f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). Aunque la distribuci&oacute;n molecular de las hemicelulosas estuvo repartida en la totalidad del volumen de eluci&oacute;n, la mayor proporci&oacute;n se colect&oacute; entre los 50 y 80 ml. Los frutos en madurez presentaron un patr&oacute;n de despolimerizaci&oacute;n de hemicelulosas, ya que los polisac&aacute;ridos se concentraron entre los 60 y 110 ml, donde eluyen compuestos de menor tama&ntilde;o.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tama&ntilde;o molecular de las pectinas quelatadas fue mayor que las pectinas hidrosolubles. El cambio en la distribuci&oacute;n del tama&ntilde;o de las pectinas solubles en agua por efecto de la maduraci&oacute;n de los frutos se considera atipico, ya que muestra una acumulaci&oacute;n de pectinas de mayor tama&ntilde;o. No obstante, el patr&oacute;n de polidispersi&oacute;n y la reducci&oacute;n de los ur&oacute;nicos cercanos al volumen muerto de las pectinas hidrosolubles de los frutos en madurez 5, indicaron la posible acci&oacute;n despolimerizante de pectinasas (Yashoda <i>et al.,</i> 2006). Esta reducci&oacute;n en grado de polimerizaci&oacute;n ha sido asociada al ablandamiento de frutos de mango 'Tommy Atkins' y 'Kaew' (Roe y Bruemmer, 1981; Mitcham y McDonald, 1992; Muda <i>et al.,</i> 1995; Varanyanond <i>et al.,</i> 1999). La reducci&oacute;n de la masa molecular de las fracciones EDTA y KOH 24 % fue evidente en la madurez 5, lo que indic&oacute; que la despolimerizaci&oacute;n de pectinas de la l&aacute;mina media (quelatadas) y hemicelulosas de alto grado de asociaci&oacute;n a microfibrillas de celulosa, son factores que tambi&eacute;n contribuyen al ablandamiento del fruto.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ablandamiento de los frutos de mango 'Kent' se encuentra diferencialmente asociado con la degradaci&oacute;n de los polisac&aacute;ridos de la l&aacute;mina media y de la pared celular primaria. La degradaci&oacute;n de almid&oacute;n se asoci&oacute; con el ablandamiento temprano de los frutos; sin embargo, los cambios en la composici&oacute;n de la pared celular contribuyeron al ablandamiento tard&iacute;o de los frutos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A la colaboraci&oacute;n t&eacute;cnica de Manuel A. B&aacute;ez Sa&ntilde;udo, Laura Contreras Angulo y Rosalba Contreras Mart&iacute;nez. Al Fondo Mixto del estado de Sinaloa por el apoyo financiero (Proyecto clave Sin&#150;2008&#150;C01&#150;98642).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AHMED, A. E. R.; LABAVITCH, J. M. 1977. A simplified method for accurate determination of cell wall uronide content. Food Biochemistry 1: 361&#150;365.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680039&pid=S1027-152X201200010000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ALBERSHEIM, P.; NEVINS, D. J.; ENGLISH, P. D.; KARR, A. 1967. A method for the analysis of sugars in plant cell&#150;wall polysaccharides by gas&#150;liquid chromatography. Carbohydrate Research 5: 340&#150;345.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680041&pid=S1027-152X201200010000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ALI, Z. M.; ARMUGAM, S.; LAZAN, H. 1995. <i>&#946;</i>&#150;Galactosidase and its significance in ripening mango fruit. Phytochemistry 38: 1109&#150;1114.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680043&pid=S1027-152X201200010000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">B&Aacute;EZ S., R. 1998. Norma mexicana de calidad para mango fresco de exportaci&oacute;n. Comit&eacute; T&eacute;cnico Cient&iacute;fico de Empacadores de Mango de Exportaci&oacute;n, A. C. (EMEX, A. C.). Guadalajara, Jalisco. M&eacute;xico. 4 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680045&pid=S1027-152X201200010000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BRUMMELL, D. A. 2006. Cell wall disassembly in ripening fruit. Functional Plant Biology 33: 103&#150;119.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680047&pid=S1027-152X201200010000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">BRUMMELL, D. A.; HARPSTER, M. H. 2001. Cell wall metabolism in fruit softening and quality and its manipulation in transgenic plants. Plant Molecular Biology 47: 311&#150;340.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680049&pid=S1027-152X201200010000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">GAL&Aacute;N&#150;SA&Uacute;CO V. 1999. El Cultivo del Mango. Ed. Mundi&#150;Prensa. Malaga, Madrid. 298 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680051&pid=S1027-152X201200010000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">IRETA, A.; GUZMAN, C. 2002. Gu&iacute;a t&eacute;cnica para la producci&oacute;n de mango en Sinaloa. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias. Folleto T&eacute;cnico 22. Culiac&aacute;n, Sinaloa. 152 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680053&pid=S1027-152X201200010000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">JONES, L.; MILNE, J. L.; ASHFORD, D.; MCQUEEN&#150;MASON, S. J. 2003. Cell wall arabinan is essential for guard cell function. Plant Biology 100: 11783&#150;11788.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680055&pid=S1027-152X201200010000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MITCHAM, E. J.; MCDONALD, R. E. 1992. Cell wall modification during ripening of 'Keitt' and 'Tommy Atkins' mango fruit. Journal of American Society for Horticultural Science 117: 919&#150;924.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680057&pid=S1027-152X201200010000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MOORE, J. P.; FARRANT, J. M.; DRIOUICH, A. 2008. A role for pectin&#150;associated arabinans in maintaining the flexibility of the plant cell wall during water deficit stress. Plant Signaling &amp; Behavior 3(2): 102&#150;104.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680059&pid=S1027-152X201200010000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MUDA, P.; SEYMOUR, G. B.; ERRINGTON, N.; TUCKER, G. A. 1995. Compositional changes in cell wall polymers during mango fruit ripening. Carbohydrate Polymers 26: 255&#150;260.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680061&pid=S1027-152X201200010000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">OLL&Eacute;, D.; LOZANO, Y. F.; BRILLOUET, J. 1996. Isolation and characterization of soluble polysaccharides and insoluble cell wall material of the pulp from four mango (<i>Mangifera indica</i> L.) cultivars. Journal of Agricultural and Food Chemistry 44: 2658&#150;2662.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680063&pid=S1027-152X201200010000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PRASANNA, V.; PRABHA, T. N.; THARANATHAN, R. N. 2005. Multiple forms of &#946;&#150;galactosidase from mango (<i>Mangifera indica</i> L. 'Alphonso') fruit pulp. Journal of the Science of Food and Agriculture 85: 797&#150;803.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680065&pid=S1027-152X201200010000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PRASANNA, V.; YASHODA, H. M.; PRABHA, T. N.; THARA&#150;NATHAN, R. N. 2003. Pectic polysaccharides during ripening of mango (<i>Mangifera indica</i> L). Journal of the Science of Food and Agriculture 83: 1182&#150;1186.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680067&pid=S1027-152X201200010000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ROE, B.; BRUEMMER, J. H. 1981. Changes in pectic substances and enzymes during ripening and storage of 'Keitt' mangoes. Journal of Food Science 46: 186&#150;189.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680069&pid=S1027-152X201200010000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ROSE, J. K. C.; HADFIELD, K. A.; LABAVITCH, J. M.; BENETT, A. B. 1998. Temporal sequence of cell wall disassembly in rapidly ripening melon fruit. Plant Physiology 117: 345&#150;361.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680071&pid=S1027-152X201200010000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SEN, S.; CHATTERJEE, B. K.; ROY, H. B. 1985. Amylase activity in ripening mango (<i>Mangifera indica</i> L.) fruit. Indian Biology 17: 25&#150;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680073&pid=S1027-152X201200010000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SILLER&#150;CEPEDA, J.; MUY&#150;RANGEL, D.; B&Aacute;EZ&#150;SA&Ntilde;UDO, M.; ARAIZA&#150;LIZARDE, E.; IRETA&#150;OJEDA, A. 2009. Calidad poscosecha de variedades de mango de maduraci&oacute;n temprana, intermedia y tard&iacute;a. Revista Fitotecnia Mexicana 32: 45&#150;52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680075&pid=S1027-152X201200010000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">THARANATHAN, R. N.; YASHODA H. M.; PRABHA, T. N. 2006. Mango (<i>Mangifera indica</i> L.), "The King of Fruits"&#151;An Overview. Food Reviews International 22: 95&#150;123.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680077&pid=S1027-152X201200010000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">VARANYANOND, W.; NAOHARA, J.; WONGKRAJANG, K.; MANABE, M. 1999 Changes in pectin content and average molecular weight of pectin during maturation of the mango 'Kaew'. Food Science Technology Research 5: 362&#150;364.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680079&pid=S1027-152X201200010000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">YASHODA, H.M.; PRABHA, T.N.; THARANATHAN, R. N. 2006. Mango ripening: changes in cell wall constituents in relation to textural softening. Journal of the Science of Food and Agriculture 86: 713&#150;721.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680081&pid=S1027-152X201200010000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">YEMM, E.W.; WILLIS, A. J. 1954. The estimation of carbohydrates in plant extracts by anthrone. Biochemistry Journal 57: 508&#150;514.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6680083&pid=S1027-152X201200010000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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