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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto del ácido acetil salicílico y Bacillus subtilis en la infección causada por Cucumber mosaic virus en calabacita]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Acetyl salicylic acid and Bacillus subtilis, as resistance promoters, were evaluated on Cucurbita pepo cv. Zucchinni grey infected by Cucumber mosaic virus (CMV). A complete randomized experimental design with five treatments and eight replications was established under greenhouse conditions: Bacillus subtilis applied to soil, B. subtilis applied to leaves, B. subtilis applied to soil and leaves, acetyl salicylic acid applied to leaves, and a Control (without any treatment). Twenty days-old plants were mechanically inoculated with Cucumber mosaic virus (CMV) and 15 days after the inoculation, fresh plant tissue weights, and viral concentration obtained by DAS-ELISA test, were evaluated. Results showed that plants inoculated with B. subtilis applied to soil and those treated with acetyl salicylic acid had significantly more fresh plant tissue weight compared with Control (P&#8804;0.05). Plants of all treatments treated with B. subtilis (to soil, leaves and to soil and leaves) had a significant lower viral concentration compared with Control (P&#8804;0.05) in the DAS- ELISA test.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto del &aacute;cido acetil salic&iacute;lico y <b><i>Bacillus subtilis</i></b> en la infecci&oacute;n causada por <b><i>Cucumber mosaic virus</i></b> en calabacita</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effect of acetyl salicylic acid and <i>Bacillus subtilis </i></b><b>on <i>Cucumber mosaic virus gourd infection</i></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>E. Maldonado&#150;Cruz<sup>1</sup>, D. L. Ochoa&#150;Mart&iacute;nez<sup>2*</sup> y  B. Tlapal&#150;Bola&ntilde;os<sup>1</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup> <i>Departamento de Parasitolog&iacute;a Agr&iacute;cola, Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Km. 38.5 Carretera M&eacute;xico&#150;Texcoco. Chapingo, Estado de M&eacute;xico. C. P. 56230. M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Orientaci&oacute;n en Fitopatolog&iacute;a. Colegio de Postgraduados. Km. 36.5 Carretera M&eacute;xico&#150;Texcoco. Montecillo, Estado de M&eacute;xico. C. P. 56230. M&eacute;xico. Correo&#150;e:</i> <a href="mailto:ldaniel@colpos.mx">ldaniel@colpos.mx</a> <i>(*Autor responsable).</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 12 de febrero, 2007    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> Aceptado: 28 de agosto, 2007</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dos conocidos agentes inductores de resistencia en las plantas, &aacute;cido acetil salic&iacute;lico y <i>Bacillus subtilis</i>, fueron evaluados con la finalidad de conocer su efecto en la infecci&oacute;n causada por el <i>Cucumber mosaic virus </i>(CMV) en <i>Cucurbita pepo </i>var. Zucchini grey. Se estableci&oacute; un dise&ntilde;o experimental completamente al azar en invernadero con cinco tratamientos y ocho repeticiones: <i>Bacillus subtilis </i>aplicado al suelo, <i>B. subtilis </i>aplicado al follaje; <i>B. subtilis </i>aplicado al suelo y al follaje, &aacute;cido acetil salic&iacute;lico aplicado al follaje y testigo (sin aplicaci&oacute;n de ninguno de los productos antes indicados). Plantas de 20 d&iacute;as de edad fueron inoculadas mec&aacute;nicamente con <i>Cucumber mosaic virus </i>y 15 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n se evaluaron las variables peso de biomasa fresca y concentraci&oacute;n viral mediante la t&eacute;cnica de DAS&#150;ELISA. Los resultados muestran que las plantas inoculadas con <i>B. subtilis </i>al suelo y &aacute;cido acetil salic&iacute;lico tuvieron significativamente mayor peso de biomasa fresca comparados con el tratamiento Testigo (<i>P</i>&#8804;0.05). Las plantas de todos los tratamientos donde se aplic&oacute; <i>B. subtilis </i>(al suelo, al follaje o al suelo y al follaje) tuvieron una concentraci&oacute;n viral significativamente menor comparadas con el testigo (<i>P</i>&#8804;0.05) en la prueba de ELISA.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>bacterias promotoras del crecimiento, resistencia sist&eacute;mica adquirida, resistencia sist&eacute;mica inducida, <i>Cucurbita pepo </i>var. Zucchinni grey.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Acetyl salicylic acid and <i>Bacillus subtilis</i>, as resistance promoters, were evaluated on <i>Cucurbita pepo </i>cv. Zucchinni grey infected by <i>Cucumber mosaic virus </i>(CMV). A complete randomized experimental design with five treatments and eight replications was established under greenhouse conditions: <i>Bacillus subtilis </i>applied to soil, <i>B. subtilis </i>applied to leaves, <i>B. subtilis </i>applied to soil and leaves, acetyl salicylic acid applied to leaves, and a Control (without any treatment). Twenty days&#150;old plants were mechanically inoculated with <i>Cucumber mosaic virus </i>(CMV) and 15 days after the inoculation, fresh plant tissue weights, and viral concentration obtained by DAS&#150;ELISA test, were evaluated. Results showed that plants inoculated with <i>B. subtilis </i>applied to soil and those treated with acetyl salicylic acid had significantly more fresh plant tissue weight compared with Control (<i>P</i>&#8804;0.05). Plants of all treatments treated with <i>B. subtilis </i>(to soil, leaves and to soil and leaves) had a significant lower viral concentration compared with Control (<i>P</i>&#8804;0.05) in the DAS&#150; ELISA test.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b>plant growth promoting rhizobacteria, systemic acquired resistance, systemic induced resistance, <i>Cucurbita pepo </i>cv. Zucchinni grey.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Debido a su potencial destructivo y dif&iacute;cil manejo, las enfermedades virales de la calabaza (<i>Cucurbita pepo </i>L.) son de gran importancia en la producci&oacute;n comercial de este cultivo (Zitter <i>et al</i>., 2004). El <i>Cucumber mosaic virus </i>(CMV, virus mosaico del pepino) afecta a la calabacita donde ocasiona p&eacute;rdidas econ&oacute;micas de gran importancia (Conti <i>et al., </i>2000). Las enfermedades virales han cobrado gran importancia en los &uacute;ltimos a&ntilde;os, debido a que su manejo se ha basado principalmente en la obtenci&oacute;n de variedades resistentes, saneamiento y prevenci&oacute;n sin que hasta el momento exista alg&uacute;n producto parecido a un viricida, con el cual se les pueda combatir con &eacute;xito una vez que las plantas est&aacute;n infectadas (Ponz, 2000). La resistencia sist&eacute;mica es una alternativa con gran potencial de aplicaci&oacute;n para el manejo de enfermedades virales. Actualmente, se conocen dos tipos de resistencia, la resistencia sist&eacute;mica adquirida (RSA) y la resistencia sist&eacute;mica inducida (RSI). La RSA puede ser inducida por agentes bi&oacute;ticos (tales como pat&oacute;genos atenuados) o abi&oacute;ticos (como compuestos qu&iacute;micos) y se asocia al incremento de la concentraci&oacute;n de la fitohormona salicilato y a la producci&oacute;n de prote&iacute;nas relacionadas con patog&eacute;nesis (PRP). La RSI es estimulada por rizobacterias promotoras del crecimiento y se asocia a la mayor sensibilidad a las fitohomonas etileno y jasmonato sin producci&oacute;n de prote&iacute;nas relacionadas con patog&eacute;nesis. Ambos mecanismos pueden resultar en una resistencia general de las plantas hacia diversos pat&oacute;genos (Pieterse <i>et al</i>., 1996; Kloepper <i>et al., </i>2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se sabe que plantas de tabaco resistentes al <i>Tobacco mosaic virus </i>(TMV) sintetizan diversas prote&iacute;nas relacionadas con patog&eacute;nesis (PRP) poco despu&eacute;s de la infecci&oacute;n y que la aplicaci&oacute;n ex&oacute;gena de &aacute;cido acetil salic&iacute;lico (AAS) induce la expresi&oacute;n de los genes que sintetizan &eacute;stas PRP y con ello la resistencia de las plantas al virus (Malamy <i>et al., </i>1990) u otros fitopat&oacute;genos como bacterias y hongos (Chivasa <i>et al., </i>1997). En calabacita se ha encontrado que el &aacute;cido acetil salic&iacute;lico podr&iacute;a funcionar como un compuesto que transmite la se&ntilde;al de resistencia contra el <i>Tobacco necrosis virus </i>(Metraux <i>et al., </i>1990). Diversas especies de bacterias de los g&eacute;neros <i>Pseudomonas </i>y <i>Bacillus </i>han sido utilizadas para inducir resistencia sist&eacute;mica contra enfermedades producidas por diferentes hongos, bacterias, nematodos y virus en cultivos como jitomate, pepino, chile y cacahuate (Vallad y Goodman, 2004). La presente investigaci&oacute;n tuvo como objetivo evaluar el efecto de <i>Bacillus subtilis </i>y el &aacute;cido acetil salic&iacute;lico contra <i>Cucumber mosaic virus </i>en plantas de calabacita (<i>Cucurbita pepo </i>L. var. Zucchini grey) y proporcionar evidencia indirecta de que los mecanismos de resistencia (RSA y RSI) pueden ser activados en esta variedad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente trabajo se realiz&oacute; en el invernadero de Virolog&iacute;a Agr&iacute;cola del Departamento de Parasitolog&iacute;a Agr&iacute;cola de la Universidad Aut&oacute;noma Chapingo ubicado en el municipio de Texcoco, Estado de M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Siembra y trasplante de calabacita</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se sembraron semillas de calabacita variedad Zucchini grey de la empresa Caloro<sup>&reg;</sup>, en charolas de pl&aacute;stico negro de 128 cavidades conteniendo un sustrato est&eacute;ril (peatmoss). La charola fue regada diariamente hasta la emergencia de las pl&aacute;ntulas y despu&eacute;s cada tres o cuatro d&iacute;as de acuerdo con la humedad observada en el sustrato. Una vez emergidas las pl&aacute;ntulas, &eacute;stas se trasplantaron a vasos de unicel de 500 ml de capacidad que conten&iacute;an suelo de monte esterilizado con bromuro de metilo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aplicaci&oacute;n de tratamientos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se establecieron cinco tratamientos bajo un dise&ntilde;o completamente al azar con ocho repeticiones (plantas de calabacita) cada uno. Los tratamientos evaluados fueron: a) <i>Bacillus subtilis </i>aplicado al suelo; b) <i>B. subtilis </i>aplicado al follaje; c) <i>B. subtilis </i>aplicado al suelo y al follaje; d) &aacute;cido acetil salic&iacute;lico aplicado al follaje (AAS) y e) testigo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el caso de <i>Bacillus subtilis</i>, se utiliz&oacute; el producto comercial Biologic<sup>&reg;</sup> (Gustafson LLC, USA), el cual consiste en un concentrado soluble de esta bacteria m&aacute;s &aacute;cidos h&uacute;micos. Este producto se aplic&oacute; al sustrato de germinaci&oacute;n de la semilla en el alm&aacute;cigo a una dosis de 5 ml&#183;litro<sup>&#150;1</sup> de agua con un aspersor manual a partir del momento de la siembra, y posteriormente, al suelo una vez realizado el trasplante de las pl&aacute;ntulas. En el caso de la aplicaci&oacute;n al follaje, las aspersiones se realizaron hasta punto de goteo a una dosis de 5 ml&#183;litro<sup>&#150;1</sup> de agua con un aspersor manual a partir del momento de la emergencia de las pl&aacute;ntulas y hasta el final del experimento. La aplicaci&oacute;n simult&aacute;nea del producto al suelo y al follaje se realiz&oacute; en la forma, dosis y tiempos antes indicados. El AAS se aplic&oacute; al follaje hasta punto de goteo a una dosis de 1 g&#183;litro<sup>&#150;1</sup> de agua con un aspersor manual a partir del momento de la emergencia de las pl&aacute;ntulas. En este caso el AAS fue diluido primeramente en aproximadamente 2 ml de alcohol et&iacute;lico 96%, y posteriormente, en el agua. En todos los casos anteriores, la aplicaci&oacute;n de los productos se realiz&oacute; cada tercer d&iacute;a hasta el momento de la evaluaci&oacute;n del experimento. Debido al tama&ntilde;o de las plantas, durante la etapa de alm&aacute;cigo y las tres primeras semanas despu&eacute;s del trasplante se prepararon 50 ml de cada producto y posteriormente 100 ml hasta la evaluaci&oacute;n del experimento. El tratamiento testigo consisti&oacute; en plantas de calabacita inoculadas con CMV sin aplicaci&oacute;n de los productos antes indicados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Inoculaci&oacute;n del <i>Cucumber mosaic virus</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas de todos los tratamientos fueron inoculadas mec&aacute;nicamente con <i>Cucumber mosaic virus </i>a los 20 d&iacute;as de edad (tres d&iacute;as despu&eacute;s del trasplante), utilizando como fuente de in&oacute;culo 2 g de tejido foliar aproximadamente de una planta de tabaco infectada con dicho virus que mostraba s&iacute;ntomas de mosaico, el cual fue macerado en una soluci&oacute;n amortiguadora de fosfatos 0.025M pH 7.2 + DIECA (&aacute;cido dietilditiocarb&aacute;mico).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variables evaluadas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el prop&oacute;sito de conocer si exist&iacute;an diferencias en el peso de biomasa fresca de las plantas de cada tratamiento, a los 18 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n del CMV, con unas tijeras de podar se cortaron ocho plantas a la altura del cuello de cada uno de ellas y se metieron en bolsas de pl&aacute;stico previamente etiquetadas con el nombre del tratamiento para su traslado al laboratorio. En laboratorio se pes&oacute; cada planta de manera individual en una balanza granataria.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tejido foliar de las ocho plantas de cada tratamiento fue sometido a la prueba de DAS&#150;ELISA siguiendo el protocolo establecido por el proveedor de los antisueros (AGDIA, USA) para detectar de manera cuantitativa al <i>Cucumber mosaic virus </i>en cada una de ellas. Al final de la prueba se registraron los valores de absorbancia en un lector de ELISA Dynatech, Minireader II a 405 nm obtenidos en cada una de las plantas de los diferentes tratamientos. El criterio utilizado para discriminar muestras positivas fue el propuesto por Peralta y Fr&iacute;as (1987) consistente en la media m&aacute;s dos veces la desviaci&oacute;n est&aacute;ndar de los testigos negativos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La homogeneidad de varianzas y normalidad de los datos fue comprobada en el paquete estad&iacute;stico MINITAB 13.1 para las variables peso de biomasa fresca (<i>P</i>&#8804;0.05) y absorbancia (<i>P</i>&#8804;0.05). El an&aacute;lisis de la varianza se realiz&oacute; utilizando el modelo general lineal (MGL). Para la comparaci&oacute;n de medias se utiliz&oacute; la prueba de Tukey (<i>P</i>&#8804;0.05). Todos los c&aacute;lculos se realizaron utilizando el paquete estad&iacute;stico SAS 8.1.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Peso de biomasa fresca</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del an&aacute;lisis de la varianza del peso de biomasa fresco mostr&oacute; diferencias significativas entre las plantas tratadas con <i>B. subtilis</i>, &aacute;cido acetil salic&iacute;lico y el testigo (<i>P</i>&#8804;0.05). Las plantas de calabacita que fueron tratadas con <i>B. subtilis </i>aplicado al suelo y &aacute;cido acetil salic&iacute;lico aplicado al follaje tuvieron mayor tama&ntilde;o y peso de biomasa fresca comparadas con el tratamiento testigo (<a href="#cuadro1">Cuadro 1</a>, <a href="#figura1">Figura 1</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="cuadro1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n1/a8c1.jpg"></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="figura1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rcsh/v14n1/a8f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Concentraci&oacute;n viral</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con el criterio de Peralta y Frias (1987) utilizado en esta investigaci&oacute;n, el valor umbral para determinar a una muestra como positiva fue de 0.347 unidades de absorbancia a 405 nm. Con base en lo anterior, s&oacute;lo los tratamientos de &aacute;cido acetil salic&iacute;lico aplicado al follaje y el testigo fueron positivos al CMV (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n1/a8c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de varianza de la absorbancia mostr&oacute; diferencias significativas entre las plantas tratadas con <i>B. subtilis</i>, &aacute;cido acetil salic&iacute;lico y testigo (<i>P</i>&#8804;0.05). Las plantas de calabacita que fueron tratadas con <i>B. subtilis </i>aplicado al suelo, al follaje y la aplicaci&oacute;n simult&aacute;nea al suelo y al follaje tuvieron valores de absorbancia menores al testigo no tratado (<a href="/img/revistas/rcsh/v14n1/a8c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos en el presente trabajo mostraron que <i>B. subtilis </i>aplicado al suelo y &aacute;cido acetil salic&iacute;lico aplicado al follaje incrementaron significativamente el peso de biomasa fresca de plantas de calabacita var. Zucchinni grey. Resultados similares se han reportado con plantas de pepino infectadas con <i>P. syringae </i>pv. <i>lachrymans </i>y tratadas con <i>Bacillus subtilis </i>cepa GB03, <i>Bacillus pumilus </i>INR7 y <i>Curtobacterium flaccumfaciens </i>con la finalidad de evaluar resistencia sist&eacute;mica inducida y severidad, donde se observ&oacute; una promoci&oacute;n significativa del crecimiento en las plantas inoculadas con estas bacterias comparada con el tratamiento testigo que no fue tratado (Raupach y Kloepper, 2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, un valor muy alto en peso de biomasa fresca y similar al del tratamiento <i>Bacillus subtilis </i>aplicado al suelo se obtuvo en el tratamiento con &aacute;cido acetil salic&iacute;lico. Este comportamiento es diferente del reportado por L&oacute;pez y Scott (1997) quienes mencionan que el crecimiento del tallo de explantes de papa se inhibe con la aplicaci&oacute;n de &aacute;cido acetil salic&iacute;lico a una concentraci&oacute;n de 0.018 a 0.180 g&#183;litro<sup>&#150;1</sup>, o bien, en el caso del frijol donde al aplicar 0.25 a 0.5 g&#183;litro<sup>&#150;1</sup> de &aacute;cido acetil salic&iacute;lico se registr&oacute; una fuerte p&eacute;rdida de peso de discos foliares de esta especie que no se observ&oacute; cuando se utiliz&oacute; una concentraci&oacute;n de 0.1 g&#183;litro<sup>&#150;1 </sup>(Canakci, 2003).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas tratadas con <i>Bacillus subtilis </i>aplicado al follaje tuvieron un peso de biomasa fresca inferior al registrado en el caso de la aplicaci&oacute;n de <i>Bacillus subtilis </i>al suelo. Lo anterior se debe a que las bacterias del g&eacute;nero <i>Bacillus </i>son habitantes comunes del suelo y no del follaje (Olsen y Baker, 1967). Se esperaba que la aplicaci&oacute;n simult&aacute;nea de <i>Bacillus subtilis </i>al suelo y al follaje incrementara el peso de biomasa fresca al incrementar la superficie de contacto de esta bacteria con la planta que pudiera influir en un mayor est&iacute;mulo de los mecanismos de defensa.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El menor peso de biomasa fresca registrado en el tratamiento testigo puede atribuirse a la infecci&oacute;n viral, ya que se sabe que uno de los efectos de estos pat&oacute;genos en las plantas es precisamente una disminuci&oacute;n en su crecimiento. Plantas infectadas por <i>Cucumber mosaic virus </i>pueden quedar achaparradas en grado considerable o morir por la infecci&oacute;n ocasionada por el virus (Agrios, 2004). En el caso del pepino, se observa que a los cuatro o cinco d&iacute;as despu&eacute;s de haberse producido la inoculaci&oacute;n con <i>Cucumber mosaic virus</i>, todo crecimiento posterior disminuye dr&aacute;sticamente y las plantas se quedan enanas, debido a que los entrenudos y pec&iacute;olos del tallo se acortan y a que las hojas se desarrollan s&oacute;lo a la mitad de su tama&ntilde;o normal (Conti <i>et al.</i>, 2000). La infecci&oacute;n causada por el <i>Cucumber mosaic virus </i>ocasiona una disminuci&oacute;n del crecimiento en plantas de calabacita (Agrios, 2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los tratamientos en los que se aplic&oacute; <i>Bacillus subtilis </i>resultaron negativos al <i>Cucumber mosaic virus </i>en la prueba de DAS&#150;ELISA y sus valores de absorbancia fueron muy similares entre s&iacute; y diferentes estad&iacute;sticamente de los registrados en los tratamientos testigo y &aacute;cido acetil salic&iacute;lico. De acuerdo con van Loon <i>et al</i>. (1998), las bacterias promotoras del crecimiento, como <i>Bacillus </i>sp., constituyen uno de los diversos grupos de microorganismos asociados a las plantas con el potencial de inducir mecanismos de defensa. En este sentido, los bajos valores de absorbancia observados en las plantas tratadas con <i>Bacillus subtilis </i>pueden ser el resultado de la inducci&oacute;n de los mecanismos de resistencia en la planta, inhibici&oacute;n en la replicaci&oacute;n viral o a su diluci&oacute;n por efectos de crecimiento de la planta.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, se observ&oacute; que la aplicaci&oacute;n del &aacute;cido acetil salic&iacute;lico al follaje no afect&oacute; la concentraci&oacute;n de <i>Cucumber mosaic virus </i>comparadas con el testigo. Adicionalmente, se observ&oacute; un incremento en el crecimiento de las plantas. Esta combinaci&oacute;n tiene un potencial negativo en el manejo de la enfermedad provocada por CMV en el cultivo de calabacita en campo, pues estas plantas servir&iacute;an como fuente de in&oacute;culo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por el contrario, las plantas tratadas con <i>Bacillus subtilis </i>(ya sea al suelo o al follaje) tuvieron un mayor peso de biomasa fresca comparado con el testigo y adem&aacute;s resultaron negativas a <i>Cucumber mosaic virus </i>(<a href="/img/revistas/rcsh/v14n1/a8c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). No obstante, es m&aacute;s conveniente la aplicaci&oacute;n de <i>Bacillus subtilis </i>al suelo ya que puede obtenerse un mayor peso de biomasa fresca y una disminuci&oacute;n considerable de la concentraci&oacute;n del <i>Cucumber mosaic virus </i>en las plantas con la ventaja adicional de su f&aacute;cil aplicaci&oacute;n y menor costo comparado con la aplicaci&oacute;n simult&aacute;nea de esta misma bacteria al suelo y al follaje.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n de <i>Bacillus subtilis </i>redujo la concentraci&oacute;n de <i>Cucumber mosaic virus </i>en plantas de calabacita. El &aacute;cido acetil salic&iacute;lico no afect&oacute; la concentraci&oacute;n de <i>Cucumber mosaic viru</i>s en plantas de calabacita. La aplicaci&oacute;n de <i>Bacillus subtilis </i>al suelo y &aacute;cido acetil salic&iacute;lico al follaje a plantas de calabacita var. Zuchini increment&oacute; el peso de biomasa fresca. La aplicaci&oacute;n de <i>Bacillus subtilis </i>aument&oacute; el crecimiento y redujo la concentraci&oacute;n de <i>Cucumber mosaic virus </i>en calabacita.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">AGRIOS, G. N. 2004. Plant Pathology. 5<sup>th</sup> ed. Ed. Academic Press. San Diego, Califoria. USA. 952 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647555&pid=S1027-152X200800010000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CANAKCI, S. 2003. Effects of acetyl salicylic acid on fresh weight pigment and protein content of bean leaf discs <i>(Phaseolus vulgaris </i>L.). Acta Biologica Hungarica 54: 385&#150;392.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647557&pid=S1027-152X200800010000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CHIVASA, S.; MURPHY, A. M.; NAYLOR, M.; CARR, J. P. 1997. Salicylic acid interferes with tobacco mosaic virus replication via a novel salicylhydroxamic acid&#150;sensitive mechanism. The Plant Cell 9: 547&#150;557.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647559&pid=S1027-152X200800010000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CONTI, M.; GALLITELLI, D.; LISA, V.; LOVISOLO, O.; MARTELLI, G. P.; RAGOZZINO, A.; RANA, G. L.; VOVLAS, C. 2000. Principales virus de las plantas hort&iacute;colas. Traducido al espa&ntilde;ol de J. M. MATEO BOX. Edit. Ediciones Mundi Prensa. Espa&ntilde;a. 206 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647561&pid=S1027-152X200800010000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">KLOEPPER, J. W.; CHOONG&#150;MIN, R.; ZHANG, S. 2004. Induced systemic resistance and promotion of plant growth by <i>Bacillus </i>spp. Phytopathology 94: 1260&#150;1266.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647563&pid=S1027-152X200800010000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">L&Oacute;PEZ, D. H.; SCOTT, I. M. 1997. Induction of <i>in vitro </i>tuberization of potato microplants by acetylsalicylic acid. Journal of Plant Physiology 151: 74&#150;78.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647565&pid=S1027-152X200800010000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">MALAMY, J.; CARR, J. P.; KLESSIG, D. F.; RASKIN, I. 1990. Salicylic acid: A likely endogenous signal in the resistance response of tobacco to viral infection. Science: 1002&#150;1004.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647567&pid=S1027-152X200800010000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">METRAUX, J. P.; SIGNER, H.; RYALS, J.; WRAD, E.; WYSS&#150;BENZ, M.; GAUDIN, J.; RASCHDORF, K.; SCHMID E.; BLUM, W.; INVERARDI, B. 1990. Increase in salicylic acid at the onset of systemic acquired resistance in cucumber. Science: 1004&#150;1006.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647569&pid=S1027-152X200800010000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">OLSEN, C. M.; BAKER, K. F. 1967. Selective heat treatment of soil, and its effect on the inhibition of <i>Rhizoctonia solani </i>by <i>Bacillus subtilis</i>. Phytopathology 58: 79&#150;87.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647571&pid=S1027-152X200800010000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PERALTA, E. L.; FR&Iacute;AS, M. T. 1987. Manual sobre la t&eacute;cnica inmunoenzim&aacute;tica ELISA. Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria. La Habana, Cuba. 71 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647573&pid=S1027-152X200800010000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PIETERSE, C. M. J.; VAN WEES, S. C. M.; HOFFLAND, E.; VAN PELT, J. A.; VAN LOON L. C. 1996. Systemic resistance in Arabidopsis induced by biocontrol bacteria is independent of salicylic acid accumulation and pathogenesis&#150;related gene expression. The Plant Cell 8: 1225&#150;1237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647575&pid=S1027-152X200800010000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">PONZ, F. 2000. Resistencia a virus de plantas, pp. 101&#150;118. <i>In: </i>Patolog&iacute;a Vegetal. G. LL&Aacute;CER; M. M. L&Oacute;PEZ; A. TRAPERO; A. BELLO (eds.). Ed. Phytoma&#150;Espa&ntilde;a S. L. 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E.; GOODMAN, R. M. 2004. Systemic acquired resistance and induced systemic resistance in conventional agriculture. Crop Science 44: 1920&#150;1934.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647581&pid=S1027-152X200800010000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">VAN LOON, L. C.; BAKKER, P. A. H.; PIETERSE, C. M. J. 1998. Systemic resistance induced by rhizosphere bacteria. Annual Review of Phytopathology 36: 453&#150;83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647583&pid=S1027-152X200800010000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">ZITTER, A. T.; HOPKINS, D. L.; THOMAS, C. E. 2004. Plagas y enfermedades de las cucurbit&aacute;ceas. The American Phytophatological Society. Edit. Ediciones Mundi Prensa. Espa&ntilde;a. 87 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=6647585&pid=S1027-152X200800010000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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