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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Cambios nutrimentales en el lechón y desarrollo morfofisiológico de su aparato digestivo]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[En esta revisión se muestra el desarrollo que tiene el tracto gastrointestinal (TGI) desde la vida intrauterina. Inmediatamente después del nacimiento el TGI inicia otra fase importante de su ontogénesis, la cual garantiza el acceso de los lechones a sustancias protectoras del calostro y a los nutrimentos de la leche. Otra etapa de importancia en el desarrollo del TGI se da después del destete, en general, en los días alrededor del mismo se presentan cambios en la vida del lechón los cuales conducen a una disminución en el consumo de alimento por la confluencia de una serie de factores que llevan a un estrés nutricional, y tiene como consecuencia la atrofia en las vellosidades intestinales, disminuyendo la capacidad del lechón para digerir y absorber los nutrimentos necesarios para su buen crecimiento. El peso del intestino delgado se ve afectado debido a una pérdida neta de mucosa intestinal. La disminución en el consumo voluntario también produce una reducción en la actividad de las enzimas pancreáticas, por la falta del sustrato necesario para su acción, y de las enzimas de borde en cepillo, en primer lugar por una pérdida física de enterocitos a nivel del intestino delgado y, en segundo lugar, por una ausencia de sustrato. Una vez que los animales empiezan a consumir alimento sólido, el organismo pasa por un proceso de adaptación a todos los factores adversos antes mencionados y los animales comienzan a recuperar el crecimiento del TGI y con ello sus funciones digestivas. En este proceso, la cantidad de alimento que se proporciona, así como las materias primas que lo componen, tienen un papel importante en la maduración del TGI de los lechones recién destetados.]]></p></abstract>
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<kwd lng="en"><![CDATA[piglet nutrition]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos de revisi&oacute;n</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Cambios nutrimentales en el lech&oacute;n y desarrollo morfofisiol&oacute;gico de su aparato digestivo</b></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Nutritional changes in piglets and morphophysiologic development of their digestive tract</b></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>T&eacute;rcia Ces&aacute;ria Reis de Souza*, Gerardo Mariscal Land&iacute;n**, Konisgmar Escobar Garc&iacute;a***, Araceli Aguilera Barreyro***, Aline Magn&eacute; Barr&oacute;nt&dagger;</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>* Facultad de Ciencias Naturales, Universidad Aut&oacute;noma de Quer&eacute;taro, Av. de las Ciencias s/n, Juriquilla, Quer&eacute;taro, 76230, M&eacute;xico.</i></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>** CENID Fisiolog&iacute;a INIFAP, km 1, carretera a Col&oacute;n, Ajuchitl&aacute;n, Col&oacute;n, 76280, Quer&eacute;taro.</i></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>*** Alumnos del Doctorado en Ciencias Biol&oacute;gicas, Facultad de Ciencias Naturales, Universidad Aut&oacute;noma de Quer&eacute;taro, Av. de las Ciencias s/n, Juriquilla, Quer&eacute;taro, 76230, M&eacute;xico.</i></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>&dagger; Alumna de la Maestr&iacute;a en Recursos Bi&oacute;ticos Facultad de Ciencias Naturales, Universidad Aut&oacute;noma de Quer&eacute;taro, Av. de las Ciencias s/n, Juriquilla, Quer&eacute;taro, 76230, M&eacute;xico.</i></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Responsable de correspondencia:    <br> 	  </b>T&eacute;rcia Ces&aacute;ria Reis de Souza,    <br> 	    Tel.: (442) 1921200, ext. 5391,    <br>       Fax: (442) 2342958,    <br>       correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:tercia@uaq.mx">tercia@uaq.mx</a>.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 22 de mayo de 2011    <br>     aceptado el 28 de noviembre de 2011</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">This review shows the development of the pig gastrointestinal tract (GIT) since intrauterine life. Immediately after birth, the GIT begins another important stage in its ontogenesis, which ensures for the piglets to have access to the protective substances in colostrum and milk nutrients. Another important stage in the development of the GIT begins after weaning. In general, life changes in the days around weaning leading to a decrease in feed intake, which, in turn, leads to nutritional stress that results in the atrophy of intestinal villi, diminishing the piglets ability to digest and absorb nutrients necessary for growth. The small intestine loses weight due to a net loss of intestinal mucosa. The decrease in voluntary feed intake also produces a reduction in both pancreatic enzyme activity, due to lack of substrate, and brush border enzyme activity, due to physical loss of enterocytes in the small intestine and to lack of substrate. Once the animals begin to eat solid food the organism goes through an adaptation process to all the adverse factors previously mentioned and GIT growth and digestive function are restored. During this process, the amount of feed provided to the newly weaned piglet and the ingredients used play an important role in GIT maturation.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b>piglet nutrition, weaning, digestive physiology, gastrointestinal tract development.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En esta revisi&oacute;n se muestra el desarrollo que tiene el tracto gastrointestinal (TGI) desde la vida intrauterina. Inmediatamente despu&eacute;s del nacimiento el TGI inicia otra fase importante de su ontog&eacute;nesis, la cual garantiza el acceso de los lechones a sustancias protectoras del calostro y a los nutrimentos de la leche. Otra etapa de importancia en el desarrollo del TGI se da despu&eacute;s del destete, en general, en los d&iacute;as alrededor del mismo se presentan cambios en la vida del lech&oacute;n los cuales conducen a una disminuci&oacute;n en el consumo de alimento por la confluencia de una serie de factores que llevan a un estr&eacute;s nutricional, y tiene como consecuencia la atrofia en las vellosidades intestinales, disminuyendo la capacidad del lech&oacute;n para digerir y absorber los nutrimentos necesarios para su buen crecimiento. El peso del intestino delgado se ve afectado debido a una p&eacute;rdida neta de mucosa intestinal. La disminuci&oacute;n en el consumo voluntario tambi&eacute;n produce una reducci&oacute;n en la actividad de las enzimas pancre&aacute;ticas, por la falta del sustrato necesario para su acci&oacute;n, y de las enzimas de borde en cepillo, en primer lugar por una p&eacute;rdida f&iacute;sica de enterocitos a nivel del intestino delgado y, en segundo lugar, por una ausencia de sustrato. Una vez que los animales empiezan a consumir alimento s&oacute;lido, el organismo pasa por un proceso de adaptaci&oacute;n a todos los factores adversos antes mencionados y los animales comienzan a recuperar el crecimiento del TGI y con ello sus funciones digestivas. En este proceso, la cantidad de alimento que se proporciona, as&iacute; como las materias primas que lo componen, tienen un papel importante en la maduraci&oacute;n del TGI de los lechones reci&eacute;n destetados.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>nutrici&oacute;n de lechones, destete, fisiolog&iacute;a digestiva, desarrollo del tracto gastrointestinal.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las diferentes fases de desarrollo del tracto gastrointestinal (TGI) fueron revisadas por Cranwell,<sup>1</sup> qui&eacute;n describe que durante la vida fetal el TGI del cerdo, y de otros mam&iacute;feros, empieza su desarrollo pasando por tres fases: en la primera, se da un periodo de proliferaci&oacute;n, crecimiento y morfog&eacute;nesis; en la segunda, se presenta la diferenciaci&oacute;n de las c&eacute;lulas epiteliales; y, en la tercera, la maduraci&oacute;n funcional. Inmediatamente despu&eacute;s del nacimiento, con el consumo del calostro y de la leche, se establece otra etapa importante en la ontog&eacute;nesis del TGI, la cual es responsable de proveer a los neonatos las sustancias protectoras a trav&eacute;s de la endocitosis de las inmunoglobulinas presentes en el calostro, as&iacute; como los metabolitos resultantes de los procesos de digesti&oacute;n y absorci&oacute;n de los nutrimentos de la leche.<sup>2</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al destete, el cambio de la leche materna a una dieta s&oacute;lida basada en almid&oacute;n y prote&iacute;nas de origen vegetal, hace que el TGI pase por un largo proceso de adaptaci&oacute;n, debido a que este no estaba preparado para digerir dichos nutrimentos.<sup>3</sup> Esta situaci&oacute;n genera cambios morfol&oacute;gicos y funcionales en el TGI que pueden causar trastornos en el consumo de alimento y alteraciones en el proceso digestivo, impidiendo que el animal cubra sus requerimientos de prote&iacute;na y energ&iacute;a, lo que dificulta su crecimiento inicial.<sup>4</sup> Este proceso ocurre principalmente durante la primera semana posdestete; posteriormente, el desarrollo del aparato digestivo est&aacute; &iacute;ntimamente ligado con el consumo de alimento s&oacute;lido. Los animales que consumen una mayor cantidad de alimento y, por ende, m&aacute;s energ&iacute;a, tienen un mayor crecimiento del est&oacute;mago, p&aacute;ncreas, intestino delgado e h&iacute;gado, ya que estos &oacute;rganos consumen aproximadamente 50% de la energ&iacute;a total.<sup>5,6</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante el periodo comprendido entre los a&ntilde;os setenta y noventa se intensificaron los estudios sobre fisiolog&iacute;a digestiva y el efecto de la nutrici&oacute;n en el TGI de los lechones reci&eacute;n destetados; por esta raz&oacute;n, en la presente revisi&oacute;n se citan muchos trabajos publicados en esos a&ntilde;os. En los &uacute;ltimos a&ntilde;os, a partir de los conocimientos generados en esos estudios, la industria ha desarrollado alimentos iniciadores de alta calidad para minimizar las alteraciones en un aparato digestivo poco desarrollado, estimular el consumo voluntario y disminuir el costo energ&eacute;tico del proceso de adaptaci&oacute;n posdestete en los lechones. Se recomienda que las raciones iniciadoras sean altamente digestibles para obtener un aprovechamiento lo m&aacute;s eficiente posible, y no poner en riesgo la salud y el desarrollo de los animales j&oacute;venes. Dada la importancia del tema, el objetivo del presente trabajo fue revisar los principales cambios que ocurren en el TGI durante la fase inicial de la vida de los lechones, y su relaci&oacute;n con los aspectos nutrimentales que estimulan o inhiben su desarrollo.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Desarrollo de los &oacute;rganos digestivos en el periodo predestete</i></b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El desarrollo funcional del TGI es el resultado de la interacci&oacute;n de un gran n&uacute;mero de factores: desarrollo intr&iacute;nseco, reloj biol&oacute;gico y mecanismos reguladores end&oacute;genos,<sup>1</sup> gen&eacute;tica<sup>7</sup> (las razas "magras" tienen el TGI m&aacute;s desarrollado que las "obesas"),<sup>8</sup> e influencias ambientales tales como, la dieta, factores de crecimiento, poliaminas, factores antinutrimentales y bacterias.<sup>2,7</sup> En relaci&oacute;n con otras especies, el TGI de los cerdos se desarrolla muy poco durante la vida fetal, pero se acelera despu&eacute;s del nacimiento aumentando en su longitud, di&aacute;metro y peso en los primeros d&iacute;as de vida,<sup>4</sup> maximiz&aacute;ndose el crecimiento una vez que los lechones se destetan. El TGI alcanza la madurez alrededor de las 12 semanas de vida.<sup>5,8,9</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Desde el nacimiento hasta la sexta semana de vida, el lech&oacute;n aumenta alrededor de 7.5 veces su peso, cada uno de los &oacute;rganos pasa por transformaciones importantes, por ejemplo, el p&aacute;ncreas aumenta 12 veces su peso absoluto (<a href="#f1">Figura 1</a>).<sup>10</sup> Aparentemente, el desarrollo del p&aacute;ncreas est&aacute; &iacute;ntimamente ligado a la ingesti&oacute;n de alimento, ya sea en forma de calostro o alimento s&oacute;lido, pues es un &oacute;rgano esencial para la vida extra uterina.<sup>2,11</sup> Las enzimas pancre&aacute;ticas que alcanzan la luz intestinal son esenciales para la hidr&oacute;lisis de los macronutrimentos despu&eacute;s del nacimiento, mientras que en el feto, los nutrimentos son transferidos v&iacute;a placentaria y no por el TGI, por lo tanto, es probable que no se requiera la funci&oacute;n exocrina del p&aacute;ncreas durante la gestaci&oacute;n. Las hormonas que secreta tienen un papel central en el control de la homeostasis del metabolismo energ&eacute;tico y prote&iacute;nico. Una revisi&oacute;n bibliogr&aacute;fica<sup>11</sup> describe detalladamente el desarrollo del p&aacute;ncreas antes del nacimiento en diferentes especies de animales dom&eacute;sticos, mencionando que los resultados de varios experimentos sugieren que la funci&oacute;n endocrina del p&aacute;ncreas es necesaria para la nutrici&oacute;n y crecimiento del feto; sin embargo, durante la fase fetal, ambas funciones pancre&aacute;ticas (endocrina y exocrina) est&aacute;n relativamente inmaduras en t&eacute;rminos estructurales y funcionales, pues la maduraci&oacute;n de estas funciones se presenta varias semanas despu&eacute;s del nacimiento. En los lechones reci&eacute;n nacidos, el p&aacute;ncreas tiene un crecimiento masivo (50&#150;80% de incremento en su peso absoluto) en respuesta a las primeras horas de ingesti&oacute;n de calostro, es decir, el p&aacute;ncreas depende m&aacute;s de la estimulaci&oacute;n enteral para su crecimiento y desarrollo, que de otras se&ntilde;ales.<sup>2,11</sup> Al d&iacute;a 3 de vida, el peso absoluto del p&aacute;ncreas aumenta entre 100 y 130%, y este crecimiento es mayor que el aumento del peso vivo del animal.<sup>11</sup> Despu&eacute;s del destete, el p&aacute;ncreas pasa por una nueva fase de aceleraci&oacute;n en su crecimiento (<a href="#f1">Figura 1</a>).<sup>10</sup></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v43n2/a7f1.jpg"></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Antes del nacimiento, la mucosa g&aacute;strica es capaz de secretar HCl y enzimas; el final de la vida fetal se caracteriza por un descenso del pH estomacal de 7 a 2&#150;3. Justo despu&eacute;s del nacimiento de los lechones el est&oacute;mago crece intensamente y su capacidad de secretar &aacute;cido aumenta cerca de cinco veces en la primera semana posparto, con un posterior incremento muy lento hasta el destete.<sup>2</sup> Resultados de diferentes trabajos presentados en una revisi&oacute;n bibliogr&aacute;fica,<sup>1</sup> muestran una correlaci&oacute;n positiva entre el peso relativo (g/kg de peso vivo (PV)) del est&oacute;mago y la edad del lech&oacute;n; entre el nacimiento y el tercer d&iacute;a de vida. Entre el d&iacute;a cuatro y 36 de vida la correlaci&oacute;n es negativa; es decir, al d&iacute;a 36 el peso del est&oacute;mago por unidad de PV es menor que al nacimiento. En la mucosa g&aacute;strica, se observa<sup>10</sup> un comportamiento similar al del peso del est&oacute;mago durante el periodo de lactancia (<a href="#f2">Figura 2</a>).</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v43n2/a7f2.jpg"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El intestino delgado de los cerdos presenta un desarrollo acelerado durante los primeros 10 d&iacute;as despu&eacute;s del nacimiento, y es entonces cuando ocurren aumentos significativos en su peso absoluto y en el peso de la mucosa intestinal.<sup>1</sup> Despu&eacute;s del d&iacute;a 10 de vida se observa que el intestino delgado pasa por un proceso de maduraci&oacute;n, que se caracteriza por aumentos marcados del volumen, longitud y peso.<sup>12</sup> Los cambios macrosc&oacute;picos del intestino delgado est&aacute;n asociados con las transformaciones que sufren las vellosidades de la mucosa intestinal. En fetos porcinos, los enterocitos tienen membranas bien desarrolladas, pero las vellosidades intestinales est&aacute;n distribuidas de manera relativamente dispersa, y son de un di&aacute;metro angosto y de longitud irregular.<sup>1</sup> Al nacimiento, las vellosidades tienen forma de dedos alargados, y conforme avanza la edad se van engrosando. En cerdos lactantes de aproximadamente dos semanas de edad, las vellosidades disminuyen gradualmente de altura y su ancho y la profundidad de las criptas de Lieberk&uuml;hn aumentan.<sup>13</sup> Adem&aacute;s, se incrementa la poblaci&oacute;n celular de la mucosa, se desarrollan las capas musculares y aumenta la longitud y el di&aacute;metro del intestino delgado. Mougham <i>et al.<sup>14</sup></i> y Xu <i>et al.<sup>15</sup></i> describieron detalles sobre los cambios morfol&oacute;gicos iniciales, as&iacute; como las diferencias regionales de las vellosidades, gl&aacute;ndulas de Brunner y criptas de Lieberk&uuml;hn. Los factores reguladores del desarrollo perinatal de la mucosa del TGI y sus secreciones en le&#150;chones y otros mam&iacute;feros se describen con detalle en la revisi&oacute;n publicada por Zabielski <i>et al.<sup>2</sup></i></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El intestino puede cambiar su superficie con el su crecimiento longitudinal, y por el aumento o disminuci&oacute;n de la altura de las vellosidades. El acortamiento y la fusi&oacute;n de vellosidades propiciar&aacute;n en una p&eacute;rdida de la superficie de digesti&oacute;n y absorci&oacute;n de los alimentos.<sup>16</sup> Para que la digesti&oacute;n y la absorci&oacute;n de los nutrimentos se lleven a cabo de una manera satisfactoria, es necesario que se mantenga la integridad de la mucosa intestinal, la cual depende del recambio y de la renovaci&oacute;n de sus c&eacute;lulas. La funci&oacute;n digestiva (secreci&oacute;n de carbohidrasas y peptidasas) de los enterocitos y sus microvellosidades comienza solamente cuando se completa la diferenciaci&oacute;n estructural de la mucosa, lo que generalmente ocurre durante el periodo de migraci&oacute;n celular hacia el primer tercio de la vellosidad. La absorci&oacute;n de az&uacute;cares y amino&aacute;cidos empieza cuando el enterocito migra hacia la mitad de la vellosidad y contin&uacute;a aumentando hasta que sale por descamaci&oacute;n en la punta de &eacute;sta.<sup>16</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Efecto del destete</i></b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El destete en condiciones naturales se lleva a cabo varias semanas despu&eacute;s del nacimiento, y es un proceso durante el cual el sistema digestivo del lech&oacute;n se adapta progresivamente a un menor consumo de leche y mayores cantidades de alimento s&oacute;lido. Desde finales de la d&eacute;cada de los setenta se practica el destete "temprano" con el objetivo de que las cerdas reinicien su ciclo reproductivo de manera prematura. Eso signific&oacute; que se pasara de un destete gradual, realizado por la misma cerda entre las 15&#150;22 semanas de edad de los lechones, a un destete brusco y ultra precoz alrededor de los 7 d&iacute;as de edad.<sup>17</sup> En la actualidad, el destete se realiza en la mayor parte del mundo entre los 21 y 28 d&iacute;as de edad. Contrariamente a lo que ocurre en condiciones naturales, en el destete temprano los factores psicol&oacute;gicos, sociales y nutrimentales inherentes a esta etapa, interfieren de manera importante en el desarrollo de los animales, particularmente del TGI.<sup>18</sup> Las alteraciones generadas por el destete temprano no se presentan en ningun otra etapa del crecimiento del cerdo y, debido al cambio radical en la alimentaci&oacute;n, los animales se someten a un severo estr&eacute;s nutrimental.<sup>19</sup> La leche materna, l&iacute;quida, altamente digestible y muy bien acoplada a las enzimas del tubo digestivo del lech&oacute;n, se reemplaza por una dieta s&oacute;lida, elaborada a base de cereales (fuente de almid&oacute;n) y de prote&iacute;nas de origen vegetal.<sup>19</sup> Los lechones reci&eacute;n destetados poseen un menor grado de maduraci&oacute;n de la funci&oacute;n digestiva, pues su TGI a&uacute;n no produce todas las enzimas necesarias para la digesti&oacute;n de alimentos s&oacute;lidos.<sup>20</sup> Adem&aacute;s, las secreciones digestivas no son suficientes,<sup>21</sup> y el epitelio intestinal pasa por cambios morfol&oacute;gicos muy dr&aacute;sticos, por lo que la absorci&oacute;n de los nutrimentos se reduce. En consecuencia, se observa en el lech&oacute;n reci&eacute;n destetado una capacidad limitada de digesti&oacute;n y de absorci&oacute;n de los alimentos, sobre todo respecto a las prote&iacute;nas vegetales,<sup>22</sup> lo que repercute en el consumo de alimento.<sup>23&#150;26</sup> La primera semana posdestete suele ser en la que m&aacute;s consecuencias negativas tiene en el TGI. En los dos o tres primeros d&iacute;as posdestete se observa una disminuci&oacute;n del peso de los &oacute;rganos digestivos, aunque en algunos casos, el peso permanece constante en este periodo (<a href="#f3">Figuras 3</a> y <a href="#f4">4</a>).<sup>27,28</sup></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v43n2/a7f3.jpg"></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v43n2/a7f4.jpg"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Efecto del consumo de alimento</i></b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La nutrici&oacute;n enteral representa una de las influencias m&aacute;s significativas en el desarrollo del TGI y del p&aacute;ncreas, y depende de la naturaleza del alimento ingerido (calostro <i>versus</i> leche materna) y de la diversidad de los ingredientes que componen el alimento.<sup>2</sup> El efecto del consumo de alimentos s&oacute;lidos sobre el TGI es ambiguo, pues por un lado es ben&eacute;fico y estimulador del desarrollo (mucosa g&aacute;strica, p&aacute;ncreas y flora microbiana no pat&oacute;gena); por otro lado, es adverso debido a las alteraciones estructurales de la mucosa del intestino delgado y al desarrollo de una flora microbiana pat&oacute;gena. As&iacute;, dependiendo del &oacute;rgano digestivo considerado, los efectos en el desarrollo son distintos.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Est&oacute;mago.</i> El crecimiento del est&oacute;mago se asocia con el desarrollo de la mucosa g&aacute;strica, lo que provoca una mayor producci&oacute;n de HCl y de pepsina en respuesta al est&iacute;mulo f&iacute;sico provocado por el aumento de la masa alimenticia ingerida y al efecto tr&oacute;fico de la hormona gastrina.<sup>10</sup> Durante las cuatro semanas posdestete, se observ&oacute;<sup>1</sup> que el crecimiento del est&oacute;mago fue positivamente alom&eacute;trico, de tal manera que el peso estomacal aument&oacute; de 4.9 a 6.3 g/kg en relaci&oacute;n con el peso corporal. El peso absoluto de la mucosa g&aacute;strica se incrementa de manera relevante durante las dos primeras semanas posdestete (<a href="#f2">Figura 2</a>);<sup>10,17</sup> sin embargo, el desarrollo parece estabilizarse en las semanas subsecuentes.<sup>17</sup> El peso relativo (g/kg de PV) de la mucosa g&aacute;strica increment&oacute; en la etapa inicial de ingesti&oacute;n de alimento s&oacute;lido. Este efecto fue m&aacute;s evidente bajo condiciones en las que el lech&oacute;n present&oacute; una ligera p&eacute;rdida de peso en la semana inmediata al destete (<a href="#f2">Figura 2</a>).<sup>10</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>P&aacute;ncreas.</i> El p&aacute;ncreas de un animal al destete es generalmente del mismo tama&ntilde;o o mayor que al nacimiento; sin embargo, en los primeros d&iacute;as despu&eacute;s del destete, el ayuno o el bajo consumo de alimento provocan un descenso en los pesos absoluto y relativo del p&aacute;ncreas (<a href="#f4">Figura 4</a>).<sup>21</sup> Tambi&eacute;n se se&ntilde;ala que el ayuno provoca un aumento en la concentraci&oacute;n de enzimas en su tejido, lo que se refleja en una reducci&oacute;n de la secreci&oacute;n de jugo pancre&aacute;tico. A partir de estudios moleculares, se ha observado<sup>18</sup> que los niveles de ARN mensajero (ARNm) en el p&aacute;ncreas son bajos inmediatamente despu&eacute;s del destete; lo que origin&oacute; una disminuci&oacute;n en la s&iacute;ntesis de las enzimas pancre&aacute;ticas en este periodo. Sin embargo, pocos d&iacute;as despu&eacute;s, se restauraron los niveles pancre&aacute;ticos de ARNm y la actividad enzim&aacute;tica, con excepci&oacute;n de la actividad de la lipasa.<sup>18</sup> Despu&eacute;s de que los animales empiezan a aumentar el consumo de alimento se observa un gran aumento en la tasa de crecimiento del tejido pancre&aacute;tico. El tama&ntilde;o del p&aacute;ncreas en cerdos de 7 a 17 kg de peso vivo (2 y 4 semanas posdestete) fue de 1.54&#150;2.19 g/kg, significativamente m&aacute;s grande que antes del destete (0.8&#150;1.0 g/kg).<sup>10,29</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Intestino delgado.</i> Muchos estudios sobre la fisiolog&iacute;a digestiva de lechones reci&eacute;n destetados se abocaron a determinar los efectos del destete sobre la morfolog&iacute;a y la funci&oacute;n del intestino delgado, y a caracterizar la magnitud de los cambios provocados por los alimentos.<sup>19,23,30&#150;32</sup> Los resultados de estos trabajos sugieren que la disminuci&oacute;n en la ganancia de peso, el bajo consumo y las alteraciones intestinales, son capaces de producir enfermedades diarreicas durante el destete, y se relacionan con una limitada capacidad del TGI para digerir y absorber eficientemente las dietas iniciadoras.<sup>32</sup> La disminuci&oacute;n del nivel de consumo de alimento impide que el animal alcance a satisfacer los requerimientos necesarios de energ&iacute;a y prote&iacute;na, lo que afecta la proliferaci&oacute;n, diferenciaci&oacute;n y migraci&oacute;n de las c&eacute;lulas del epitelio intestinal.<sup>31</sup> Se han mencionado otros factores como causantes de una reducida capacidad digestiva en los lechones reci&eacute;n destetados, entre &eacute;stos se encuentran: la presencia de ant&iacute;genos (prote&iacute;nas alerg&eacute;nicas) en la dieta, que afectan la inmunidad local intestinal, la fibra dietaria y los factores antinutrimentales presentes en las materias primas. Como consecuencia, se observan alteraciones en la integridad de la mucosa intestinal, las cuales van de la mano con la disminuci&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica del borde en cepillo de los enterocitos.<sup>23</sup> Diversos autores<sup>17,21,30</sup> coinciden en que las vellosidades pueden disminuir 75% de su altura durante las primeras 24 horas posdestete, debido a la p&eacute;rdida de enterocitos maduros. Esta disminuci&oacute;n se manifiesta en un cambio morfol&oacute;gico de las vellosidades, de largas como un dedo en los reci&eacute;n nacidos y cerdos lactantes, a m&aacute;s cortas y anchas como una hoja o una lengua, en los reci&eacute;n destetados.<sup>31</sup> Simult&aacute;neamente, la actividad de la lactasa disminuye,<sup>24,33</sup> debido a la presencia de enterocitos inmaduros en las vellosidades acortadas, los cuales no pueden expresar su m&aacute;xima capacidad de s&iacute;ntesis de enzimas. Las peptidasas presentes en las membranas y en el citosol de los enterocitos, y que se encargan de la hidr&oacute;lisis final de los p&eacute;ptidos, disminuyen su actividad desde el nacimiento hasta la quinta semana de edad.<sup>1</sup> Tambi&eacute;n se puede explicar la reducci&oacute;n de la actividad de las enzimas intestinales, por el consumo de alimento err&aacute;tico que se observa durante los primeros d&iacute;as posdestete, lo que provoca una baja de sustratos en la luz intestinal.<sup>21</sup> Por ejemplo, la actividad de la lactasa disminuye a consecuencia de la reducci&oacute;n en la ingesti&oacute;n de lactosa.<sup>34</sup> Los cambios funcionales y estructurales que se observan en el intestino delgado suceden dentro de las primeras 24 a 36 horas posdestete y traen como consecuencia una disminuci&oacute;n del 20 al 30% del peso intestinal.<sup>18</sup> La recuperaci&oacute;n del crecimiento de las vellosidades se observa desde el d&iacute;a tres posdestete,<sup>19,23,31,35</sup> lo cual se ha relacionado con la presencia de alimento en el tubo digestivo.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Influencia de la composici&oacute;n del alimento sobre el TGI</i></b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El desarrollo y la diferenciaci&oacute;n intr&iacute;nseca del TGI del lech&oacute;n reci&eacute;n nacido dependen profundamente de la interacci&oacute;n entre los componentes dietarios y la flora microbiana, teniendo el alimento un efecto determinante. El calostro y la leche contienen altas concentraciones de factores de crecimiento que aceleran la proliferaci&oacute;n y la maduraci&oacute;n del intestino de los animales reci&eacute;n nacidos.<sup>26</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s del destete, la composici&oacute;n del alimento iniciador tiene un papel importante en los cambios morfofisiol&oacute;gicos del TGI. La manera de formular las dietas iniciadoras ha cambiado en las &uacute;ltimas d&eacute;cadas, pasando de dietas simples (dos ingredientes) a dietas m&aacute;s complejas, en las cuales el n&uacute;mero de ingredientes es muy amplio.<sup>36</sup> La dieta simple se formula estrictamente con productos vegetales, por ejemplo, cereales y pasta de soya. Las dietas complejas est&aacute;n compuestas por productos y subproductos l&aacute;cteos, tales como: leche en polvo descremada, case&iacute;na y suero seco de leche; harinas de origen animal, al igual que una cantidad m&iacute;nima de cereales y pasta de soya, con la finalidad de estimular el consumo de alimento y mantener la integridad intestinal.<sup>19</sup> Al momento de realizar el cambio de una dieta compleja a una simple, el lech&oacute;n ya ha superado el estr&eacute;s del destete y ha ajustado su consumo de acuerdo con su capacidad f&iacute;sica, de modo que su aparato digestivo se encuentra preparado para recibir mayores cantidades de almid&oacute;n y de prote&iacute;na de origen vegetal. La lactasa, que es la principal enzima intestinal para la digesti&oacute;n de carbohidratos en el periodo de lactancia, declina paulatinamente despu&eacute;s del destete; en el caso de las enzimas maltasa y sacarasa el comportamiento es a la inversa, pues se expresan y se activan con el consumo del alimento s&oacute;lido, que contiene almidones y sacarosa.<sup>1</sup> De igual forma, la mucosa intestinal parece ser bastante sensible a la composici&oacute;n de las dietas. Un grupo de investigadores<sup>37</sup> compar&oacute; dos tipos de dietas: una t&iacute;pica estadunidense, que conten&iacute;a prote&iacute;nas de origen animal y promotores de crecimiento (&oacute;xido de zinc, sulfato de cobre y antibi&oacute;ticos); y la otra, una dieta t&iacute;pica europea, a base de prote&iacute;nas vegetales, sin promotores de crecimiento. Como resultado se encontr&oacute; que el consumo de la dieta europea caus&oacute; una reducci&oacute;n de alrededor de 20% en la altura de las vellosidades, y un aumento en la profundidad de la cripta, en comparaci&oacute;n con los lechones alimentados con la dieta estadunidense, reduci&eacute;ndose la superficie de absorci&oacute;n intestinal. Esto probablemente se origin&oacute; por una reducci&oacute;n en la tasa de mitosis o al aumento en la tasa de apoptosis, o por ambos procesos.<sup>37</sup> El desarrollo del p&aacute;ncreas tambi&eacute;n est&aacute; directamente relacionado con el tipo de dieta que consuma el animal, ya que si los animales tienen acceso a alimentos ricos en prote&iacute;nas, grasas o carbohidratos, este &oacute;rgano tendr&aacute; que desarrollar sus funciones de acuerdo con dichos sustratos.<sup>31</sup> Los principales componentes de la dieta que afectan el desarrollo del TGI son las fuentes de lactosa, los alimentos prote&iacute;nicos y los cereales.<sup>31</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los ingredientes l&aacute;cteos son fuente de lactosa y de prote&iacute;na de alta calidad y son alimentos clave durante los primeros d&iacute;as posdestete, pues la recuperaci&oacute;n de peso es m&aacute;s r&aacute;pida, ya que su presencia en la dieta iniciadora har&aacute; que el cambio de alimentaci&oacute;n sea menos brusco para el lech&oacute;n, por el sabor y el valor nutritivo de estos productos, adem&aacute;s de que su TGI est&aacute; adaptado (secreciones enzim&aacute;ticas, motilidad y absorci&oacute;n) a sus componentes desde el nacimiento.<sup>38</sup> Un factor importante es la continuidad de la presencia de sustrato en el tracto gastrointestinal despu&eacute;s del destete, y &eacute;sta tiene un efecto sobre la actividad de la enzima lactasa intestinal. La presencia de lactosa en la dieta, independientemente de la fuente (lactosa cristalina o suero de leche), increment&oacute; la actividad de la lactasa (68%) y el peso del intestino delgado durante los primeros 14 d&iacute;as posdestete.<sup>34</sup> Otra ventaja es que los subproductos l&aacute;cteos poseen factores de crecimiento, que estimulan el desarrollo del TGI en los animales reci&eacute;n destetados.<sup>26</sup></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Fuentes de prote&iacute;na.</i> La cantidad, la fuente y la digestibilidad de la prote&iacute;na dietaria determinan la disponibilidad de amino&aacute;cidos y p&eacute;ptidos en el lumen del intestino delgado, lo que puede influir en la recuperaci&oacute;n de la morfolog&iacute;a intestinal despu&eacute;s del destete.<sup>39</sup> Resultados de diferentes trabajos sugieren que la glutamina es un amino&aacute;cido que sirve como sustrato energ&eacute;tico muy importante para los enterocitos.<sup>31</sup> Lechones alimentados con dieta adicionadas con glutamina ex&oacute;gena presentaron vellosidades m&aacute;s altas y criptas m&aacute;s profundas en la primera semana despu&eacute;s del destete, que cerdos que no recibieron glutamina.<sup>40</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La calidad de la fuente de prote&iacute;na incluida en la dieta para lechones tiene un papel importante en el desarrollo del TGI. Esa calidad depende en gran medida del origen de las fuentes prote&iacute;nicas (animal o vegetal). Las fuentes prote&iacute;nicas de origen animal se emplean con gran frecuencia en las dietas iniciadoras por su alto contenido de prote&iacute;na, valor biol&oacute;gico y alta digestibilidad,<sup>41</sup> as&iacute; como por la ausencia de factores antinutrimentales; sin embargo, tiene un costo elevado. Hasta la aparici&oacute;n de la encefalitis espongiforme bovina, los ingredientes animales m&aacute;s utilizados tradicionalmente en las dietas de lechones destetados, se encontraban las harinas de sangre y de carne y el plasma sangu&iacute;neo (bovino), que mejoraban sustancialmente el consumo, el crecimiento y el &iacute;ndice de conversi&oacute;n, as&iacute; como el estado inmunitario del animal. En la actualidad, estos ingredientes est&aacute;n prohibidos en varios pa&iacute;ses, y se utilizan en mayor escala los productos l&aacute;cteos, el plasma porcino y la harina de pescado, cuyo mayor problema radica en la variabilidad de su calidad.<sup>26</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las fuentes prote&iacute;nicas de origen vegetal, principalmente la pasta de soya, suelen resultar econ&oacute;micas y constituyen un mayor aporte de prote&iacute;na durante las fases de crecimiento y finalizaci&oacute;n del cerdo. El excelente perfil de amino&aacute;cidos de la pasta de soya es muy reconocido, pero existe una variaci&oacute;n en el valor nutrimental de sus distintas variedades,<sup>42</sup> debido a factores como el nivel de prote&iacute;na cruda y la cantidad y tipo de factores antinutrimentales. En la soya es relevante la presencia de ciertos componentes que suelen provocar problemas digestivos en los lechones, especialmente cuando no se procesa correctamente,<sup>43</sup> por lo que su uso es limitado en la fase inicial de crianza. Entre los componentes antinutrimentales presentes en la pasta de soya se incluyen los factores inhibidores de proteasas (quimotripsina y tripsina), antivitaminas y lectinas.<sup>44</sup> Algunas fracciones prote&iacute;nicas (P&#150;conglicinina y glicinina) pueden da&ntilde;ar las vellosidades intestinales, debido a un proceso de hipersensibilidad transitoria que ocurre en la mucosa intestinal y, consecuentemente, disminuyen la digesti&oacute;n de prote&iacute;nas.<sup>45,46</sup> Las lectinas son glicoprote&iacute;nas resistentes a las enzimas digestivas proteol&iacute;ticas y al ligarse a las mol&eacute;culas de hidratos de carbono de las membranas de las c&eacute;lulas epiteliales de la mucosa intestinal pueden da&ntilde;ar las vellosidades intestinales; la toxicidad que causa depende de la magnitud de este enlace.<sup>44</sup> As&iacute;, los factores antinutrimentales pueden causar la inhibici&oacute;n del crecimiento, disminuci&oacute;n de la eficiencia alimentaria, hipertrofia pancre&aacute;tica, hipoglicemia y da&ntilde;o hep&aacute;tico en animales no ruminantes, en funci&oacute;n de la especie, edad, tama&ntilde;o, sexo, estado de salud y plano de alimentaci&oacute;n.<sup>43</sup> Las lesiones de la mucosa causadas por la pasta de soya pueden variar seg&uacute;n el nivel de inclusi&oacute;n en las dietas,<sup>47</sup> o la variedad utilizada. Para aumentar el valor nutrimental de la soya se han seleccionado variedades con una mayor concentraci&oacute;n de prote&iacute;na cruda o con una menor cantidad de inhibidores de tripsina y lectinas.<sup>43</sup> Felizmente, muchos de los factores antinutrimentales son termol&aacute;biles y se destruyen durante la aplicaci&oacute;n de tratamientos t&eacute;rmicos. Otros componentes no deseables en la soya, que no son eliminados con el procesamiento,<sup>48</sup> son los oligosac&aacute;ridos (estaquiosa y rafinosa); &eacute;stos representan de 4 a 6% de su materia seca y pueden causar flatulencia, diarrea y estr&eacute;s a los animales no rumiantes, debido a su incapacidad para digerir estas sustancias, ya que no sintetizan la enzima a&#150;1,6 galactosidasa, que es la responsable de su digesti&oacute;n, dej&aacute;ndolas como sustrato para los procesos fermentativos bacterianos en el tracto intestinal posterior, que alberga las bacterias anaerobias, y que pueden producir hidr&oacute;geno, di&oacute;xido de carbono y peque&ntilde;as cantidades de metano.<sup>49</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Actualmente, existen variedades de soya que contienen de 70 a 90% menos oligosac&aacute;ridos que la pasta de soya convencional. Por su uso se observa una mayor digestibilidad de la mayor&iacute;a de los amino&aacute;cidos de la pasta de soya con menor nivel de oligosac&aacute;ridos en relaci&oacute;n con la convencional, y una digestibilidad de energ&iacute;a comparable a la pasta de soya convencional,<sup>50</sup> por lo que probablemente la pasta de soya baja en oligosac&aacute;ridos, tenga un menor impacto negativo en la integridad intestinal.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La industria de alimentos ha desarrollado otros subproductos de la soya con alto valor biol&oacute;gico, como es el caso de los concentrados y aislados de prote&iacute;na de soya, &eacute;stos disminuyen la reacci&oacute;n de hipersensibilidad pasajera que se presenta al utilizar pasta de soya, lo que se manifiesta en un menor da&ntilde;o de las vellosidades intestinales, mayor digestibilidad de los nutrimentos y mejores ganancias de peso. Sin embargo, estos alimentos altamente digestibles no son estimuladores del crecimiento de las vellosidades intestinales.<sup>51</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otras fuentes de prote&iacute;na vegetal tambi&eacute;n son evaluadas como posibles alternativas a la pasta de soya.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La inclusi&oacute;n de 10% de canola natural o canola peletizada en dietas que se consumieron durante 14 d&iacute;as despu&eacute;s del destete no afect&oacute; la altura de las vellosidades intestinales.<sup>52</sup> Compar&aacute;ndose dietas formuladas con pasta de soya o pasta de ajonjol&iacute; no se observaron diferencias en la morfolog&iacute;a de las vellosidades o de las criptas intestinales despu&eacute;s de un periodo de 25 d&iacute;as de consumo.<sup>53</sup> En otro trabajo,<sup>54</sup> lechones alimentados durante 22 d&iacute;as despu&eacute;s del destete con dietas a base de pasta de soya o de ajonjol&iacute; no presentaron diferencias en el peso relativo de los &oacute;rganos digestivos (<a href="/img/revistas/vetmex/v43n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Cereales.</i> Los cereales son los ingredientes presentes en mayor proporci&oacute;n en las dietas de iniciaci&oacute;n (entre 50 y 70%), pero no est&aacute;n bien determinadas las consecuencias de su uso sobre la integridad intestinal.<sup>55</sup> Seg&uacute;n algunos autores,<sup>56</sup> los taninos y los polisac&aacute;ridos no amil&aacute;ceos (fibra) de los cereales<sup>55&#150;58</sup> podr&iacute;an afectar negativamente la estructura de la mucosa del intestino delgado.<sup>57</sup> Sin embargo, otros autores<sup>35</sup> no observaron diferencias significativas en el peso absoluto o relativo (g/kg de peso vivo) del intestino delgado o en la altura de las vellosidades y en la profundidad de las criptas intestinales entre animales que consumieron, en los primeros 14 d&iacute;as posdestete, dietas con ma&iacute;z o sorgo (pobres en fibra) o con cebada (rica en fibra). El nivel de taninos de los sorgos incluidos en las dietas tampoco afect&oacute; la morfolog&iacute;a de las vellosidades ni de las criptas intestinales (<a href="/img/revistas/vetmex/v43n2/a7c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).<sup>35&#150;59</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Otros ingredientes de la dieta.</i> Para reducir el impacto del destete sobre el crecimiento y en la salud del lech&oacute;n se adicionan a las dietas algunos ingredientes (alimentos funcionales) para atenuar o evitar problemas gastrointestinales, previniendo la proliferaci&oacute;n de bacterias pat&oacute;genas, mejorando la funci&oacute;n digestiva y sustituyendo a los antibi&oacute;ticos. Los alimentos funcionales son compuestos que, ya sea que aporten, o no, nutrimentos, tienen efectos positivos en una o varias funciones del organismo y propician bienestar en los animales.<sup>60</sup> Entre ellos destacan: los antibi&oacute;ticos, probi&oacute;ticos, prebi&oacute;ticos, simbi&oacute;ticos, extractos de plantas, &aacute;cidos org&aacute;nicos, antioxidantes, oligosac&aacute;ridos no digestibles (FOS y MOS), l&iacute;pidos estructurales, etc. Existe relativamente poca informaci&oacute;n sobre el efecto de la adici&oacute;n de estos alimentos a las dietas iniciadoras sobre el desarrollo del TGI y la mejor&iacute;a observada en la salud intestinal de los lechones parece estar relacionada con la modificaci&oacute;n de la microbiota y los productos de la fermentaci&oacute;n que realizan. Algunos autores coinciden en que la utilizaci&oacute;n de aditivos probi&oacute;ticos o antimicrobianos no afecta la estructura intestinal. La inclusi&oacute;n de levaduras solas o adicionadas con &aacute;cido c&iacute;trico,<sup>61</sup> o prote&iacute;na de papa <i>(Solanum tuberosum</i> L. cv. Golden valley) y ciertos extractos de plantas,<sup>62&#150;63</sup> en dietas para lechones, no provoc&oacute; un efecto positivo en la altura de las vellosidades intestinales. Sin embargo, el uso de prebi&oacute;ticos, como los quitooligosac&aacute;ridos, adicionados a dietas posdestete durante 21 d&iacute;as, increment&oacute; la altura de las vellosidades de yeyuno e &iacute;leon.<sup>64</sup> Los &aacute;cidos org&aacute;nicos son compuestos que se utilizan como aditivos en las dietas para prevenir diarreas, al controlar la proliferaci&oacute;n de bacterias indeseables en el TGI.<sup>65</sup> Algunos datos sugieren que la complementaci&oacute;n de una f&oacute;rmula l&aacute;ctea con butirato de sodio puede contribuir a un mayor desarrollo de la mucosa intestinal en lechones neonatales.<sup>66</sup> La acci&oacute;n protectora de los &aacute;cidos org&aacute;nicos puede ser de gran valor cuando el cambio de leche a la dieta iniciadora es abrupto. El uso de butirato en dietas de iniciaci&oacute;n increment&oacute; el espesor de la mucosa g&aacute;strica, as&iacute; como el n&uacute;mero de c&eacute;lulas parietales por gl&aacute;ndula g&aacute;strica y de c&eacute;lulas neuroendocrinas, lo que probablemente est&eacute; relacionado con su acci&oacute;n en la maduraci&oacute;n de las mucosas y diferenciaci&oacute;n celular.<sup>67</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Influencia de la fermentaci&oacute;n microbiana en el TGI</i></b></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El tubo digestivo en el momento del nacimiento es est&eacute;ril, pues en condiciones no patol&oacute;gicas, los lechones se encuentran exentos de microorganismos en el &uacute;tero de la cerda. Pasadas algunas horas despu&eacute;s del nacimiento, ya se encuentran colonias de bacterias procedentes de la propia cerda (fundamentalmente a partir de las heces y del canal del parto), o bien del ambiente de la maternidad, de tal manera que, a las 12 horas de vida, ya se detecta en las heces de los lechones una cifra de 108&#150;109 bacterias/g de heces. Estas bacterias buscan el nicho m&aacute;s adecuado, donde compiten e interact&uacute;an entre s&iacute;, constituyendo finalmente una poblaci&oacute;n relativamente estable y compleja que representa a la flora intestinal sapr&oacute;fita. Despu&eacute;s de la colonizaci&oacute;n microbiana inicial en los animales reci&eacute;n nacidos, el n&uacute;mero de las poblaciones bacterianas del TGI permanecen bastante estables durante el periodo de lactancia, pero pueden ocurrir cambios cualitativos.<sup>68</sup> Sin embargo, el consumo de alimento s&oacute;lido causa una mayor alteraci&oacute;n tanto cualitativa como cuantitativa en la flora, aumentando las bacterias anaer&oacute;bicas estrictas, como los Bacteroides y disminuyendo concomitantemente los microorganismos facultativos. Por lo tanto, el proceso de destete puede dejar a los animales j&oacute;venes vulnerables a la presencia de microorganismos potencialmente pat&oacute;genos.<sup>69</sup> Los nutrimentos no digeridos y no absorbidos, presentes en la luz intestinal, sirven de sustrato para las bacterias enteropat&oacute;genas, propiciando su proliferaci&oacute;n<sup>70</sup> y conduciendo al animal a cuadros diarreicos.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A pesar de que la digesti&oacute;n enzim&aacute;tica y el proceso de absorci&oacute;n son muy efectivos en el intestino delgado, existe un constante aporte de nutrimentos al intestino grueso proveniente de componentes dietarios no digeridos, enzimas end&oacute;genas y c&eacute;lulas del epitelio intestinal descamadas. Las enzimas microbianas facilitan la utilizaci&oacute;n de los alimentos no digeridos como el almid&oacute;n resistente y los polisac&aacute;ridos no almil&aacute;ceos.<sup>71</sup> Las bacterias del colon metabolizan los carbohidratos disponibles generadores de energ&iacute;a para su crecimiento y mantenimiento (incluyendo motilidad, s&iacute;ntesis de enzimas, mantenimiento del gradiente i&oacute;nico y osm&oacute;tico y transporte activo).<sup>69</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los animales no rumiantes la fermentaci&oacute;n ocurre de forma m&aacute;s intensa en el intestino grueso, principalmente por el mayor tiempo de tr&aacute;nsito en este tramo del TGI. Mientras que el tiempo que tarda en pasar el contenido intestinal a lo largo del intestino delgado es solamente de dos a cuatro horas en el ser humano, en el intestino grueso el contenido intestinal tarda entre veinte y ochenta horas; esto quiere decir que hay mucho tiempo para el desarrollo y la actividad de la microflora.<sup>69,71</sup> La cantidad y la composici&oacute;n de las sustancias que llegan al intestino grueso pueden modificarse f&aacute;cilmente en funci&oacute;n de la dieta, siendo la fracci&oacute;n m&aacute;s importante la de los carbohidratos resistentes a la digesti&oacute;n en el intestino delgado. Es probable que los carbohidratos puedan estimular el crecimiento de ciertos microorganismos, los cuales producen &aacute;cidos grasos vol&aacute;tiles (AGV) y utilizan amoniaco (NH<sub>3</sub>) como su fuente de nitr&oacute;geno. Algunos compuestos espec&iacute;ficos pueden tener efectos m&aacute;s precisos en especies bacterianas particulares; por ejemplo, se sabe que substancias tales como la manosa<sup>72</sup> y la galactosa,<sup>73</sup> bloquean la adherencia de cepas pat&oacute;genas de <i>E. coli.</i></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fermentaci&oacute;n anaer&oacute;bica de los carbohidratos ha sido resumida mediante la siguiente ecuaci&oacute;n general:<sup>74</sup></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">57.5 C<sub>6</sub>H<sub>12</sub>O<sub>6</sub> + 45 H<sub>2</sub>O &#8594; 65 acetato + 20 propionato + 15 n&#150;butirato + 140 H<sub>2</sub> + 95 CO<sub>2</sub> + 288 ATP</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El colon absorbe r&aacute;pidamente los AGV formados, conservando la energ&iacute;a y reduciendo la presi&oacute;n osm&oacute;tica. Los AGV, especialmente el &aacute;cido but&iacute;rico, son un combustible importante para los colonocitos. Todos los AGV son absorbidos, pero solamente el &aacute;cido ac&eacute;tico aparece en la circulaci&oacute;n sist&eacute;mica, v&iacute;a hep&aacute;tica, en cantidades considerables, llegando a los m&uacute;sculos en donde puede ser metabolizado; el &aacute;cido but&iacute;rico se metaboliza en los colonocitos. As&iacute;, la fermentaci&oacute;n microbiana en el TGI repercute en la salud intestinal del animal hospedero,<sup>75</sup> pues los AGV formados durante la fermentaci&oacute;n de los carbohidratos son importantes para el mantenimiento de la integridad morfol&oacute;gica y funcional del epitelio del colon.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como las fuentes de carbohidratos (almidones y otros carbohidratos fermentables) se van reduciendo debido a la fermentaci&oacute;n en el intestino grueso, el nitr&oacute;geno (N) en el ciego disminuye y la fermentaci&oacute;n se vuelve m&aacute;s proteol&iacute;tica.<sup>76</sup> Por lo tanto, algunos de los AGV intestinales pueden provenir de polip&eacute;ptidos, los cuales, aparentemente, son la principal fuente de la mayor&iacute;a de los AGV ramificados (isobut&iacute;rico, val&eacute;rico e isoval&eacute;rico), los cuales se forman a partir del metabolismo de los amino&aacute;cidos ramificados, como valina, leucina e isoleucina.<sup>77</sup> Una fermentaci&oacute;n proteol&iacute;tica tambi&eacute;n puede conducir a la formaci&oacute;n de metabolitos potencialmente t&oacute;xicos, como NH<sub>3</sub>, aminas, fenoles vol&aacute;tiles e indoles,<sup>77&#150;79</sup> los cuales se encuentran en peque&ntilde;as cantidades en un colon saludable,<sup>80</sup> pero en elevadas cantidades en procesos patol&oacute;gicos, lo que genera los cuadros diarreicos.<sup>75</sup> De hecho, la desaminaci&oacute;n de los amino&aacute;cidos tanto de la prote&iacute;na end&oacute;gena como de la dietaria, es la principal fuente de NH<sub>3</sub> en el colon.<sup>81</sup> El NH<sub>3</sub> generado en el colon pasa a trav&eacute;s de la pared intestinal, ganando acceso a otros tejidos del cuerpo. El NH<sub>3</sub> puede afectar el desarrollo de la mucosa intestinal<sup>82</sup> y se ha determinado que est&aacute; negativamente correlacionado con la altura de las vellosidades intestinales. El NH<sub>3</sub> absorbido debe ser excretado en forma de urea, con un costo de energ&iacute;a de 7% del total del gasto energ&eacute;tico, tanto en animales no rumiantes como en rumiantes.<sup>83</sup> Los niveles subagudos de NH<sub>3</sub> pueden influir en el metabolismo del hu&eacute;sped y resultar en una disminuci&oacute;n en el rendimiento del animal.<sup>76</sup> Las aminas generadas por los microbios pueden alterar el nivel de &aacute;cido y bicarbonato agregado por parte de la mucosa intestinal y la velocidad de tr&aacute;nsito a trav&eacute;s del intestino. Sin embargo, la presencia de carbohidratos fermentables estimula el crecimiento microbiano. Ello conlleva a un aumento en la demanda de amino&aacute;cidos por parte de los microorganismos,<sup>84</sup> como est&aacute; indicado a trav&eacute;sde la reducci&oacute;n del catabolismo de las prote&iacute;nas en el intestino grueso y, consecuentemente, habr&aacute; menores concentraciones de NH<sub>3</sub> y excreci&oacute;n de nitr&oacute;geno uri&#150;nario.<sup>85</sup> Por lo tanto, la producci&oacute;n de compuestos potencialmente perjudiciales, como el escatol derivado del catabolismo del tript&oacute;fano a, ser&iacute;a menos probable con la presencia de fuentes de carbohidratos. De manera similar, existe evidencia de que la excreci&oacute;n de N en forma de urea a trav&eacute;s de la orina puede ser desplazada por la excreci&oacute;n de N como prote&iacute;na bacteriana en las heces por medio de la inclusi&oacute;n de compuestos fibrosos en la dieta.<sup>86</sup></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Conclusiones</b></font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana">La ontog&eacute;nesis del tracto gastrointestinal de los lechones depende de diferentes factores fisiol&oacute;gicos, ambientales y nutrimentales. Las diferentes fases del aparato digestivo parecen estar adaptadas a las necesidades del animal para nutrirse y protegerse de los pat&oacute;genos que amenazan constantemente su supervivencia, debido a la inmadurez de sus funciones digestivas e inmunol&oacute;gicas. La nutrici&oacute;n intrauterina est&aacute; bajo la responsabilidad de la madre, lo que no requiere de un mayor desarrollo de las estructuras digestivas. Despu&eacute;s del nacimiento, el sistema digestivo pasa por un periodo de intenso desarrollo, pero los &oacute;rganos digestivos est&aacute;n morfofisiol&oacute;gicamente adaptados a la alimentaci&oacute;n l&aacute;ctea (calostro y leche), permitiendo un alto desempe&ntilde;o de los animales durante la fase de lactaci&oacute;n. El destete es un periodo durante el cual se interrumpe bruscamente la armon&iacute;a alcanzada en la lactancia y, el aparato digestivo, sufre un rev&eacute;s en su desarrollo durante la primera semana posdestete, ocasionando un periodo de subnutrici&oacute;n transitoria en el lech&oacute;n. Tras un nuevo periodo de adaptaci&oacute;n a la nueva alimentaci&oacute;n y al nuevo ambiente, &eacute;ste recupera el ritmo de desarrollo de todos sus sistemas vitales, principalmente del sistema digestivo. En este proceso, la cantidad de alimento que se proporciona al cerdo reci&eacute;n destetado y las materias primas que componen su alimento, desempe&ntilde;an un papel importante en la maduraci&oacute;n del tracto gastrointestinal.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Referencias</b></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="verdana">1. CRANWELL PD. Development of the neonatal gut and enzyme systems. In: VARLEY MA, editor. Wallingford UK: CAB International, 1995: 99&#150;154.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162299&pid=S0301-5092201200020000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. ZABIELSKI R, LE HU&Euml;RON&#150;LURON I, GUILLOTEAU P. Development of gastrointestinal and pancreatic functions in mammalians (mainly bovine and porcine species): influence of age and ingested food. Reprod Nutr Dev 1999; 39:5&#150;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162301&pid=S0301-5092201200020000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. DIRKZWAGER A, VELDMAN B, BIKKER P. A nutritional approach for the prevention of Post Weaning Syndrome in piglets. Anim Res 2005; 54:231&#150;236.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162303&pid=S0301-5092201200020000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. LE DIVIDICH J, S&Egrave;VE B. Effects of underfeeding during the weaning period on growth, metabolism, and hormonal adjustments in the piglet. Domest Anim Endocrinol 2000; 19:63&#150;74.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162305&pid=S0301-5092201200020000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. QUINIOU N, NOBLET J. Prediction of tissular body composition from protein and lipid deposition in growing pigs. J Anim Sci 1995; 73: 1567&#150;1575.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162307&pid=S0301-5092201200020000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. NYACHOTI CM, DE LANGE CFM, SCHULZE H. Estimating endogenous amino acid flows at the terminal ileum and true ileal amino acid digestibilities in feedstuffs for growing pigs using the homoarginine method. J Anim Sci 1997; 75: 3206&#150;3213.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162309&pid=S0301-5092201200020000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. DROZDOWSKI LA, CLANDININ T, THOMSON ABR. Ontogeny, growth and development of the small intestine: Understanding pediatric gastroenterology. World J Gastroenterol 2010; 16: 787&#150;799.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162311&pid=S0301-5092201200020000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. KOONG LJ, NIENABER JA, MERSMANN J. Effects of plane of nutrition on organ size and fasting heat production in genetically obese and lean pigs. J Nutr 1983; 113: 1626&#150;1631.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162313&pid=S0301-5092201200020000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. BIKKER P, VERSTEGEN MWA, KEMPS B, BOSH MW. Performance and body composition of finishing gilts (45 to 85 kilograms) as affected by energy intake and nutrition in earlier life: I. Growth of the body and components. J Anim Sci 1996; 74: 806&#150;816.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162315&pid=S0301-5092201200020000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. LINDEMAN MD, CORNELIUS SG, EL KANDELGY SM, MOSER RL. Effect of Age, Weaning and diet on digestive enzyme levels in the piglet. J Anim Sci 1986; 62:1298&#150;1307.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162317&pid=S0301-5092201200020000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. SANGILD PT. Biology of the pancreas before birth. In: PIERZYNOWSKI SG AND ZABIELSKI, editors. Biology of the pancreas in growing animals. Amsterdan, The Netherlands. Elsevier Science BV, 1999:1&#150;13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162319&pid=S0301-5092201200020000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. SEVE B. El&eacute;vage et sevrage des porcelets. In: P&Eacute;REZ JM, MORNET P, R&Eacute;RAT A, editors. Le porc et son &eacute;levage, bases scientifiques et techniques. France: Editorial Maloine, 1986: 403.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162321&pid=S0301-5092201200020000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. CERA KR, MAHAN DC, CROSS RF, REINHART GA, WHITMOYER RE. Effect of age, weaning and postweaning diet on small intestinal growth and jejunal morphology in young swine. J Anim Sci 1988; 66:574&#150;584.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162323&pid=S0301-5092201200020000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. MOUGHAM PJ, BIRTLES MJ, CRANWELL PD, SMITH WC, PEDRAZA M. The piglet as a model for studing aspects of digestion and absorption in milk&#150;fed human infants. World Rev Nutr Diet 1992; 67:40&#150;113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162325&pid=S0301-5092201200020000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. XU RJ, TUNGTHANATHANICH P, BIRTLES MJ, REYNOLDS GW, SIMPSON HV. Growth and morphological changes in the small and large intestine in piglets during the first three days after birth. J Dev Physiol 1992; 18:161&#150;172.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162327&pid=S0301-5092201200020000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. VAN DIJKAJ, MARGRY CF, VAN DER LEE AG, HEMKE G, BEYNEN AC. Growth performance and Health status in weanling piglets fed spray&#150;dried proccine plasma under typical Northen european conditions. J Anim Physiol Anim Nutr 2002; 86:17&#150;25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162329&pid=S0301-5092201200020000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. JENSEN MS, JENSEN SK, JAKOBSEN K. Development of digestive enzymes in pigs with emphasis on lypolitic activity in the stomach and pancreas. J Anim Sci 1997 75:437&#150;445.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162331&pid=S0301-5092201200020000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. LALL&Egrave;S JP, BOUNDRY G, FAVIER C, LE FLOC'H N, LURON I, MONTAGNE L <i>et al.</i> Gut function and dysfunction in young pigs: physiology. Anim Res 2004; 53:301&#150;316.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162333&pid=S0301-5092201200020000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. PLUSKE JR, WILLIAMS IH, AHERNE FX. Nutrition of the neonatal pig. In: VARLEY MA, editor. The neonatal pig: development and survival. Wallingford, UK: CAB International, 1995:187&#150;235.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162335&pid=S0301-5092201200020000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. FOWLER WR. The nutrition of weaned pigs. Pigs News Info 1980, 1:11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162337&pid=S0301-5092201200020000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. MAKKINK CA, BERNTSEN PJM, OP DEN KAMP BML, KEMP B, VERSTEGEN WA. Gastric protein breakdown and pancreatic enzyme activities in response to two different dietary protein sources in newly weaned pigs. J Anim Sci 1994; 72:2843&#150;2850.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162339&pid=S0301-5092201200020000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. LALL&Egrave;S JP, TOULLEC R. Digestion des proteins v&egrave;g&egrave;tales et hypersensibilit&egrave; digestive chez le veau pr&egrave;rumiant. INRA. Prod Anim 1996; 9:255&#150;264.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162341&pid=S0301-5092201200020000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. HAMPSON D. Alterations in the pig small intestinal structure at weaning. Res Vet Sci 1986; 40:32&#150;40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162343&pid=S0301-5092201200020000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. MILLER BG, JAMES PS, SMITH MW, BOURNE FJ. Effect of weaning on the capacity of pig intestinal villi to digest and absorb nutrients. J Agric Sci Camb 1986; 107:579&#150;589.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162345&pid=S0301-5092201200020000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. KELLY D, SMYTH JA, MCCRACKEN KJ. Digestive development of the early&#150;weaned pig. 2. Effect of level of food intake on digestive enzyme activity during the immediate post&#150;weaning period. Br J Nutr 1991; 65:181&#150;188.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162347&pid=S0301-5092201200020000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. KELLY D, KING TP. Digestive physiology and development pigs. In: VARLEY MA, WISEMAN J, editors. The weaner pig, nutrition and Management, 2001: 179&#150;206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162349&pid=S0301-5092201200020000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. AGUILERA BA, SOUZA RTC, MARISCAL LG, JU&Aacute;REZ GY. Desarrollo de los &oacute;rganos digestivos hasta la cuarta semana posdestete en lechones alimentados con subproductos l&aacute;cteos. Memorias del XI Congreso de la AMENA y I del CLANA; 2003 agosto 18&#150;23; Canc&uacute;n, Quintana Roo, M&eacute;xico. Quer&eacute;taro, Quer&eacute;taro: Cuar&oacute;n JA, Cortez M, Fern&aacute;ndez D., Labandero E, P&eacute;rez VG, Quintana M, editores, 2003:335&#150;336.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162351&pid=S0301-5092201200020000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. ESCOBAR GK, REIS DE SOUZA TC, GUERRERO MJC, MARISCAL LG, AGUILERA BA, BERNAL MGS. Morfolog&iacute;a del intestino delgado de lechones destetados alimentados con diferentes fuentes de prote&iacute;na. Memorias del III Congreso CLANA; 2008 Noviembre 18&#150;21; Canc&uacute;n, Quintana Roo, M&eacute;xico. CELIS A, GARC&Iacute;A M, editores, 2008:513&#150;516.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162353&pid=S0301-5092201200020000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. OWSLEY WF, ORR DE, TRIBBLE LF. Effects of age and diet on the development of the pancreas and synthesis and secretion of pancreatic secretions in the young pig. J Anim Sci 1986; 63: 497&#150;504.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162355&pid=S0301-5092201200020000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. EFIRD RC, ARMSTRONG WD, HERMAN DL. The development of digestive capacity in the young pigs: effect of weaning regimen and dietary treatment. J Anim Sci 1982; 55: 1371&#150;1379.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162357&pid=S0301-5092201200020000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. PLUSKE JR, HAMPSON DJ, WILLIAM IH. Factors influencing the structure and function of the small intestine in the weaning pig: a review. Livest Prod Sci 1997; 51: 215&#150;236.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162359&pid=S0301-5092201200020000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. XIANHONG G, DEFA L, RUIPING S. Effect of weaning on small intestinal structure and function in the piglet. Arch Anim Nutr 2002; 56:275&#150;286.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162361&pid=S0301-5092201200020000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33. HAMPSON DJ, KIDDER DE. Influence of creep feeding and weaning on brush border enzyme activities in the piglet small intestine. Res Vet Sci 1986; 40:24&#150;31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162363&pid=S0301-5092201200020000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">34. REIS DE SOUZA TC, MARISCAL LG, AGUILERA BA. Empleo de dos fuentes de lactosa en la dieta de lechones y sus efectos en el aparato digestivo. Tec Pec M&eacute;x 2002; 40:299&#150;308.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162365&pid=S0301-5092201200020000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">35. REIS DE SOUZA TC, GUERRERO MJC, AGUILERA BA, MARISCAL LG. Efecto de diferentes cereales sobre la morfolog&iacute;a intestinal de lechones reci&eacute;n destetados. Tec Pec M&eacute;x 2005; 43:309:321.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162367&pid=S0301-5092201200020000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">36. MEDEL P, LATORRE MA, MATEOS GG. Nutrici&oacute;n y alimentaci&oacute;n de lechones destetados precozmente. En: REBOLLAR PG, DE BLAS C, MATEOS GG, editores. XV Curso de especializaci&oacute;n avances en nutrici&oacute;n y alimentaci&oacute;n animal. Madrid, Espa&ntilde;a: Fundaci&oacute;n Espa&ntilde;ola para el Desarrollo de la Nutrici&oacute;n Animal, 1999:145&#150;196.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162369&pid=S0301-5092201200020000700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">37. PIVA A, GRILLI E, FABBRI L, PIZZAMIGLIO V, GATTA PP, GALVANO F <i>et al.</i> Intestinal metabolism of weaned piglets fed a typical United States or European diet with or without supplementation of tributyrin and lactitol. J Anim Sci 2008; 86:2952&#150;2961.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162371&pid=S0301-5092201200020000700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">38. ZIJLSTRA RT, WHANG KY, EASTER RA, ODLE J. Effect of feeding a milk replacer to early&#150;weaned pigs on growth, body composition, and small intestinal morphology, compared with suckled littermates. J Anim Sci 1996; 74:2948&#150;2959.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162373&pid=S0301-5092201200020000700038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">39. VENTE&#150;SPREEUWENBERG MAM, VERDONK JMAJ, KOENINKX JFJG, BEYNEN AC, VERSTEGEN MWA. Dietary protein hydrolysates <i>vs.</i> intact proteins do not enhance mucosal integrity and growth performance in weaned piglets. Liv Prod Sci 2004; 85:151&#150;164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162375&pid=S0301-5092201200020000700039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">40. WU G, MEIER SA, KNABE DA. Dietary glutamine supplementation prevents jejunal atrophy in weaned pigs. J Nutr 1996; 126:2578&#150;2584.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162377&pid=S0301-5092201200020000700040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">41. HANSENJA, NELSSENJL, GOODBAND RD, WEEDEN TL. Evaluation of animal protein supplements in diets of early&#150;weaned pigs. J Anim Sci 1993; 71:1853&#150;1862.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162379&pid=S0301-5092201200020000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">42. SMIRICKY MR, GRIESHOP CM, ALBIN DM, WUBBEN JE, GABERT VM, FAHEY GC Jr. The influence of soy oligosaccharides on apparent and true ileal amino acid digestibilities and fecal consistency in growing pigs. J Anim Sci 2002; 80:2433&#150;2441.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162381&pid=S0301-5092201200020000700042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">43. PALACIOS MF, EASTER RA, SOLTWEDEL KT, PARSONS CM, DOUGLAS MW, HYMOWITZ T <i>et al. </i>Effect of soybean variety and processing on growth performance of young chicks and pigs. J Anim Sci 2004; 82:1108&#150;1114.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162383&pid=S0301-5092201200020000700043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">44. LIENER IE. Factors affecting the nutritional quality of soya products. J Am Oil Chem Soc 1981; 58:406&#150;415.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162385&pid=S0301-5092201200020000700044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">45. LI DF, NELSSEN JL, REDDY PG, BLECHA F, HANCOCK JD, ALLEE GL <i>et al.</i> Transient hypersensitivity to soybean meal in the early&#150;weaned pig. J Anim Sci 1990; 68:1790&#150;1799.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162387&pid=S0301-5092201200020000700045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">46. FRIESEN KG, NELSSEN JL, GOODBAND RD, BEHNKE KC, KATS LJ. The effect of pre and postweaning exposure to soybean meal on growth performance and on the immune response in the early&#150;weaned pig. J Anim Sci 1993; 71:2089&#150;2098.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162389&pid=S0301-5092201200020000700046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">47. DUNSFORD BR, KNABE DA, HAENSLY WE. Effect of dietary soybean meal on the microscopic anatomy of the small intestine in the early weaned pigs. J Anim Sci 1989; 67:1855&#150;1863.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162391&pid=S0301-5092201200020000700047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">48. LESKE KL, JEVNE CJ, COON CN. Effect of oligosaccharide additions on nitrogen&#150;corrected true metabolizable energy of soy protein concentrate. Poult Sci 1993; 72:664&#150;668.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162393&pid=S0301-5092201200020000700048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">49. CUMMINGS JH, ENGLYST HN. Gastrointestinal effects of food carbohydrate. Am J Clin Nutr 1995; 61(suppl):938S&#150;945S.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162395&pid=S0301-5092201200020000700049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">50. BAKER KM, STEIN HH. Amino acid digestibility and concentration of digestible and metabolizable energy in varieties of soybeans and fed to growing pigs soybean meal produced from conventional, high&#150;protein, or low&#150;oligosaccharide. J Anim Sci 2009; 87:2282&#150;2290.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162397&pid=S0301-5092201200020000700050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">51. REIS DE SOUZA TC, AGUILERA MAB, AGUILERA AB, MARISCAL GL, CARRILLO MJG. Digestive tract morphology of piglets fed diets with isolated or concentrate soy protein. Arch Latinoam Prod Anim 2007; 15:134&#150;140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162399&pid=S0301-5092201200020000700051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">52. REIS STC, GUERRERO CMJ, MARISCAL LG, AGUILERA BA. Integridad intestinal en lechones alimentados con dietas complementadas con pasta de canola. XII Congreso Nacional AMENA; 2005 octubre 25&#150;28; Puerto Vallarta, Jalisco, M&eacute;xico. Quer&eacute;taro, Quer&eacute;taro: AMENA, 2005:1&#150;2.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162401&pid=S0301-5092201200020000700052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">53. ESCOBAR GK, REIS DE SOUZA TC, GUERRERO MJC, MARISCAL LG, AGUILERA BA, BERNAL MGS. Morfolog&iacute;a del intestino delgado de lechones destetados alimentados con diferentes fuentes de prote&iacute;na. Memorias del III Congreso CLANA; 2008 Noviembre 18&#150;21; Canc&uacute;n, Quintana Roo, M&eacute;xico. Celis A, Garc&iacute;a M, editores, 2008: 2008:513&#150;516.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162403&pid=S0301-5092201200020000700053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">54. REIS TC, AGUILERA BA, MARISCAL LG, BALDERRAMA PVN, BERNAL SMG, ESCOBAR GK <i>et al.</i> Efecto de las pastas de ajonjol&iacute; y soya de sobre el tracto digestivo de lechones destetados. XLVI Reuniones Nacionales de Investigaci&oacute;n e Innovaci&oacute;n Agroalimentaria y Forestal en M&eacute;xico; 2010 Noviembre 22&#150;27; Campeche, Campeche, M&eacute;xico. Guadalajara, Jalisco, M&eacute;xico: Editores Prometeo SA de CV, 2010:249.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162405&pid=S0301-5092201200020000700054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">55. RIOP&Eacute;REZ J, S&Aacute;NCHEZ CP, CASTA&Ntilde;O M. Estudio histopatol&oacute;gico del &iacute;leon de lechones precozmente destetados dependiente del cereal utilizado en su alimentaci&oacute;n. Arch Zootec 1991; 40:261&#150;271.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162407&pid=S0301-5092201200020000700055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">56. SALGADO P, FREIRE LPB, MOURATO M, CABRAL F, TOULLEC R, LALL&Egrave;S JP. Comparative effects of different legume protein sources in weaning piglets: Nutrient digestibility, intestinal morphology and digestive enzymes. Liv Prod Sci 2002; 74:191&#150;202.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162409&pid=S0301-5092201200020000700056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">57. BEDFORD MR, CAMPBELL LD. Enzymes application for monogastric feeds a review. Can J Anim Sci 1992; 72:449&#150;466.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162411&pid=S0301-5092201200020000700057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">58. COWAN WD, KORSBAKA, HASTRUP T, RASMUSSEN PB. Influence of added microbial enzymes on energy and protein availability of selected feed ingredients. Anim Feed Sci Technol 1996; 60:311&#150;319.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162413&pid=S0301-5092201200020000700058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">59. G&Oacute;MEZ&#150;SOTO JG, REIS DE SOUZA TC, MARISCAL&#150;LAND&Iacute;N G, AGUILERA&#150;BARREYRO A, MONTEMAYOR HM. Efecto del nivel de taninos del sorgo sobre la morfofisiolog&iacute;a digestiva en lechones destetados. XLVI Reuniones Nacionales de Investigaci&oacute;n e Innovaci&oacute;n Agroalimentaria y Forestal en M&eacute;xico; 2010 Noviembre 22&#150;27; Campeche, Campeche, M&eacute;xico. Guadalajara, Jalisco, M&eacute;xico: Editores Prometeo SA de CV, 2010:247.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162415&pid=S0301-5092201200020000700059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">60. FIGUEROA VJL, CHI MEE, CERVANTES RM, DOMINGUEZ VIA. Functional foods for weanling pigs. Vet M&eacute;x 2006; 37:117&#150;136.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162417&pid=S0301-5092201200020000700060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">61. WHITE LA, NEWMAN MC, CROMWELL GL, LINDEMANN MD. Brewers dried yeast as a source of mannan oligosaccharides for weanling pigs. J Anim Sci 2002; 80:2619&#150;2628.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162419&pid=S0301-5092201200020000700061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">62. JIN Z, YANG YX, CHOI JY, SHINDE PL, YOON SY, HAHNB TW <i>et al.</i> Effects of potato (Solanum tuberosum L. cv. Golden valley) protein having antimicrobial activity on the growth performance, and intestinal microflora and morphology in weanling pigs. Anim Feed Sci Tech 2008; 140:139&#150;154.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162421&pid=S0301-5092201200020000700062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">63. MANZANILLA EG, P&Eacute;REZ JF, MART&Iacute;N M, BLAND&Oacute;N JC, BAUCELLS F, KAMEL C <i>et al.</i> Dietary protein modifies effect of plant extracts in the intestinal ecosystem of the pig at weaning. J Anim Sci 2009; 87:2029&#150;2037.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162423&pid=S0301-5092201200020000700063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">64. LIU P, PIAO XS, KIM SW, WANG L, SHEN YB, LEE HS <i>et al.</i> Effects of chito&#150;oligosaccharide supplementation on the growth performance, nutrient digestibility, intestinal morphology, and fecal shedding of <i>Escherichia coli</i> and Lactobacillus in weaning pigs. J Anim Sci 2008; 86: 2609&#150;2618.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162425&pid=S0301-5092201200020000700064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">65. MAVROMICHALIS I, PATON F. Nuevos ingredientes en la alimentaci&oacute;n de cerdos. XX Curso de Especializaci&oacute;n FEDNA: Avances en Nutrici&oacute;n y Alimentaci&oacute;n Animal. En: REBOLLAR PG, DE BLAS C, MATEOS GG, editores. Fira de Barcelona, Espa&ntilde;a: Fundaci&oacute;n Espa&ntilde;ola para el Desarrollo de la Nutrici&oacute;n Animal, 2004:125&#150;147.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162427&pid=S0301-5092201200020000700065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">66. KOTUNIA A, WOLI&Ntilde;SKIJ, LAUBITZ D,JURKOWSKA M, ROM&Eacute; V, GUILLOTEAU P <i>et al.</i> Effect of sodium butyrate on the small intestine development in neonatal piglets feed by artificial sow. J Physiol Pharm 2004; 55:59&#150;68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162429&pid=S0301-5092201200020000700066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">67. MAZZONI M, LE GALL M, DE FILIPPI S, MINIERI L, TREVISI P, WOLINSKI J <i>et al.</i> Supplemental Sodium Butyrate Stimulates Different Gastric Cells in Weaned Pigs. J Nutr 2008; 138: 1426&#150;1431.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162431&pid=S0301-5092201200020000700067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">68. SNEL J, HARMSEN HJM, VAN DER WIELEN PWJJ, WILLIAMS BA. 2. Dietary strategies to influence the gastro&#150;intestinal microflora of young animals, and its potential to improve intestinal health. In: BLOK MC, VAHL H A, DE LANGE L, VAN DE BRAAK AE, HEMKE G, HESSING M, editors. Nutrition and health of the gastrointestinal tract. Wageningen, The Netherlands: Wageningen Academic publishers, 2006:37&#150;60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162433&pid=S0301-5092201200020000700068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">69. WILLIAMS BA, VERSTEGEN MWA, TAMMINGA S. Fermentation in the large intestine of single&#150;stomached animals and its relationship to animal health. Nutr Res Rev 2001; 14:207&#150;227.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162435&pid=S0301-5092201200020000700069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">70. MCCRACKEN KJ, KELLY D. Development of digestive function and nutrition/disease interactions in the weaned pig. In: FARRELL DJ, editor. Recent advances in animal nutrition in Australia. Armidale: Department of Biochemistry, Microbiology and Nutrition, University of New England, 1993:182&#150;192.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162437&pid=S0301-5092201200020000700070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">71. BUGAUT M. Occurrence, absorption and metabolism of short chain fatty acids in the digestive tract of mammals. Comp Biochem Physiol 1987; 86B, 439&#150;472.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162439&pid=S0301-5092201200020000700071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">72. OFEK I, MIRELMAN D, SHARON N, Adherence of <i>Escherichia coli</i> to human mucosal cells mediated by mannose receptors. Nature 1977; 265:623&#150;625.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162441&pid=S0301-5092201200020000700072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">73. MATHEW AG, SUTTON AL, SCHEIDT AB, PATTERSON JA, KELLY DT, MEYERHOLZ KA. Effect of galactan on selected microbial populations and pH and volatile fatty acids in the ileum of the weanling pig, J Anim Sci 1993; 71:1503&#150;1509.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162443&pid=S0301-5092201200020000700073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">74. EWING WN, COLE DJA. The Living Gut: An Introduction to Micro&#150;organisms in Nutrition. Dungannon, Ireland: Context: 1994:220.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162445&pid=S0301-5092201200020000700074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">75. REIS DE SOUZA TC, MARISCAL LAND&Iacute;N G, ESCOBAR GARC&Iacute;A K. Algunos factores fisiol&oacute;gicos y nutricionales que afectan la incidencia de diarreas posdestete en lechones. Vet M&eacute;x 2010; 41:275&#150;288.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162447&pid=S0301-5092201200020000700075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">76. PIVA A, PANCIROLI A, MEOLA E, FORMIGONI A. Lactitol enhances short&#150;chain fatty acid and gas production by swine microflora to a greater extent when fermenting low rather than high fibre diets. J Nutr 1995; 126: 280&#150;289.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162449&pid=S0301-5092201200020000700076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">77. MACFARLANE GT, GIBSON GR, BEATTY E, CUMMINGS JH. Estimation of short&#150;chain fatty acid production from protein by human intestinal bacteria based on branched&#150;chain fatty acid measurements, FEMS Microbiol Ecol 1992; 101:81&#150;88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162451&pid=S0301-5092201200020000700077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">78. YOKOYAMA MT, TABORI C, MILLER ER, HOGBERG MG. The effects of antibiotic in the weanling pig diet on growth and the excretion of volatile phenolic and aromatic bacterial metabolites. Am J of Cl Nutr 1982; 35:1417&#150;1424.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162453&pid=S0301-5092201200020000700078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">79. RUSSELL JB, SNIFFEN CJ, VAN SOEST PJ. Effect of carbohydrate limitation on degradation and utilization of casein by mixed rumen bacteria. J Dairy Sci 1983; 66:763&#150;775.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10162455&pid=S0301-5092201200020000700079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
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