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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Inducción de la actividad ovárica en yeguas criollas con un programa de fotoperiodo artificial en la latitud 19°9'N]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[En el presente trabajo se evaluó el efecto de un fotoperiodo artificial de 16 horas de luz y ocho de oscuridad sobre la longitud del periodo anovulatorio y la duración del periodo de transición hacia la época ovulatoria en yeguas criollas, localizadas en la latitud 19° 9'N. Se utilizaron 22 yeguas criollas de tres a 17 años de edad, que fueron divididas al azar en dos grupos. Las yeguas del grupo experimental (n = 14) se mantuvieron bajo un programa de fotoperiodo artificial de 16 horas de luz por día durante cuatro meses, de diciembre a marzo. Las yeguas del grupo testigo (n = 8) se mantuvieron en condiciones de luz natural. El intervalo desde el inicio del tratamiento luminoso (1 de diciembre) a la primera ovulación del año en el grupo experimental fue de 88.4 ± 3.6 días, y para el grupo testigo fue de 137.2 ± 15.0 días (P < 0.01); la duración del periodo de transición invernal (intervalo entre el desarrollo del primer folículo mayor a 30 mm y la primera ovulación) fue de 30.9 ± 2.2 días para el grupo experimental y 37.6 ± 6.6 para el grupo testigo, esta diferencia no fue significativa (P > 0.05). El diámetro folicular promedio aumentó paulatinamente a partir de la semana siete en el grupo experimental y de la semana 13 en el grupo testigo. En ambos grupos se presentaron estros anovulatorios durante la época de anestro y durante la época de transición. Los intervalos entre estros fueron irregulares en su mayoría. Los resultados indicaron que en latitudes relativamente cercanas al ecuador (19° 9'N) la exposición de yeguas criollas a un fotoperiodo artificial de 16 horas de luz y ocho horas de oscuridad adelanta el inicio de la etapa de transición y de la etapa ovulatoria, por lo que puede ser utilizado para anticipar el inicio del programa reproductivo.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="4">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Inducci&oacute;n de la actividad ov&aacute;rica en yeguas criollas con un programa de fotoperiodo artificial en la latitud 19&deg;9'N</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Induction of ovarian activity with artificial photoperiod in criollo mares located at 19&deg;9'N</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Luna Mar&iacute;a L&oacute;pez P&eacute;rez* Luis Zarco Quintero*   Ana Myriam Boeta Acosta*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>* Departamento de Reproducci&oacute;n, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, 04510, M&eacute;xico, D. F.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 12 de junio de 2009.    <br> Aceptado el 12 de febrero de 2010.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The objective of this study was to evaluate the effect of an artificially long photoperiod of 16 h of light and eight h of darkness on the length of the seasonally anovulatory period and the duration of the transitional period to ovarian activity in Criollo mares, located at 19&deg; 9'N latitude. Twenty two adult Criollo mares, from three to 17 years old, were randomly divided in two groups. The animals on the experimental group (n = 14) were exposed to 16 h of light per day during four months from December to March. The control mares (n = 8) were exposed only to the natural photoperiod in open pens. The interval from the beginning of the artificial light treatment (December 1) to the first ovulation of the year in the experimental group was 88.4 &plusmn; 3.6 days and for the control group, 137.2 &plusmn; 15.0 days (P &lt; 0.01); the interval between the development of the first follicle larger than 30 mm and the first ovulation (vernal transition) was 30.9 &plusmn; 2.2 days for the experimental group and 37.6 &plusmn; 6.6 days for the control group, this difference was not significant (P &gt; 0.05). The mean diameter of the largest follicle increased gradually from week seven in the experimental group and from week 13, in the control group. Mares from both groups showed anovulatory estrus during the anovulatory season as well as during the transitional period. In the majority of the cases, estrous periods were irregular. The results indicate that exposure to an artificially photoperiod of 16 h of light and eight h of darkness, advances the onset of the vernal transition and the first ovulation in Criollo mares located at latitudes that are relatively close to the equator (19&deg; 9'N); therefore, it can be used to anticipate the beginning of a reproductive program.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b>Ovarian activity, photoperiod, mares, anovulatory season, criollo mares.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente trabajo se evalu&oacute; el efecto de un fotoperiodo artificial de 16 horas de luz y ocho de oscuridad sobre la longitud del periodo anovulatorio y la duraci&oacute;n del periodo de transici&oacute;n hacia la &eacute;poca ovulatoria en yeguas criollas, localizadas en la latitud 19&deg; 9'N. Se utilizaron 22 yeguas criollas de tres a 17 a&ntilde;os de edad, que fueron divididas al azar en dos grupos. Las yeguas del grupo experimental (n = 14) se mantuvieron bajo un programa de fotoperiodo artificial de 16 horas de luz por d&iacute;a durante cuatro meses, de diciembre a marzo. Las yeguas del grupo testigo (n = 8) se mantuvieron en condiciones de luz natural. El intervalo desde el inicio del tratamiento luminoso (1 de diciembre) a la primera ovulaci&oacute;n del a&ntilde;o en el grupo experimental fue de 88.4 &plusmn; 3.6 d&iacute;as, y para el grupo testigo fue de 137.2 &plusmn; 15.0 d&iacute;as (P &lt; 0.01); la duraci&oacute;n del periodo de transici&oacute;n invernal (intervalo entre el desarrollo del primer fol&iacute;culo mayor a 30 mm y la primera ovulaci&oacute;n) fue de 30.9 &plusmn; 2.2 d&iacute;as para el grupo experimental y 37.6 &plusmn; 6.6 para el grupo testigo, esta diferencia no fue significativa (P &gt; 0.05). El di&aacute;metro folicular promedio aument&oacute; paulatinamente a partir de la semana siete en el grupo experimental y de la semana 13 en el grupo testigo. En ambos grupos se presentaron estros anovulatorios durante la &eacute;poca de anestro y durante la &eacute;poca de transici&oacute;n. Los intervalos entre estros fueron irregulares en su mayor&iacute;a. Los resultados indicaron que en latitudes relativamente cercanas al ecuador (19&deg; 9'N) la exposici&oacute;n de yeguas criollas a un fotoperiodo artificial de 16 horas de luz y ocho horas de oscuridad adelanta el inicio de la etapa de transici&oacute;n y de la etapa ovulatoria, por lo que puede ser utilizado para anticipar el inicio del programa reproductivo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>&Eacute;poca ovulatoria, fotoperiodo, yeguas, temporada anovulatoria, yeguas criollas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Desde el punto de vista reproductivo, la yegua es una especie poli&eacute;strica estacional con actividad ov&aacute;lica en la &eacute;poca de primavera&#150;verano y un periodo de quiescencia sexual en oto&ntilde;o e invierno. Esta estacionalidad reproductiva de la yegua est&aacute; regulada principalmente por los cambios en la duraci&oacute;n del periodo de luz de cada d&iacute;a (fotoperiodo), aunque puede ser modulada por la temperatura y la disponibilidad del alimento.<sup>1&#150;3</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ritmo circanual de la reproducci&oacute;n en los caballos, como en la mayor&iacute;a de las especies, est&aacute; regulado principalmente por el fotoperiodo. Los animales perciben los cambios en la duraci&oacute;n diaria de la luz solar, lo que les indica la &eacute;poca del a&ntilde;o en la que se encuentran.<sup>4</sup> Para ello, la se&ntilde;al luminosa es transformada en se&ntilde;ales endocrinas por medio de la gl&aacute;ndula pineal, que interact&uacute;a con el hipot&aacute;lamo, la hip&oacute;fisis y las g&oacute;nadas, para regular las etapas de la fisiolog&iacute;a reproductiva. La actividad ov&aacute;rica aumenta conforme se incrementan las horas luz, hasta alcanzar, en el hemisferio Norte, un patr&oacute;n c&iacute;clico regular entre abril y septiembre (temporada reproductiva o &eacute;poca ovulatoria), que corresponden con el periodo de mayor longitud del d&iacute;a. Posteriormente, la actividad ov&aacute;rica se reduce conforme disminuye la duraci&oacute;n de la luz diaria, hasta llegar a cesar durante noviembre a enero (temporada anovulatoria), cuando los d&iacute;as son m&aacute;s cortos.<sup>3,4</sup> En el hemisferio Sur las temporadas reproductiva y de anestro se invierten debido a que la longitud del d&iacute;a tambi&eacute;n sigue un patr&oacute;n opuesto al del hemisferio Norte.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El control del fotoperiodo en la estacionalidad reproductiva es m&aacute;s evidente en las latitudes altas, ya sea al Norte o al Sur del ecuador. Sin embargo, aun en latitudes relativamente cercanas al ecuador (por ejemplo, entre la latitud 15&deg; y la latitud 22&deg; N), se presenta una clara &eacute;poca anovulatoria a pesar de que la diferencia entre la duraci&oacute;n del d&iacute;a m&aacute;s largo y el d&iacute;a m&aacute;s corto es de tan s&oacute;lo dos horas.<sup>5,6</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las caracter&iacute;sticas de una poblaci&oacute;n equina espec&iacute;fica, en conjunto con los intereses econ&oacute;micos asociados con los programas de reproducci&oacute;n que se realizan para maximizar el uso de gen&eacute;tica superior y para facilitar los nacimientos de potros tan cerca del 1 de enero como sea posible, han provocado el desarrollo de programas de reproducci&oacute;n enfocados a acelerar el inicio de la etapa reproductiva, acortando la duraci&oacute;n del periodo de transici&oacute;n entre la &eacute;poca de anestro y la de actividad ov&aacute;rica c&iacute;clica plena.<sup>5,7 </sup>Con este fin se han utilizado varios tratamientos que incluyen hormonas como GnRH y progesterona, otras sustancias como los antagonistas de dopamina D2 y otras, as&iacute; como programas de luz artificial.<sup>7,8</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Varios estudios han demostrado la eficacia de los programas de fotoperiodo artificial para adelantar el inicio de la estaci&oacute;n de actividad ov&aacute;rica en yeguas en anestro estacional.<sup>1,9&#150;12</sup> En diferentes latitudes de ambos hemisferios se han realizado estudios para evaluar diversos programas de fotoperiodo artificial enfocados a disminuir la duraci&oacute;n del periodo de transici&oacute;n hacia la &eacute;poca reproductiva.<sup>9&#150;12</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico se han realizado estudios de la estacionalidad reproductiva de diferentes razas de yeguas en distintas latitudes (15&deg;&#150;22&deg; N), usando para ello tanto animales vivos como material de rastro.<sup>12,13 </sup>Tambi&eacute;n se han evaluado los efectos de la exposici&oacute;n a fotoperiodo artificial en yeguas Pura Sangre Ingl&eacute;s, en las que se ha observado notorio acortamiento de la &eacute;poca anovulatoria en los casos en que se aplic&oacute; luz adicional, obteniendo rangos de concepci&oacute;n en febrero y marzo de hasta 53.5%.<sup>11</sup> Sin embargo, la respuesta de las yeguas criollas al fotoperiodo artificial podr&iacute;a ser diferente que las de las yeguas Pura Sangre Ingl&eacute;s, ya que Boeta <i>et al.,<sup>6</sup> </i>encontraron que las yeguas criollas expuestas a fotoperiodo natural presentan mucho menos estacionalidad reproductiva que la encontrada por otros autores en yeguas Pura Sangre Ingl&eacute;s en la misma latitud.<sup>11,13</sup> Hasta el momento no se conoce si la estacionalidad reproductiva de las yeguas criollas mexicanas es susceptible de ser manipulada con fotoperiodo artificial, por lo que el objetivo del presente experimento fue evaluar el efecto de la exposici&oacute;n a fotoperiodo artificial sobre la longitud del periodo anovulatorio y la longitud del periodo de transici&oacute;n hacia la estaci&oacute;n ovulatoria en yeguas criollas localizadas en Chalco, Estado de M&eacute;xico (19&deg; 9'N).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material y m&eacute;todos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estudio se realiz&oacute; en Chalco, Estado de M&eacute;xico, M&eacute;xico, latitud 19&deg; 9'N, 2 203 msnm. Se utilizaron 22 yeguas vac&iacute;as de raza criolla con edades variables (tres a 17 a&ntilde;os). La alimentaci&oacute;n consisti&oacute; en heno de avena, alfalfa, concentrado y pastoreo en pasto verde. El agua se ofreci&oacute; <i>ad libitum. </i>La condici&oacute;n corporal de las yeguas de ambos grupos al inicio del estudio oscilaba entre 5 y 6 (escala de 1 a 9) y al t&eacute;rmino del estudio estaba entre 7 y 8.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las yeguas se dividieron aleatoriamente en dos grupos balanceados de acuerdo con la edad de los animales: Las yeguas del grupo testigo (n = 8) fueron alojadas en corrales con una peque&ntilde;a &aacute;rea de sombra, estuvieron expuestas al fotoperiodo natural durante el estudio. El grupo experimental (n = 14) fue expuesto a un programa de luz artificial con el que se lograba un periodo diario de exposici&oacute;n a luz (natural + artificial) de 16 horas diarias desde el inicio del tratamiento (1 de diciembre) hasta el 15 de marzo. La aplicaci&oacute;n del fotoperiodo artificial (16L:8D) se logr&oacute; a trav&eacute;s de 14 reflectores de 150 watts colocados en postes a una altura de 2.50 m, con los que se cubr&iacute;a un &aacute;rea de 568.8 m<sup>2</sup>. Los reflectores estaban conectados a un sistema de encendido autom&aacute;tico que se activaba a las 5:00 pm y se apagaba a las 11:00 pm.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las yeguas fueron receladas con un gara&ntilde;&oacute;n cada tercer d&iacute;a, para observar signos de estro. La actividad folicular fue controlada transrectalmente con un ultrasonido Aloka 210 con transductor lineal de 5 MHz una vez por semana, durante el mes de diciembre, y dos o tres veces por semana desde la primera semana de enero hasta la aparici&oacute;n del primer cuerpo l&uacute;teo. Los fol&iacute;culos se clasificaron en peque&ntilde;os (&lt; 15 mm), medianos (16&#150;30 mm) y grandes (&gt; 30 mm).<sup>6</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Todas las yeguas fueron sangradas de la vena yugular (10 mL) por punci&oacute;n de la vena yugular una o dos veces por semana para evaluar la funci&oacute;n ov&aacute;rica.<sup>14 </sup>Las muestras sangu&iacute;neas se centrifugaron (1 000 <i>g </i>por 20 min) una hora despu&eacute;s de su obtenci&oacute;n. Se separ&oacute; el suero y se mantuvo congelado a &#150;20&deg;C hasta el ensayo para la determinaci&oacute;n de progesterona. Las concentraciones de progesterona se determinaron mediante radioinmunoensayo en fase s&oacute;lida con un kit comercial,<a href="#nota">*</a> en el laboratorio del Departamento de Reproducci&oacute;n de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico. Las diluciones utilizadas fueron 1:40 y la sensibilidad del ensayo fue de 0.02 ng/mL. El coeficiente de variaci&oacute;n interensayos fue de 4.03% y 5.16%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando las concentraciones de progesterona fueron iguales o mayores a 1 ng/mL en por lo menos dos muestras sangu&iacute;neas consecutivas, se asum&iacute;a la presencia de un cuerpo l&uacute;teo funcional formado como resultado de una ovulaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto del fotoperiodo artificial sobre el desarrollo folicular, la duraci&oacute;n del periodo de transici&oacute;n y los d&iacute;as transcurridos desde el inicio del experimento hasta la ovulaci&oacute;n fueron examinados mediante an&aacute;lisis de varianza.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f1">Figura 1</a> se resume la actividad ov&aacute;rica y conductual de las yeguas del grupo testigo durante el periodo del estudio. Las barras de tono oscuro indican los periodos durante los cuales las yeguas manten&iacute;an actividad ovulatoria regular, caracterizada por periodos con concentraciones elevadas de progesterona, que indican la presencia de un cuerpo l&uacute;teo funcional, e interrumpidas por periodos de progesterona baja de no m&aacute;s de dos semanas de duraci&oacute;n (compatible con la fase folicular del ciclo). Las barras de tono claro indican periodos de transici&oacute;n hacia la &eacute;poca ovulatoria durante los cuales se desarrollaban fol&iacute;culos de di&aacute;metro igual o mayor a 30 mm de di&aacute;metro, sin que se registraran concentraciones de progesterona indicativas de ovulaci&oacute;n. Las "X" indican periodos de manifestaci&oacute;n de signos de estro. Las flechas claras se&ntilde;alan la primera ovulaci&oacute;n de la &eacute;poca ovulatoria, y las flechas oscuras indican otro tipo de ovulaciones.. Se observa que todas las yeguas del grupo testigo tuvieron un periodo anovulatorio de duraci&oacute;n variable que se inici&oacute; entre noviembre y enero, y concluy&oacute; entre abril y junio. El 87.5% de las yeguas (7/8) presentaron estros anovulatorios. En todos los animales tanto la primera ovulaci&oacute;n de la &eacute;poca ovulatoria como las ovulaciones subsecuentes estuvieron acompa&ntilde;adas de signos de estro.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v41n2/a2f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f2">Figura 2</a> se presenta la informaci&oacute;n resumida de las yeguas del grupo experimental. La mayor&iacute;a de las yeguas de este grupo presentaron su primera ovulaci&oacute;n durante febrero. El 100% de las yeguas (14/14) presentaron estros sin ovulaci&oacute;n, hubo presencia de fol&iacute;culos grandes que no llegaban a ovular. Sin embargo, dichos fol&iacute;culos persistentes se presentaron antes en el grupo experimental (diciembre a febrero) que en el grupo testigo (marzo a mayo).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v41n2/a2f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f3">Figura 3</a> se muestra la distribuci&oacute;n de las yeguas del grupo testigo de acuerdo con el tama&ntilde;o del fol&iacute;culo m&aacute;s grande observado en los ovarios cada mes. Durante enero, febrero y marzo solamente una o dos yeguas desarrollaron fol&iacute;culos grandes, y m&aacute;s de la mitad de las yeguas desarrollaron fol&iacute;culos peque&ntilde;os. En marzo se produjo un s&uacute;bito incremento en el porcentaje de yeguas que desarrollaron fol&iacute;culos grandes, y en abril todas menos una desarrollaron fol&iacute;culos grandes.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v41n2/a2f3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f4">Figura 4</a> se muestra la distribuci&oacute;n de las yeguas del grupo experimental. Se observa que a partir de enero aument&oacute; el porcentaje de yeguas con fol&iacute;culos grandes, y durante febrero, marzo y abril la mayor&iacute;a de las yeguas desarrollaron fol&iacute;culos grandes, de los cuales muchos ovularon.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v41n2/a2f4.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f5">Figura 5</a> se muestra el di&aacute;metro promedio del fol&iacute;culo m&aacute;s grande desarrollado en cada yegua durante cada semana. En el grupo testigo los fol&iacute;culos se mantuvieron, en promedio, alrededor de 15 mm de di&aacute;metro, aumentando a alrededor de 25 mm en marzo y abril, para llegar a 30 mm en mayo. En contraste, en el grupo experimental el di&aacute;metro promedio del fol&iacute;culo mayor aument&oacute; en forma sostenida durante enero, llegando a casi 40 mm, para reducir posteriormente y mostrar un aparente patr&oacute;n c&iacute;clico cada tres o cuatro semanas. Durante casi todo enero y febrero los di&aacute;metros promedio fueron significativamente mayores en el grupo experimental que en el grupo testigo (P &lt; 0.05).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v41n2/a2f5.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como se muestra en el <a href="/img/revistas/vetmex/v41n2/a2c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>, las yeguas del grupo experimental ovularon significativamente m&aacute;s pronto que las del grupo testigo (P &lt; 0.05). No hubo diferencias entre grupos con respecto a la duraci&oacute;n del intervalo entre el desarrollo del primer fol&iacute;culo grande y la ovulaci&oacute;n. La longitud del periodo anovulatorio de cada yegua fue menor a 100 d&iacute;as en 25% de las yeguas del grupo testigo y en 79% de las yeguas expuestas al fotoperiodo artificial, siendo esta diferencia significativa (P &lt; 0.05). Una yegua del grupo experimental nunca dej&oacute; de mostrar actividad ovulatoria c&iacute;clica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la etapa anovulatoria en la mayor&iacute;a de las yeguas de los dos grupos se presentaron periodos en los que respondieron al recelado con uno o m&aacute;s signos de estro (espejeo, micci&oacute;n, vocalizaciones, inter&eacute;s frente al macho y lordosis positiva) a pesar de no tener fol&iacute;culos grandes. Estos estros anovulatorios se presentaban a intervalos irregulares con duraci&oacute;n promedio de 12 d&iacute;as (<a href="#f1">Figuras 1</a> y <a href="#f2">2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En ambos grupos, durante la etapa de transici&oacute;n tambi&eacute;n se presentaron estros con un fol&iacute;culo de talla preovulatoria que, sin embargo, no ovulaban. En la mayor&iacute;a de los casos la primera ovulaci&oacute;n se present&oacute; a partir de un fol&iacute;culo grande acompa&ntilde;ado de signos de estro durante dos o m&aacute;s semanas antes de presentarse la ovulaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f6">Figura 6</a> se ilustra la distribuci&oacute;n del reinicio de la actividad ovulatoria en ambos grupos. Como se observa en el grupo experimental, una yegua nunca dej&oacute; de ciclar. El resto de las yeguas que s&iacute; tuvieron periodo anovulatorio y las primeras ovulaciones comenzaron a ocurrir hasta la primera semana de febrero, cuando aqu&eacute;llas llevaban nueve semanas expuestas al fotoperiodo artificial. Cinco semanas despu&eacute;s, todas las yeguas del grupo hab&iacute;an tenido su primera ovulaci&oacute;n. En contraparte, en el grupo testigo las primeras yeguas que ovularon lo hicieron hasta abril, cuando hab&iacute;an transcurrido 19 semanas desde el inicio del estudio, requiri&eacute;ndose siete semanas m&aacute;s para que todas las yeguas del grupo testigo llegaran a su primera ovulaci&oacute;n..</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f6"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v41n2/a2f6.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente estudio fue realizado en un sitio (19&deg;N) en el que la variaci&oacute;n m&aacute;xima en la longitud del fotoperiodo a trav&eacute;s del a&ntilde;o es de s&oacute;lo dos horas,<sup>12</sup> varias investigaciones han sugerido que la estacionalidad reproductiva de la yegua puede reducirse en latitudes en que el cambio en la duraci&oacute;n del d&iacute;a a lo largo del a&ntilde;o no es muy marcado.<sup>15</sup> Sin embargo, los resultados del presente estudio demuestran que las yeguas criollas localizadas a los 19&deg;N mantienen un patr&oacute;n de reproducci&oacute;n estacional regido por el fotoperiodo, el cual puede ser modificado por medio de su exposici&oacute;n a fotoperiodo artificial.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor&iacute;a de las yeguas del grupo testigo presentaron un patr&oacute;n estacional muy similar al que se ha descrito en latitudes en las que la variaci&oacute;n en la longitud del d&iacute;a a lo largo del a&ntilde;o es m&aacute;s grande,<sup>16&#150;18 </sup>presentando un periodo anovulatorio de duraci&oacute;n variable que ocurri&oacute; entre noviembre y mayo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente trabajo la exposici&oacute;n a un fotoperiodo de 16 horas luz y ocho horas de oscuridad (16L:8D) adelant&oacute; en promedio 49 d&iacute;as el inicio de la &eacute;poca ovulatoria, lo que es similar a lo encontrado en experimentos realizados en latitudes m&aacute;s elevadas (42 a 84 d&iacute;as).<sup>9,10,17</sup> La duraci&oacute;n del periodo anovulatorio de las yeguas expuestas al fotoperiodo artificial en el presente trabajo (88.4 &plusmn; 5.8) indica que las yeguas respondieron en forma favorable, ya que no s&oacute;lo fue significativamente menor que la duraci&oacute;n del periodo anovulatorio de las yeguas testigo (137 &plusmn; 15 d&iacute;as), sino que fue m&aacute;s corto que el informado por otros autores utilizando el mismo programa de luz artificial (101 &plusmn; 2 d&iacute;as) (100 &plusmn; 1 d&iacute;as) (105 &plusmn; 3 d&iacute;as),<sup>9,17,19</sup> La buena respuesta permiti&oacute; que la mayor&iacute;a de las yeguas expuestas al fotoperiodo artificial comenzaran a ciclar durante febrero y marzo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunos autores han indicado que el n&uacute;mero exacto de horas luz en un programa de fotoperiodo artificial no es esencial para que las yeguas adelanten su actividad ov&aacute;rica.<sup>3,9,19</sup> Tampoco es necesario que las yeguas sean expuestas a incrementos graduales de fotoperiodo artificial como los que ocurren en forma natural a partir del solsticio de invierno. Lo importante para obtener una respuesta es que la yegua perciba un incremento en la longitud del d&iacute;a con respecto al fotoperiodo natural al que estuvo expuesta antes de iniciar la exposici&oacute;n a fotoperiodo artificial y que esta exposici&oacute;n sea recibida durante la fase fotosensible del ritmo circadiano de las yeguas.<sup>9,20</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Antes de iniciar el presente experimento las yeguas estaban expuestas a un fotoperiodo natural de aproximadamente 11 horas de luz y 13 de oscuridad, por lo que la exposici&oacute;n al fotoperiodo artificial result&oacute; en repentino incremento de aproximadamente cinco horas en la duraci&oacute;n del periodo luminoso, el cual fue suficiente para acelerar el inicio de la &eacute;poca ovulatoria.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La duraci&oacute;n del periodo de transici&oacute;n entre el inicio de la actividad folicular y la primera ovulaci&oacute;n, fue ligeramente distinto entre los grupos experimental y el testigo (31 &plusmn; 2 y 38 &plusmn; 7 d&iacute;as, respectivamente), pero la diferencia no fue significativa (P &lt; 0.05). La duraci&oacute;n de este periodo es similar o menor al observado por otros autores, quienes han encontrado un periodo de longitud muy variable que puede durar desde 30 hasta 90 d&iacute;as.<sup>15</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las <a href="#f1">figuras 1</a> y <a href="#f2">2</a> muestran que ambos grupos presentaron considerable variaci&oacute;n individual, tanto en la duraci&oacute;n del periodo anovulatorio como en la fecha de inicio del periodo ovulatorio. En el grupo expuesto a fotoperiodo artificial, a pesar de que la respuesta fue bastante similar en la mayor&iacute;a de las yeguas (11 de las 14 tuvieron su primera ovulaci&oacute;n en un periodo de cuatro semanas), se presentaron excepciones que variaron desde una yegua (E14) que no present&oacute; periodo anovulatorio, hasta otra (E13) que present&oacute; un retraso de dos meses con respecto a la mayor&iacute;a de las yeguas. Estas diferencias han sido registradas por otros autores y pueden deberse, entre otras causas, a diferencias de edad, diferencias gen&eacute;ticas y diferencias gen&eacute;ticas, de edad y de estado corporal de los animales.<sup>2,</sup> <sup>21,22</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La yegua E14 del grupo experimental mantuvo actividad ovulatoria regular durante todo el periodo de estudio (<a href="#f2">Figura 2</a>). Se ha informado que la manipulaci&oacute;n del fotoperiodo est&aacute; acompa&ntilde;ada por una proporci&oacute;n de yeguas que exhiben actividad reproductiva continua, predominantemente si son animales viejos, los cuales, al parecer, pueden responder tan r&aacute;pidamente al fotoperiodo artificial que son estimulados antes de que dejen de ciclar a finales de diciembre o principios de enero, por lo que la estaci&oacute;n ovulatoria simplemente se prolonga.<sup>3,9,19,20 </sup>Sin embargo, el caso de la yegua E14 podr&iacute;a no deberse al tratamiento, ya que en el rancho en el que se llev&oacute; a cabo el estudio se ha encontrado que algunas yeguas mantienen actividad ovulatoria continua sin necesidad de tratamiento alguno.<sup>6</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La yegua E13 no respondi&oacute; a la exposici&oacute;n al fotoperiodo artificial, ya que su primera ovulaci&oacute;n se present&oacute; hacia mediados de abril, que corresponde al periodo en que las yeguas testigo comenzaron a ovular. No es posible se&ntilde;alar la causa de esta falta de respuesta, ya que se trataba de una yegua madura sin ninguna exposici&oacute;n anterior a fotoperiodo artificial, lo cual hace dif&iacute;cil pensar que se trate de un periodo fotorrefractario, como el que mencionan Nagy <i>et al.<sup>3</sup></i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En varios estudios realizados en diversos sitios se ha encontrado un incremento gradual de la actividad folicular antes de la primera ovulaci&oacute;n del a&ntilde;o de la yegua, que se manifiesta en incremento del di&aacute;metro folicular y en aumento en la frecuencia de presentaci&oacute;n de fol&iacute;culos grandes.<sup>17,</sup> <sup>21,23</sup> Durante esta etapa los ovarios presentan oleadas de desarrollo folicular caracterizadas por una fase de crecimiento, mantenimiento y regresi&oacute;n de fol&iacute;culos dominantes anovulatorios, present&aacute;ndose un promedio de 3.7 fol&iacute;culos dominantes anovulatorios mayores a 30 mm de di&aacute;metro, a intervalos promedio de 9.9 d&iacute;as,<sup>24,25</sup> lo que resulta en un periodo de transici&oacute;n de entre 30 y 40 d&iacute;as, como el encontrado en el presente estudio, tanto en las yeguas del grupo testigo como en las expuestas a fotoperiodo artificial.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del presente trabajo sugieren que el efecto del fotoperiodo artificial consiste b&aacute;sicamente en adelantar el inicio de la etapa de desarrollo de fol&iacute;culos grandes, los cuales comenzaron a aparecer a finales de diciembre y principios de enero en el grupo experimental, mientras que en el grupo testigo aparecieron hasta marzo (<a href="#f1">figuras 1</a>, <a href="#f2">2</a>, <a href="#f3">3</a> y <a href="#f4">4</a>). En cambio, el intervalo que transcurri&oacute; desde la aparici&oacute;n del primer fol&iacute;culo grande hasta la primera ovulaci&oacute;n (periodo de transici&oacute;n) fue similar en ambos grupos (<a href="/img/revistas/vetmex/v41n2/a2c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>), lo que sugiere que todas las yeguas deben pasar por un periodo de transici&oacute;n caracterizado por la presencia de fol&iacute;culos grandes persistentes, y que la exposici&oacute;n al fotoperiodo artificial no elimina esta necesidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto estimulatorio del fotoperiodo artificial sobre el desarrollo folicular fue muy bueno, ya que en la mayor&iacute;a de las yeguas los fol&iacute;culos grandes comenzaron a aparecer en los ovarios entre la tercera y la quinta semanas de exposici&oacute;n al fotoperiodo artificial, mientras que en el grupo testigo se presentaron alrededor de ocho semanas despu&eacute;s.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sin embargo, en t&eacute;rminos reproductivos pr&aacute;cticos el efecto se observa hasta que se produce la primera ovulaci&oacute;n, lo que en el presente experimento ocurri&oacute; durante el tercer mes de exposici&oacute;n al fotoperiodo debido a que las yeguas estimuladas a&uacute;n deb&iacute;an pasar por el periodo de transici&oacute;n. Este resultado sugiere que una posibilidad adicional de control artificial de la reproducci&oacute;n consistir&iacute;a en combinar la exposici&oacute;n a fotoperiodo artificial con alg&uacute;n tratamiento que reduzca la duraci&oacute;n del periodo de transici&oacute;n, como ser&iacute;a la aplicaci&oacute;n de hormonas inductoras de la ovulaci&oacute;n (GnRH o hCG).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, en todas las yeguas se present&oacute; conducta estral durante el periodo anovulatorio, como lo informan estudios anteriores,<sup>6,18</sup> lo cual se debe a los bajos niveles de progesterona presentes durante el periodo anovulatorio, as&iacute; como a la presencia estimulante del gara&ntilde;&oacute;n.<sup>26</sup> La exposici&oacute;n al fotoperiodo artificial no modific&oacute; la ocurrencia o frecuencia de estros anovulatorios.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del presente estudio sugieren que el modelo de fotoperiodo artificial de 16 horas luz y ocho horas de oscuridad, iniciado el 1 de diciembre, estimula &oacute;ptimamente el desarrollo folicular y adelanta el tiempo de ovulaci&oacute;n en yeguas an&eacute;stricas localizadas a 19&deg; 9'N, sin afectar la duraci&oacute;n del periodo de transici&oacute;n. Como resultado, la exposici&oacute;n a fotoperiodo artificial acorta la duraci&oacute;n del periodo anovulatorio y adelanta la primera ovulaci&oacute;n del a&ntilde;o en yeguas criollas localizadas en latitudes relativamente cercanas al ecuador.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este trabajo fue financiado con el proyecto PAPIME PE208306, de la Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. GUERIN M, WANG X. Environmental temperature has an influence on timing of the first ovulation of seasonal estrus in the mare". Theriogenology 1994;42:1053&#150;1060.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151538&pid=S0301-5092201000020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. FITZGERALD BP, MCMANUS CJ. Photoperiodic <i>versus </i>metabolic signals as determinants of seasonal anestrus in the mare. Biol Reprod 2000;63:335&#150;340.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151539&pid=S0301-5092201000020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. NAGY P, GUILLAUME D, DAELS P. Seasonality in mares. Anim Reprod Sci 2000; 60&#150;61: 245&#150;262.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151540&pid=S0301-5092201000020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. GINTHER OJ. "Reproductive Biology of the Mare". Wisconsin, USA: Ed. Equiservices Publishing, Cross Plains, 1992.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151541&pid=S0301-5092201000020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. SHARP DC. Horse. In: KNOBILL E, NEILL JD, Encyclopedia of Reproduction. Vol. 2. San Diego Ca.,USA: Ed. Academic Press, 1998: 680&#150;693.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151542&pid=S0301-5092201000020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. BOETA M, PORRAS A, ZARCO L, AGUIRRE&#150;HERNANDEZ R. Ovarian activity of the mare during winter and spring at a latitude of 19&deg;21' North. J Equine Vet Sci 2006;26:55&#150;58.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151543&pid=S0301-5092201000020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. HART PJ, SQUIRES EL, IMEL KJ, NETT TM. Seasonal variation in hypothalamic content of gonadotropin&#150;releasing hormone (GnRH), pituitary receptors for GnRH, and pituitary content of luteinizing hormone and follicle&#150;stimulating hormone in the mare. Biol Reprod 1984;30:1055&#150;1062.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151544&pid=S0301-5092201000020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. DAELS PF, BESOGNET B. Manipulation of the estrous cycle in the mare: clinical aspects. Reprod Dom Anim 1998;33:101&#150;102.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151545&pid=S0301-5092201000020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. MALINOWKI K, JOHNSON AL, SCANES CG. Effects of interrupted photoperiods on the induction of ovulation in anestrous mares. J Anim Sci 1985;61:951&#150;955.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151546&pid=S0301-5092201000020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. OXENDER WD, NODEN PA, HAFS HD. Estrus, ovulation and serum progesterone, estradiol, and LH concentrations in mares after an increased photoperiods during winter. Anim J Vet Res 1977;38:203&#150;207.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151547&pid=S0301-5092201000020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. V&Aacute;ZQUEZ&#150;DUE&Ntilde;AS S, ESCOBAR&#150;MEDINA FJ, COLINA&#150;FLORES F, HAYEN&#150;VALLES S. Comportamiento reproductivo de yeguas Pura Sangre Ingl&eacute;s en un criadero de partos al principio del a&ntilde;o. Rev Biomed 2004;15:27&#150;31.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151548&pid=S0301-5092201000020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. SALTIEL A, CALDERON A, GARCIA N, HURLEY DP. Ovarian activity in the mare between latitude 15&deg; and 22&deg; N. J Reprod Fertil Suppl 1982;32:261&#150;267.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151549&pid=S0301-5092201000020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. GONZ&Aacute;LEZ FM, VALENCIA MJ. Estudio del comportamiento reproductivo de la yegua en M&eacute;xico. Vet M&eacute;x 1977;8:19&#150;23.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151550&pid=S0301-5092201000020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. KOSKINEN E, HUNTINEN M, KATILA T. Serum progesterone levels in mare in winter and during transitional periods. Acta Vet Scand 1996;37:409&#150;414.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151551&pid=S0301-5092201000020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. DONADEU FX, WATSON ED. Seasonal changes in ovarian activity: lessons learnt from the horse. Anim Reprod Sci 2007;100:225&#150;242.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151552&pid=S0301-5092201000020000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. ARTHUR GH. An analysis of the reproductive function of mares based on <i>post mortem </i>examination. Vet Rec 1958;70:682&#150;686.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151553&pid=S0301-5092201000020000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. FREEDMAN LJ, GARCIA MC, GINTHER OJ. Influence of photoperiod and ovaries on seasonal reproductive activity in mares. Biol Reprod 1979;20:567&#150;574.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151554&pid=S0301-5092201000020000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. GINTHER OJ. Ocurrence of anestrus, estrus, diestrus, and ovulation over 12&#150;month period in mares. Am J Vet Res 1974;35:1173&#150;11179.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151555&pid=S0301-5092201000020000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. SCRABA ST, GINTHER OJ. Effects of lighting programs on onset of the ovulatory season in mares. Theriogenology 1985;24:667&#150;679.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151556&pid=S0301-5092201000020000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. PALMER E, DRIANCOURT MA, ORTAVANT R. Photoperiodic stimulation of the mare during winter anoestrus. J Reprod Fertil Suppl 1982;32:275&#150;282.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151557&pid=S0301-5092201000020000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. CARNEVALE EM, HERMENET MJ, GINTHER OJ. Age and pasture effects on vernal transition in mare. Theriogenology 1997;47:1009&#150;1018.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151558&pid=S0301-5092201000020000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. WESSON JA, GINTHER OJ. Puberty in the female pony: Reproductive behavior, ovulation, and plasma gonadotropin concentrations. Biol Reprod 1981;24:977&#150;986</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151559&pid=S0301-5092201000020000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. GINTHER OJ. Folliculogenesis during the transitional period and early ovulatory season in mares. J Reprod Fert 1990;90:311&#150;320.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151560&pid=S0301-5092201000020000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. DONADEU FX, GINTHER OJ. Changes in concentrations of follicular fluid factors during follicle selection in mares. Biol Reprod 2002; 66: 1111&#150;1118.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151561&pid=S0301-5092201000020000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. WATSON ED, Al&#150;ZPabi MO. Characterization of morphology and angiogenesis in follicles of mares during spring transition and the breeding season. Reproduction 2002; 124: 227&#150;234.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151562&pid=S0301-5092201000020000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. IRVINE CHG, ALEXANDER SL. Managing the mare for optimal fertility. J Equine Sci 1998;9:83&#150;87.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10151563&pid=S0301-5092201000020000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><a name="nota" id="nota"></a>Nota</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Coat&#150;A&#150;Count&reg; Progesterona, Diagnostic Product Corporation, Los Angeles, CA, Estados Unidos de Am&eacute;rica.</font></p>     ]]></body>
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