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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[La eficiencia cuántica máxima de separación de carga del fotosistema II de la comunidad de fitoplancton en el Pacífico Nororiental Tropical Mexicano: ¿Una herramienta adecuada para diagnosticar el estrés por nutrientes?]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Phytoplankton growth in oligotrophic regions might be constrained by a low photosynthetic capacity related to nutrient stress. A reduced photosynthetic capacity has been documented by low values of the maximum quantum efficiency of charge separation (Fv/Fm) of photosystem II (PSII). In the present work, spatial and temporal variations of Fv/Fm in phytoplankton samples of the Eastern Tropical North Pacific (ETNP) off Mexico were characterized to explore the potential of this parameter as a nutrient stress indicator. Our results show that Fv/Fm was lower than 0.5 in most of the samples and that in surface waters this parameter was highly variable. The variability of Fv/Fm was related to the time of sampling, and Fv/Fm changes followed a day/night cycle with maximum values at dawn and a strong reduction at noon related to down-regulation of PSII activity. Enrichment experiments showed that Fv/Fm did not increase after nitrate addition to surface samples. These results suggest that photosynthesis of the phytoplankton community in the ETNP dominated by picoplankton, of which 60-80% was represented by prokaryote biomass (Prochloroccocus and other cyanobacteria), was not rate-limited under natural conditions. Therefore, low Fv/Fm values associated with PSII down-regulation and inherent of specific phytoplankton species are not indicative of nutrient stress in picoplankton-dominated environments such as the ETNP off Mexico. These sources of variability that are not directly associated with the nutritional status of the phytoplankton community should be taken into account when using Fv/Fm as a diagnostic tool for nutrient limitation.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Máxima eficiencia del fotosistema II]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>La eficiencia cu&aacute;ntica m&aacute;xima de separaci&oacute;n de carga del fotosistema II de la comunidad de fitoplancton en el Pac&iacute;fico Nororiental Tropical Mexicano: &iquest;Una herramienta adecuada para diagnosticar el estr&eacute;s por nutrientes?</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Maximum efficiency of charge separation of photosystem II of the phytoplankton community in the Eastern Tropical North Pacific off Mexico: A nutrient stress diagnostic tool?</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>A Almaz&aacute;n&#45;Becerril y E Garc&iacute;a&#45;Mendoza<sup>*</sup></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Departamento de Oceanograf&iacute;a Biol&oacute;gica, Centro de Investigaci&oacute;n Cient&iacute;fica y de Educaci&oacute;n Superior de Ensenada (CICESE), Km. 107 Carretera Tijuana&#45;Ensenada, Ensenada 22860, Baja California, M&eacute;xico.</i> * E&#45;mail: <a href="mailto:ergarcia@cicese.mx">ergarcia@cicese.mx</a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido en diciembre de 2006.    <br> 	Aceptado en noviembre de 2007.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento del fitoplancton en zonas oligotr&oacute;ficas del oc&eacute;ano puede estar restringido por una baja capacidad fotosint&eacute;tica asociada a una limitaci&oacute;n por nutrientes. Se ha documentado la reducci&oacute;n de la capacidad fotosint&eacute;tica como valores bajos de la eficiencia cu&aacute;ntica m&aacute;xima de separaci&oacute;n de carga del fotosistema II (PSII, <i>F<sub>v</sub></i> /F<sub>m</sub>). En el presente trabajo se caracteriz&oacute; la variaci&oacute;n espacial y temporal de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> en muestras de fitoplancton de la regi&oacute;n oce&aacute;nica del Pacifico Nororiental Tropical (PNOT) ubicado frente a la costa de M&eacute;xico para explorar el potencial de este par&aacute;metro como indicador de estr&eacute;s nutricional. Los resultados mostraron que <i>F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub></i> fue menor de 0.5 en la mayor&iacute;a de las muestras y present&oacute; una alta variabilidad en muestras de agua recolectadas en la superficie. Esta variabilidad estuvo relacionada con la hora de muestreo. Los cambios de <i>F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub></i> siguieron un patr&oacute;n d&iacute;a&#45;noche con valores m&aacute;ximos al final de la tarde y una marcada disminuci&oacute;n durante el mediod&iacute;a asociada a la regulaci&oacute;n en la actividad del PSII. En experimentos de enriquecimiento con diferentes nutrientes en muestras de agua superficial no se observ&oacute; un aumento en <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub>.</i> La comunidad del PNOT estuvo dominada por picoplancton, del cual entre 60 y 80% estuvo constituido por biomasa procariota <i>(Prochlorococcus</i> y otras cianobacterias), y no se encontr&oacute; evidencia de limitaci&oacute;n de la tasa fotosint&eacute;tica por estr&eacute;s nutricional en condiciones naturales. Por lo tanto, los valores bajos de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> relacionados con la regulaci&oacute;n de la actividad del PSII e inherentes a especies fitoplanct&oacute;nicas espec&iacute;ficas, no indican un estr&eacute;s nutricional en ambientes dominados por el picoplancton, como es el caso del PNOT de M&eacute;xico. La variabilidad que no est&aacute; directamente asociada con el estado nutricional de la comunidad fitoplanct&oacute;nica debe de tomarse en cuenta al usar <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> como herramienta diagn&oacute;stica de limitaci&oacute;n por nutrientes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: M&aacute;xima eficiencia del fotosistema II, estr&eacute;s nutricional, Pac&iacute;fico Tropical, <i>Prochlorococcus.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Phytoplankton growth in oligotrophic regions might be constrained by a low photosynthetic capacity related to nutrient stress. A reduced photosynthetic capacity has been documented by low values of the maximum quantum efficiency of charge separation <i>(F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub>)</i> of photosystem II (PSII). In the present work, spatial and temporal variations of <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> in phytoplankton samples of the Eastern Tropical North Pacific (ETNP) off Mexico were characterized to explore the potential of this parameter as a nutrient stress indicator. Our results show that <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> was lower than 0.5 in most of the samples and that in surface waters this parameter was highly variable. The variability of <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> was related to the time of sampling, and <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> changes followed a day/night cycle with maximum values at dawn and a strong reduction at noon related to down&#45;regulation of PSII activity. Enrichment experiments showed that <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> did not increase after nitrate addition to surface samples. These results suggest that photosynthesis of the phytoplankton community in the ETNP dominated by picoplankton, of which 60&#45;80% was represented by prokaryote biomass <i>(Prochloroccocus</i> and other cyanobacteria), was not rate&#45;limited under natural conditions. Therefore, low <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> values associated with PSII down&#45;regulation and inherent of specific phytoplankton species are not indicative of nutrient stress in picoplankton&#45;dominated environments such as the ETNP off Mexico. These sources of variability that are not directly associated with the nutritional status of the phytoplankton community should be taken into account when using <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> as a diagnostic tool for nutrient limitation.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words</b>: Photosystem II maximum efficiency, nutrient stress, tropical Pacific, <i>Prochloroccocus.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las t&eacute;cnicas de fluorescencia activa han sido utilizadas ampliamente como una aproximaci&oacute;n para conocer el estado fisiol&oacute;gico del fitoplancton marino (Kolber <i>et al.</i> 1990; Falkowski <i>et al.</i> 1991, Geider <i>et al.</i> 1993a, Olaizola <i>et al.</i> 1996, Greene <i>et al.</i> 1994, Behrenfeld <i>et al.</i> 2006). Un par&aacute;metro clave derivado de estas t&eacute;cnicas es la eficiencia cu&aacute;ntica m&aacute;xima de separaci&oacute;n de carga del fotosistema II <i>(F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub>).</i> Dependiendo del protocolo usado (ver Kromkamp y Forster 2003), los valores de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> menores a 0.65 o 0.75 han sido asociados a una actividad fotosint&eacute;tica sub&oacute;ptima debida a limitaci&oacute;n por nutrientes, en particular nitr&oacute;geno inorg&aacute;nico (Kolber <i>et al.</i> 1990, Falkowski <i>et al.</i> 1991, Geider <i>et al.</i> 1993a, Olaizola <i>et al.</i> 1996). El estr&eacute;s nutricional se refleja en la disminuci&oacute;n de la eficiencia del fotosistema II (PSII) causada por la reducci&oacute;n en la tasa de recambio de las reacciones involucradas en la cadena de transporte de electrones y fijaci&oacute;n de CO<sub>2</sub> (Kolber y Falkowski 1993).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A&uacute;n cuando <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> es generalmente aceptado como un buen indicador de limitaci&oacute;n por nutrientes, este par&aacute;metro no necesariamente refleja estr&eacute;s nutricional en cultivos que crecen en condiciones de equilibrio (Parkhill <i>et al.</i> 2001). Incluso, la historia lum&iacute;nica podr&iacute;a ser m&aacute;s importante que el estado nutricional para la regulaci&oacute;n de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> en dinoflagelados que crecen bajo condiciones de estr&eacute;s (Rodr&iacute;guez&#45;Rom&aacute;n e Iglesias&#45;Prieto 2005). Por lo tanto, las c&eacute;lulas que crecen en condiciones de estr&eacute;s pueden presentar valores de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> similares a los que presentan las c&eacute;lulas que crecen sin limitaciones de nutrientes si logran aclimatarse a la baja disponibilidad de los mismos (Parkhill <i>et al.</i> 2001). Aunado a esto, la mayor&iacute;a de los estudios relacionados con el efecto del estr&eacute;s nutricional se han efectuado con especies con requerimientos altos de nitrato como las diatomeas (Geider <i>et al.</i> 1993b). Es dif&iacute;cil extrapolar las respuestas fisiol&oacute;gicas observadas en este grupo a condiciones de campo si se toma en cuenta que las comunidades naturales est&aacute;n compuestas por diferentes linajes evolutivos de c&eacute;lulas procariotas y eucariotas. Particularmente en reg&iacute;menes oligotr&oacute;ficos las cianobacterias y los picoeucariotas dominan la comunidad de fitoplancton (Goericke <i>et al.</i> 2000). La estructura de una comunidad de fitoplancton es el resultado de la respuesta fisiol&oacute;gica de especies particulares y de procesos ecol&oacute;gicos ligados a condiciones ambientales espec&iacute;ficas (Legendre <i>et al.</i> 1999). Las especies que habitan los regimenes oligotr&oacute;ficos deben tener la capacidad de resistir la baja disponibilidad de nutrientes sin que esto afecte su fisiolog&iacute;a. Probablemente estas especies desarrollan estrategias que les permiten optimizar su desempe&ntilde;o fotosint&eacute;tico en aguas pobres en nitratos. En el presente trabajo se presenta una serie de experimentos efectuados durante el crucero MEX0203 en el Pacifico Nororiental Tropical (PNOT) mexicano para probar la hip&oacute;tesis de que, en un r&eacute;gimen oligotr&oacute;fico con una fuerte estratificaci&oacute;n vertical, el fitoplancton est&aacute; adaptado a estas condiciones y su tasa fotosint&eacute;tica no est&aacute; limitada. Por lo tanto, valores bajos de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> no reflejar&aacute;n un bajo potencial fotoqu&iacute;mico en esa regi&oacute;n.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante febrero y marzo de 2003 se realiz&oacute; el crucero MEX0203 en la regi&oacute;n del PNOT mexicano a bordo del B/O <i>New Horizon.</i> Se muestrearon un total de 11 estaciones distribuidas en un transecto perpendicular a la l&iacute;nea de costa (<a href="#f1">fig. 1</a>). En cada estaci&oacute;n se registraron los valores de salinidad, temperatura, presi&oacute;n y fluorescencia de la clorofila a (Chl <i>a</i>) en la columna de agua mediante lances de CTD (Seabird 19 plus). Paralelamente se filtraron muestras de agua de profundidades discretas en cada estaci&oacute;n para an&aacute;lisis pigmentarios y mediciones de la eficiencia cu&aacute;ntica <i>(F<sub>v</sub> /F<sub>m</sub>).</i> El criterio para elegir las profundidades de colecta se bas&oacute; en la distribuci&oacute;n vertical de Chl <i>a</i> determinada mediante del perfil vertical de fluorescencia.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f1.jpg"></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Medici&oacute;n de la eficiencia cu&aacute;ntica m&aacute;xima de separaci&oacute;n de carga del PSII (F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub>)</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La emisi&oacute;n del PSII fue medida con un fluor&oacute;metro de pulsos de amplitud modulada (XE&#45;PAM; Heinz Walz, Effeltrich, Alemania). La nomenclatura y el c&aacute;lculo de los par&aacute;metros han sido descritos por Kromkamp y Forster (2003). La eficiencia cu&aacute;ntica m&aacute;xima fue calculada como <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub>.</i> La fluorescencia variable <i>(F<sub>v</sub>)</i> es la diferencia entre la emisi&oacute;n m&aacute;xima <i>(F<sub>m</sub>)</i> y la m&iacute;nima <i>(F<sub>0</sub>)</i> de la Chl <i>a</i>. <i>F<sub>0</sub></i> es la se&ntilde;al de fluorescencia en la oscuridad, obtenida con pulsos de excitaci&oacute;n de 2 Hz (l&aacute;mpara de xen&oacute;n con filtro &oacute;ptico Schott BG39) y <i>F<sub>m</sub></i> representa la florescencia m&aacute;xima medida en la oscuridad cuando todo el <i>quenching</i> fotoqu&iacute;mico es suprimido por un pulso de luz saturante (0.8 s). La se&ntilde;al de fluorescencia fue medida en muestras mantenidas en oscuridad por al menos 30 min. Despu&eacute;s de este periodo, se colocaron 2 ml de muestra en una celda espectrofotom&eacute;trica de cuarzo montada en la unidad &oacute;ptica ED&#45;101US del fluor&oacute;metro. Se aplicaron tres pulsos saturantes a cada muestra en intervalos de 30 s. Estas mediciones fueron realizadas por triplicado para cada muestra. La variaci&oacute;n entre muestras no fue mayor al 5%. La se&ntilde;al de fluorescencia fue corregida sustrayendo la fluorescencia producida por el agua de mar filtrada por GF/F proveniente de la misma profundidad de la muestra.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Cuantificaci&oacute;n de pigmentos fotosint&eacute;ticos</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se filtraron de 1.5 a 2.5 L de agua mediante filtros GF/F de 25 mm di&aacute;metro, que fueron congelados de inmediato en nitr&oacute;geno l&iacute;quido. La extracci&oacute;n de los pigmentos se llev&oacute; a cabo por disrupci&oacute;n mec&aacute;nica (Bead Beater, Biospec Inc.) de los filtros en viales con perlas de vidrio/zirconio y 1.5 mL de acetona al 100% previamente enfriada. El homogenizado se mantuvo por al menos 2 h en oscuridad a &#45;20&deg;C. La soluci&oacute;n de pigmentos se separ&oacute; por centrifugaci&oacute;n (15000 <i>g</i> x 5 min, 4&deg;C). Este procedimiento dio buena eficiencia de extracci&oacute;n sin degradaci&oacute;n de la muestra (datos no mostrados). La separaci&oacute;n de pigmentos se realiz&oacute; mediante cromatograf&iacute;a l&iacute;quida de alto rendimiento (HPLC) de acuerdo al protocolo de van Heukelem y Thomas (2001) con la modificaci&oacute;n descrita en Colombo&#45;Pallota <i>et al.</i> (2006). El equipo de HPLC utilizado fue un modelo Shimadzu de la serie AV&#45;10 equipado con una columna de fase reversa Zorbax Eclipse XDBC&#45;8 (150 mm x 4.6 mm de di&aacute;metro interno y 3.5 &#956;m de tama&ntilde;o de part&iacute;cula). El detector de absorci&oacute;n fue configurado a 436 nm. Este protocolo separa, a nivel de l&iacute;nea base, la Chl <i>a</i> de la divinil clorofila <i>a</i> (DVChl <i>a),</i> y fue calibrado con 16 est&aacute;ndares comerciales (DHI, Inc. Suecia) de acuerdo a lo descrito por Wright y Montoura (1997).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Estimaci&oacute;n de la contribuci&oacute;n relativa de los grupos de fitoplancton a la biomasa total</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La contribuci&oacute;n relativa de los diferentes grupos de fitoplancton a la biomasa total, considerada como la concentraci&oacute;n total de clorofila (Chl <i>a</i> + DVChl <i>a</i> = TChl <i>a),</i> fue estimada con el programa CHEMTAX (Mackey <i>et al.</i> 1996). La estimaci&oacute;n de la contribuci&oacute;n relativa de cada uno de los grupos de fitoplancton a la TChl <i>a</i> con base en una sola matriz de razones pigmentarias involucra de antemano un error anal&iacute;tico ya que supone que todas las especies est&aacute;n aclimatadas a las mismas condiciones ambientales. En este trabajo se intent&oacute; hacer estimaciones m&aacute;s confiables dividiendo las muestras en diferentes estratos para representar las condiciones a las cuales la comunidad de fitoplancton est&aacute; expuesta. Para ello se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de <i>clusters</i> utilizando la distancia euclidiana de las concentraciones de pigmentos y razones pigmentarias en las muestras. Mediante este an&aacute;lisis se separaron tres diferentes grupos de acuerdo a la profundidad de las muestras. Por lo tanto se definieron tres estratos diferentes para el an&aacute;lisis quimiotaxon&oacute;mico. El primer estrato abarc&oacute; los primeros 35 metros de columna de agua, el segundo se estableci&oacute; entre 36 y 85 m donde se localiz&oacute; el m&aacute;ximo subsuperficial de clorofila (MSC). Finalmente, se consider&oacute; que las muestras obtenidas a m&aacute;s de 85 m proven&iacute;an de una comunidad con condiciones similares de aclimataci&oacute;n. La matriz inicial de razones pigmentarias fue tomada del trabajo de Schl&uuml;ter <i>et al.</i> (2000).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La contribuci&oacute;n relativa de <i>Prochlorococcus</i> a la biomasa fitoplanct&oacute;nica se calcul&oacute; mediante la raz&oacute;n DVChl <i>a</i>/TChl <i>a.</i> Por lo tanto, la contribuci&oacute;n de Chl <i>a</i> asociada a ese grupo fue restada de la matriz de razones pigmentarias. De la misma forma, la zeaxantina (Zea) asociada a <i>Prochlorococcus</i> fue sustra&iacute;da de la matriz para evitar la sobreestimaci&oacute;n de la contribuci&oacute;n de las cianobacterias. La cantidad de Zea asociada a <i>Prochlorococcus</i> se calcul&oacute; usando razones Zea/DVChl <i>a</i> de 1, 0.425 y 0.76 para los estratos de superficie, media agua y zona profunda respectivamente. Estas razones fueron obtenidas de muestras donde la DVChl <i>a</i> represent&oacute; alrededor del 95% de la TChl <i>a.</i> Suponiendo constante este cociente en todas las muestras de la misma capa de profundidad, entonces la zeaxantina asociada a <i>Prochlorococcus</i> se calcul&oacute; como:</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3e1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La Zea independiente de <i>Prochlorococcus</i> en cada una de las muestras se atribuy&oacute; a otras cianobacterias.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Experimentos de enriquecimiento con nitrato</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para probar el efecto de la adici&oacute;n de nutrientes sobre el desempe&ntilde;o fotosint&eacute;tico de la comunidad de fitoplancton se realizaron tres experimentos de enriquecimiento. En el primer experimento se evalu&oacute; la respuesta de la comunidad al enriquecimiento con fosfato (como ortofosfato PO<sub>4</sub><sup>&#45;3</sup>), nitrato (como NaNO<sub>3</sub>), y hierro (como FeCl<sub>3</sub> quelado). En los resultados de este primer experimento no se observaron cambios en la se&ntilde;al de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub>,</i> pero si se registr&oacute; un aumento de la biomasa del fitoplancton en la muestra enriquecida con nitrato (datos no mostrados). Por lo tanto se realizaron dos nuevos experimentos en diferentes fechas a&ntilde;adiendo s&oacute;lo nitrato a muestras superficiales de la estaci&oacute;n 11. Cada experimento consisti&oacute; en dos tratamientos y un control (sin adici&oacute;n de nitrato). Se hicieron dos r&eacute;plicas por cada tratamiento y cada control. Se incubaron a bordo muestras de agua de superficie con 2 &#956;M (tratamiento 1) y 4 &#956;M (tratamiento 2) de concentraci&oacute;n final de NO3 en botellas de policarbonato de boca angosta de 1 L previamente lavadas con HCl al 10%. Las botellas se mantuvieron en un incubador de acr&iacute;lico con flujo constante de agua de mar y se cubrieron con una malla de pl&aacute;stico para simular 60&#45;70% de la irradiancia medida en superficie. El objetivo de exponer las muestras a este nivel menor de irradiancia fue disminuir el estr&eacute;s lum&iacute;nico sin limitar el crecimiento. Se tomaron al&iacute;cotas de cada muestra cada 3 horas durante 3 d&iacute;as para mediciones de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub>.</i> Al final del experimento el resto del agua fue filtrada para analizarla por HPLC. En este paso se mezcl&oacute; el agua de las botellas control y se trat&oacute; todo como una sola muestra.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Series de tiempo de F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La eficiencia cu&aacute;ntica m&aacute;xima fue monitoreada en la comunidad de fitoplancton de superficie (intervalo de 1 a 2 m de profundidad dependiendo de la longitud de la botella y la roseta usadas para el muestreo) y de 40 m durante el periodo de luz en las estaciones 5 y 7 (ver <a href="#f1">fig. 1</a>). Cada hora se recolect&oacute; agua de la superficie para determinar la concentraci&oacute;n de pigmentos (HPLC) y para mediciones de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub>,</i> comenzando antes del amanecer y concluyendo despu&eacute;s del ocaso.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Hidrograf&iacute;a</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la &eacute;poca de estudio se registraron temperaturas superficiales mayores a 25&deg;C en la regi&oacute;n del ETNP. La termoclina se encontr&oacute; a ~50 m de profundidad cerca de la costa, y entre 80 y 90 m en las estaciones oce&aacute;nicas (estaciones 4 a 11; <a href="#f2">fig. 2</a>). Se observ&oacute; una pronunciada estratificaci&oacute;n (<a href="#f2">fig. 2c</a>) en la regi&oacute;n, lo que evit&oacute; el flujo de nitr&oacute;geno remineralizado de aguas profundas a la capa de mezcla. Fue evidente la elevaci&oacute;n de las isopicnas en algunos puntos a lo largo del transecto, probablemente relacionadas con estructuras de mesoescala, las cuales son caracter&iacute;sticas comunes en la zona (L&oacute;pez&#45;Calder&oacute;n <i>et al.</i> 2006).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Cambios verticales de F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub> y la composici&oacute;n de la comunidad de fitoplancton</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">figura 3</a> presenta la distribuci&oacute;n de la TChl <i>a</i> a profundidad, <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> y las contribuciones a la biomasa de los diferentes grupos de fitoplancton estimados por medio de los pigmentos huella en tres estaciones (1, 3 y 11). La estaci&oacute;n 1 represent&oacute; las condiciones relacionadas con un ambiente costero en el que se detect&oacute; un m&aacute;ximo subsuperficial de clorofila (DCM) bien desarrollado situado a menos de 20 m de profundidad (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">fig. 3a</a>). Desde la superficie y hasta 30 m la clorofila asociada a las diatomeas constituy&oacute; m&aacute;s de 90% de TChl <i>a.</i> Por debajo del MSC se increment&oacute; sustancialmente la contribuci&oacute;n relativa de los procariotas, y la DVChl <i>a</i> constituy&oacute; aproximadamente un 90% de la TChl <i>a</i> entre 80 y 90 m de profundidad (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">fig. 3c</a>). La estaci&oacute;n 3 present&oacute; caracter&iacute;sticas de transici&oacute;n entre las condiciones oce&aacute;nicas (estaciones 4 a 11) ylos ambientes influenciados por la costa, y se caracteriz&oacute; por presentar un MSC relativamente somero (~40 m) con concentraciones de TChl <i>a</i> de 0.37 &#956;g L<sup>&#45;1</sup>. En la superficie la TChl <i>a</i> estuvo conformada principalmente por biomasa de c&eacute;lulas procariotas (&gt;80% de la TChl <i>a).</i> La contribuci&oacute;n de estos grupos a la TChl <i>a</i> disminuy&oacute; hasta un 23% en el MSC (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">fig. 3g</a>) y el componente eucariota (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">fig. 3h</a>) estuvo representado principalmente por primnesiofitas (presencia de 19&#45;hexanoiloxifucoxantina, HF) y pelagofitas (presencia de 19&#45;butanoiloxifucoxantina, BF). En la estaci&oacute;n 3, alrededor de los 100 m (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">fig. 3e</a>), se encontr&oacute; un segundo MSC donde la DVChl <i>a</i> represent&oacute; m&aacute;s del 94% de la TChl <i>a.</i> La presencia de este segundo m&aacute;ximo (m&aacute;ximo de <i>Prochlorococcus, p</i>MSC) no estuvo correlacionada con la TChl <i>a</i> en la superficie o en el MSC <i>(P</i> &gt; 0.05; <i>n</i> = 9; correlaci&oacute;n de Spearman). Sin embargo, se detect&oacute; una fuerte correlaci&oacute;n negativa entre la profundidad del <i>p</i>MSC y la distancia a la costa <i>(r</i> = &#45;0.94, <i>P</i> &lt; 0.05; <i>n</i> = 9). El <i>p</i>MSC se detect&oacute; en toda el &aacute;rea de estudio excepto en las estaciones 10 y 11 (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">fig. 3i</a>). El <i>p</i>MSC se ha relacionado con la presencia de la capa del m&iacute;nimo de ox&iacute;geno en el ETNP de M&eacute;xico que es somera cerca de la costa y tiende a hacerse m&aacute;s profunda hacia ambientes oce&aacute;nicos (Goericke <i>et al.</i> 2000). <i>Prochlorococcus</i> fue el tax&oacute;n m&aacute;s importante en la columna de agua en el &aacute;rea de estudio. Por ejemplo, en la estaci&oacute;n 11, la DVChl <i>a</i> constituy&oacute; 60% de la TChl <i>a</i> en superficie (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">fig. 3k</a>). Este aporte disminuy&oacute; al 30% en el MSC y se increment&oacute; en aguas m&aacute;s profundas donde lleg&oacute; a ser m&aacute;s del 90% de la TChl <i>a</i> (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">fig. 3g</a>, <a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">c</a>). En relaci&oacute;n a los valores del potencial fotoqu&iacute;mico de la comunidad de fitoplancton en el &aacute;rea, los valores de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> estuvieron por debajo, o cercanos a 0.5 en la mayor&iacute;a de las muestras (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">fig. 3b</a>, <a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">f</a>, <a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">j</a>). <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> pareci&oacute; incrementarse de la superficie a aguas profundas con valores por encima de 0.5 s&oacute;lo en el <i>p</i>MSC. La mayor variabilidad de este par&aacute;metro se detect&oacute; en la superficie y cercano al MSC.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para identificar una posible relaci&oacute;n entre la eficiencia fotoqu&iacute;mica y las diferentes condiciones ambientales se investig&oacute; la variaci&oacute;n costa&#45;oc&eacute;ano de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> y la estructura de la comunidad de fitoplancton. Cerca de la costa las diatomeas dominaron la comunidad de fitoplancton, mientras que en el &aacute;rea oce&aacute;nica 70&#45;80% de la TChl <i>a</i> (~0.1 &#956;g L<sup>&#45;1</sup> en promedio) estuvo asociada a <i>Prochlorococcus</i> y otras cianobacterias (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg" target="_blank">fig. 4a</a>). Las primnesiofitas fueron el grupo de eucariotas mejor representado en las comunidades oce&aacute;nicas (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg" target="_blank">fig. 4a</a>). Un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n entre los grupos de fitoplancton mostr&oacute; una fuerte asociaci&oacute;n entre primnesiofitas y pelagofitas (correlaci&oacute;n de Spearman; <i>r</i> = 0.83, <i>P</i> &lt; 0.05; <i>n</i> = 60). Lo mismo se observ&oacute; para <i>Prochlorococcus</i> y cianobacterias, pero la intensidad de esta relaci&oacute;n no fue tan alta como la primera <i>(r</i> = 0.5, <i>P</i> &lt; 0.05; <i>n</i> = 60). Estos cuatro grupos coexistieron en el &aacute;rea, y en las estaciones oce&aacute;nicas (estaciones 2 a 11) se observ&oacute; una correlaci&oacute;n negativa <i>(r</i> = &#45;0.78, <i>P</i> &lt; 0.05; <i>n</i> = 60) entre los componentes procariotas y eucariotas (principalmente primnesiofitas y pelagofitas). Estos resultados indican que la contribuci&oacute;n relativa de estos cuatro grupos principales a la biomasa total definen diferentes comunidades de fitoplancton en el &aacute;rea. Espec&iacute;ficamente, la comunidad de fitoplancton en el MSC fue diferente a la de la superficie en la zona oce&aacute;nica. En la superficie la variaci&oacute;n de la biomasa fue causada por cambios en la contribuci&oacute;n relativa de las pelagofitas y primnesiofitas <i>(r</i> = 0.88, <i>P</i> &lt; 0.05; <i>n</i> = 9) con cambios concomitantes en el componente procariota <i>(r</i> = &#45;0.88, <i>P</i> &lt; 0.05; <i>n</i> = 9). En contraste, el incremento de biomasa en el MSC fue consecuencia del incremento de especies eucariotas y no de la disminuci&oacute;n de la biomasa procariota <i>(r</i> = 0.83; <i>P</i> &lt; 0.05; <i>n</i> = 9). Por lo tanto, consideramos que las comunidades de fitoplancton de la superficie, el MSC y el <i>p</i>MSC en el oc&eacute;ano pueden ser consideradas comunidades diferentes y, por tanto, deben de poseer distintas caracter&iacute;sticas fisiol&oacute;gicas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La comunidad de fitoplancton en la superficie fue relativamente constante en la regi&oacute;n oce&aacute;nica (estaciones 2 a 11, <a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg" target="_blank">fig.</a> <a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg">4a</a>). Sin embargo, en las muestras obtenidas a esta profundidad <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> fue altamente variable (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg" target="_blank">fig. 4c</a>). En comparaci&oacute;n con las muestras de la superficie, la comunidad del MSC fue m&aacute;s diversa. La contribuci&oacute;n relativa del fitoplancton eucariota a la TChl <i>a</i> fue m&aacute;s importante en el MSC (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg" target="_blank">fig. 4b</a>). Entre 30% y 40% de la TChl <i>a</i> estuvo asociada a primnesiofitas, pelagofitas y, en menor proporci&oacute;n, a diatomeas y prasinofitas (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg" target="_blank">fig. 4b</a>). En el MSC los valores mayores de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> se registraron cerca de la costa (0.55). Por el contrario, los valores m&aacute;s bajos se detectaron en estaciones oce&aacute;nicas (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg" target="_blank">fig. 4d</a>). <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> disminuy&oacute; de la costa hacia mar abierto (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg" target="_blank">fig. 4d</a>) y esta disminuci&oacute;n estuvo correlacionada negativamente con la profundidad del MSC <i>(r</i> = &#45;0.81, <i>P</i> &lt; 0.05; <i>n</i> = 9).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Variabilidad diurna de F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la superficie se detectaron valores bajos de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> en muestras recolectadas durante las horas de luz (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg" target="_blank">fig. 4b</a>). Por lo tanto, la variaci&oacute;n diurna de este par&aacute;metro fue monitoreada en las estaciones 5 y 7 a dos diferentes profundidades. Los cambios de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> fueron similares en ambas estaciones. La <a href="#f5">figura 5</a> muestra la variaci&oacute;n diurna de este par&aacute;metro observada en la estaci&oacute;n 7. El valor m&aacute;s alto de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> fue medido al amanecer (0.6). <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> disminuy&oacute; durante la ma&ntilde;ana hasta llegar a su valor m&aacute;s bajo medido al mediod&iacute;a (0.05) y se recuper&oacute; paulatinamente durante la tarde hasta alcanzar 85% del valor medido al amanecer (<a href="#f5">fig. 5</a>). La raz&oacute;n Zea/Chl <i>a</i> fue significativamente mayor en la superficie (40%) que en las muestras tomadas a 40 m de profundidad (prueba de t, <i>P</i> &lt; 0.05), pero no se detectaron cambios en la concentraci&oacute;n relativa de este pigmento ni en la superficie ni en las muestras tomadas a 40 m de profundidad (datos no mostrados). Por lo tanto, la variaci&oacute;n diurna no estuvo relacionada con cambios en la concentraci&oacute;n de pigmentos de la comunidad de fitoplancton.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f5.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Experimentos de enriquecimiento</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; el efecto de la adici&oacute;n de nutrientes sobre <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> y la biomasa del fitoplancton. Al igual que en las condiciones <i>in situ,</i> en los experimentos de enriquecimiento la variaci&oacute;n de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> sigui&oacute; un ciclo d&iacute;a&#45;noche (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f6.jpg" target="_blank">fig. 6</a>). La disminuci&oacute;n de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> durante el mediod&iacute;a fue menor ya que las c&eacute;lulas de los experimentos estuvieron expuestas a menores irradiancias comparadas con las condiciones de campo. La adici&oacute;n de nitrato a las muestras superficiales no tuvo efecto notable en <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> <i>.</i> No hubo un incremento en los valores m&aacute;ximos de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> tras la adici&oacute;n de nitratos a las muestras superficiales y este par&aacute;metro nunca fue mayor a 0.6. En contraste, la adici&oacute;n de nitrato a estas muestras afect&oacute; la acumulaci&oacute;n de biomasa y la composici&oacute;n de la comunidad de fitoplancton. Las muestras superficiales utilizadas para los experimentos de enriquecimiento presentaron concentraciones bajas de TChl <i>a</i> (0.1 &#956;g L<sup>&#45;1</sup>), en las que los procariotas representaron 80% de la biomasa. (Condici&oacute;n inicial; <a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). La adici&oacute;n de nitrato result&oacute; en un incremento de 26 veces en la TChl <i>a</i> en el experimento 1 y en menos de 2 veces en el experimento 2 (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). La biomasa de las primnesiofitas y pelagofitas, pero principalmente la de las diatomeas, se increment&oacute; en las muestras en las que se a&ntilde;adi&oacute; nitrato (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). Esto fue evidente por el incremento de fucoxantina, BF y HF (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). Particularmente, la concentraci&oacute;n de fucoxantina al final del periodo de incubaci&oacute;n fue de 100 y 20 veces mayor comparada con la condici&oacute;n inicial y el tratamiento control en los experimentos 1 y 2 respectivamente (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). En contraste, las concentraciones de Zea y DVChl <i>a</i> fueron semejantes entre el control y los tratamientos con nitrato. Por lo tanto, la biomasa de las ciano&#45;bacterias no se increment&oacute; tras la adici&oacute;n de nitrato.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La eficiencia m&aacute;xima de separaci&oacute;n de carga del PSII no es un buen indicador de estr&eacute;s nutricional en las comunidades de fitoplancton de regimenes oligotr&oacute;ficos debido a que este par&aacute;metro mostr&oacute; una fuerte variabilidad diurna, en especial en las muestras superficiales. Por lo tanto, los valores bajos de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> no reflejan necesariamente una limitaci&oacute;n de la tasa fotosint&eacute;tica de la comunidad de fitoplancton debida al estr&eacute;s nutricional. El uso de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> como indicador de estr&eacute;s nutricional en estudios oceanogr&aacute;ficos se basa en observaciones donde este par&aacute;metro se incrementa de la superficie hacia la nutriclina (Geider <i>et al.</i> 1993a). De la misma forma, la disminuci&oacute;n de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> en muestras superficiales en un gradiente costa&#45;oc&eacute;ano ha sido usado para concluir que los valores bajos de este par&aacute;metro indican limitaci&oacute;n por nutrientes de la tasa fotosint&eacute;tica (Kolber <i>et al.</i> 1990, Geider <i>et al.</i> 1993a, Falkowski <i>et al.</i> 1991, Olaizola <i>et al.</i> 1996). Sin embargo, estos estudios no toman en cuenta la variaci&oacute;n diurna de la eficiencia del PSII. Behrenfeld <i>et al.</i> (2006) mostraron que <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> sigue un ciclo d&iacute;a&#45;noche con una disminuci&oacute;n acentuada al mediod&iacute;a asociada con la respuesta fisiol&oacute;gica del fitoplancton al exceso de luz, y tambi&eacute;n una disminuci&oacute;n durante la noche debida a procesos de respiraci&oacute;n. <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> reflejan la fisiolog&iacute;a del fitoplancton; sin embargo, los cambios diurnos de este par&aacute;metro deben de ser considerados para hacer inferencias sobre el estr&eacute;s por nutrientes. Espec&iacute;ficamente, el valor m&aacute;s alto al amanecer y su reducci&oacute;n durante la noche define el estado fisiol&oacute;gico de la comunidad de fitoplancton (Behrenfeld <i>et al.</i> 2006). Nuestro estudio concuerda con lo reportado por Behrenfeld <i>et al.</i> (2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El grado de reducci&oacute;n de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> durante el periodo de luz depende de la cantidad de irradiancia que llega al fitoplancton. Con una composici&oacute;n relativamente similar, la comunidad ubicada a 40 m de profundidad present&oacute; una reducci&oacute;n mucho menor que la superficial durante el mediod&iacute;a. La disminuci&oacute;n de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> relacionada con e campo de luz en capas profundas tambi&eacute;n fue reportado por Behrenfeld <i>et al.</i> (2006). Aunque hubo una disminuci&oacute;n considerable al mediod&iacute;a en las muestras superficiales, se detect&oacute; una recuperaci&oacute;n casi total al final del d&iacute;a, lo que indica que la actividad del PSII est&aacute; eficientemente regulada durante las horas de luz. Varios procesos est&aacute;n involucrados en la regulaci&oacute;n reversible del PSII. Espec&iacute;ficamente, la s&iacute;ntesis en corto plazo de carotenoides fotoprotectores es uno de los procesos m&aacute;s importantes relacionados con la regulaci&oacute;n del PSII. La acumulaci&oacute;n de diatoxantina es la principal estrategia fotoprotectora en comunidades dominadas por diatomeas (Kashino <i>et al.</i> 2002). Este no es el caso para regiones oligotr&oacute;ficas donde la comunidad del fitoplancton est&aacute; dominada por cianobacterias. Espec&iacute;ficamente, en el PNOT mexicano 60&#45;80% de la biomasa superficial del fitoplancton estuvo asociada con este grupo (<a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f3.jpg" target="_blank">figs. 3</a>, <a href="/img/revistas/ciemar/v34n1/a3f4.jpg" target="_blank">4</a>). La s&iacute;ntesis a corto plazo de carotenoides foto&#45;protectores no est&aacute; presente en las cianobacterias. Por lo tanto, no se esperaba detectar variaciones en el corto plazo en la concentraci&oacute;n de carotenoides, lo cual se confirma con los valores relativamente constantes de la raz&oacute;n Zea/Chl <i>a</i> encontrados a lo largo del d&iacute;a. Sin embargo, esta raz&oacute;n fue mucho mayor en la superficie que en las muestras m&aacute;s profundas. Kana <i>et al.</i> (1988) reportaron que la concentraci&oacute;n de Zea es significativamente mayor en cultivos de <i>Synechococcus</i> aclimatados a luz intensa. Tambi&eacute;n, el incremento de la concentraci&oacute;n de Zea como respuesta a una alta intensidad de luz ha sido reportada en comunidades oligotr&oacute;ficas superficiales (Letelier <i>et al.</i> 1993, Babin <i>et al.</i> 1996) y en cultivos de <i>Prochlorococcus</i> (Bruyant <i>et al.</i> 2005). Aunque no se ha caracterizado el papel especifico del Zea en la regulaci&oacute;n de PSII <i>(quenching</i> energ&eacute;tico) en cianobacterias, es claro que este carotenoide juega un papel importante en la fotoprotecci&oacute;n de este grupo (Kerfeld 2004). El fitoplancton que habita ambientes oligotr&oacute;ficos debe contar con mecanismos efectivos de fotoprotecci&oacute;n para regular la actividad de PSII y evitar la fotoinhibici&oacute;n. Para recuperarse de la fotoinhibici&oacute;n los organismos requieren s&iacute;ntesis <i>de novo</i> de prote&iacute;nas, lo que representa una inversi&oacute;n energ&eacute;tica importante. Por lo tanto, la regulaci&oacute;n de la actividad del PSII (reflejado en los valores bajos de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> <i>)</i> no significa que el potencial fotoqu&iacute;mico est&eacute; asociado con estr&eacute;s nutricional. Una observaci&oacute;n que corrobora que la fotos&iacute;ntesis del fitoplancton en el PNOT no est&aacute; limitada por nitratos es la ausencia de cambios en <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> despu&eacute;s de la adici&oacute;n de este nutriente a las muestras superficiales. La eficiencia del PSII responde inmediatamente a la mitigaci&oacute;n del factor de estr&eacute;s. Por ejemplo, en comunidades de fitoplancton limitadas por hierro, la ca&iacute;da nocturna de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> se revierte y su valor se incrementa inmediatamente despu&eacute;s de incorporar este micronutriente (Olson <i>et al.</i> 2000, Behrenfeld <i>et al.</i> 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> medidos antes del amanecer y al atardecer en las muestras superficiales del PNOT; los obtenidos a 40 m de profundidad y los medidos en los experimentos de enriquecimiento (entre 0.5 y 0.6) son caracter&iacute;sticos de lo que Behrenfeld <i>et al.</i> (2006) definieron como el r&eacute;gimen fisiol&oacute;gico I de la cuenca del Pac&iacute;fico Tropical. Este r&eacute;gimen est&aacute; presente en regiones oceanogr&aacute;ficas con suficiente hierro disuelto pero poca disponibilidad de macronutrientes. La tasa fotosint&eacute;tica de la comunidad de fitoplancton en estas regiones no est&aacute; limitada ya que las microalgas presentan tasas de crecimiento altas (Behrenfeld <i>et al.</i> 2006). Por otra parte, las c&eacute;lulas con altos requerimientos espec&iacute;ficos de nitrato como las diatomeas y primnesiofitas si pueden sufrir limitaci&oacute;n en su eficiencia fotosint&eacute;tica por falta de este nutriente. Lo anterior puede explicar la baja acumulaci&oacute;n de biomasa de estos grupos en la zona de estudio donde las variaciones en <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> probablemente no reflejen las condiciones fisiol&oacute;gicas de tales c&eacute;lulas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> como herramienta diagn&oacute;stica en oceanograf&iacute;a supone que la comunidad de fitoplancton es considerada una entidad compuesta por organismos que responden en forma homog&eacute;nea a las restricciones ambientales. Sin embargo, dicha comunidad es un grupo diverso compuesto por microalgas pertenecientes a varios linajes evolutivos. Por lo tanto, la estructura de la comunidad puede jugar un papel importante en los valores m&aacute;ximos de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub>,</i> y la variaci&oacute;n de este par&aacute;metro debe estar asociada con la respuesta diferencial de los fitoplanctontes en la comunidad. Por ejemplo, en las cianobacterias <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> nunca es mayor de 0.45 y las eficiencias de fluorescencia (m&aacute;xima y m&iacute;nima) dependen de la asociaci&oacute;n de los principales complejos antena (ficobilisomas) ya sea al PSII o PSI (Campbell <i>et al.</i> 1998). Adem&aacute;s, en las algas procariotas la respiraci&oacute;n y la cadena fotosint&eacute;tica de transporte de electrones est&aacute;n acopladas, lo que afecta el estado redox del conjunto de PQ, y &eacute;ste a su vez incide directamente en los valores de fluorescencia del PSII (Campbell <i>et al.</i> 1998, Kolber y Falkowski 1993). Por lo tanto, en comunidades mixtas de fitoplancton las estimaciones de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> menores a 0.75 (para protocolos PAM) no necesariamente indican una disminuci&oacute;n en la eficiencia del PSII. Valores bajos pueden reflejar una contribuci&oacute;n significativa de grupos con bajo <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> a la se&ntilde;al de fluorescencia. De hecho, los valores de <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> reportados para comunidades naturales nunca son mayores a los reportados en cultivos (Bergmann <i>et al.</i> 2002, Gervais <i>et al.</i> 2002, Kashino <i>et</i> <i>al.</i> 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, en las comunidades de fitoplancton de la regi&oacute;n del PNOT mexicano, dominadas por aut&oacute;trofos procariotas, el <i>F<sub>v</sub>/F<sub>m</sub></i> m&aacute;ximo medido al amanecer y la insensibilidad de este par&aacute;metro a la adici&oacute;n de nitratos, indican que las c&eacute;lulas procariotas no presentaron caracter&iacute;sticas de limitaci&oacute;n por las condiciones ambientales presentes. En contraste, las condiciones del PNOT limitan la acumulaci&oacute;n de biomasa de especies cuyos requerimientos metab&oacute;licos de nitrato son mayores, tales como las diatomeas. La eficiencia m&aacute;xima del PSII puede reflejar el estado fisiol&oacute;gico de la comunidad a las condiciones ambientales. Sin embargo, los cambios diurnos observados durante las horas de luz y la variaci&oacute;n asociada con diferentes comunidades del fitoplanct&oacute;nicas limitan el uso de la fluorescencia activa como herramienta diagnostica de estr&eacute;s nutricional.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen al CONACyT la beca otorgada a A Almaz&aacute;n, y al Dr. Ralph Goericke de SIO y la tripulaci&oacute;n del B/O <i>New Horizon</i> por su apoyo y colaboraci&oacute;n.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Babin M, Morel A, Claustre H, Bricaud A, Kolber Z, Falkowski PG. 1996. Nitrogen&#45; and irradiance&#45;dependent variations of the maximum quantum yield of carbon fixation in eutrophic, mesotrophic and oligotrophic marine systems. Deep&#45;Sea Res. I 43: 1241&#45;1271.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908055&pid=S0185-3880200800010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Behrenfeld JM, Worthington K, Sherrell MR, Chavez PF, Strutton P, McPhaden M, Shea DM. 2006. Controls on tropical Pacific Ocean productivity revealed through nutrient stress diagnostics. Nature 442: 1025&#45;1028.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908057&pid=S0185-3880200800010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bergmann T, Richardson TL, Pearl HW, Pinckney JL, Schofield O. 2002. Synergy and nutrients on the photosynthetic efficiency of phytoplankton populations from the Neuse River Estuary, North Carolina. J. Plankton Res. 24: 923&#45;933.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908059&pid=S0185-3880200800010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bruyant F, Babin M, Genty B, Prasil O, Behrenfeld JM, Claustre H, Bricaud A, Garaczarek L, Holtzendorff J, Koblizek M, Dousova H, Partensky F. 2005. Diel variations in the photosynthetic parameters of <i>Prochlorococcus</i> strain PCC 9511: Combined effects of light and cell cycle. Limnol. Oceanogr. 50: 858&#45;863.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908061&pid=S0185-3880200800010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Campbell D, Hurry V, Clarke AK, Gustafsson P, Oquist G. 1998. Chlorophyll fluorescence analysis of cyanobacterial photosynthesis and acclimatation. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 62: 667&#45;683.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908063&pid=S0185-3880200800010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Colombo&#45;Pallota MF, Garc&iacute;a&#45;Mondoza E, Ladah LB. 2006. Photosynthetic performance, light absorption, and pigment composition of <i>Macrocystis pyrifera</i> (Laminariales, Phaeophyceae) blades from different depths. J. Phycol. 42: 1225&#45;1234.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908065&pid=S0185-3880200800010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Falkowski PG, Ziemann D, Kolber Z, Bienfang PK. 1991. Nutrient pumping and phytoplankton response in a subtropical mesoscale eddy. Nature 352: 55&#45;58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908067&pid=S0185-3880200800010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Geider RJ, Green RM, Kolber ZS, MacIntyre HL, Falkowski PG. 1993a. Fluorescence assessment of the maximum quantum yield efficiency of photosynthesis in the western North Atlantic. Deep&#45;Sea Res. 40: 1205&#45;1224.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908069&pid=S0185-3880200800010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Geider R, La Roche JR, Greene M, Olaizola M. 1993b. Response of the photosynthetic apparatus of <i>Phaeodactylum tricornutum</i> (Bacillariophyceae) to nitrate, phosphate, or iron starvation. J. Phycol. 29: 755&#45;756.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908071&pid=S0185-3880200800010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gervais F, Riebsell U, Gurbonov M. 2002. Changes in primary productivity and chlorophyll <i>a</i> in response to iron fertilization in the Southern Polar Frontal Zone. Limnol. Oceanogr. 47: 1324&#45;1335.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908073&pid=S0185-3880200800010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Goericke R, Olson RJ, Shalapyonok A. 2000. A novel niche for <i>Prochlorococcus</i> sp. in low&#45;light suboxic environments in the Arabian Sea and the Eastern Tropical North Pacific. Deep&#45;Sea Res. 47: 1183&#45;1205.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908075&pid=S0185-3880200800010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Greene RM, Kolber ZS, Swift DG, Tindale NW, Falkowski PG. 1994. Physiological limitation of phytoplankton photosynthesis in the eastern equatorial Pacific determined from variability in the quantum yield of fluorescence. Limnol. Oceanogr. 39: 1061&#45;1074.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908077&pid=S0185-3880200800010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kana TM, Gilbert PM, Goericke R, Welschmeyer A. 1988. Zeaxanthin and B&#45;caritene in <i>Synechococcus</i> WH 7803 respond different to irradiance. Limnol. Oceanogr. 33: 1623&#45;1327.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908079&pid=S0185-3880200800010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kashino Y, Kudoh S, Hayashi Y, Suzuki Y, Odate T, Hirakawe T, Satoh K, Fukuchi M. 2002. Strategies of phytoplankton to perform effective photosynthesis in North Water. Deep&#45;Sea Res. 49: 5049&#45;5061.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908081&pid=S0185-3880200800010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kerfeld CA. 2004. Structure and function of the water&#45;soluble carotenoid&#45;binding proteins of cyanobacteria. Photosynthesis Res. 81: 215&#45;225.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908083&pid=S0185-3880200800010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kolber Z, Falkowski PG. 1993. Use of active fluorescence to estimate phytoplankton photosynthesis <i>in situ.</i> Limnol. Oceanogr. 38: 1646&#45;1665.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908085&pid=S0185-3880200800010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kolber Z, Wyman KD, Falkowski PG. 1990. Natural variability in photosynthetic energy conversion efficiency: A field study in the Gulf of Maine. Limnol. Oceanogr. 35: 72&#45;79.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908087&pid=S0185-3880200800010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kromkamp CJ, Forster RM. 2003. The use of variable fluorescence measurements in aquatic ecosystems: Differences between multiple and single turnover measuring protocols and suggested terminology. Eur. J. Phycol. 38: 103&#45;112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908089&pid=S0185-3880200800010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Legendre L, Rassoulzadegan F, Michaud J. 1999. Identifying the dominant processes (physical versus biological) in pelagic marine ecosystems from field chlorophyll <i>a</i> and phytoplankton production. J. Plankton Res. 21: 1643&#45;1658.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908091&pid=S0185-3880200800010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Letelier RM, Bidigare RR, Henbel DV, Ondrusek M, Winn CD, Karl DM. 1993. Temporal variability of phytoplankton community based on pigment analysis. Limnol. Oceanogr. 38: 1420&#45;1437.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908093&pid=S0185-3880200800010000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">L&oacute;pez&#45;Calder&oacute;n J, Manzo&#45;Monroy H, Santamar&iacute;a&#45;del&#45;&Aacute;ngel E, Castro R, Gonz&aacute;lez&#45;Silvera A, Mill&aacute;n&#45;N&uacute;&ntilde;ez R. 2006. Mesoscale variability of the Mexican Tropical Pacific using TOPEX and SeaWiFS data. Cienc. Mar. 32: 539&#45;549.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908095&pid=S0185-3880200800010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mackey MD, Mackey DJ, Higgins HW, Wright S. 1996. CHEMTAX, a program for estimating class abundances from chemical markers: Application to HPLC measurements of phytoplankton pigments. Mar. Ecol. Prog. Ser. 144: 265&#45;283.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908097&pid=S0185-3880200800010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Olaizola M, Geider RJ, Harrison WG, Graziano LM, Ferrari GM, Schlittenhardt PM. 1996. Synoptic study of variations in the fluorescence&#45;based maximum quantum yield efficiency of photosynthesis across the North Atlantic Ocean. Limnol. Oceanogr. 41: 755&#45;765.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908099&pid=S0185-3880200800010000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Olson RJ, Sosik HM, Chekalyuk AM, Shalapyonok A. 2000. Effects of iron enrichment on phytoplankton in the Southern Ocean during late summer: Active fluorescence and flow cytometric analyses. Deep&#45;Sea Res. 47: 3181&#45;3200.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908101&pid=S0185-3880200800010000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Parkhill JP, Maillet G, Cullen JJ. 2001. Fluorescence&#45;based maximal quantum yield for PS II as a diagnostic of nutrient stress. J. Phycol. 37: 517&#45;529.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1908103&pid=S0185-3880200800010000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodriguez&#45;Rom&aacute;n A, Iglesias&#45;Prieto R. 2005. Regulation of photochemical activity in cultured symbiotic dinoflagellates under nitrate limitation and deprivation. Mar. 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