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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Detección del Virus Mosaico Amarillo de la Calabaza Zucchini (ZYMV) y su Coinfección con otros Virus en Cucurbitáceas Cultivadas y Plantas Silvestres en el Valle del Fuerte, Sinaloa, México]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Detection of Zucchini yellows mosaic virus (ZYMV) and its coinfection with other virus in cultivated Cucurbitaceae and wild plants in Fuerte Valley, Sinaloa, Mexico]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Viral diseases are the main limiting factor for cucurbit production in El Fuerte Valley, Sinaloa, Mexico. The objective of this study was to detect Zucchini yellows mosaic virus (ZYWV), Watermelon mosaic virus (WMV), Papaya ring spot virus (PRSV-W), and Cucumber mosaic virus (CMV) using ELISA and RT-PCR procedures. ZYMV and the mixture ZYMV + PRSV-W predominated during the month of November with 54.5 and 36.4% incidence, respectively. In December, infections by ZYMV and PRSV-W occurred at 8.3 and 75%, while ZYMV + PRSV-W was detected at 16.7%. In January, infections by ZYMV, PRSV-W, CMV, and WMV ranged from 3.8 to 23.1%; and the combinations of these viruses varied from 3.8 to 30.8%. In February, ZYMV and WMV occurred at 28.6%, while CMV occurred at 7.6%; combinations of these viruses ranged from 5.6 to 8.7%. In April, WMV and ZYMV reached 38.9 and 44.4%, respectively; the mixtures ZYMV + PRSV-W and ZYMV + WMV ocurred at 5.5 and 11.1%. All these viruses were detected in wild plants of tobacco (Nicotiana glauca), wild melon (Cucurbita foetedissima), bitter cucumber (Momordica charantia), and spiny cucumber (Cucumis dipsaceus), except ZYMV, which was not detected in wild tobacco. This study indicates the role of the wild plant species in the epidemiology these viruses merits further research in the region.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Detecci&oacute;n del Virus Mosaico Amarillo de la Calabaza Zucchini (ZYMV) y su Coinfecci&oacute;n con otros Virus en Cucurbit&aacute;ceas Cultivadas y Plantas Silvestres en el Valle del Fuerte, Sinaloa, M&eacute;xico</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Detection of <i>Zucchini yellows mosaic virus</i> (ZYMV) and its coinfection with other virus in cultivated Cucurbitaceae and wild plants in Fuerte Valley, Sinaloa, Mexico</b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Rub&eacute;n F&eacute;lix&#45;Gast&eacute;lum<sup>1</sup>, Marco Antonio Magallanes&#45;Tapia<sup>2</sup>, Jes&uacute;s M&eacute;ndez&#45;Lozano<sup>2</sup>, Herv&eacute; Huet<sup>3</sup>, Jos&eacute; &Aacute;ngel Trigueros&#45;Salmer&oacute;n<sup>1</sup> y Rosa Mar&iacute;a Longoria&#45;Espinoza<sup>4</sup></b></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup><i> Universidad de Occidente (U de O), Unidad Los Mochis, Depto. de Ciencias Biol&oacute;gicas (DCB), Blvd. Macario Gaxiola y Carr. Internacional s/n, Los Mochis, Sinaloa, M&eacute;xico CP 81223.</i></font> <font face="verdana" size="2">Correspondencia: <a href="mailto:rfelix@mochis.udo.mx">rfelix@mochis.udo.mx</a>.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> <sup><i>2 </i></sup><i>CIIDIR&#45;IPN, Unidad Sinaloa, Blvd. Juan de Dios Batiz Paredes 250, Guasave, Sinaloa, M&eacute;xico CP 81101.</i></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> Bio&#45;Oz. Ltd., Yad&#45;Mordechai, Hof&#45;Ashkelon 79145, Israel.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>4</sup> U de O, Unidad Guasave, DCB, Av. Universidad s/n, Guasave, Sinaloa, M&eacute;xico CP 81120.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Marzo 26, 2007     <br>     </font><font face="verdana" size="2">Aceptado: Junio 26, 2007</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b> </font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las enfermedades de origen viral son el principal factor limitante en la producci&oacute;n de cucurbit&aacute;ceas en el Valle del Fuerte, Sinaloa, M&eacute;xico. El objetivo del presente estudio fue detectar al virus mosaico amarillo de la calabaza zucchini (ZYMV), virus mosaico de la sand&iacute;a (WMV), virus mancha anular del papayo variante sand&iacute;a (PRSV&#45;W) y virus mosaico del pepino (CMV) mediante ELISA y RT&#45;PCR. En el mes de noviembre predominaron ZYMV con 54.5&#37; de incidencia y la mezcla ZYMV + PRSV&#45;W con 36.4&#37;; en diciembre ocurrieron el ZYMV y PRSV&#45;W en 8.3 y 75&#37;, respectivamente, y la mezcla ZYMV + PRSV&#45;W ocurri&oacute; en 16.7&#37;. En enero las infecciones por ZYMV, PRSV&#45;W, CMV y WMV variaron de 3.8 a 23.1&#37; y las mezclas de &eacute;stos oscilaron de 3.8 a 30.8&#37;; en febrero predominaron el ZYMV y WMV con incidencias de 28.6&#37; y CMV con 7.6&#37;, las mezclas de &eacute;stos variaron de 5.6 a 8.7&#37;; en abril, el WMV y ZYMV ocurrieron en 38.9 y 44.4&#37;, mientras que las mezclas ZYMV+PRSV&#45;W y ZYMV+ WMV ocurrieron en 5.5 y 11.1&#37;. Plantas silvestres de tabaco <i>(Nicotiana glauca),</i> mel&oacute;n silvestre <i>(Cuc&uacute;rbita foetedissima),</i> pepino amargo <i>(Momordica charantia)</i> y pepino espinoso <i>(Cucumis dipsaseus)</i> presentaron los mismos virus excepto ZYMV, el cual no se detect&oacute; en tabaco. Este trabajo abre nuevas l&iacute;neas de investigaci&oacute;n orientadas a la determinaci&oacute;n del papel de las malezas en la epidemiolog&iacute;a de los virus en la regi&oacute;n.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Enfermedades virales, tabaco, <i>Nicotiana glauca, Cucurbita foetedissima, Momordica charantia, Cucumis dipsaseus.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Viral diseases are the main limiting factor for cucurbit production in El Fuerte Valley, Sinaloa, Mexico. The objective of this study was to detect <i>Zucchini yellows mosaic virus</i> (ZYWV), <i>Watermelon mosaic virus</i> (WMV), <i>Papaya ring spot virus</i> (PRSV&#45;W), and <i>Cucumber mosaic virus</i> (CMV) using ELISA and RT&#45;PCR procedures. ZYMV and the mixture ZYMV + PRSV&#45;W predominated during the month of November with 54.5 and 36.4&#37; incidence, respectively. In December, infections by ZYMV and PRSV&#45;W occurred at 8.3 and 75&#37;, while ZYMV + PRSV&#45;W was detected at 16.7&#37;. In January, infections by ZYMV, PRSV&#45;W, CMV, and WMV ranged from 3.8 to 23.1&#37;; and the combinations of these viruses varied from 3.8 to 30.8&#37;. In February, ZYMV and WMV occurred at 28.6&#37;, while CMV occurred at 7.6&#37;; combinations of these viruses ranged from 5.6 to 8.7&#37;. In April, WMV and ZYMV reached 38.9 and 44.4&#37;, respectively; the mixtures ZYMV + PRSV&#45;W and ZYMV + WMV ocurred at 5.5 and 11.1&#37;. All these viruses were detected in wild plants of tobacco <i>(Nicotiana glauca),</i> wild melon <i>(Cucurbita foetedissima),</i> bitter cucumber <i>(Momordica charantia),</i> and spiny cucumber <i>(Cucumis dipsaceus),</i> except ZYMV, which was not detected in wild tobacco. This study indicates the role of the wild plant species in the epidemiology these viruses merits further research in the region.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> Viral diseases, tabacco, <i>Nicotiana glauca, Cucurbita foetedissima, Momordica charantia, Cucumis dipsaseus.</i></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el norte de Sinaloa, M&eacute;xico, se siembra un promedio de 7,055 ha de cucurbit&aacute;ceas anualmente (CAADES, 2004) e incluyen dos especies de calabaza (<i>Cucurbita pepo</i> L. y <i>Cucurbita moschata</i> Duch. ex Poir.), pepino (<i>Cucumis sativus</i> L.), mel&oacute;n (<i>Cucumis melo</i> L.) y sand&iacute;a &#91;<i>Citrullus lanatus</i> (Thumb.) Matsum. y Nakai&#93;. Estos cultivos son afectados por enfermedades de origen fungoso y bacterial (Le&oacute;n&#45;Gallegos, 1988; Ram&iacute;rez, 1991). Dentro de las primeras se encuentran el mildi&uacute; <i>(Pseudoperonospora cubensis</i> Berk. y Curt.) Rost., el tiz&oacute;n foliar por <i>Alternaria cucumerina</i> (Ellis y Everhart) Elliot, la mancha foliar inducida por <i>Corynespora cassicola</i> (Berk. y Curt.) Wei (F&eacute;lix&#45;Gast&eacute;lum y S&aacute;nchez&#45;Castro, 1980) y la cenicilla causada por <i>Podosphaera</i> (Sect. <i>Sphaerotheca) xanthii</i> (Castagne) U. Braun y N. Schishkoff (F&eacute;lix&#45;Gast&eacute;lum <i>et al.,</i> 2005) En relaci&oacute;n a los virus, 32 de ellos han sido consignados en cucurbit&aacute;ceas en el mundo (Lovisolo, 1980; Zitter <i>et al.,</i> 1996.). Dentro de estos virus sobresalen por su importancia los que son trasmitidos por &aacute;fidos, particularmente el virus mosaico del pepino (CMV), virus mancha anular del papayo variante sand&iacute;a (PRSV&#45;W), virus mosaico de la sand&iacute;a (WMV) y virus mosaico amarillo de la calabaza zucchini (ZYMV), los cuales son trasmitidos por 60, 25, 42, y 12 especies de &aacute;fidos (Homoptera: Aphididae), respectivamente (Kucharek y Purcifull, 2001). Estudios realizados en otros pa&iacute;ses indican que estos cuatro virus causan efectos severos en la producci&oacute;n y calidad de diversas cucurbit&aacute;ceas (Blua y Perring, 1989; Castle <i>et al.,</i> 1992; Desbiez y Lecoq, 1997; Lisa y Lecoq, 1984; Wang <i>et al.,</i> 1992); por ejemplo, en los estados de Maranhao (Moura, <i>et al.,</i> 2001) y Sao Paulo, Brasil (Yuki, <i>et al.,</i> 2000), la incidencia del PRSV&#45;W ha alcanzado el 64.4 y 49&#37;, respectivamente. De igual forma, en &Aacute;frica del Sur se ha consignado la incidencia del ZYMV, WMV y CMV en niveles de 50.6, 22.6 y 6.67&#37;, respectivamente, encontr&aacute;ndose que el 30&#37; de las plantas resultaron positivas para la presencia de m&aacute;s de uno de estos virus (Cradock <i>et al.,</i> 2001). En Turqu&iacute;a, WMV, ZYMV y CMV han presentado incidencias de 53.9, 38.8, y 26.6&#37;, respectivamente, en cucurbit&aacute;ceas cultivadas (Sevik y Arli&#45;Sokmen, 2003). Se ha observado que los s&iacute;ntomas inducidos por el ZYMV son m&aacute;s severos cuando ocurre en infecciones mixtas con otros virus, particularmente con CMV (Lecoq <i>et</i> al., 1981). Adicionalmente, en Hungr&iacute;a se ha detectado CMV, ZYMV y WMV en pepino, y su incidencia en el campo var&iacute;a de un a&ntilde;o al siguiente (Kiss <i>et al.,</i> 2002). El PRSV&#45;W y WMV se consignaron en Australia, donde el segundo ha prevalecido en <i>C. pepo, C. maxima</i> Duchesne ex Lam. y <i>C. moschata</i> (Greber, 1978), en tanto que ZYMV se report&oacute; algunos a&ntilde;os m&aacute;s tarde en el mismo pa&iacute;s en un amplio grupo de cucurbit&aacute;ceas cultivadas (Greber <i>et al.,</i> 1987). Los virus en cuesti&oacute;n tambi&eacute;n se han detectado en malezas; as&iacute;, el CMV, PRSV&#45;W y ZYMV se reportaron en bule <i>&#91;Lagenaria siceraria</i> (Molina) St.&#93; pepino amargo <i>(Momordica charantia</i> L.) y pepino espinoso <i>(Cucumis dipsaseus</i> Eh.) (Ullman <i>et al.,</i> 1991). Estudios subsiguientes indicaron la presencia de WMV y ZYMV en M. <i>charantia</i> en Costa Rica (S&aacute;nchez <i>et al.,</i> 1998) y el CMV en <i>Nicotiana glauca</i> Graham. en Grecia (Volvas y Di Franco, 2004). A&uacute;n cuando las enfermedades virales en cucurbit&aacute;ceas son limitantes econ&oacute;micas de gran importancia en el norte de Sinaloa, M&eacute;xico, no se han realizado estudios sobre detecci&oacute;n de virus en estos cultivos, y si bien existen, se realizaron hace varios a&ntilde;os en el valle de Culiac&aacute;n, Sinaloa, M&eacute;xico, donde se determin&oacute; la presencia del CMV, virus mosaico de la calabaza (SqMV), WMV y PRSV&#45;W (Nelson <i>et al.,</i> 1966). Con base en lo anterior, se llev&oacute; a cabo el presente trabajo con el objetivo de detectar a CMV, WMV, PRSV&#45;W y ZYMV asociados a mosaicos, amarillamientos, as&iacute; como enanismo de plantas y deformaci&oacute;n de hojas y frutos en cucurbit&aacute;ceas cultivadas, tales como calabaza tipo table ace <i>(Cucurbita pepo</i> L.), kabocha (C. <i>moschata),</i> cehualca (C. <i>moschata)</i> y zucchini <i>(C. pepo)</i> y algunas malezas como <i>M. charantia, C. dipsaseus, Cucurbita foetedissima</i> Kunth. y <i>N. glauca</i> en el norte de Sinaloa, M&eacute;xico.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Presencia de los virus ZYMV, CMV, WMV y el PRSV&#45;W en lotes comerciales de cucurbit&aacute;ceas cultivadas y plantas silvestres en el Valle del Fuerte.</b> Para determinar la presencia de los virus se colectaron 178 muestras en 31 lotes comerciales de calabaza tipo table ace, kabocha, cehualca y zucchini (16, 27, 63 y 72 muestras de cada tipo, respectivamente) con s&iacute;ntomas presumiblemente de origen viral, en los Municipios de Ahome, Guasave y El Fuerte, Sinaloa, M&eacute;xico. El material se colect&oacute; de noviembre de 2004 a abril de 2005 y el n&uacute;mero muestras por mes vari&oacute; de 18 a 37. Durante dicho per&iacute;odo tambi&eacute;n se colectaron 5, 5, 3, y 39 muestras con s&iacute;ntomas de posible origen viral de pepino espinoso (C. <i>dipsaseus),</i> mel&oacute;n silvestre <i>(C. foetedissima),</i> pepino amargo <i>(M. charantia)</i> y tabaco silvestre <i>(N. glauca),</i> respectivamente. </font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Detecci&oacute;n de ZYMV, PRSV&#45;W, CMV y WMV por DAS&#45;ELISA.</b> Para el an&aacute;lisis de las muestras se utiliz&oacute; la t&eacute;cnica serol&oacute;gica de inmunoadsorci&oacute;n ligada a enzimas en s&aacute;ndwich de doble anticuerpo (DAS&#45;ELISA) (Clark y Adams, 1977). Las celdas de las placas (Dynatech, Alexandria, VA) se tapizaron en forma separada a partir de antisueros espec&iacute;ficos para el ZYMV, PRSV&#45;W, CMV y WMV proporcionados por el Dr. Herv&eacute; Huet (Bio&#45;Oz. Ltd., Yad&#45;Mordechai, Hof&#45;Ashkelon 79145, Israel). A cada celda se le agregaron 100 &#181;L savia obtenida de tejido sintom&aacute;tico; en el proceso se agreg&oacute; un volumen igual de conjugado IgG&#45;fosfatasa alcalina. Finalmente, se agregaron 100 &#181;L de sustrato PNP diluido en buffer de sustrato a cada celda de la placa y se incub&oacute; en c&aacute;mara h&uacute;meda a temperatura ambiente y en oscuridad. La absorbancia de la reacci&oacute;n ant&iacute;geno&#45;anticuerpo se registr&oacute; en un lector Minireader II (Dyanatech laboratories, Inc., 900 Slaters Lane, Alexandria, Virginia, 22314) con una longitud de onda de 405 nm. Se consider&oacute; positiva la reacci&oacute;n, cuando el valor de la absorbancia fue tres veces m&aacute;s alto que la absorbancia del testigo negativo, el cual consisti&oacute; en 2 celdas conteniendo soluci&oacute;n de extracci&oacute;n y dos celdas adicionales con savia de calabaza o pepino sanos.</font>	</p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de RNA de plantas.</b> Cuarenta y cinco muestras que resultaron positivas para la presencia de ZYMV por DAS&#45;ELISA, tambi&eacute;n se analizaron mediante la t&eacute;cnica de RT&#45;PCR, para la detecci&oacute;n del mismo virus, recurriendo al siguiente procedimiento: 5 discos de tejido sintom&aacute;tico de 9 mm de di&aacute;metro de cada muestra se colocaron en tubos de microcentr&iacute;fuga de 1.5 mL, luego se agregaron 400 &#181;L de buffer de borato 0.5M pH 8.0, el tejido se macer&oacute; y se centrifug&oacute; por 6 segundos; 150 &#181;L del sobrenadante se transfirieron a tubos de microcentr&iacute;fuga de 1.5 mL y se centrifugaron a 13,000 rpm por 5 min; posteriormente, 40 &#181;L del sobrenadante se transfirieron a otro tubo de 0.6 mL, al que se le agregaron 40 &#181;L de PEG 6000 (12&#37;) + NaCl (1&#37;) y se repos&oacute; en hielo por 5 min, para centrifugarse a 10,000 rpm por 10 min; finalmente, la pastilla se resuspendi&oacute; en 400 &#181;L de buffer de borato 0.5M pH 8.0.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Detecci&oacute;n de ZYMV por RT&#45;PCR.</b> El volumen total de la de reacci&oacute;n de RT fue de 10 &#181;L, conteniendo 2.0 &#181;L de soluci&oacute;n amortiguadora AMV (5X), 0.5 del iniciador PR75 (AGG ATC CTG GGT AAT TC), 0.37 mM de dNTP's, 2.0 U/&#181;L de inhibidor de RNAsa, 0.07 U/&#181;L de AMV&#45;RT, 3.43 &#181;L de agua triple destilada est&eacute;ril y 2.0 &#181;L de RNA total del extracto de plantas sintom&aacute;ticas. La mezcla de reacci&oacute;n se incub&oacute; en un termociclador DNA de Perkin Elmer CETUS serie P&#45;7376 por 90 min a 46&deg;C. Enseguida, las muestras se sometieron a amplificaci&oacute;n por PCR. La mezcla final de reacci&oacute;n conten&iacute;a un volumen total 20 &#181;L, la cual consisti&oacute; en 2.0 &#181;L de buffer MMLV (5X), 1.5 mM de MgCl<sub>2</sub> , 0.2 de los iniciadores PR151 (GTA GTG AAA CTA TCG TGC CAA ACA TGC) y PR75 (AGG ATC CTG GGT AAT TC), 0.2 &#181;M de dNTPs , 0.03 U/&#181;L de taq DNA polimerasa, 12.68 &#181;L de agua triple destilada est&eacute;ril y 2.0 &#181;L del producto del RT (cDNA). La mezcla de reacci&oacute;n se incub&oacute; en el termociclador antes mencionado por 30 ciclos con una temperatura inicial de desnaturalizaci&oacute;n de 95&deg;C por 2 min. Cada ciclo se program&oacute; para: 30 seg a 94&deg;C, 30 seg a 56&deg;C y 50 seg a 72&deg;C; al finalizar los ciclos, se dio una extensi&oacute;n de 72&deg;C por 3 min. Seis &#181;L del producto de la PCR se analizaron por electroforesis con un voltaje constante de 77 V por 1.5 h en gel de agarosa al 1&#37;. El producto se visualiz&oacute; en un transiluminador.</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n de la presencia de virus en forma individual y en mezcla en lotes comerciales de cucurbit&aacute;ceas en el valle del Fuerte, Sinaloa.</b> Los s&iacute;ntomas consistieron en moteado, mosaico amarillo, malformaci&oacute;n de hojas y enanismo de las plantas en general. En calabaza zucchini, fue frecuente la presencia de ampollamiento y agrietamiento de frutos. La incidencia de infecciones de virus en mezcla no permitieron discernir los s&iacute;ntomas inducidos por cada uno de ellos en particular. Durante el mes de noviembre se detect&oacute; al ZYMV, la mezcla ZYMV+PRSV&#45;W y al PRSV&#45;W en un 54.5, 36.4 y 9.1&#37; de las muestras, respectivamente (<a href="#c1">Cuadro 1</a>). Durante diciembre se encontr&oacute; al ZYMV en un 8.3&#37;, la mezcla ZYMV + PRSV&#45;W en un 16.7&#37; y al PRSV&#45;W en un 75&#37;. En enero se detect&oacute; el ZYMV en un 11.5&#37;, mientras que la incidencia de las mezclas ZYMV+PRSV&#45;W, ZYMV+WMV, ZYMV+PRSV&#45;W+WMV y PRSV&#45;W + WMV vari&oacute; de 3.8 a 30.8&#37;, al mismo tiempo la incidencia del PRSV&#45;W en forma individual fue de 23.1&#37;; de igual forma, por primera vez se detectaron los virus CMV y WMV infectando en forma individual, con incidencia de 3.8 y 11.5&#37;, respectivamente. En febrero, la incidencia del ZYMV fue de 28.6&#37;, no se encontr&oacute; la mezcla ZYMV+PRSV&#45;W, pero se encontr&oacute; ZYMV + WMV con una incidencia del 7.1&#37;; adem&aacute;s se detectaron por &uacute;nica ocasi&oacute;n a las mezclas ZYMV+PRSV&#45;W+CMV, ZYMV + CMV+WMV y ZYMV + PRSV&#45;W+CMV+WMV con una incidencia de 6.3, 5.6 y 8.7&#37;, respectivamente; a su vez se encontr&oacute; por &uacute;nica ocasi&oacute;n a la mezcla PRSV + CMV con una incidencia de 7.3&#37;; al mismo tiempo se encontr&oacute; a CMV y WMV con incidencia de 7.6 y 28.6&#37;, respectivamente. Los muestreos durante el mes de abril indicaron una incidencia de 44.4&#37; para el ZYMV; nuevamente se detect&oacute; la mezcla ZYMV + PRSV con una incidencia del 5.5&#37;, en tanto que la incidencia de la mezcla ZYMV + WMV fue de 11.1&#37;; no se detect&oacute; al CMV s&oacute;lo ni en mezcla con otros virus en esta fecha de muestreo; en tanto que la incidencia del WMV fue de 38.9&#37;. </font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v25n2/a1c1.jpg"></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Detecci&oacute;n de virus en plantas silvestres mediante el procedimiento de ELISA en el Valle del Fuerte, Sinaloa.</b> De un total de 39 muestras de tabaco silvestre colectadas durante noviembre&#45;abril, 13, 3 y 5 resultaron positivas para el CMV, PRSV&#45;W y WMV, respectivamente; mientras que las mezclas CMV+WMV, PRSV&#45;W+CMV y WMV + CMV+PRSV&#45;W se detectaron en 2, 9 y 2 de las muestras, destacando por su mayor incidencia el CMV y la mezcla CMV+PRSV&#45;W (<a href="/img/revistas/rmfi/v25n2/a1c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). De igual forma, de los ejidos La Arrocera, San Miguel y Flores Mag&oacute;n, se obtuvo un total de 13 muestras de cucurbit&aacute;ceas silvestres; de ellas, 5 correspondieron a pepino espinoso y una fue positiva para ZYMV; un n&uacute;mero igual de muestras de mel&oacute;n silvestre presentaron a PRSV y la mezcla ZYMV + PRSV&#45;W, mientras que en tres de las muestras de pepino amargo se detect&oacute; PRSV&#45;W, WMV y la mezcla de ambos (datos no mostrados).</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Detecci&oacute;n del ZYMV mediante RT&#45;PCR en muestras de calabaza zucchini.</b> Este procedimiento permiti&oacute; detectar el ZYMV en el 100&#37; de las muestras que resultaron positivas mediante el procedimiento de DAS&#45;ELISA. La amplificaci&oacute;n del fragmento esperado de 1069 pb, indic&oacute; la presencia de ZYMV en las muestras (<a href="#f1">Fig. 1</a>).</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v25n2/a1f1.jpg"></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados indican que el ZYMV, CMV, PRSV&#45;W y el WMV est&aacute;n presentes en cucurbit&aacute;ceas cultivadas el norte de Sinaloa, M&eacute;xico, como ocurre en otras zonas productoras de cucurbit&aacute;ceas en el mundo (Blua y Perring, 1989; Castle <i>et</i> al., 1992; Cradock <i>et al.,</i> 2001; Desbiez y Lecoq, 1997; Lisa y Lecoq, 1984; Wang <i>et al.,</i> 1992), de estos virus, el ZYMV fue el m&aacute;s frecuente en infecciones simples o en mezcla con otros virus. La t&eacute;cnica de RT&#45;PCR permiti&oacute; la detecci&oacute;n del ZYMV en muestras que previamente resultaron positivas mediante DAS&#45;ELISA; dicha prueba permiti&oacute; amplificar un producto de 1069 pb que corresponde a un fragmento del virus ZYMV reportado en Israel (Comunicaci&oacute;n personal, Dr. Herv&eacute; Huet; Bio&#45;Oz Ltd., Yad&#45;Mordechai, Hof&#45;Ashkelon). La alta sensibilidad y especificidad de la t&eacute;cnica de RT&#45;PCR representan una ventaja con respecto a DAS&#45;ELISA, pues permitir&aacute; la detecci&oacute;n del ZYMV en vectores potenciales y en semilla de cucurbit&aacute;ceas, donde el t&iacute;tulo de los virus en general es bajo. Esto a su vez contribuir&aacute; en la implementaci&oacute;n de estrategias para el manejo de este virus. Resalta la detecci&oacute;n de infecciones mixtas de hasta cuatro virus en una misma planta, como se ha consignado en Hawaii (Ullman <i>et al.,</i> 1991) y Africa del Sur (Cradock <i>et al.,</i> 2001). En esta ocasi&oacute;n, mezclas de virus fueron m&aacute;s frecuentes hacia el final del ciclo agr&iacute;cola, lo que refleja una mayor disponibilidad de in&oacute;culo de los diferentes virus y altas poblaciones de insectos vectores; al mismo tiempo, se observ&oacute; que la severidad de los s&iacute;ntomas consistentes en moteado, mosaico amarillo, malformaciones de hojas, ampollamiento y agrietamiento de frutos, as&iacute; como enanismo de las plantas en general, particularmente en calabaza zucchini, fueron m&aacute;s evidentes al final del ciclo del cultivo lo que se puede deber a la presencia de m&aacute;s de un virus en las plantas, como ocurre en coinfecciones del ZYMV con el CMV (Lecoq <i>et al.,</i> 1981). Aunque todas las muestras colectadas y procesadas por DAS&#45;ELISA, mostraban s&iacute;ntomas presumiblemente de origen viral, no todas resultaron positivas para alguno de los virus analizados, pero podr&iacute;an ser hospedantes naturales de otros virus no incluidos en este trabajo, pues se sabe que las cucurbit&aacute;ceas pueden ser infectadas por m&aacute;s de 32 virus diferentes (Lovisolo, 1980; Zitter <i>et al.,</i> 1996). A&uacute;n cuando se ha detectado a ZYMV, CMV, WMV y a PRSV&#45;W en cucurbit&aacute;ceas silvestres, tales como <i>M. charantia, C. foetedissima</i> y <i>C. dipsaceus</i> en Costa Rica (S&aacute;nchez <i>et al.,</i> 1998), Florida (Adlerz, 1972) y Hawaii (Ullman <i>et al.,</i> 1991), no se ha demostrado su importancia en la epidemiolog&iacute;a de dichos virus. Estas malezas mostraron s&iacute;ntomas consistentes en mosaico y deformaci&oacute;n de hojas (<a href="#f2">Figs. 2</a> y <a href="#f3">3</a>), excepto en<i>M. charantia,</i> en la que los s&iacute;ntomas no fueron visibles. De igual forma, la detecci&oacute;n del CMV en tabaco silvestre, concuerda con estudios en Grecia (Vovlas y Di Franco, 2004), sin embargo, no se encontraron trabajos indicando la presencia del PRSV&#45;W y el WMV en dicho hospedante. La detecci&oacute;n de los virus, as&iacute; como las mezclas de ellos en tabaco silvestre es relevante, pues esta especie crece en altas densidades principalmente en terrenos de aluvi&oacute;n abandonados, &aacute;reas lim&iacute;trofes entre lotes agr&iacute;colas y a los costados de carreteras, caminos vecinales, v&iacute;as de ferrocarril, as&iacute; como en los bordos y taludes de canales de riego y drenes agr&iacute;colas; de igual forma, la presencia de estos virus adem&aacute;s del ZYMV, en calabaza cehualca en huertos familiares de las comunidades ejidales de la regi&oacute;n (datos no mostrados) reviste importancia, pues esta cucurbit&aacute;cea est&aacute; presente durante las cuatro estaciones del a&ntilde;o, particularmente durante el verano y oto&ntilde;o, al igual que el tabaco silvestre, que representa una fuente potencial de in&oacute;culo. Con frecuencia esta cucurbit&aacute;cea muestra s&iacute;ntomas de origen viral y su producci&oacute;n y calidad de la cosecha no son afectados en forma significativa; sin embargo, los virus detectados en esta especie causan p&eacute;rdidas cuantiosas en otras especies de importancia econ&oacute;mica. En el norte de Sinaloa, M&eacute;xico, durante el verano y propiciado por las lluvias, abundan las cucurbit&aacute;ceas y tabaco silvestres, as&iacute; como la calabaza cehualca, las cuales se originan por germinaci&oacute;n de semilla del a&ntilde;o anterior o bien por el rebrotamiento en el caso de plantas perennes como ocurre en tabaco silvestre. Es importante resaltar que con frecuencia las cucurbit&aacute;ceas silvestres, particularmente la calabaza cehualca, son colonizadas por especies no identificadas de pulgones, y considerando que estos virus pertenecen a los grupos de los potyvirus y cucumovirus, podr&iacute;an ser diseminados por dichos insectos a lotes comerciales como ocurre en otras &aacute;reas productoras de cucurbit&aacute;ceas del mundo (Kucharek y Purcifull, 2001). De los resultados del presente estudio se abren nuevas l&iacute;neas de investigaci&oacute;n, tales como el determinar si las especies predominantes de &aacute;fidos en la regi&oacute;n act&uacute;an como vectores de virus presentes en las malezas antes se&ntilde;aladas. De igual forma, es importante determinar la presencia de otros virus que infectan a las cucurbit&aacute;ceas cultivadas y la fluctuaci&oacute;n poblacional de los vectores, as&iacute; como la distribuci&oacute;n espacio&#45;temporal de los virus en la regi&oacute;n. Esta informaci&oacute;n es fundamental para la implementaci&oacute;n de estrategias de manejo de enfermedades de origen viral, donde se integren medidas de saneamiento (identificaci&oacute;n y eliminaci&oacute;n de hospedantes alternos), variedades resistentes, fechas de siembra y determinaci&oacute;n de niveles de riesgo de incidencia de estas enfermedades en la diferentes zonas productoras de cucurbit&aacute;ceas en el norte de Sinaloa, M&eacute;xico.</font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v25n2/a1f2.jpg"></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmfi/v25n2/a1f3.jpg"></font></p>              <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ZYMV fue el virus predominante en cucurbit&aacute;ceas cultivadas en el norte de Sinaloa, M&eacute;xico, durante el ciclo agr&iacute;cola 2004&#45;2005. La incidencia del ZYMV, CMV, WMV y el PRSV&#45;W en forma individual e infecciones mixtas en cucurbit&aacute;ceas cultivadas y malezas en el valle del Fuerte, Sinaloa, justifica la conducci&oacute;n de investigaci&oacute;n sobre la ecolog&iacute;a y epidemiolog&iacute;a de estos virus; estos estudios permitir&aacute;n el dise&ntilde;o de medidas apropiadas para el manejo de las enfermedades inducidas por estos virus en cucurbit&aacute;ceas y otros cultivos de importancia econ&oacute;mica a nivel regional.</font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>              <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adlerz, W.C. 1972. <i>Momordica charantia</i> as a source of watermelon mosaic virus I for cucurbit crops in palm beach County, Florida. Plant Disease Reporter 56:563&#45;564.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467367&pid=S0185-3309200700020000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Blua, M.J., and Perring, T.M. 1989. Effect of zucchini yellow mosaic virus on development and yield of cantaloupe <i>(Cucumis melo).</i> Plant Disease 73:317&#45;320.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467369&pid=S0185-3309200700020000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">CAADES. 2004. Comparativo del Avance de Siembras de Hortalizas en las Temporadas 2002&#45;2003 y 2003&#45;2004. Documento interno del Departamento de Estudios Econ&oacute;micos, de la Confederaci&oacute;n de Asociaciones Agr&iacute;colas del Estado de Sinaloa. Culiac&aacute;n, M&eacute;xico. s/p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467371&pid=S0185-3309200700020000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Castle, S.J., Perring, T.M., Farrar, C.A., and Kishaba, A.N. 1992. Field and laboratory transmission of watermelon mosaic virus 2 and zucchini yellow mosaic virus by various aphid species. Phytopathology 82:235&#45;240.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467373&pid=S0185-3309200700020000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Clark, M.F., and Adams, A.N. 1977. Characteristcs of the microplate method of enzyme&#45;linked immunosorbent assay for the detection of plant viruses. Journal of General Virology 34:475&#45;483.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467375&pid=S0185-3309200700020000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cradock, K.R., da Graca V.J., and Laing, M.D. 2001. Viruses infecting cucurbits in KwaZulu&#45;Natal, South Africa. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 19:251&#45;252.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467377&pid=S0185-3309200700020000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Desbiez, C., and Lecoq, H. 1997. Zucchini yellow mosaic virus. Plant Pathology 46:809&#45;829.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467379&pid=S0185-3309200700020000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">F&eacute;lix&#45;Gast&eacute;lum, R., Apodaca&#45;S&aacute;nchez, M.A., Mart&iacute;nez&#45;Valenzuela, M.C. y Espinosa&#45;Mat&iacute;as, S. 2005. <i>Podosphaera</i> (sect. <i>Sphaerotheca) xanthii</i> (Castagne) U. Brawn N. Shishkoff en Cucurbit&aacute;ceas en el Norte de Sinaloa, M&eacute;xico. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 23:162&#45;168.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467381&pid=S0185-3309200700020000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">F&eacute;lix&#45;Gast&eacute;lum, R. y S&aacute;nchez&#45;Castro, M.A. 1980. Estudio epifitiol&oacute;gico y combate qu&iacute;mico de la mancha foliar del pepino causada por <i>Corynespora cassicola</i> (Berk. &amp; Curt.) Wei, en el Valle de Culiac&aacute;n, Sinaloa, M&eacute;xico. Memorias del IX Congreso Nacional de la Sociedad Mexicana de Fitopatolog&iacute;a. Uruapan, Michoac&aacute;n. M&eacute;xico. 4 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467383&pid=S0185-3309200700020000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Greber, R.S. 1978. Watermelon mosaic virus 1 and 2 in Queensland cucurbit crops. Australian Journal of Agricultural Research 29:1235&#45;1245.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467385&pid=S0185-3309200700020000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Greber, R.S, Mclean, G.D., and Grice, M.S. 1987. Zucchini yellow mosaic virus in three states of Australia. Australasian Plant Pathology 16:19&#45;21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467387&pid=S0185-3309200700020000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kiss, E., Kazinczi, G., Horv&aacute;th, J., Kobza, S., Baranyi, T., Varga, M., Havasr&eacute;ti, B., and Feh&eacute;r, A. 2002. Virus disease problems on field cucumber in Hungary with some international aspects. Acta Phytopathologica et Entomologica Hungarica 37:317&#45;327.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467389&pid=S0185-3309200700020000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kucharek,T., and Purcifull, D. 2001. Aphid&#45;transmitted viruses of cucurbits in Florida. Florida Cooperative Extension Service. Institute of Food and Agricultural Sciences. Circular 1184. University of Florida. Gainesville, Florida, USA. 14 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467391&pid=S0185-3309200700020000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lecoq, H., Pitrat, M., and Clement, M. 1981. Identification, et caract&eacute;risation d'un potyvirus provoquant la maladie du rabougrissementjaune du melon. Agronomie 1:827&#45;834.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467393&pid=S0185-3309200700020000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lisa, V., and Lecoq, H. 1984. Zucchini yellow mosaic virus. In: B.D. Harrison, and A.F. Murant (eds.). Description of Plant Viruses. Commonwealth Mycological Institute and Association of Applied Biologist. Slough, Inglaterra. No. 282.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467395&pid=S0185-3309200700020000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Le&oacute;n&#45;Gallegos, H.M. 1988. Enfermedades de Cultivos en el Estado de Sinaloa. Tercera edici&oacute;n. CAEVACU&#45;CIAPAN. INIFAP. Culiac&aacute;n, Sinaloa, M&eacute;xico. 262 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467397&pid=S0185-3309200700020000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lovisolo, O. 1980. Virus and viroid deseases of cucurbits. Acta Horticulturae 88:33&#45;71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467399&pid=S0185-3309200700020000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>         <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Moura, C.C.L., Lima, J.A.A., Oliveira, V.B. y Goncalves, F.B. 2001. Identificacao serol&oacute;gica de esp&eacute;cies de virus que infectam cucurbit&aacute;ceas em &aacute;reas produtoras do Maranhao. Fitopatologia Brasileira 26:90&#45;92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467401&pid=S0185-3309200700020000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font>	</p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nelson, M.R., Laborde, J.A., and McDonald, H.H. 1966. Cucurbit viruses on the west coast of Mexico. Plant Disease Reporter 50:947&#45;950.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467403&pid=S0185-3309200700020000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ram&iacute;rez, V.J. 1991. Enfermedades de las Hortalizas. Primera Edici&oacute;n. Universidad Aut&oacute;noma de Sinaloa. Culiac&aacute;n, Sinaloa, M&eacute;xico. 105 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467405&pid=S0185-3309200700020000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">S&aacute;nchez, M.V., Aguero, R. y Rivera, C. 1998. Plantas hospederas de los virus mas importantes que infectan el mel&oacute;n <i>(Cucumis melo)</i> en Costa Rica. Revista de Biolog&iacute;a Tropical 46:13&#45;25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467407&pid=S0185-3309200700020000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sivik, M.A., and Arli&#45;Sokmen, M.2003. Virus infecting cucurbits in Samsun,Turkey. Plant Disease 87:341&#45;344.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467409&pid=S0185-3309200700020000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ullman, D.E., Cho, J.J., and German, T.L. 1991.Occurrence and distribution of cucurbit viruses in the Hawaiian Islands. Plant Disease 75:367&#45;370.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467411&pid=S0185-3309200700020000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Volvas, C., and Di Franco, A. 2004. Cucumber mosaic virus in <i>Nicotiana glauca</i> in Greece. Journal of Plant Pathology 86:91&#45;92.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467413&pid=S0185-3309200700020000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wang, H.L., Gonsalves, D., Providenti, R., and Zitter, T.A. 1992. Comparative biological and serological properties of four strains of zucchini yellow mosaic virus. Plant Disease 76:530&#45;535.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467415&pid=S0185-3309200700020000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>              <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yuki, V.A., Rezende, J.A.M., Kitajima, E.W., Barroso, P.A.V., Kuniyuki, H., Groppo, G.A., and Pavan, M.A. 2000. Occurrence, distribution and relative incidence of five viruses infecting cucurbits in the state of Sao Paulo, Brazil. Plant Disease 84:516&#45;520.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467417&pid=S0185-3309200700020000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zitter, T.A., Hopkins, D.L., and Thomas, C.E. (eds.). 1996. Compendium of Cucurbit Diseases. APS Press. St. Paul, Minnesota, USA. 87 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8467419&pid=S0185-3309200700020000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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