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<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias forestales]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización fisicoquímica de propóleos colectados en el Bosque La Primavera Zapopan, Jalisco]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Propolis is a resinous material produced by bees from vegetative natural sources. It has antimicrobial, antiviral and antiparasitic properties, which show variations according to its natural original source and geographic location. The aim of this work was the physicochemical characterization of propolis and its ethanolic extract [EPP] of Apis mellifera collected in Zapopan, Jalisco, Mexico. Ethanolic propolis extracts were obtained from defated propolis [EPPd] according to the Ramal Cubana 932-88 standards. Spectroscopic profiles of UV-Vis, fluorescence and FTIR were obtained. Results show that the main percent by weight is composed for waxes (47 %) and ethanol insoluble material (16 %). The yield of ethanolic extract [EEP] was 33 %. The quantification of phenolics compounds were 260 mg of gallic acid equivalents per gram of EEP (expressed as total phenol content) and 130 mg of flavonoids as quercetin equivalent per gram of EEP. The spectroscopic fingerprints (UV-VIS, fluorescence and FTIR spectra) features of the EEP showed absorbance bands in the same wavelength region described by phenols. In the instance of fluorescence, the EEP signals are similar to those reported for flavonoid type molecules. FTIR spectra are consistent with those published in the literature for other propolis, as an indication of a suitable process used in this work.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culo</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica de prop&oacute;leos colectados en el Bosque La Primavera Zapopan, Jalisco</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>MPhysical&#45;chemical description of propolis collected in La Primavera forest, Zapopan, Jalisco state</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Mar&iacute;a de Lourdes Delgado Aceves<sup>1</sup>, Jes&uacute;s &Aacute;ngel Andrade Ortega<sup>2</sup> y Carlos Alberto Ram&iacute;rez Barrag&aacute;n<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Licenciatura en Biolog&iacute;a, Centro Universitario de Ciencias Biol&oacute;gicas y Agropecuarias, Universidad de Guadalajara.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup> <i>Centro de Investigaci&oacute;n en Biomateriales, Departamento de Madera, Celulosa y Papel, CUCEI, Universidad de Guadalajara.</i> Correo e: <a href="mailto:aandrade@dmcyp.cucei.udg.mx">aandrade@dmcyp.cucei.udg.mx</a></font></p>  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2">    <br> 	    <br> 	Recibido 12 de noviembre de 2014.    <br> 	Aceptado 20 de enero de 2015.</font></p>  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El prop&oacute;leo es un material resinoso producido por las abejas a partir de recursos naturales vegetativos; tiene propiedades antimicrobianas, antif&uacute;ngicas, antivirales y antiparasitarias, las cuales var&iacute;an en funci&oacute;n de su fuente natural geogr&aacute;fica. El objetivo de este trabajo fue la caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica de prop&oacute;leo y de su extracto etan&oacute;lico &#91;EEP&#93;, de <i>Apis mellifera</i> colectados en la regi&oacute;n Zapopan, Jalisco, M&eacute;xico. Se obtuvieron extractos etan&oacute;licos de prop&oacute;leo desgrasado &#91;EEPd&#93;, que fueron analizados de acuerdo a la Norma Ramal Cubana 932&#45;88. Se determin&oacute; la cantidad de flavonoides y fenoles totales, y se obtuvieron sus perfiles espectrosc&oacute;picos de UV&#45;Vis, fluorescencia y FTIR. Los resultados evidenciaron que el mayor porcentaje en peso se distribuye entre ceras (47 %) y material insoluble en etanol (16 %); sin embargo, el rendimiento del extracto etan&oacute;lico del prop&oacute;leo (EEP) fue de 33 %. Se determin&oacute; un contenido de fenoles totales de 260 mg equivalentes de &aacute;cido g&aacute;lico por gramo de EEP y 130 mg de flavonoides equivalentes de quercetina por gramo de EEP. Las huellas espectrosc&oacute;picas de los EEP muestran bandas de absorbancia (UV&#45;Vis) en los mismos intervalos de longitud de onda en los que las presentan los fenoles; en cuanto a la fluorescencia, las se&ntilde;ales de los EEP son similares a las de las mol&eacute;culas del tipo flavonoides. Los espectros FTIR son consistentes con los de la literatura para otros prop&oacute;leos, lo que significa que se sigui&oacute; un buen proceso de obtenci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Bosque La Primavera, composici&oacute;n qu&iacute;mica, espectroscopia, fenoles, flavonoides, prop&oacute;leo.</font></p>  	    <p align="left"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Propolis is a resinous material produced by bees from vegetative natural sources. It has antimicrobial, antiviral and antiparasitic properties, which show variations according to its natural original source and geographic location. The aim of this work was the physicochemical characterization of propolis and its ethanolic extract &#91;EPP&#93; <i>of Apis mellifera collected in Zapopan, Jalisco</i>, Mexico. Ethanolic propolis extracts were obtained from defated propolis &#91;EPPd&#93; according to the Ramal Cubana 932&#45;88 standards. Spectroscopic profiles of UV&#45;Vis, fluorescence and FTIR were obtained. Results show that the main percent by weight is composed for waxes (47 %) and ethanol insoluble material (16 %). The yield of ethanolic extract &#91;EEP&#93; was 33 %. The quantification of phenolics compounds were 260 mg of gallic acid equivalents per gram of EEP (expressed as total phenol content) and 130 mg of flavonoids as quercetin equivalent per gram of EEP. The spectroscopic fingerprints (UV&#45;VIS, fluorescence and FTIR spectra) features of the EEP showed absorbance bands in the same wavelength region described by phenols. In the instance of fluorescence, the EEP signals are similar to those reported for flavonoid type molecules. FTIR spectra are consistent with those published in the literature for other propolis, as an indication of a suitable process used in this work.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> La Primavera forest, chemical composition, spectroscopy, phenols, flavonoids, propolis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El nombre de prop&oacute;leo proviene del griego <i>propolis</i>, pro "en defensa de" <i>y polis</i> "ciudad"; es decir, en defensa de la ciudad, que en el caso de las abejas se refiere a la colmena. El prop&oacute;leo es una mezcla de resinas y exudados vegetales recolectados por las abejas (<i>Apis mellifera</i> Linnaeus, 1758), con el fin de sellar herm&eacute;ticamente su colmena e impedir que se forme dentro de ella cualquier tipo de contaminaci&oacute;n, ya que act&uacute;a como un agente microbicida; por lo anterior se le ha usado de manera amplia y popular como un remedio medicinal desde tiempos remotos (As&iacute;s, 1991; Farr&eacute; et al., 2004; Li&#45;Chang et al., 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las propiedades antimicrobianas, antif&uacute;ngicas, antivirales y antiparasitarias que se le atribuyen a este producto, tambi&eacute;n denominadas como actividad biol&oacute;gica o simplemente bioactividad (Banskota et al., 2001; Choi et al., 2006; Cruz et al., 2008; Vargas et al., 2013) var&iacute;an en funci&oacute;n de la fuente natural geogr&aacute;fica de donde es extra&iacute;do (fitogeograf&iacute;a) (Catalin <i>et al</i>., 2010; Yaghoubi et al., 2007);y se atribuyen a la presencia de componentes qu&iacute;micos identificados como familias de polifenoles, flavonoides, &aacute;cidos fen&oacute;licos, etc&eacute;tera, que pueden llegar a superar los 150 compuestos en un prop&oacute;leo (Palomino <i>et al</i>., 2010). Entre las mol&eacute;culas farmacol&oacute;gicamente activas destacan las de tipo flavonoides y &aacute;cidos fen&oacute;licos con sus &eacute;steres.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En muestras provenientes de pa&iacute;ses del tr&oacute;pico, que tienen una actividad biol&oacute;gica similar, se han identificado mol&eacute;culas de terpenoides, derivados prenilados de &aacute;cidos r&#45;cum&aacute;ricos, lignanos y benzofenonaspreniladas (Mart&iacute;nez et al., 2012). En Brasil se han aislado como sus constituyentes principales terpenoides y derivados prenilados de &aacute;cidos p&#45;cum&aacute;ricos (Marcucci, 1995), mientras que en Chile se han detectado, predominantemente, lignanos, y en Venezuela, Brasil y Cuba se hallaron benzofenonaspreniladas (Palomino et al., 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los prop&oacute;leos originarios de zonas templadas (oeste de Asia, Europa y Am&eacute;rica del Norte) poseen una composici&oacute;n qu&iacute;mica parecida entre ellos en la que sobresalen los fen&oacute;licos (flavonoides, &aacute;cidos cin&aacute;micos y derivados).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lamentablemente, pocos estudios han sido desarrollados con prop&oacute;leos mexicanos (Lotti et al., 2010), pero es evidente que todo lo anterior sugiere que su actividad biol&oacute;gica se debe a la combinaci&oacute;n y sinergias de los diferentes compuestos que contiene.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Si bien, la composici&oacute;n del prop&oacute;leo es muy compleja y variada, se puede hacer una estimaci&oacute;n de sus componentes m&aacute;s importantes: resinas, 50 %; cera, 30 %; polen, 5 %; aceites esenciales, 10 %; y 5 %, de otros residuos org&aacute;nicos. Debe se&ntilde;alarse que la mayor&iacute;a de los estudios no pretenden determinar la composici&oacute;n qu&iacute;mica completa, si no tan solo algunos de los elementos de inter&eacute;s, as&iacute; como la cuantificaci&oacute;n de los mismos (Bracho, 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En trabajos recientes se han incorporado m&eacute;todos anal&iacute;ticos a los ya tradicionalmente usados (FTIR, absorbancia UV&#45;Vis y cromatograf&iacute;a); tal es el caso de la espectroscop&iacute;a infrarroja visible/cercana (Vis/NIR), fluorescencia, espectroscop&iacute;a Raman y resonancia magn&eacute;tica nuclear (RMN) (<i>Cruz et al</i>., 2008; Pe&ntilde;a, 2008). Se asume que cambios espectrales de un prop&oacute;leo analizado est&aacute;n directamente ligados a una modificaci&oacute;n en la su composici&oacute;n qu&iacute;mica. Debido a la variedad de especies de &aacute;rboles de las que las abejas recolectan el prop&oacute;leo, cada regi&oacute;n produce mezclas complejas de compuestos que a su vez producen espectros &uacute;nicos, los cuales se consideran como "huellas digitales" individuales (Hacura, 2006; Yan&#45;Wen et al., 2008; Cai et al., 2012).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo del presente trabajo fue la caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica de prop&oacute;leo y de su extracto etan&oacute;lico &#91;EEP&#93; recolectado en la regi&oacute;n Zapopan, Jalisco, M&eacute;xico, por Apis mellifera, mediante la determinaci&oacute;n de la humedad, cenizas, ceras y extra&iacute;bles en etanol; con t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas espectrofotom&eacute;tricas se cuantific&oacute; el contenido de fenoles totales, flavonoides y se obtuvieron las huellas espectrales (UV&#45;Vis, fluorescencia y FTIR). Cabe destacar que estos son los primeros datos descriptivos de un prop&oacute;leo en la regi&oacute;n de estudio.</font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Materiales y M&eacute;todos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sitio de estudio y obtenci&oacute;n de prop&oacute;leos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los prop&oacute;leos se obtuvieron de abejas mel&iacute;feras africanizadas en el apiario del Centro Universitario de Ciencias Biol&oacute;gicas y Agropecuarias (CUCBA) de la Universidad de Guadalajara, localizado en el km 15.5 de la carretera Guadalajara&#45;Nogales, en el predio Las Agujas, Nextipac, municipio Zapopan, Jalisco, M&eacute;xico; de acuerdo a las coordenadas: 20&#176;44'50.3" de latitud norte y 103&#176;30'43.6" de longitud oeste y una altitud de 1 662 m.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las muestras se recolectaron en el oto&ntilde;o, de septiembre a noviembre de 2013, por el m&eacute;todo de malla pl&aacute;stica. La vegetaci&oacute;n predominante alrededor del apiario incluye especies arb&oacute;reas: <i>Quercus resinosa Liebm., Q. magnoliifolia N&eacute;e, Q. castanea N&eacute;e, Clethra rosei Britton, Arbutus xalapensis Kunth, Pinus oocarpa Schiede ex Schltdl., P. devoniana Lindl., P. douglasiana Mart&iacute;nez, P. lumholtzii B. L. Rob. & Fernald, P. luzmariae P&eacute;rez de la Rosa y Arbutus glandulosa Mart. & Galleotti.</i> El material se almacen&oacute; en refrigeraci&oacute;n (2 &#176;C) y ausencia de luz durante 72 h.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Propiedades fisicoqu&iacute;micas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los an&aacute;lisis se realizaron por triplicado. Los m&eacute;todos utilizados correspondieron a los de la Norma Ramal Cubana 932&#45;88 (As&iacute;s, 1991), cuyo uso obedece a la correspondencia de latitudes de la regi&oacute;n de estudio, lo que hace suponer que se trata de composiciones similares. Al extracto etan&oacute;lico de los prop&oacute;leos (EEP) se le identific&oacute; el contenido de polifenoles y flavonoides y se aplic&oacute; espectrofotemetr&iacute;a de UV&#45;Vis, fluorescencia e infrarrojo (FTIR). Las pruebas fisicoqu&iacute;micas realizadas fueron las siguientes:</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cenizas. Se determinaron gravim&eacute;tricamente al calcinar 0.5 g de muestra en mufla a 500 &#176;C, durante 4 h; posteriormente se pas&oacute; a un desecador hasta alcanzar un peso constante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Humedad. Se calcul&oacute; de forma termogravim&eacute;trica; se secaron 0.5 g de muestra en estufa (Felisa FE&#45;292AD) a 105 &#177; 2 &#176;C hasta llegar a un peso constante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Iacute;ndice de oxidaci&oacute;n. Se realiz&oacute; de acuerdo con la metodolog&iacute;a de Salamanca et al. (2007) y As&iacute;s (1991). El m&eacute;todo se basa en el tiempo que demora en decolorar una soluci&oacute;n de permanganato de potasio por la acci&oacute;n reductora del prop&oacute;leo en medio &aacute;cido, con modificaciones: se pesaron 0.2 g de prop&oacute;leo en un frasco &aacute;mbar con tapa; enseguida se le adicionaron 3 mL de etanol (96 %) y se le dej&oacute; en agitaci&oacute;n por 48 h a 25 &#176;C. La mezcla obtenida se pas&oacute; lentamente a trav&eacute;s de un papel filtro. A continuaci&oacute;n, se tom&oacute; 1 mL del filtrado y se diluy&oacute; con agua destilada hasta 25 mL en un matraz aforado. De esta disoluci&oacute;n se vertieron 0.5 mL a un tubo de ensayo, se le agregaron 0.5 mL de agua destilada y 1 mL de H<sub>2</sub>SO<sub>4</sub> al 20 %, y se agit&oacute; durante 1 min; despu&eacute;s de ese lapso se a&ntilde;adieron 50 &#956;L de soluci&oacute;n de KMnO<sub>4</sub> (0.1 N).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cera. Se determin&oacute; por gravimetr&iacute;a (diferencia de masas) entre una muestra original y el residuo obtenido mediante una extracci&oacute;n con hexano (40&#45;60 &#176;C) en un equipo Soxhlet, durante 8 h.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Material insoluble en etanol. Se pes&oacute; 1 gramo de prop&oacute;leo desgrasado, y se le a&ntilde;adieron 10 mL de alcohol et&iacute;lico (96 %); se dej&oacute; 24 h en agitaci&oacute;n, al t&eacute;rmino se filtr&oacute; a vac&iacute;o en papel Whatman N&uacute;m. 41; el residuo s&oacute;lido remanente se sec&oacute; a temperatura ambiente en desecador de vidrio hasta peso constante, que corresponde al material insoluble en etanol.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Extra&iacute;bles en etanol. Basado en la descripci&oacute;n metodol&oacute;gica anterior, la diferencia de masa entre la muestra original y el material insoluble en etanol se denomina "extra&iacute;bles en etanol".</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Obtenci&oacute;n de los extractos. Se pesaron 5 g de prop&oacute;leo desgrasado, los cuales se sometieron a extracci&oacute;n exhaustiva en agitaci&oacute;n con etanol de 96 % (1 g 10 mL<sup>&#45;1</sup>) durante 24 h, a temperatura ambiente y en ausencia de luz. Despu&eacute;s se us&oacute; vac&iacute;o para la filtraci&oacute;n con papel filtro Whatman N&uacute;m. 41; la fracci&oacute;n s&oacute;lida se coloc&oacute; en cajas de Petri que se mantuvieron en desecador hasta alcanzar un peso constante, con el prop&oacute;sito de conocer el rendimiento. La fracci&oacute;n etan&oacute;lica se someti&oacute; a un proceso de evaporaci&oacute;n al vac&iacute;o y temperatura de 40 &#176;C, hasta el punto de sequedad. La resina resultante (EEPd) fue envasada en viales &aacute;mbar y refrigerada a &#45;12 &#176;C hasta su posterior utilizaci&oacute;n. De la misma forma se produjo el extracto de prop&oacute;leo en crudo (sin desgrasado, EEPo).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Preparaci&oacute;n de las soluciones de extractos etan&oacute;licos de prop&oacute;leo (EEP). Se pesaron 0.33 g de EEP (tanto desgrasado como sin desgrasar) y se disolvieron en 10 mL de etanol.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Determinaci&oacute;n cuantitativa de fenoles totales y flavonoides</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de fenoles totales en el extracto fue determinado por el m&eacute;todo de <i>Folin Ciocalteu</i> (Singleton y Rossi, 1965), con &aacute;cido g&aacute;lico como est&aacute;ndar de referencia; se graficaron curvas de calibraci&oacute;n (100, 200, 300 y 400 ppm) y se ley&oacute; la absorbancia a 760 nm; el contenido de flavonoides totales se cuantific&oacute; por el m&eacute;todo del AlCl<sub>3</sub>(Woisky y Salatino, 1998), con quercetina como est&aacute;ndar de referencia (40, 60, 80 100 y 120 ppm) y se registr&oacute; la absorbancia a 420 nm; en ambos casos se us&oacute; un espectrofot&oacute;metro <i>Ocean Optics</i> USB 4000 y etanol al 96 % como blanco.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">An&aacute;lisis espectrosc&oacute;picos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espectroscop&iacute;a UV&#45;Vis. A partir de las soluciones de extracto etan&oacute;lico (EEP) se hicieron diluciones en etanol al 96 % y enseguida se produjeron los perfiles de absorbancia en UV&#45;Vis, mediante un equipo <i>Ocean Optics</i> USB 4000 en un intervalo de 200 a 450 nm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espectrofluorescencia. Se procedi&oacute; de igual forma y con las mismas soluciones que en la espectroscopia UV&#45;Vis, para establecer los perfiles de fluorescencia, solo que las lecturas se llevaron a cabo en un intervalo de 400 a 650 nm con un equipo <i>Ocean Optics</i> USB 2000 FL.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espectroscop&iacute;a FTIR. Se lograron los espectros de FTIR de soluciones de prop&oacute;leo desgrasado (EEPd), las cuales se prepararon a partir de la disoluci&oacute;n de 1 g en 10 mL de etanol. Estos an&aacute;lisis se efectuaron en un equipo <i>Perkin Elmer</i> <i>modelo Spectrum GX<sup>&#174;</sup></i> con aditamento de cristal de diamante, en un intervalo de 700 a 4 000 cm<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En todos los an&aacute;lisis espectrosc&oacute;picos tambi&eacute;n se obtuvieron los espectros de los compuestos usados como est&aacute;ndares para la determinaci&oacute;n de fenoles totales y flavonoides: &aacute;cido g&aacute;lico (SAG), quercetina (SQ) y una mezcla de ambas (MAGQ).</font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Resultados y Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica, contenido de fenoles totales y flavonoides del prop&oacute;leo y de su extracto etan&oacute;lico se presentan en el <a href="#c1">Cuadro 1</a>.</font></p>     <p align="center"><a name="c1"></a></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">Cuadro 1. Caracterizaci&oacute;n del prop&oacute;leo de estudio y su comparaci&oacute;n con valores estandarizados.    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> 	Table 1. Description of the studied propolis and its comparison with standard values.    <br> 	<img src="/img/revistas/remcf/v6n28/a6c1_th.jpg">    <br> 	*Las cenizas se consideran dentro de impurezas mec&aacute;nicas.    <br> 	**Dentro de extra&iacute;bles con etanol.    <br> 	*Ashes are considered within the mechanical impurities    <br> 	**Within extractables with ethanol</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores porcentuales de cenizas y humedad (2.5 % y 4.0 %, respectivamente) se consideran adecuados debido a que un valor superior a 5 % de cenizas estar&iacute;a asociado a un mayor contenido de metales, incluso algunos que resultan nocivos, como el plomo; en cuanto al contenido de humedad, un porcentaje superior a 10 % ser&iacute;a indicativo de ocurrencia de posibles fermentaciones, lo que genera productos no deseados o contaminantes, que pueden ser t&oacute;xicos y perjudiciales para la salud (Palomino et al., 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cantidad de cera presente en el prop&oacute;leo result&oacute; alta (47 %), y posiblemente est&eacute; influenciado por m&uacute;ltiples factores: la &eacute;poca del a&ntilde;o en que se recolect&oacute;, por una mala manipulaci&oacute;n del apicultor, o por la especie de abeja que llev&oacute; a cabo la recolecci&oacute;n (Arrate, 2008; Londo&ntilde;o <i>et al</i>., 2008; Mart&iacute;nez et al., 2012). Un gran contenido de ceras en muestras de prop&oacute;leos crudos es desfavorable, porque en esta fracci&oacute;n no est&aacute;n los compuestos fen&oacute;licos, los cuales se asocian con la actividad biol&oacute;gica (Cupull <i>et al</i>., 2013).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s del contenido de ceras, otro par&aacute;metro que incide notablemente en la calidad del prop&oacute;leo son las resinas solubles en etanol, ya que cuanto mayor sea el valor de esta fracci&oacute;n, mejor ser&aacute; el producto final, debido a que es en ella donde est&aacute;n los compuestos de inter&eacute;s. En el caso particular del estudio que se documenta, el valor de 33 % resulta favorable, si se considera el contenido de ceras determinado. Adicionalmente, el material insoluble es un elemento que no contiene los principios activos y su elevada presencia deprecia el producto (Arrate, 2008). En el prop&oacute;leo analizado, este par&aacute;metro fue de 16 %; es decir, casi no contiene impurezas mec&aacute;nicas, y se ubica 50 % por debajo de lo establecido en la norma Ramal Cubana 932&#45;88 (As&iacute;s, 1991).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una determinaci&oacute;n r&aacute;pida de la capacidad antioxidante (asociada a la actividad biol&oacute;gica del prop&oacute;leo) es el &iacute;ndice de oxidaci&oacute;n. Los resultados para esta prueba fueron en promedio de siete segundos, n&uacute;mero que representa un buen indicador de la presencia de compuestos de naturaleza fen&oacute;lica, o con grupos funcionales oxidables (Palomino et al., 2010), ya que la norma de Ramal Cubana (As&iacute;s, 1991) establece 22 segundos como m&aacute;ximo.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cuantificaci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos totales en los EEP arroj&oacute; un contenido de 260 mg equivalentes de &aacute;cido g&aacute;lico por gramo de muestra. Por otra parte, la concentraci&oacute;n de flavonoides obtenida en EEP fue de 130 mg equivalentes de quercetina g<sup>&#45;1</sup> de muestra. Lotti <i>et al</i>. (2010) registraron por primera vez la existencia de isoflavonoides en prop&oacute;leos mexicanos; la importancia de la presencia y concentraci&oacute;n de compuestos fen&oacute;licos radica en que se les atribuyen las propiedades biol&oacute;gicas del prop&oacute;leo, principalmente, los tipo flavonoides que se asocian a la actividad antimicrobiana (Manrique, 2006; Mihai <i>et al</i>., 2012).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al referirse a estos compuestos, en t&eacute;rminos porcentuales respecto al prop&oacute;leo bruto, hay 8.6 % de fenoles totales, cantidad que parece ser baja; sin embargo, el contenido de flavonoides es de 4.3 %; por lo que su proporci&oacute;n dentro de los fenoles totales es de 50 %, valor relevante e importante debido a las propiedades a las que se asocian esas mol&eacute;culas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espectroscop&iacute;a UV&#45;Vis</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dado que se emplean tanto el &aacute;cido g&aacute;lico, como la quercetina en la determinaci&oacute;n del contenido en el prop&oacute;leo de fenoles y flavonoides (mol&eacute;culas bioactivas), respectivamente (Cai <i>et al</i>., 2012), se obtuvieron las huellas espectrales de absorbancia para las mol&eacute;culas puras, as&iacute; como una mezcla de las (<a href="#f1">Figura 1a</a>). En el caso de SAG se distinguen las se&ntilde;ales caracter&iacute;sticas registradas por Hern&aacute;ndez et al. (2013) a 220 y 267 nm (221 y 267 en la soluci&oacute;n del estudio); en la SQ tambi&eacute;n se aprecian se&ntilde;ales previamente establecidas por Dimarco et al. (2012) que se ubican en 260 y 375 nm (255 y 376 en el estudio). Adem&aacute;s, se evidencian un par de se&ntilde;ales m&aacute;s a 210 y 230 nm. Al analizar la mezcla de las soluciones est&aacute;ndar, se obtuvo el espectro de la MAGQ que, si se observa con atenci&oacute;n, es el resultado de la suma de las se&ntilde;ales de los espectros de los est&aacute;ndares individuales; en la zona de los 200 a los 300 nm los picos de la quercetina son apantallados por la mayor absorbancia del &aacute;cido g&aacute;lico.</font></p> 	    <p align="center"><a name="f1"></a></p> 	    <p align="center"><img src="/img/revistas/remcf/v6n28/a6f1_th.jpg">    <br> 	  <font face="verdana" size="2">Figura 1. Espectros de absorbancia: a) comparaci&oacute;n entre soluci&oacute;n est&aacute;ndar de &aacute;cido g&aacute;lico (SAG), soluci&oacute;n est&aacute;ndar de quercetina (SQ) y mezcla (MAGQ). b) Extractos etan&oacute;licos de prop&oacute;leo (EEPo y EEPd) y MAGQ.    <br> 	  Figure 1. Absorbance spectra: a) comparison between the standard solution of Gallic acid (SAG), the standard solution of quercetin (SQ) and mixture (MAGQ); b) Ethanolic extracts of propolis (EEPo and EEPd) and MAGQ.</font>         <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#f1">Figura 1b</a> muestra el espectro de absorbancia de los EEPo y EEPd que presentan dos se&ntilde;ales caracter&iacute;sticas y distintivas: a 211 y 292 nm; las distintas intensidades entre EEPo y EEPd se asocian a la diferencia en el contenido de ceras y grasas que fueron removidas en el caso del EEPd; por ello, el comportamiento de la absorbancia es casi el mismo para ambos EEP, lo que parece estar regido, b&aacute;sicamente, por el contenido de compuestos fen&oacute;licos totales, esto obedece a las se&ntilde;ales a 211 nm para ambos EEP muy cerca de la que presenta MAGQ a los 223 nm, mientras que la se&ntilde;al a los 292 nm aparece desplazada a la derecha, con respecto al de la MAGQ que est&aacute; a 262 nm y lejos (hacia la izquierda) de la de 373 nm. Esa tendencia (dos se&ntilde;ales) en los EEP es at&iacute;pica en comparaci&oacute;n con espectros de absorbancia de otros prop&oacute;leos, pues la mayor&iacute;a tiene una sola se&ntilde;al entre 200 y 230 nm o bien una amplia curva de 210 a 300 nm (Samara <i>et al</i>., 2011; Bedascarrasbure <i>et al</i>., 2004).</font></p>  	     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espectrofluorometr&iacute;a</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los espectros obtenidos por el m&eacute;todo de espectrofluorometr&iacute;a se muestran en las figuras 2a y 2b. Al analizar el de las soluciones est&aacute;ndar SAG, SQ y MAGQ (<a href="#f2">Figura 2a</a>), se puede reconocer como SAG, tiene poca intensidad de fluorescencia en comparaci&oacute;n con SQ, efecto que parece estar asociado a lo que se denomina "rigidez molecular", que involucra la cantidad de anillos y dobles enlaces en la mol&eacute;cula del est&aacute;ndar, y que en este caso favorece a la mol&eacute;cula mayormente conjugada tipo flavonoide como la quercetina (SQ). Las se&ntilde;ales de intensidad de fluorescencia consignadas en la literatura (Frederice <i>et al</i>., 2010; Singh <i>et al</i>., 2013) de 490 y 540 nm para SAG y de 496 y 532 nm para SQ son consistentes con los aqu&iacute; documentadas (494 y 535 nm para SAG y SQ); sorprendentemente, la mezcla MAGQ parece provocar un efecto de "quenching" ya que reduce de forma dr&aacute;stica la intensidad de fluorescencia a 535 y 494 nm. Asimismo, se genera una nueva banda en sentido contrario al desplazamiento de Stokes (hacia la izquierda) a 406 nm, aunque de mediana intensidad.</font></p> 	    <p align="center"><a name="f2"></a></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remcf/v6n28/a6f2_th.jpg">    <br> 	Figura 2. Espectros de intensidad de fluorescencia: a) comparaci&oacute;n entre soluci&oacute;n est&aacute;ndar de &aacute;cido g&aacute;lico (SAG), soluci&oacute;n est&aacute;ndar de quercetina (SQ) y mezcla (MAGQ). b) Extractos etan&oacute;licos de prop&oacute;leo (EEPo y EEPd) y MAGQ.    <br> 	Figure 2. Fluorescence intensity spectra: a) comparison between the standard solution of Gallic acid (SAG), the standard solution of quercetin (SQ) and mixture (MAGQ); b) Ethanolic extracts of propolis (EEPo and EEPd) and MAGQ.    <br> 	<a href="/img/revistas/remcf/v6n28/a6f2.jpg" target="_blank">Hacer clic en agrandar</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los espectros de fluorescencia para EEPo y EEPd son similares entre s&iacute; (<a href="#f2">Figura 2b</a>), con se&ntilde;ales de m&aacute;xima intensidad a 540 y 535 nm, independientemente de si est&aacute; desgrasado o no el EEP; adem&aacute;s, dicho valor coincide con la m&aacute;xima intensidad de fluorescencia para SAG, SQ y MAGQ que es de 535 nm. Por tendencia e intensidad, parece que se analizan flavonoides por su similitud al espectro de SQ.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Espectroscop&iacute;a FTIR</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se generaron espectros de infrarrojo con el objetivo de identificar los principales grupos funcionales y enlaces de los componentes en el prop&oacute;leo obtenido (EEPd). En la <a href="#f3">Figura 3</a> se observan los espectros de infrarrojo en transmitancia para la muestra EEPd y su comparaci&oacute;n con &aacute;cido g&aacute;lico y quercetina.</font></p> 	    <p align="center"><a name="f3"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/remcf/v6n28/a6f3_th.jpg">    <br> Figura 3. Espectros de FTIR de A) prop&oacute;leo desgrasado (EEPd), B) &aacute;cido g&aacute;lico (SAG) y C) quercetina (SQ).    <br> 	Figure 3. FTIR spectra of: A) lean propolis (EEPd), B) Gallic acid (SAG) and C) quercetin (SQ).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como se aprecia, las principales se&ntilde;ales se corresponden entre s&iacute;, tan solo con ligeros desplazamientos, lo cual es factible que se relacione con la presencia de diferentes tipos de fenoles en el extracto EEPd, mientras que las se&ntilde;ales del espectro de &aacute;cido g&aacute;lico son solo de uno de ellos en particular. Lo anterior tambi&eacute;n se advierte con mayor detalle en el <a href="#c2">Cuadro 2</a>, en el que se ofrece un resumen de las principales se&ntilde;ales para fenoles y flavonoides, y es f&aacute;cil visualizar que la mayor&iacute;a de las se&ntilde;ales caracter&iacute;sticas de los fenoles se corresponden con las obtenidas para el extracto EEPd.</font></p> 	    <p align="center"><a name="c2"></a></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">Cuadro 2. Principales se&ntilde;ales de FTIR para el extracto (EPPd) y su comparaci&oacute;n con los de la literatura (Yan&#45;Wen et al., 2008).    <br> 	Table 2. Main FTIR signals for the extract (EPPd) and its comparison with those in literature (Yan&#45;Wen et al., 2008).    <br> 	<img src="/img/revistas/remcf/v6n28/a6c2_th.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algo similar ocurre con la comparaci&oacute;n entre los espectros de EEPd y la quercetina (<a href="#f3">Figura 3</a>), en la que pr&aacute;cticamente todas las se&ntilde;ales existen, tanto en SQ como en el extracto, de modo parecida tan solo con ligeros desplazamientos, los cuales has sido ya registrados por algunos autores para este tipo de muestras (Yan&#45;Wen <i>et al</i>., 2008). De forma an&aacute;loga (<a href="#c2">Cuadro 2</a>), hay alta correspondencia de las se&ntilde;ales de la muestra analizada en el laboratorio (EEPd) con las dadas a conocer por diversos autores (Yan&#45;Wen <i>et al</i>., 2008; Cai <i>et al</i>., 2012) para fenoles y flavonoides; lo cual se puede considerar como un fuerte indicativo de la presencia de los dos compuestos en el extracto, y se explica porque las se&ntilde;ales caracter&iacute;sticas principales para ambos son vibraci&oacute;n y flexi&oacute;n a 1 450 cm<sup>&#45;1</sup> (para este estudio, 1 450&#45;1 455 cm<sup>&#45;1</sup>), de vibraci&oacute;n y flexi&oacute;n a 1 369 cm<sup>&#45;1</sup> (en el presente trabajo, 1 380 cm<sup>&#45;1</sup>) y de vibraci&oacute;n, alargamiento y flexi&oacute;n a 1 088 cm<sup>&#45;1</sup> (para el caso analizado, 1 087 cm<sup>&#45;1</sup>). La se&ntilde;al a 880 cm<sup>&#45;1</sup> est&aacute; asociada a alcoholes primarios y secundarios y espec&iacute;ficamente en el etanol se da un estiramiento sim&eacute;trico a 880&#45;881 cm<sup>&#45;1</sup> (para este estudio, 800 cm<sup>&#45;1</sup>), en respuesta a que los extractos est&aacute;n disueltos en etanol.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los espectros de infrarrojo obtenidos para la muestra EPPd se considera como una "huella digital" del prop&oacute;leo estudiado. Ha sido consignado por otros autores (Zimnicka y Hacura, 2006; Shang, 2011) que la composici&oacute;n de los prop&oacute;leos pueden variar con el &aacute;rea y la estaci&oacute;n del a&ntilde;o en los que se recolectan.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por lo anterior se propone el uso de las t&eacute;cnicas espectrosc&oacute;picas (UV&#45;VIS, Fluorescencia, FTIR) para dar un seguimiento a la composici&oacute;n del prop&oacute;leo o a infecciones de la colmena por bacterias o virus a lo largo del tiempo, y usar los cambios en los espectros como indicadores de las modificaciones en el medio ambiente, las cuales son factibles de verificarse en las especies de &aacute;rboles de las que las abejas obtienen los diferentes componentes para elaborar este importante producto.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estudio que se presenta constituye la primera descripci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica de prop&oacute;leo procedente del Bosque La Primavera, en el que la muestra analizada presenta caracter&iacute;sticas ubicadas dentro de los par&aacute;metros establecidos en la norma Ramal Cubana 932&#45;88, en funci&oacute;n de los cuales se considera que tiene un gran potencial para desempe&ntilde;ar actividad biol&oacute;gica y, por lo tanto, tener aplicaciones en el &aacute;rea de la salud.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los espectros obtenidos sugieren que el perfil UV&#45;Vis es at&iacute;pico, ya que tiene dos se&ntilde;ales particulares y diferenciadas; resultados m&aacute;s asociado a la existencia y concentraci&oacute;n de fenoles totales. El perfil de fluorescencia evidencia compuestos con anillos conjugados y gran cantidad de dobles enlaces, como los que se observan en las mol&eacute;culas tipo flavonoide, los cuales poseen un espectro de emisi&oacute;n fluorescente &uacute;nico. En cuanto al an&aacute;lisis mediante FTIR, los espectros revelaron pr&aacute;cticamente la totalidad de las se&ntilde;ales representativas de los grupos qu&iacute;micos correspondientes a fenoles y flavonoides, indicador de la presencia de dichos compuestos en el prop&oacute;leo estudiado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conflicto de intereses</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores declaramos no tener conflicto de intereses.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contribuci&oacute;n por autor</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mar&iacute;a de Lourdes Delgado Aceves: desarrollo experimental, c&aacute;lculos y redacci&oacute;n; Jes&uacute;s &Aacute;ngel Andrade Ortega: concepci&oacute;n y planeaci&oacute;n del trabajo, gesti&oacute;n de recursos materiales y econ&oacute;micos, revisi&oacute;n de resultados de trabajo experimental, redacci&oacute;n y correcci&oacute;n del manuscrito y Carlos Alberto Ram&iacute;rez Barrag&aacute;n: desarrollo experimental, revisi&oacute;n de resultados de trabajo experimental, redacci&oacute;n y correcci&oacute;n del documento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores desean expresar al Mtro. Rafael Ordaz Brise&ntilde;o por las facilidades otorgadas en el muestreo de prop&oacute;leo en el apiario del Centro Universitario de Ciencias Biol&oacute;gicas y Agropecuarias (CUCBA) de la Universidad de Guadalajara.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Arrate, L. 2008. Prop&oacute;leo, el "antibi&oacute;tico" natural de la colmena. Sustrai: Revista Agropesquera 85:56&#45;61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977812&pid=S2007-1132201500020000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">As&iacute;s, M. 1991. Prop&oacute;leo, el oro p&uacute;rpura de las abejas. Centro de Informaci&oacute;n y Documentaci&oacute;n Agropecuario (CIDA). La Habana, Cuba. 255 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977814&pid=S2007-1132201500020000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Banskota, A. H., Y. Tezuka and S. Kadota. 2001. Recent progress in pharmacological research of propolis. Phytotherapy Research 15 (7):561&#45;571.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977816&pid=S2007-1132201500020000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bedascarrasbure, E., L. Maldonado, A. &Aacute;lvarez y E. Rodr&iacute;guez. 2004. Contenido de Fenoles y Flavonoides del Prop&oacute;leos Argentino. Acta Farmac&eacute;utica Bonaerense 23 (3):369&#45;372.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977818&pid=S2007-1132201500020000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bracho, J. 2003. Calidad de prop&oacute;leos de origen argentino. I. Propiedades organol&eacute;pticas. Vida Ap&iacute;cola 118:52&#45;59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977820&pid=S2007-1132201500020000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cai, R., S. Wang, Y. Meng, Q. Mengand and W. Zhao. 2012. Rapid quantification of flavonoids in propolis and previous study for classification of propolis from different origins by using near infrared spectroscopy. Analytical Methods 4:2388&#45;2395.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977822&pid=S2007-1132201500020000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Catalin, M. A., F. Soponar and C. S&acirc;rbu. 2010. Multivariate analysis of reflectance spectra from propolis: Geographical variation in Romanian samples. Talanta 81 (3):1010&#45;1015.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977824&pid=S2007-1132201500020000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Choi, Y. M., D. O. Noh, S. Y. Cho, H. J. Suh, K. M. Kim and J. M. Kim. 2006. Antioxidant and antimicrobial activities of propolis from several regions of Korea. LWT&#45;Food Science and Technology 39 (7):756&#45;761.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977826&pid=S2007-1132201500020000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cruz, C., A. Cavaco, R. Guerra, D. Antunes, H. Guia and M. Graca. 2008. A First Approach to the Optical and Antioxidant Properties of Propolis Collected at Different Sites of Algarve Region. In: World Scientific and Engineering Academy and Society (eds.). 4th IASME/WSEAS International Conference on Energy, Environment, Ecosystems and Sustainable Development (EEESD'08). June 11&#45;13. Algarve, Portugal. pp. 532&#45;536.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977828&pid=S2007-1132201500020000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cupull&#45;Santana, R. D., R. Cort&eacute;s&#45;Rodr&iacute;guez, E. E. Olaz&aacute;bal&#45;Manso y C. A. Hern&aacute;ndez&#45;Medina. 2013. Actividad antif&uacute;ngica de prop&oacute;leos obtenidos en tres provincias de Cuba sobre hongos contaminantes en cultivos de tejidos vegetales. Acta Universitaria 23 (6):3&#45;9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977830&pid=S2007-1132201500020000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Farr&eacute;, R., I. Frasquet and A. S&aacute;nchez. 2004. Propolis and human health. Ars Pharmaceutica 45(1): 21&#45;43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977832&pid=S2007-1132201500020000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hacura, A. and B. Zimnicka. 2006. An Investigation of Molecular Structure and Dynamics of Crude Beeswax by Vibrational Spectroscopy. Polish Journal of Environmental Studies 15 (4A):112&#45;114.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977834&pid=S2007-1132201500020000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Li&#45;Chan, L., C. Yue&#45;Wen and C. Cheng&#45;Chun. 2005. Antibacterial activity of propolis against <i>Staphylococcus aureus</i>. International Journal of Food Microbiology 102 (2): 213&#45;220.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977836&pid=S2007-1132201500020000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Londo&ntilde;o, A., J. Penieres, C. Garc&iacute;a, L. Carrillo, M. Quintero, S. Garc&iacute;a, M. Mendoza y T. Cruz. 2008. Estudio de la actividad antif&uacute;ngica de un extracto de prop&oacute;leo de la abeja <i>Apis mellifera</i> proveniente del estado de M&eacute;xico. Tecnolog&iacute;a en Marcha 21 (1):49&#45;55.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977838&pid=S2007-1132201500020000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lotti, C., M. Campo F., A. L. Piccinelli, O. Cuesta&#45;Rubio, I. M&aacute;rquez H. and L. Rastrelli. 2010. Chemical constituents of red Mexican propolis. Journal of Agricultural and Food Chemistry 58 (4):2209&#45;2213.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977840&pid=S2007-1132201500020000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Manrique, A. J. 2006. Actividad antimicrobiana de prop&oacute;leos provenientes de dos zonas clim&aacute;ticas del estado Miranda, Venezuela. Efecto de la variaci&oacute;n estacional. Zootecnia Tropical 24 (1):43&#45;53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977842&pid=S2007-1132201500020000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Marcucci, M. 1995. Propolis: chemicalcomposition, biologicalproperties and therapeuticalactivity. Apidologie 26 (2):83&#45;99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977844&pid=S2007-1132201500020000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez, J. G., C. Garc&iacute;a P., D. Durango R. y J. Gil G. 2012. Caracterizaci&oacute;n de prop&oacute;leos provenientes del municipio de Caldas obtenido por dos m&eacute;todos de recolecci&oacute;n. Revista MVZ C&oacute;rdoba 17 (1):2861&#45;2869.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977846&pid=S2007-1132201500020000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mihai, C. M., L. A. Marghitas, D. S. Dezmirean, F. Chirila, R. F. A. Moritz and H. Schl&uuml;ns. 2012. Interactions among flavonoids of propolis affect antibacterial activity against the honeybee pathogen <i>Paenibacillus larvae</i>. Journal of Invertebrate Pathology 110 (1):68&#45;72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977848&pid=S2007-1132201500020000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mok&#45;Ryeon, A., S. Kumazawa, Y. Usui, J. Nakamura, M. Matsuka, F. Zhu and T. Nakayama. 2007. Antioxidant activity and constituents of propolis collected in various areas of China. Food Chemistry 101 (4):1383&#45;1392.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977850&pid=S2007-1132201500020000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Palomino G., L. R., J. P. Mart&iacute;nez G., C. M. Garc&iacute;a P., J. H. Gil G. y D. L. Durango R. 2010. Caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica y actividad antimicrobiana del prop&oacute;leos en el municipio de La Uni&oacute;n (Antioquia, Colombia). Revista Facultad Nacional de Agronom&iacute;a Medell&iacute;n 63 (1):5373&#45;5383.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977852&pid=S2007-1132201500020000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pe&ntilde;a, R. C. 2008. Estandarizaci&oacute;n en prop&oacute;leos: antecedentes qu&iacute;micos y biol&oacute;gicos. Ciencia e Investigaci&oacute;n Agraria 35 (1):17&#45;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977854&pid=S2007-1132201500020000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Salamanca, G., I. L. Correa y J. Principal. 2007. Perfil de flavonoides e &iacute;ndices de oxidaci&oacute;n de algunos prop&oacute;leos colombianos. Zootecnia Tropical 25 (2):95&#45;102.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977856&pid=S2007-1132201500020000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shimizu, K., H. Ashida, Y. Matsuura and K. Kanazawa. 2004. Antioxidative bioavailability of artepillin C in Brazilian propolis. Archives of Biochemistry and Biophysics 424 (2):181&#45;188.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977858&pid=S2007-1132201500020000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Singleton, V. L. and J. A. Rossi. 1965. Colorunetry of total phenolics with phosphomolybdic&#45;phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture 16:144&#45;58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977860&pid=S2007-1132201500020000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vargas, R., G. Torrescano y A. S&aacute;nchez. 2013. El prop&oacute;leos: conservador potencial para la industria alimentaria. Interciencia 38 (10):705&#45;711.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977862&pid=S2007-1132201500020000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Woisky, R. and A. Salatino. 1998. Analysis of propolis: some parameters and procedures for chemical quality control. Journal of Apicultural Research 37 (2):99&#45;105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977864&pid=S2007-1132201500020000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yaghoubi, S. M. J., G. R. Ghorbani, Z. S. Soleimanian and R. Satari. 2007. Antimicrobial activity of Iranian propolis and its chemical composition. DARU Journal of Pharmaceutical Sciences 15 (1):45&#45;48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977866&pid=S2007-1132201500020000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yan&#45;Wen, W., S. Su&#45;Qin, J. Zhao, Y. Li and Q. Zhou. 2008. Rapid discrimination of extracts of Chinese propolis and poplar buds by FT&#45;IR and 2D IR correlation spectroscopy. Journal of Molecular Structure 883&#45;884:48&#45;54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7977868&pid=S2007-1132201500020000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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