<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>2007-1124</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Revista mexicana de ciencias pecuarias]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Rev. mex. de cienc. pecuarias]]></abbrev-journal-title>
<issn>2007-1124</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S2007-11242010000200002</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Determinación de la fijación biológica de N2 usando la técnica de abundancia natural del N15 en tres ecotipos de cacahuate forrajero]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Assessment of N2 fixation by three forage peanut ecotypes using 15N natural abundance technique]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Valles de la Mora]]></surname>
<given-names><![CDATA[Braulio]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cadisch]]></surname>
<given-names><![CDATA[Georg]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Nacional Autónoma de México Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia Centro de Enseñanza, Investigación y Extensión en Ganadería Tropical]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ Veracruz]]></addr-line>
<country>México</country>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,University of Hohenheim Institute of Plant Production and Agroecology in the Tropics and Subtropics ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[ ]]></addr-line>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>06</month>
<year>2010</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>06</month>
<year>2010</year>
</pub-date>
<volume>1</volume>
<numero>2</numero>
<fpage>99</fpage>
<lpage>114</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S2007-11242010000200002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S2007-11242010000200002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S2007-11242010000200002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se midió la proporción de nitrógeno atmosférico (N2) biológicamente fijado, utilizando el método de abundancia natural de N15 , en tres ecotipos de la leguminosa forrajera Arachis pintoi (Ap): CIAT 17434, 18744 y 18748, empleando el inoculante mejorado Bradyrhizobium CIAT 3101 (BS), y una mezcla de cepas nativas (NS) de un suelo de Veracruz, México. Como plantas de referencia, se usaron la leguminosa no-nodulante Arachis hypogaea, y las gramíneas forrajeras Brachiaria arrecta, Brachiaria brizantha y Cynodon nlemfuensis. El experimento se estableció en condiciones de invernadero, y se realizaron cinco muestreos. Los rendimientos más altos de materia seca se lograron con los ecotipos inoculados con BS (98.3 ± 10.0 g maceta-1) vs plantas con NS (19.9 ± 1.4 g maceta-1). Los valores de &#948; (delta) N15 en los ecotipos 17434, 18744 y 18748 fueron, 8.4, 5.7, 7.7 &#8240;; y 1.2, 1.0 y 3.5 &#8240; para NS y BS, revelando estos últimos una mayor dependencia del N2 para crecer. Todas las plantas de referencia mostraron efectos positivos de BS sobre el porcentaje de N2 fijado: 92.7 ± 1.8 vs 6.5 ± 7.6 con ecotipos inoculados con NS. Se concluyó que el N2 fijado fue altamente dependiente de la cepa de Rhizobium, y Bradyrhizobium CIAT 3101 fue más eficiente para fijar N2. Los ecotipos Arachis pintoi CIAT 17434 y 18744 mostraron los más altos valores de fijación de N2. Arachis hypogea destacó como planta de referencia debido a su patrón de crecimiento similar a Arachis pintoi.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The percentage of nitrogen derived from N2 fixation was measured by the 15N natural abundance method, in three Arachis pintoi (Ap) ecotypes: CIAT 17434, 18744 and 18748, using an improved Bradyrhizobium strain CIAT 3101 (BS), and a mixing of native strains (NS). As reference plants, a non-nodulating Arachis hypogaea, Brachiaria arrecta, B. brizantha and Cynodon nlemfuensis were used. The experiment was set up under greenhouse conditions, and five harvests were done. Dry matter yield was highest in Ap ecotypes and BS (98.3 ± 10.0 g pot-1), vs plants with NS (19.9 ± 1.4 g pot-1). Values of &#948; (delta) 15N in the ecotypes 17434, 18744 and 18748 were, 8.4, 5.7, 7.7 &#8240;, and 1.2, 1.0 and 3.5 &#8240; for NS and BS, revealing for the later group more N2 dependence to grow. All reference plants showed positive effects of the BS on the percentage of N2 fixed: 92.7 ± 1.8 vs 6.5 ± 7.6 with ecotypes inoculated with NS. It was concluded that the N2 fixed was highly dependent of the Rhizobium strain, and Bradyrhizobium CIAT 3101 strain was more efficient to fix N2. The Arachis pintoi ecotypes CIAT 17434 and 18744 showed the highest N2 fixing values. A. hypogaea highlighted as reference plant considering its growth pattern similar to A. pintoi.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[Arachis pintoi]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Plantas de referencia]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Bradyrhizobium]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[Abundancia natural de N15]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Arachis pintoi]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Reference plants]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Bradyrhizobium strain]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[15N natural abundance method]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Determinaci&oacute;n de la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de N<sub>2</sub> usando la t&eacute;cnica de abundancia natural del N<sup>15</sup> en tres ecotipos de cacahuate forrajero</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Assessment of N<sub>2</sub> fixation by three forage peanut ecotypes using <sup>15</sup>N natural abundance technique</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Braulio Valles de la Mora<sup>a</sup>, Georg Cadisch<sup>b</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>a</sup> Centro de Ense&ntilde;anza, Investigaci&oacute;n y Extensi&oacute;n en Ganader&iacute;a Tropical, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico, Mart&iacute;nez de la Torre, Veracruz, 93600, M&eacute;xico. Tel&eacute;fono: +232 32 43941;</i> <a href="mailto:braulio_36@hotmail.com">braulio_36@hotmail.com</a>. Correspondencia al primer autor.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>b</sup> Institute of Plant Production and Agroecology in the Tropics and Subtropics, University of Hohenheim,</i> <a href="mailto:cadisch@uni-hohenheim.de">cadisch@uni&#150;hohenheim.de</a>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 21 de abril de 2009    <br> 	Aceptado para su publicaci&oacute;n el 27 de octubre de 2009</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se midi&oacute; la proporci&oacute;n de nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico (N<sub>2</sub>) biol&oacute;gicamente fijado, utilizando el m&eacute;todo de abundancia natural de N<sup>15</sup> , en tres ecotipos de la leguminosa forrajera <i>Arachis pintoi</i> (<i>Ap</i>): CIAT 17434, 18744 y 18748, empleando el inoculante mejorado <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101 (BS), y una mezcla de cepas nativas (NS) de un suelo de Veracruz, M&eacute;xico. Como plantas de referencia, se usaron la leguminosa no&#150;nodulante <i>Arachis hypogaea</i>, y las gram&iacute;neas forrajeras <i>Brachiaria arrecta</i>, <i>Brachiaria brizantha</i> y <i>Cynodon nlemfuensis</i>. El experimento se estableci&oacute; en condiciones de invernadero, y se realizaron cinco muestreos. Los rendimientos m&aacute;s altos de materia seca se lograron con los ecotipos inoculados con BS (98.3 &plusmn; 10.0 g maceta<sup>&#150;1</sup>) <i>vs</i> plantas con NS (19.9 &plusmn; 1.4 g maceta<sup>&#150;1</sup>). Los valores de &#948; (delta) N<sup>15</sup> en los ecotipos 17434, 18744 y 18748 fueron, 8.4, 5.7, 7.7 &permil;; y 1.2, 1.0 y 3.5 &permil; para NS y BS, revelando estos &uacute;ltimos una mayor dependencia del N<sub>2</sub> para crecer. Todas las plantas de referencia mostraron efectos positivos de BS sobre el porcentaje de N<sub>2</sub> fijado: 92.7 &plusmn; 1.8 vs 6.5 &plusmn; 7.6 con ecotipos inoculados con NS. Se concluy&oacute; que el N<sub>2</sub> fijado fue altamente dependiente de la cepa de <i>Rhizobium</i>, y <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101 fue m&aacute;s eficiente para fijar N<sub>2</sub>. Los ecotipos <i>Arachis pintoi</i> CIAT 17434 y 18744 mostraron los m&aacute;s altos valores de fijaci&oacute;n de N2. <i>Arachis hypogea</i> destac&oacute; como planta de referencia debido a su patr&oacute;n de crecimiento similar a <i>Arachis pintoi</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Arachis pintoi</i>, Plantas de referencia, <i>Bradyrhizobium</i>, Abundancia natural de N<sup>15</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The percentage of nitrogen derived from N<sub>2</sub> fixation was measured by the <sup>15</sup>N natural abundance method, in three <i>Arachis pintoi </i>(<i>Ap</i>) ecotypes: CIAT 17434, 18744 and 18748, using an improved <i>Bradyrhizobium</i> strain CIAT 3101 (BS), and a mixing of native strains (NS). As reference plants, a non&#150;nodulating <i>Arachis hypogaea</i>, <i>Brachiaria arrecta</i>, <i>B. brizantha</i> and <i>Cynodon nlemfuensis</i> were used. The experiment was set up under greenhouse conditions, and five harvests were done. Dry matter yield was highest in <i>Ap ecotypes</i> and BS (98.3 &plusmn; 10.0 g pot<sup>&#150;1</sup>), <i>vs</i> plants with NS (19.9 &plusmn; 1.4 g pot<sup>&#150;1</sup>). Values of &#948; (delta) <sup>15</sup>N in the ecotypes 17434, 18744 and 18748 were, 8.4, 5.7, 7.7 &permil;, and 1.2, 1.0 and 3.5 &permil; for NS and BS, revealing for the later group more N<sub>2</sub> dependence to grow. All reference plants showed positive effects of the BS on the percentage of N<sub>2</sub> fixed: 92.7 &plusmn; 1.8 vs 6.5 &plusmn; 7.6 with ecotypes inoculated with NS. It was concluded that the N<sub>2</sub> fixed was highly dependent of the <i>Rhizobium</i> strain, and <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101 strain was more efficient to fix N<sub>2.</sub> The <i>Arachis pintoi</i> ecotypes CIAT 17434 and 18744 showed the highest N<sub>2</sub> fixing values. <i>A. hypogaea</i> highlighted as reference plant considering its growth pattern similar to <i>A. pintoi</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Arachis pintoi</i>, Reference plants, <i>Bradyrhizobium</i> strain, <sup>15</sup>N natural abundance method.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las sabanas neo tropicales de Am&eacute;rica del Sur cubren alrededor de 250 millones de hect&aacute;reas, y se encuentran asociadas con otros importantes biomas como la cuenca del Amazonas y la regi&oacute;n del Chaco en Bolivia, Paraguay y Argentina<sup>(1)</sup>. Las pasturas tropicales en esta regi&oacute;n se encuentran sujetas a deterioro y degradaci&oacute;n debido, entre otras causas, al sobrepastoreo y la subsecuente erosi&oacute;n del suelo, deficiencias minerales (principalmente N y P), y por la presencia de plagas y enfermedades<sup>(2)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Desde hace muchos a&ntilde;os, se ha propuesto en &aacute;reas tropicales, el uso de leguminosas fijadoras de N<sub>2</sub> para mejorar la fertilidad del suelo y en consecuencia la productividad de las pasturas<sup>(3),</sup> ya que la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno (N<sub>2</sub>) constituye una fuente gratuita de N, las leguminosas forrajeras tropicales representan una manera econ&oacute;mica de disponer de N para el sistema suelo&#150;planta&#150;animal. Este aporte de N al sistema puede ser directo (N<sub>2</sub> fijado en granos cosechados, o en pastoreo por el ganado) o indirecto (N proveniente de la descomposici&oacute;n de los residuos vegetales). Sin embargo, los beneficios al sistema no son, en muchos casos, inmediatos, ya que se requiere mejorar otros factores complementarios tales como la presencia de cepas efectivas de Bradyrhizobium<sup>(4)</sup>, y la selecci&oacute;n de leguminosas persistentes, para lograr los beneficios deseados<sup>(5)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ninguno de los m&eacute;todos actualmente disponibles, determina el N simbi&oacute;ticamente fijado sin introducir alg&uacute;n error inherente al m&eacute;todo, y se ha mencionado que no existe una manera f&aacute;cil de medir la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub>, adem&aacute;s de que debe considerarse cuidadosamente el dise&ntilde;o experimental, ya sea para lograr mediciones precisas o para realizar determinaciones comparativas<sup>(3)</sup>. Los m&eacute;todos de abundancia natural de N<sup>15</sup> y de diluci&oacute;n de N<sup>15</sup> han sido aplicados para estimar la proporci&oacute;n de N derivado de la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> en leguminosas forrajeras.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La abundancia natural de N<sup>15</sup> es un m&eacute;todo basado en peque&ntilde;as diferencias entre el N<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico (0.3663% de &aacute;tomos N<sup>15</sup>) y el N del suelo. Considerando que el N del suelo es generalmente m&aacute;s abundante en N<sup>15</sup> que el N<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico, se espera que plantas no&#150;fijadoras de N, en las cuales la fuente primaria de este elemento es el suelo, deber&iacute;an tener m&aacute;s N<sup>15</sup> que plantas fijadoras que toman el N<sub>2</sub> de la atm&oacute;sfera y del suelo. La precisi&oacute;n con este m&eacute;todo para el N<sub>2</sub> fijado, se ve afectado por el grado y uniformidad de la abundancia de N<sup>15</sup> en suelos con pasturas. Algunos autores han sugerido una escala m&iacute;nima de enriquecimiento entre 2 a 7 &permil; &#948; (delta) unidades de N<sup>15(6)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La contribuci&oacute;n de leguminosas mejoradas como componente forrajero es m&aacute;s importante cuando &eacute;stas se asocian con gram&iacute;neas, ya que se benefician del N fijado por las primeras<sup>(7)</sup>. En a&ntilde;os recientes, se han evaluado nuevas leguminosas forrajeras tropicales para mejorar la productividad y calidad de las pasturas. Algunos de estos g&eacute;neros son (en orden alfab&eacute;tico) <i>Arachis</i>, <i>Centrosema</i>, <i>Desmodium</i>, <i>Mucuna</i> y <i>Stylosanthes</i>. Resultados de investigaciones en zonas c&aacute;lidas y h&uacute;medas de M&eacute;xico y otras partes de Am&eacute;rica Latina han mostrado que la leguminosa forrajera <i>Arachis pintoi</i> CIAT 17434 es un buen prospecto para asociarlo a gram&iacute;neas, debido a su mejor persistencia en el terreno y tambi&eacute;n por su alto valor nutritivo y palatabilidad<sup>(8,9,10)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el fin de determinar su valor e idoneidad en el mejoramiento de los sistemas de producci&oacute;n animal en el tr&oacute;pico, y en el mantenimiento o mejoramiento de los niveles de N en el suelo, es importante la cuantificaci&oacute;n precisa del N<sub>2</sub> que puede ser simbi&oacute;ticamente fijado por estas leguminosas<sup>(11)</sup>. La cepa de <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101 se ha identificado como una cepa exitosa para inocular ecotipos de <i>A. pintoi</i><sup>(12,13)</sup>. Sin embargo, en el caso de cepas nativas de <i>Rhizobium</i>, y de acuerdo con varias experiencias<sup>(13&#150;16)</sup>, a la fecha es aun desconocido su papel para promover nodulaciones efectivas. Existe, en suelos tropicales, una gran diversidad de cepas nativas que pueden fijar N<sub>2</sub> requerido por cultivos de leguminosas, o para proporcionar nuevos aislamientos a fin de producir inoculantes efectivos<sup>(17)</sup>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los objetivos de este estudio fueron, cuantificar la contribuci&oacute;n de la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno (FBN) por tres ecotipos de <i>Arachis pintoi</i>, empleando la t&eacute;cnica de abundancia natural de N<sup>15</sup>, y determinar la cepa de Rhizobium m&aacute;s apropiada para el crecimiento y acumulaci&oacute;n de N por los mencionados ecotipos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por lo anterior, se incluyeron en este experimento, cepas nativas e introducidas con el fin de adquirir experiencia acerca de su potencial para promover la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El experimento se estableci&oacute; en condiciones de invernadero en el Imperial College, Wye (Inglaterra), para determinar la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> por los ecotipos de <i>Arachis pintoi</i> CIAT 17434, 18744 y 18748 por el m&eacute;todo de abundancia natural de N<sup>15</sup>, usando cuatro plantas de referencia: la leguminosa nonodulante <i>Arachis hypogaea</i>, <i>Brachiaria arrecta</i>, <i>B. brizantha</i> y <i>Cynodon nlemfuensis</i>. Se us&oacute; un suelo del campo experimental de Wye College (condado de Kent), con un enriquecimiento en N<sup>15</sup> similar (7.5 <sup>0</sup>/<sub>00</sub>) a los suelos de Veracruz, M&eacute;xico (7.7 <sup>0</sup>/<sub>00</sub>). El suelo se combin&oacute; con 1/3 de arena, y se caracteriz&oacute; por un pH de 6.8, N total de 0.38% y &#948; N<sup>15</sup> de 7.5 <sup>0</sup>/<sub>00</sub>. Los valores de Ca, K y Mg fueron de 16.5, 0.8 y 0.9 cmol (+)/kg suelo; y de P, 30.9 m/g suelo, y un contenido de 11, 19, 24 y 46 % para arcilla, limo, arena fina y arena gruesa, respectivamente; clasificado como franco&#150;arenoso. El suelo fue secado al aire y tamizado en malla de 2 mm.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para los tres ecotipos de <i>Arachis pintoi</i>, <i>A. hypogaea</i> y <i>B. brizantha</i>, se emple&oacute; semilla esterilizada; y para las restantes especies se us&oacute; material vegetativo (estolones). Las semillas y estolones se sembraron en macetas esterilizadas (17.5 x 17.5 x 12.5 cm, 2 kg de la mezcla suelo&#150;arena), y despu&eacute;s de la emergencia de las pl&aacute;ntulas, se dejaron s&oacute;lo dos de ellas por maceta.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s de la germinaci&oacute;n, los ecotipos de <i>Arachis pintoi</i> fueron inoculados con la cepa de <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101 (19 x 10<sup>7</sup> c&eacute;lulas maceta<sup>&#150;1</sup>) o con una soluci&oacute;n de suelo (1:5 suelo/ agua destilada), mezcla de cepas nativas preparada de un suelo de Veracruz, M&eacute;xico, con vegetaci&oacute;n nativa. Al interior del invernadero, y durante todo el experimento, la temperatura y humedad del aire fueron de 26 &ordm;C y 70 %, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Diecinueve d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra, las leguminosas y las plantas de referencia se trataron con una soluci&oacute;n nutritiva, dos veces por semana, a un volumen de 200 ml semana<sup>&#150;1</sup>. Adicionalmente, y a la misma frecuencia, se a&ntilde;adi&oacute; una soluci&oacute;n de 0.5 ml L<sup>&#150;1</sup> de micro&#150;nutrientes. Cuando se requer&iacute;a, las plantas fueron regadas a su capacidad de campo con agua deionizada.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realizaron cinco cortes (tallos y hojas) tanto en leguminosas como en gram&iacute;neas, estim&aacute;ndose su materia seca, a una frecuencia en promedio de 73 d&iacute;as; pero el primer corte fue a los 53 d&iacute;as, tiempo que se consider&oacute; suficiente para que las plantas nodularan y empezaran a fijar N<sub>2</sub>. El periodo experimental, incluyendo el tiempo de establecimiento (53 d&iacute;as) fue de 345 d&iacute;as. No se realiz&oacute; corte de uniformizaci&oacute;n. El material cosechado se sec&oacute; a 40 &deg;C en estufa de aire forzado, pesado y molido con malla fina (&lt;1 mm), usando un molino de martillos. Se tomaron sub&#150;muestras, las cuales fueron pesadas, colocadas en c&aacute;psulas y analizadas por duplicado para N% y &#948; N<sup>15 0</sup>/<sub>00,</sub> usando un espectr&oacute;metro de masas (Europa Scientific 20&#150;20, Crewe, UK) acoplado a un analizador C/N (Roboprep).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La proporci&oacute;n del N total atmosf&eacute;rico derivado de la fijaci&oacute;n (%Ndfa) por las leguminosas se calcul&oacute; usando la siguiente ecuaci&oacute;n<sup>(3)</sup>:</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcp/v1n2/a2e1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde <i>B</i> es el valor de &#948; N<sup>15</sup> de la leguminosa que crece con N<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico como la &uacute;nica fuente de nitr&oacute;geno, &#948; N<sup>15</sup> ref y &#948; N<sup>15</sup> leg son las unidades &#948; N<sup>15</sup> (<sup>0</sup>/<sub>00</sub>) para la planta de referencia y leguminosa, respectivamente. Se emplearon valores de B de los tallos y hojas correspondiente a cada ecotipo (plantas maduras). Para los ecotipos 17434, 18744 y 18748 inoculados con cepas nativas estos valores fueron (<sup>0</sup>/<sub>00</sub>), 1.11, 1.54 y 0.61; mientras que para los ecotipos con la cepa de <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101, los valores de B, calculados de un experimento previo, fueron (<sup>0</sup>/<sub>00</sub>) 0.08, &#150; 0.18 y &#150;0.29, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emple&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar, en parcelas divididas, con las cepas como parcelas principales, y las leguminosas y plantas de referencia como sub&#150;parcelas, repetidas cuatro veces (macetas). Los datos fueron sometidos a an&aacute;lisis de varianza, y las diferencias entre tratamientos se determinaron por diferencia m&iacute;nima significativa al nivel de <i>P</i>&le;0.01, usando el programa estad&iacute;stico GenStat<sup>(18)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Rendimiento de materia seca (RMS)</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de RMS fueron consistentes para los ecotipos con la cepa de <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101 (<i>P</i>&lt;0.01), comparados con las cepas nativas (<a href="#c1">Cuadro 1</a>). Desde el segundo corte, el RMS fue siempre superior (<i>P</i>&lt;0.01) para los ecotipos inoculados con la cepa 3101. En promedio, las leguminosas con cepas nativas produjeron s&oacute;lo 14 % (4.0 &plusmn; 0.79 g maceta<sup>&#150;1</sup>) del forraje producido por el otro grupo (28.6 &plusmn; 4.5 g maceta<sup>&#150;1</sup>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcp/v1n2/a2c1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Considerando los grupos inoculados con la cepa CIAT 3101, el segundo y tercer corte mostraron un incremento significativo, probablemente debido a un mejoramiento de las condiciones ambientales y al largo del periodo de crecimiento. Se encontraron diferencias altamente significativas para las interacciones cepa/corte y ecotipo/corte. Los ecotipos de <i>Arachis pintoi</i> 17434 y 18744 inoculados con esta cepa mejorada, mostraron el m&aacute;s alto RMS acumulado, con 152.0 &plusmn; 4.3 y 162.5 &plusmn; 4.8 g maceta<sup>&#150;1</sup>, respectivamente, y fueron diferentes (P&lt;0.01) al ecotipo 18748 que promedi&oacute; 113.8 &plusmn; 12.8 g maceta<sup>&#150;1</sup>. No se encontr&oacute; una explicaci&oacute;n a este comportamiento, considerando que todos fueron tratados con la misma cepa.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La ausencia de diferencias en RMS por efecto de las cepas al primer corte pudo deberse a una alta disponibilidad de N mineral durante las primeras semanas del experimento. Posteriormente, las diferencias fueron m&aacute;s evidentes a favor de las leguminosas con la cepa CIAT 3101.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se han reportado evidencias experimentales de la cepa mejorada <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101, tanto sobre efectos positivos como negativos, en el rendimiento de materia seca de leguminosas. En Costa Rica, Villarreal y Vargas<sup>(19)</sup> usaron la misma cepa y los mismos ecotipos de <i>Arachis pintoi</i>, pero no encontraron una respuesta a la inoculaci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia de cepas nativas efectivas y competitivas, o una alta disponibilidad de N mineral del suelo para las plantas, podr&iacute;a ser la raz&oacute;n para explicar esta falta de respuesta. Como aqu&iacute; se observ&oacute;, al final, el ecotipo 18744 fue el m&aacute;s productivo (644 g m<sup>2</sup>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Carimagua, Colombia, en suelos no perturbados, se evaluaron 31 cepas de <i>Bradyrhizobium</i> en kudz&uacute; (<i>Pueraria phaseoloides</i>), incluyendo la cepa mejorada CIAT 3101. Con esta cepa, la leguminosa produjo 49.7 mg of N planta<sup>&#150;1</sup>, valor que fue similar al m&aacute;s alto obtenido con la que se consider&oacute; la mejor cepa (CIAT 3221) evaluada (54.7 mg of N planta<sup>&#150;1</sup>)<sup>(20)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En Brasil, y en condiciones de invernadero, se prob&oacute; el efecto de 11 cepas mejoradas de Bradyrhizobium, as&iacute; como de cepas nativas, compar&aacute;ndolas con plantas fertilizadas con N mineral, sobre la nodulaci&oacute;n y RMS en <i>Arachis pintoi</i>. Noventa d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra, se encontr&oacute; que la cepa CIAT 3101, fue estad&iacute;sticamente comparable a los tratamientos con fertilizante nitrogenado, en t&eacute;rminos de RMS y nodulaci&oacute;n<sup>(14)</sup>. Otras referencias han destacado el papel de esta cepa para promover altos rendimientos de materia seca. Tambi&eacute;n en Brasil, en un experimento donde se evaluaron 48 cepas, CIAT 3101 tuvo efectos positivos en RMS, N (%) y N total en Arachis pintoi CIAT 17434 y en el ecotipo BRA 031143, comparados con un tratamiento que inclu&iacute;a N mineral<sup>(12)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Rendimiento de N considerando las cepas de Rhizobium</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El N producido por las leguminosas inoculadas con la cepa CIAT 3101, fue claramente mayor que el N de las leguminosas con cepas nativas (<a href="#c2">Cuadro 2</a>). Las cantidades acumuladas de N fueron diferentes (P&lt;0.01) entre estos dos grupos. Por corte, los ecotipos con cepas nativas acumularon una mayor cantidad de N s&oacute;lo al primer corte, pero despu&eacute;s de &eacute;ste, declin&oacute; a un rango de 48 a 71 mg N maceta<sup>&#150;1</sup>. En contraste, los ecotipos con la cepa CIAT 3101 mostraron un incremento desde el primero al quinto corte.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcp/v1n2/a2c2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La producci&oacute;n de N, en el caso de los ecotipos con cepas nativas, mostr&oacute; un patr&oacute;n de disminuci&oacute;n despu&eacute;s del primer corte, probablemente debido a que las leguminosas usaron el N de sus semillas, as&iacute; como el N mineral disponible, despu&eacute;s de alterar el suelo al momento de la siembra, evitando, en los subsecuentes cortes, un crecimiento m&aacute;s vigoroso, o debido a la presencia de cepas nativas ineficientes en el suelo. Una tendencia opuesta se observ&oacute; en los ecotipos con la cepa CIAT 3101.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados concuerdan con Pinto <i>et al</i><sup>(14)</sup> en Brasil, quienes observaron en condiciones de invernadero, que <i>Arachis pintoi</i> tuvo un alto rendimiento de N cuando se inocul&oacute; con la misma cepa; en contraste, el rendimiento de N con cepas nativas fue muy pobre. Otros investigadores, en un experimento con jarras de Leonard, encontraron que la cepa mejorada CIAT 3101 tuvo un rendimiento de N significativamente m&aacute;s bajo al infectar plantas de <i>P. phaseoloides</i><sup>(20)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Rendimiento de N en plantas de referencia</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El rendimiento de N en las gram&iacute;neas fue estad&iacute;sticamente similar entre ellas y mayor que en la leguminosa no&#150;nodulante (<i>P</i>&lt;0.01; <a href="/img/revistas/rmcp/v1n2/a2c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>); en promedio, las gram&iacute;neas produjeron 52 % m&aacute;s N que Arachis hypogaea durante todo el experimento. Despu&eacute;s del segundo corte, el rendimiento de N en B. arrecta y C. nlemfuensis tendi&oacute; a disminuir. La producci&oacute;n de N por corte en las plantas de referencia mostr&oacute; diferencias (P&lt;0.01) entre ellos, y se produjeron 56 % m&aacute;s N en el segundo corte que en los restantes, los que en promedio produjeron 64.3 mg maceta<sup>&#150;1</sup> .</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque el contenido de N en la leguminosa nonodulante A. hypogaea fue m&aacute;s alto comparado con las gram&iacute;neas, su bajo rendimiento de materia seca no permiti&oacute; cantidades significativas de N (<a href="/img/revistas/rmcp/v1n2/a2c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). Lo contrario se observ&oacute; para las gram&iacute;neas. Estas &uacute;ltimas, aun con un pobre contenido de N (1.2 %) presentaron altos rendimientos de materia seca, con 1.7 veces m&aacute;s N que <i>A. hypogaea</i>. El rendimiento de N logrado en el primer corte por <i>A. hypogaea</i> y <i>B. brizantha</i> fue muy bajo debido a que estas plantas fueron sembradas con semillas, por lo que al inicio del experimento su crecimiento fue m&aacute;s lento. Estas cantidades de N, comparadas con otras experiencias, son bajas. Se ha informado que el pasto <i>Dichanthium</i> aristatum produjo en un rango de 1.14 a 1.56 mg N g suelo<sup>&#150;1</sup> en un experimento donde se midi&oacute; la tasa de N transferido por la leguminosa <i>Gliricidia sepium</i> a esta gram&iacute;nea en un sistema silvopastoril<sup>(21)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el segundo corte, el alto rendimiento de N registrado, se debi&oacute; probablemente a que las plantas tuvieron acceso a una alta disponibilidad de N del suelo despu&eacute;s del periodo de establecimiento. Luego de este corte, la subsiguiente ca&iacute;da en el rendimiento de N se debi&oacute; muy probablemente a que las gram&iacute;neas agotaron el N del suelo, limitando as&iacute; su rendimiento de materia seca y contenido de N; sin embargo, no hay otras evidencias disponibles.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Valores de &#948; N<sup>15</sup></i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de &#948; N<sup>15</sup>, expresados como partes por mill&oacute;n (&permil;) relativos a la composici&oacute;n de N<sup>15</sup> en el N<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico, de hojas y tallos de los ecotipos de leguminosas, se presentan en la <a href="#f1">Figura 1</a>. Se encontraron claras diferencias entre los dos grupos inoculados, las cuales fueron m&aacute;s evidentes a partir del segundo corte (P&lt;0.01). Los promedios para cada grupo, a lo largo de todo el experimento fueron, 7.2 &plusmn; 0.52 &permil; y 1.9 &plusmn; 0.84 &permil; para las cepas nativas y mejorada, respectivamente. En todos los casos, los valores m&aacute;s bajos se registraron en el &uacute;ltimo corte con 6.2 &plusmn; 0.18 &permil; y &#150;0.11 &plusmn; 0.08 &permil; para las cepas nativas y mejorada, respectivamente.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcp/v1n2/a2f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores m&aacute;s bajos de &#948; N<sup>15</sup> en hojas y tallos se encontraron en las leguminosas con la cepa mejorada de <i>Bradyrhizobium</i>, en comparaci&oacute;n con el grupo de <i>Rhizobium</i> nativo. En las primeras, fue m&aacute;s evidente que desde el segundo corte y hasta el final del experimento tendieron hacia valores negativos, indicando una substancial diluci&oacute;n del N<sup>15</sup> con valores m&aacute;s cercanos al N<sub>2</sub> atmosf&eacute;rico, lo cual revel&oacute; una mayor dependencia de las plantas por esta fuente de N para su crecimiento. Los valores de &#948; N<sup>15</sup> en tallos y hojas pueden variar de acuerdo a la leguminosa, tejido o cepa de <i>Rhizobium</i>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Boddey <i>et al</i><sup>(11)</sup> informaron de variaciones en los valores de &#948; N<sup>15</sup> conforme pasaba el tiempo, en la leguminosa arborea no&#150;nodulante <i>Senna spectabilis</i> en crecimiento al lado de parcelas (separados por 0.5 m) con &aacute;rboles fijadores de N<sub>2</sub> como <i>Calliandra calothyrsus</i>, <i>Gliricidia sepium</i> y <i>Codariocalyx gyroides</i>. Los promedios para los &aacute;rboles fijadores, a 52, 65, 91 y 104 semanas postsiembra, fueron de: 4.07 4.17 4.12 y 3.63 &permil;, respectivamente. Este comportamiento es similar al del presente experimento, donde, a trav&eacute;s del tiempo, se observ&oacute; una disminuci&oacute;n en los valores de &#948; N<sup>15</sup> . En Brasil, Behling&#150;Miranda <i>et al</i><sup>(22)</sup> determinaron la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> en siete accesiones de <i>Arachis</i> usando como plantas de referencia a <i>Panicum maximum</i> cv Massai, <i>P. repens</i>, y las especies invasoras <i>Solanum viarum</i>, <i>Sonchus</i> spp y <i>Sida rhombifolia</i>. Ellos encontraron que las accesiones de <i>Arachis</i> presentaron una disminuci&oacute;n en los valores de &#948; N<sup>15</sup> (promedio de 1.97 <sup>0</sup>/<sub>00</sub>) en comparaci&oacute;n con las plantas testigo (6.99 <sup>0</sup>/<sub>00</sub>). Esta &uacute;ltima cifra sugiri&oacute; que el N del suelo se enriqueci&oacute; con &#948; N<sup>15</sup>, indicando tambi&eacute;n lo anterior, una mayor confianza en la t&eacute;cnica utilizada. Como sucedi&oacute; en este experimento, las accesiones de <i>Arachis pintoi</i> inoculadas con la cepa mejorada registraron una ca&iacute;da en los valores de &#948; N<sup>15</sup> conforme pasa el tiempo (<a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Porcentajes de N<sub>2</sub> fijado</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los primeros dos cortes, se registr&oacute; una alta variabilidad en la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> (<a href="#f2">Figura 2</a>), incluso con estimaciones negativas en ecotipos inoculados con la cepa nativa usando como plantas de referencia a <i>B. arrecta</i> y <i>C. nlemfuensis</i>. Sin embargo, desde el tercer corte hasta el final del experimento (<a href="#f3">Figura 3</a>), todas las plantas de referencia presentaron un efecto positivo en el porcentaje de N<sub>2</sub> fijado, por efecto de la cepa mejorada: 92.7 &plusmn; 1.8 %, en comparaci&oacute;n con los ecotipos con cepas nativas (6.5 &plusmn; 7.6 %). Desde el tercer corte, los porcentajes de fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno fueron altos independientemente de la planta de referencia usada. Para este grupo, no se encontraron diferencias estad&iacute;sticas en la interacci&oacute;n planta&#150;cepa.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcp/v1n2/a2f2.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmcp/v1n2/a2f3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El efecto de la cepa de <i>Bradyrhizobium</i> es evidente, independientemente del ecotipo de leguminosa, y las diferencias en el porcentaje de fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> son considerables entre los dos grupos, promediando: 21.6 &plusmn; 3.2 y 86.2 &plusmn; 2.4 % (P&lt;0.01), respectivamente. Los promedios de N<sub>2</sub> (%) fijados por ecotipo (17434, 18744 y 18748), fueron, para los ecotipos inoculados con la cepa mejorada de <i>Bradyrhizobium</i>, los valores fueron: 91.2, 89.5 y 78.0 %, respectivamente (P&lt;0.01). Desde el primero al quinto corte, se encontr&oacute; una tendencia de incremento en la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> (%) para los ecotipos con la cepa mejorada, con promedios de 63.1 &plusmn; 11.7, 86.5 &plusmn; 3.7, 84.6 &plusmn; 3.1, 96.0 &plusmn; 1.6 y 100.0 &plusmn; 1.3, respectivamente. Por el contrario, la tendencia fue la opuesta para los ecotipos con cepas nativas (<a href="#f3">Figura 3</a>). Esto puede explicarse por la ineficiencia en el establecimiento de una simbiosis efectiva, por parte de las cepas nativas de <i>Rhizobium</i> usadas aqu&iacute;.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los mejores resultados se obtuvieron con las leguminosas inoculadas con la cepa CIAT 3101, independientemente de la planta de referencia usada. Se ha encontrado que la cepa <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101 mostr&oacute; una alta eficiencia para fijar N<sub>2</sub>, al compararla con 38 cepas nativas, donde la mitad de ellas presentaron baja efectividad o fueron inefectivas para fijar N<sub>2</sub><sup>(14)</sup>. En Veracruz, M&eacute;xico, cepas nativas de Rhizobium provenientes de n&oacute;dulos de la leguminosa arb&oacute;rea Gliricidia sepium mostraron efectividad para fijar N<sub>2</sub>, y varias de ellas registraron rendimientos altos de materia seca<sup>(15)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Peoples <i>et al</i><sup>(23)</sup> no encontraron diferencias en la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> por <i>A. hypogaea</i> al evaluar tres cepas de <i>Bradyrhizobium</i> (promedio de 101 kg ha<sup>&#150;1</sup>) en comparaci&oacute;n con cepas nativas (98 kg ha<sup>&#150;1</sup>). Ellos atribuyeron esta falta de respuesta, a la presencia en el suelo de rhizobio efectivo naturalizado. Tambi&eacute;n con <i>A. hypogaea</i> no&#150;inoculada, se ha informado de valores de N<sub>2</sub> fijado de 53 y 21% en el primero y segundo a&ntilde;o, respectivamente, usando cacahuate no&#150;nodulante como planta de referencia<sup>(24)</sup>. En un experimento con especies de <i>Sylosanthes</i> no&#150;inoculadas, se observaron aceptables niveles de N<sub>2</sub> fijado (%): 82, 73, 77 y 64, para <i>S. capitata</i>, <i>S. guianensis</i>, <i>S. macrocephala</i> y <i>S. scabra</i>, respectivamente, lo cual sugiri&oacute; la presencia de una poblaci&oacute;n eficiente de <i>Rhizobium</i> nativo<sup>(25)</sup>.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tambi&eacute;n, se evaluaron siete accesiones de <i>Arachis</i> no&#150;inoculadas usando el m&eacute;todo de abundancia natural de N<sup>15</sup>, sin encontrar diferencias significativas para fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> entre los materiales evaluados, y las cifras oscilaron de 36 % (BRA15121, equivalente a <i>Arachis pintoi</i> CIAT 18748) a 90 % (BRA31128), con 26 y 99 kg N ha<sup>&#150;1</sup>, respectivamente<sup>(22)</sup>. Los autores atribuyeron esta alta variaci&oacute;n como un resultado de las diferentes capacidades de las accesiones evaluadas en relaci&oacute;n con el establecimiento de simbiosis con cepas nativas de <i>Bradyrhizobium</i>, considerando que las plantas no fueron inoculadas al momento de la siembra; como el terreno presentaba un gran n&uacute;mero de leguminosas nativas, se asumi&oacute; que el suelo ten&iacute;a una poblaci&oacute;n estable de <i>Bradyrhizobium</i>. El bajo nivel de N<sub>2</sub> fijado por <i>Arachis pintoi</i> CIAT 18748(22) fue similar al encontrado en este experimento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La selecci&oacute;n de una apropiada planta de referencia constituye todav&iacute;a un dilema, debido a que los resultados no siempre son consistentes<sup>(26)</sup>. Considerando que este experimento se realiz&oacute; en condiciones de invernadero, algunos de los criterios de selecci&oacute;n para plantas de referencia, como es la "zona de enraizamiento", no se pueden aplicar aqu&iacute;, ya que las plantas que crecen en macetas no siempre muestran su verdadera arquitectura radicular, como es la proliferaci&oacute;n de ra&iacute;ces finas o adventicias, y finalmente, un limitado volumen de ra&iacute;ces.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El grado de dependencia en la fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> con la cepa mejorada y usando la leguminosa nonodulante <i>A. hypogaea</i> como planta de referencia fue alta, comparado con un informe de Cadisch <i>et al</i><sup>(24)</sup> quienes no encontraron diferencias al usar A. <i>hypogaea</i> (49 %) o ma&iacute;z (48 %) como plantas de referencia durante el primer a&ntilde;o en un experimento de campo. Estas &uacute;ltimas cifras son similares al dato de 47 % reportado por Peoples <i>et al</i><sup>(23)</sup> usando tambi&eacute;n planta de cacahuate nonodulante. Varios investigadores han informado acerca del uso de gram&iacute;neas forrajeras tropicales como plantas de referencia. En un experimento donde se emple&oacute; <i>B. decumbens</i> y <i>Paspalum plicatulum</i> como plantas de referencia para cuatro especies de <i>Stylosanthes</i>, se encontr&oacute; que las leguminosas fijaron m&aacute;s N<sub>2</sub> con <i>Paspalum plicatulum</i> (80 %) que con <i>B.decumbens</i> (71 %) como planta de referencia<sup>(25)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Considerando que no siempre es posible comparar resultados de fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> obtenidos en invernadero, con aquellos realizados en campo, esto nos lleva a hacer algunas observaciones de experiencias en campo. En esta condici&oacute;n, se evalu&oacute; la respuesta a la inoculaci&oacute;n del ecotipo de <i>Arachis pintoi</i> BRA 031143 (CIAT 22160) con cepas de rhizobio seleccionadas, encontr&aacute;ndose que la cepa <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101 fue inefectiva para esta leguminosa. La pobre respuesta fue atribuida a un alto nivel de N en el suelo<sup>(27)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de N<sub>2</sub> fijado reportados por Soares <i>et al</i><sup>(28)</sup> con <i>A. repens</i> BR 31861 y 31801, <i>A. pintoi</i> 31828 y 31496, fueron menores (70 %) a los aqu&iacute; encontrados. Ellos mencionaron que estas leguminosas tuvieron un mejor desempe&ntilde;o, y destacaron que el 75 % del rendimiento de materia seca producida fue debido al nitr&oacute;geno fijado. Otros autores han mencionado que a altas tasas de fijaci&oacute;n, cuando en las leguminosas los valores de d<sup>15</sup>N son cercanos al 0 &permil;, la metodolog&iacute;a llega a ser relativamente insensible a cambios en los valores de d<sup>15</sup>N en la planta de referencia<sup>(6,29)</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES E IMPLICACIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las tasa de fijaci&oacute;n de N<sub>2</sub> estimadas por el m&eacute;todo de abundancia natural, fueron m&aacute;s que aceptables; aunque el riesgo de errores est&aacute; presente, cuando las plantas de referencia no son las adecuadas para una leguminosa en particular. Los cortes sucesivos confirmaron la idoneidad de <i>Arachis hypogaea</i> como planta de referencia debido a su similar patr&oacute;n de crecimiento y sistema radicular. La cepa mejorada <i>Bradyrhizobium</i> CIAT 3101 fue m&aacute;s eficiente para fijar N<sub>2</sub> que las cepas nativas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">A la Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico (UNAM), y al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACYT) por su apoyo para la realizaci&oacute;n de estos estudios. A Jonathan Fear (Imperial College, Wye, UK) por su apoyo t&eacute;cnico en los an&aacute;lisis de is&oacute;topos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Vera RR. Research in agropastoral systems: Background and strategies. In: Guimaraes, EP Editores. Agropastoral systems for the tropical savannas of Latin America. CIAT publication No. 338. Cali, Colombia. 2004:3&#150;10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123851&pid=S2007-1124201000020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Silva JE da, Resck DVS, Corazza EJ, Vivaldi L. Carbon storage in clayey Oxisol cultivated pastures in the "Cerrado" region, Brazil. Agr Ecosyst Environ 2004;103:357&#150;363.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123853&pid=S2007-1124201000020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Unkovich M, Herridge D, Peoples M, Cadisch G, Boddey R, Giller, K, Alves B, Chalk P. Measuring plant&#150;associated nitrogen fixation in agricultural systems. ACIAR Monograph No. 136, 2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123855&pid=S2007-1124201000020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Sanginga N, Thottappilly G, Dashiell K. Effectiveness of rhizobia nodulating recent promiscuous soyabean selections in the moist savanna of Nigeria. Soil Biol Biochem 2000;32:127&#150;133.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123857&pid=S2007-1124201000020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Giller KE, Cadisch G. Future benefits from biological nitrogen fixation: An ecological approach to agriculture. Plant Soil 1995;174:255&#150;277.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123859&pid=S2007-1124201000020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Unkovich MJ, Pate JS, Sanford P, Armstrong EL. Potential precision of the delta 15N natural abundance method in&#150; field estimates of nitrogen fixation by crop and pasture legumes in South&#150;West Australia. Aust J Agric Res1994;45:119&#150;132.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123861&pid=S2007-1124201000020000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Tessema Z, Baars RMT. Chemical composition, dry matter production and yield dynamics of tropical grasses mixed with perennial forage legumes. Tropical Grasslands 2006;40:150&#150;156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123863&pid=S2007-1124201000020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Castillo&#150;Gallegos E. Improving a native pasture with the legume Arachis pintoi in the humid tropics of M&eacute;xico &#91;Ph.D. Thesis&#93;. Wageningen, Netherlands: Wageningen University; 2003.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123865&pid=S2007-1124201000020000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Ascencio L, Valles B, Castillo E, Jarillo J. Din&aacute;mica de poblaci&oacute;n de plantas de Arachis pintoi CIAT 17434, asociada a gramas nativas en pastoreo, en el tr&oacute;pico h&uacute;medo de M&eacute;xico. T&eacute;c Pecu M&eacute;x 2005;43(2):275&#150;286.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123867&pid=S2007-1124201000020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Castillo GE, Valles B, Mannetje L, Aluja A. Efecto de introducir Arachis pintoi sobre variables del suelo de pasturas de grama nativa del tr&oacute;pico h&uacute;medo mexicano. T&eacute;c Pecu M&eacute;x 2005;43(2):287&#150;295.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123869&pid=S2007-1124201000020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Boddey RM, Peoples MB, Palmer B, Dart PJ. Use of the 15N natural abundance technique to quantify biological nitrogen fixation by woody perennials. Nutr Cycling in Agroecosystems 2000;57:235&#150;270.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123871&pid=S2007-1124201000020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Purcino HMA, Festin PM, Elkan GH. Identification of effective strains of Bradyrhizobium for Arachis pintoi. Trop Agric 2000;77:226&#150;231.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123873&pid=S2007-1124201000020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Thomas RJ. Rhizobium requirements, nitrogen fixation, and nutrient cycling in forage Arachis. In: Kerridge KC, Hardy B editors. Biology and agronomy of forage Arachis pintoi. Cali, Colombia: CIAT publication No.240;1994:84&#150;94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123875&pid=S2007-1124201000020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Pinto PP, Carneiro JA, Vargas MAT, Purcino HA, S&aacute; NMH. Indigenous rhizobia associated with Arachis pintoi in Cerrado soils of Brazil. Pasturas Tropicales (Colombia) 1999;21(2):25&#150;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123877&pid=S2007-1124201000020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Melchor&#150;Marroquin JI, Vargas HJJ, Ferrera CR, Krishnamurthy L. Screening Rhizobium spp strains associated with Gliricidia sepium along an altitudinal transect in Veracruz, Mexico. Agroforestry Systems 1999;46:25&#150;38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123879&pid=S2007-1124201000020000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Castro S, Permigiani M, Vinocur M, Fabra A. Nodulation in peanut (Arachis hypogaea L.) roots in the presence of native and inoculated rhizobia strains.Appl Soil Ecol 1999;13:39&#150;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123881&pid=S2007-1124201000020000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Mendez NJRC, Mayz FJ. Comportamiento simbi&oacute;tica de poblaciones rizobianas nativas de suelos de sabana en Arachis hypogaea L. Rev Fac Agron (LUZ, Venezuela) 2000;17:36&#150;50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123883&pid=S2007-1124201000020000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. GenStat Discovery. GenStat Discovery Edition 3. VSN International, UK. &#91;on line&#93; <a href="http://www.vsni.co.uk/downloads/genstat-discovery/" target="_blank">http://www.vsni.co.uk/downloads/genstat&#150;discovery/</a>. Accessed Feb 22, 2009.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123885&pid=S2007-1124201000020000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Villarreal M, Vargas W. Establecimiento de tres ecotipos de Arachis pintoi utilizando material vegetativo e inoculaci&oacute;n en condiciones del tr&oacute;pico. Reuni&oacute;n Latinoamericana de Rhizobiologia. Santa Cruz, Bolivia. 1996:133&#150;135.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123887&pid=S2007-1124201000020000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Sylvester&#150;Bradley R, Mosquera D, Asakawa NM, Sanchez G. Promiscuity and responses to rhizobial inoculation of Tropical Kudzu (Pueraria phaseoloides). Field Crop Res 1991;27:267&#150; 279.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123889&pid=S2007-1124201000020000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Sierra J, Nygren P. Transfer of N fixed by a legume tree to the associated grass in a tropical silvopastoral system. Soil Biol Biochem 2006;38:1983&#150;1903.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123891&pid=S2007-1124201000020000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Behling&#150;Miranda CH, Vieira A. Cadisch G. Determina&ccedil;&#259;o da fixa&ccedil;&#259;o biol&oacute;gica de nitrog&#281;nio no Amendoim Forrageiro (Arachis spp.) por interm&eacute;dio da abund&acirc;ncia natural de 15N. Rev Bras Zoot 2003;32:1859&#150;1865.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123893&pid=S2007-1124201000020000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Peoples MB, Bell MJ, Bushby HVA. Effect of rotation and inoculation with Bradyrhizobium on nitrogen fixation and yield of peanut (Arachis hypogaea L, Cv Virginia Bunch). Aust J Agric Res 1992;43:595&#150;607.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123895&pid=S2007-1124201000020000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Cadisch G, Hairiah K, Giller KE. Applicability of the natural 15N abundance technique to measure N2 fixation in Arachis hypogaea grown on an Ultisol. Neth J Agric Sci 2000;48(1):31&#150;45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123897&pid=S2007-1124201000020000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Behling&#150;Miranda CH, Fernandes CD, Cadisch G. Quantifying the nitrogen fixed by Stylosanthes. Pasturas Tropicales (Colombia) 1999;21(1):64&#150;69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123899&pid=S2007-1124201000020000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Chalk PM, Ladha JK. Estimation of legume symbiotic dependence: an evaluation of techniques based on 15N dilution. Soil Biol Biochem 1999;31:1901 1917.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123901&pid=S2007-1124201000020000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Purcino HMA, Sa NMH, Viana MCM, Scotti MR, Mendes IC, Vargas MAT. Response of Arachis pintoi to inoculation with selected rhizobia strains in Brazilian Cerrado soils under field conditions. Pasturas Tropicales (Colombia) 2003;25(2): 26&#150;29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123903&pid=S2007-1124201000020000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Soares PG, Silva de Resende A, Urquiaga S, Campello EFC, Franco AA. Estabelecimento, produ&ccedil;&#259;o de fitomassa, ac&uacute;mulo de macronutrientes e estimativa da fixa&ccedil;&#259;o biol&oacute;gica de nitrog&#281;nio em Arachis. Pasturas Tropicales (Colombia) 2006;28(2):18&#150;25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123905&pid=S2007-1124201000020000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Danso SKA, Hardarson G, Zapata F. Misconceptions and practical problems in the use of 15N soil enrichment techniques for estimating N2 fixation. Plant Soil 1993;152:25&#150;52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8123907&pid=S2007-1124201000020000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Vera]]></surname>
<given-names><![CDATA[RR]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Research in agropastoral systems: Background and strategies]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Guimaraes]]></surname>
<given-names><![CDATA[EP]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Agropastoral systems for the tropical savannas of Latin America]]></source>
<year>2004</year>
<page-range>3-10</page-range><publisher-loc><![CDATA[Cali ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Silva]]></surname>
<given-names><![CDATA[JE da]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Resck]]></surname>
<given-names><![CDATA[DVS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Corazza]]></surname>
<given-names><![CDATA[EJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vivaldi]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Carbon storage in clayey Oxisol cultivated pastures in the "Cerrado" region, Brazil]]></article-title>
<source><![CDATA[Agr Ecosyst Environ]]></source>
<year>2004</year>
<volume>103</volume>
<page-range>357-363</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Unkovich]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Herridge]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Peoples]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cadisch]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Boddey]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Giller]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Alves]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Chalk]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Measuring plant-associated nitrogen fixation in agricultural systems]]></source>
<year>2008</year>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sanginga]]></surname>
<given-names><![CDATA[N]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Thottappilly]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dashiell]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effectiveness of rhizobia nodulating recent promiscuous soyabean selections in the moist savanna of Nigeria]]></article-title>
<source><![CDATA[Soil Biol Biochem]]></source>
<year>2000</year>
<volume>32</volume>
<page-range>127-133</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Giller]]></surname>
<given-names><![CDATA[KE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cadisch]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Future benefits from biological nitrogen fixation: An ecological approach to agriculture]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Soil]]></source>
<year>1995</year>
<volume>174</volume>
<page-range>255-277</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Unkovich]]></surname>
<given-names><![CDATA[MJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Pate]]></surname>
<given-names><![CDATA[JS]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sanford]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Armstrong]]></surname>
<given-names><![CDATA[EL]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Potential precision of the delta 15N natural abundance method in- field estimates of nitrogen fixation by crop and pasture legumes in South-West Australia]]></article-title>
<source><![CDATA[Aust J Agric Res]]></source>
<year>1994</year>
<volume>45</volume>
<page-range>119-132</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B7">
<label>7</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Tessema]]></surname>
<given-names><![CDATA[Z]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Baars]]></surname>
<given-names><![CDATA[RMT]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Chemical composition, dry matter production and yield dynamics of tropical grasses mixed with perennial forage legumes]]></article-title>
<source><![CDATA[Tropical Grasslands]]></source>
<year>2006</year>
<volume>40</volume>
<page-range>150-156</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B8">
<label>8</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Castillo-Gallegos]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Improving a native pasture with the legume Arachis pintoi in the humid tropics of México]]></source>
<year></year>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B9">
<label>9</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Ascencio]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Valles]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Castillo]]></surname>
<given-names><![CDATA[E]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Jarillo]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Dinámica de población de plantas de Arachis pintoi CIAT 17434, asociada a gramas nativas en pastoreo, en el trópico húmedo de México]]></article-title>
<source><![CDATA[Téc Pecu Méx]]></source>
<year>2005</year>
<volume>43</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>275-286</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B10">
<label>10</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Castillo]]></surname>
<given-names><![CDATA[GE]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Valles]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mannetje]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Aluja]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de introducir Arachis pintoi sobre variables del suelo de pasturas de grama nativa del trópico húmedo mexicano]]></article-title>
<source><![CDATA[Téc Pecu Méx]]></source>
<year>2005</year>
<volume>43</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>287-295</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B11">
<label>11</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Boddey]]></surname>
<given-names><![CDATA[RM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Peoples]]></surname>
<given-names><![CDATA[MB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Palmer]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dart]]></surname>
<given-names><![CDATA[PJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Use of the 15N natural abundance technique to quantify biological nitrogen fixation by woody perennials]]></article-title>
<source><![CDATA[Nutr Cycling in Agroecosystems]]></source>
<year>2000</year>
<volume>57</volume>
<page-range>235-270</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B12">
<label>12</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Purcino]]></surname>
<given-names><![CDATA[HMA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Festin]]></surname>
<given-names><![CDATA[PM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Elkan]]></surname>
<given-names><![CDATA[GH]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Identification of effective strains of Bradyrhizobium for Arachis pintoi]]></article-title>
<source><![CDATA[Trop Agric]]></source>
<year>2000</year>
<volume>77</volume>
<page-range>226-231</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B13">
<label>13</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Thomas]]></surname>
<given-names><![CDATA[RJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Rhizobium requirements, nitrogen fixation, and nutrient cycling in forage Arachis]]></article-title>
<person-group person-group-type="editor">
<name>
<surname><![CDATA[Kerridge]]></surname>
<given-names><![CDATA[KC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hardy]]></surname>
<given-names><![CDATA[B]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Biology and agronomy of forage Arachis pintoi]]></source>
<year>1994</year>
<page-range>84-94</page-range><publisher-loc><![CDATA[Cali ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B14">
<label>14</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Pinto]]></surname>
<given-names><![CDATA[PP]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Carneiro]]></surname>
<given-names><![CDATA[JA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vargas]]></surname>
<given-names><![CDATA[MAT]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Purcino]]></surname>
<given-names><![CDATA[HA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sá]]></surname>
<given-names><![CDATA[NMH]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Indigenous rhizobia associated with Arachis pintoi in Cerrado soils of Brazil]]></article-title>
<source><![CDATA[Pasturas Tropicales (Colombia)]]></source>
<year>1999</year>
<volume>21</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>25-28</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B15">
<label>15</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Melchor-Marroquin]]></surname>
<given-names><![CDATA[JI]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vargas]]></surname>
<given-names><![CDATA[HJJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ferrera]]></surname>
<given-names><![CDATA[CR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Krishnamurthy]]></surname>
<given-names><![CDATA[L]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Screening Rhizobium spp strains associated with Gliricidia sepium along an altitudinal transect in Veracruz, Mexico]]></article-title>
<source><![CDATA[Agroforestry Systems]]></source>
<year>1999</year>
<volume>46</volume>
<page-range>25-38</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B16">
<label>16</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Castro]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Permigiani]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vinocur]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fabra]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Nodulation in peanut (Arachis hypogaea L.) roots in the presence of native and inoculated rhizobia strains]]></article-title>
<source><![CDATA[Appl Soil Ecol]]></source>
<year>1999</year>
<volume>13</volume>
<page-range>39-44</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B17">
<label>17</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Mendez]]></surname>
<given-names><![CDATA[NJRC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mayz]]></surname>
<given-names><![CDATA[FJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Comportamiento simbiótica de poblaciones rizobianas nativas de suelos de sabana en Arachis hypogaea L]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Fac Agron (LUZ, Venezuela)]]></source>
<year>2000</year>
<volume>17</volume>
<page-range>36-50</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B18">
<label>18</label><nlm-citation citation-type="book">
<collab>GenStat Discovery</collab>
<source><![CDATA[GenStat Discovery Edition 3]]></source>
<year></year>
<publisher-name><![CDATA[VSN International]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B19">
<label>19</label><nlm-citation citation-type="">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Villarreal]]></surname>
<given-names><![CDATA[M]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vargas]]></surname>
<given-names><![CDATA[W]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Establecimiento de tres ecotipos de Arachis pintoi utilizando material vegetativo e inoculación en condiciones del trópico. Reunión Latinoamericana de Rhizobiologia]]></source>
<year>1996</year>
<page-range>133-135</page-range><publisher-loc><![CDATA[Santa Cruz ]]></publisher-loc>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B20">
<label>20</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sylvester-Bradley]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mosquera]]></surname>
<given-names><![CDATA[D]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Asakawa]]></surname>
<given-names><![CDATA[NM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sanchez]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Promiscuity and responses to rhizobial inoculation of Tropical Kudzu (Pueraria phaseoloides)]]></article-title>
<source><![CDATA[Field Crop Res]]></source>
<year>1991</year>
<volume>27</volume>
<page-range>267- 279</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B21">
<label>21</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Sierra]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Nygren]]></surname>
<given-names><![CDATA[P]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Transfer of N fixed by a legume tree to the associated grass in a tropical silvopastoral system]]></article-title>
<source><![CDATA[Soil Biol Biochem]]></source>
<year>2006</year>
<volume>38</volume>
<page-range>1983-1903</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B22">
<label>22</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Behling-Miranda]]></surname>
<given-names><![CDATA[CH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vieira]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cadisch]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Determinaç&#259;o da fixaç&#259;o biológica de nitrog&#281;nio no Amendoim Forrageiro (Arachis spp.) por intermédio da abundância natural de 15N]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev Bras Zoot]]></source>
<year>2003</year>
<volume>32</volume>
<page-range>1859-1865</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B23">
<label>23</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Peoples]]></surname>
<given-names><![CDATA[MB]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bell]]></surname>
<given-names><![CDATA[MJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Bushby]]></surname>
<given-names><![CDATA[HVA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of rotation and inoculation with Bradyrhizobium on nitrogen fixation and yield of peanut (Arachis hypogaea L, Cv Virginia Bunch)]]></article-title>
<source><![CDATA[Aust J Agric Res]]></source>
<year>1992</year>
<volume>43</volume>
<page-range>595-607</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B24">
<label>24</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cadisch]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hairiah]]></surname>
<given-names><![CDATA[K]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Giller]]></surname>
<given-names><![CDATA[KE]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Applicability of the natural 15N abundance technique to measure N2 fixation in Arachis hypogaea grown on an Ultisol]]></article-title>
<source><![CDATA[Neth J Agric Sci]]></source>
<year>2000</year>
<volume>48</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>31-45</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B25">
<label>25</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Behling-Miranda]]></surname>
<given-names><![CDATA[CH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fernandes]]></surname>
<given-names><![CDATA[CD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Cadisch]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Quantifying the nitrogen fixed by Stylosanthes]]></article-title>
<source><![CDATA[Pasturas Tropicales (Colombia)]]></source>
<year>1999</year>
<volume>21</volume>
<numero>1</numero>
<issue>1</issue>
<page-range>64-69</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B26">
<label>26</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Chalk]]></surname>
<given-names><![CDATA[PM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Ladha]]></surname>
<given-names><![CDATA[JK]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Estimation of legume symbiotic dependence: an evaluation of techniques based on 15N dilution]]></article-title>
<source><![CDATA[Soil Biol Biochem]]></source>
<year>1999</year>
<volume>31</volume>
<page-range>1901 1917</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B27">
<label>27</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Purcino]]></surname>
<given-names><![CDATA[HMA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sa]]></surname>
<given-names><![CDATA[NMH]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Viana]]></surname>
<given-names><![CDATA[MCM]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Scotti]]></surname>
<given-names><![CDATA[MR]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Mendes]]></surname>
<given-names><![CDATA[IC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Vargas]]></surname>
<given-names><![CDATA[MAT]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Response of Arachis pintoi to inoculation with selected rhizobia strains in Brazilian Cerrado soils under field conditions]]></article-title>
<source><![CDATA[Pasturas Tropicales (Colombia)]]></source>
<year>2003</year>
<volume>25</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>26-29</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B28">
<label>28</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Soares]]></surname>
<given-names><![CDATA[PG]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Silva de Resende]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Urquiaga]]></surname>
<given-names><![CDATA[S]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Campello]]></surname>
<given-names><![CDATA[EFC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Franco]]></surname>
<given-names><![CDATA[AA]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Estabelecimento, produç&#259;o de fitomassa, acúmulo de macronutrientes e estimativa da fixaç&#259;o biológica de nitrog&#281;nio em Arachis]]></article-title>
<source><![CDATA[Pasturas Tropicales (Colombia)]]></source>
<year>2006</year>
<volume>28</volume>
<numero>2</numero>
<issue>2</issue>
<page-range>18-25</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B29">
<label>29</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Danso]]></surname>
<given-names><![CDATA[SKA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Hardarson]]></surname>
<given-names><![CDATA[G]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Zapata]]></surname>
<given-names><![CDATA[F]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Misconceptions and practical problems in the use of 15N soil enrichment techniques for estimating N2 fixation]]></article-title>
<source><![CDATA[Plant Soil]]></source>
<year>1993</year>
<volume>152</volume>
<page-range>25-52</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
