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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In Mexico some tomato growing regions like northwest have salinity problems. This problem also occurs under greenhouse conditions when nutrition and irrigation management are done improperly, this is exacerbated when heavy water is used for irrigation. Salinity affects tomato crops, so having tolerant materials to such conditions would be of great benefit. Mexico is rich in genetic diversity of this species, same that can be used to search for sources tolerant to salinity. The objectives of the study were to evaluate the physiological behavior of 34 populations of native tomatoes from Puebla and Veracruz and two commercial controls under saline conditions using five concentrations of sodium chloride (0, 0.25, 0.5, 0.75 and 1%), in order to identify outstanding germplasm tolerant to salinity in the germination stage. The experiment was performed at the Laboratory of seeds from the Postgraduate College in Agricultural Sciences in 2013. The evaluated variables were: germination percentage, germination rate, aerial dry matter and root dry matter. The results indicate that the seed vigor was negatively affected in 100% of the collections, germination in 78% and development of morphological structures of seedling as root, hypocotyl and cotyledons, the negative effect was 33%. Of the 36 genotypes tested, eight collections showed different degrees of tolerance. These populations can be used as potential sources for breeding.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Diversidad de poblaciones nativas de jitomate para</b> <b>germinaci&oacute;n en condiciones salinas*</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Diversity of native populations for germination of tomato under saline conditions</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Victoria Estrada&#45;Trejo<sup lang="es&#45;ES">1</sup>, Ricardo Lobato&#45;Ortiz<sup lang="es&#45;ES">1&sect;</sup>, Gabino Garc&iacute;a&#45;de los Santos<sup lang="es&#45;ES">1</sup>, Guillermo Carrillo&#45;Casta&ntilde;eda<sup lang="es&#45;ES">1</sup>, Fernando Castillo&#45;Gonz&aacute;lez<sup lang="es&#45;ES">1</sup>, Efra&iacute;n Contreras&#45;Maga&ntilde;a<sup lang="es&#45;ES">2</sup>, Oscar Javier Ayala&#45;Garay<sup lang="es&#45;ES">1</sup>, Micaela De la O Olan<sup lang="es&#45;ES">1</sup> y Alberto Artola Mercadal<sup lang="es&#45;ES">1</sup></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup lang="es&#45;ES"><i>1</i></sup> <i>Producci&oacute;n de Semillas&#45;Colegio de Postgraduados. Carretera M&eacute;xico&#45;Texcoco km. 36.5, Montecillo, Texcoco 56230, Estado de M&eacute;xico. Tel: 01 (595) 9520200. Ext. 1534, 1560, 1541, 1535, 1594.</i> (<a href="mailto:trejovic@hotmail.com">trejovic@hotmail.com</a>; <a href="mailto:garciag@colpos.mx">garciag@colpos.mx</a>; <a href="mailto:carrillo@colpos.mx">carrillo@colpos.mx</a>; <a href="mailto:fcastill@colpos.mx">fcastill@colpos.mx</a>; <a href="mailto:oayala@colpos.mx">oayala@colpos.mx</a>).<sup lang="es&#45;ES"> &sect;</sup>Autor para correspondencia: <a href="mailto:rlobato@colpos.mx">rlobato@colpos.mx</a>.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup lang="es&#45;ES"><i>2</i></sup> <i>Departamento de Fitotecnia&#45;Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Carretera M&eacute;xico&#45;Texcoco, km 38.5. 56230, Chapingo, Estado de M&eacute;xico. Tel: 01 (595) 9521500. Ext. 6265.</i> (<a href="mailto:cmefrain@yahoo.com">cmefrain@yahoo.com</a>).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: octubre de 2013    <br> 	Aceptado: julio de 2014</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico algunas regiones productoras de jitomate a campo abierto como el noroeste presentan problemas de salinidad. Este problema tambi&eacute;n se presenta en condiciones de invernadero cuando la nutrici&oacute;n y el manejo del riego se hacen de manera inapropiada, esto se agrava cuando se usan aguas pesadas para riego. La salinidad afecta al cultivo del jitomate, por lo que tener materiales tolerantes a esas condiciones ser&iacute;a de gran beneficio. M&eacute;xico es rico en diversidad gen&eacute;tica de esta especie, misma que puede ser utilizada para buscar fuentes de tolerancia a la salinidad. Los objetivos del trabajo fueron evaluar el comportamiento fisiol&oacute;gico de 34 poblaciones de jitomate nativas de Puebla y Veracruz y dos testigos comerciales bajo condiciones salinas usando cinco concentraciones de cloruro de sodio (0, 0.25, 0.5, 0.75 y 1.0 %), con la finalidad de identificar germoplasma sobresaliente que tolere la salinidad en la etapa de germinaci&oacute;n. El experimento se realiz&oacute; en el Laboratorio de semillas del Colegio de Postgraduados en Ciencias Agr&iacute;colas en 2013. Las variables evaluadas fueron: porcentaje de germinaci&oacute;n, velocidad de germinaci&oacute;n, materia seca a&eacute;rea y materia seca de ra&iacute;z. Los resultados indican que el vigor de las semillas fue afectado de manera negativa en 100% de las colectas, la germinaci&oacute;n en 78% y el desarrollo de las estructuras morfol&oacute;gicas de pl&aacute;ntula como ra&iacute;z, hip&oacute;cotilo y cotiledones, el efecto negativo fue de un 33 %. De los 36 genotipos probados, ocho colectas presentaron diferentes grados de tolerancia. Estas poblaciones pueden ser utilizadas como fuentes potenciales para el mejoramiento gen&eacute;tico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Solanum lycopersicum</i> L., cloruro de sodio, salinidad, germinaci&oacute;n.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">In Mexico some tomato growing regions like northwest have salinity problems. This problem also occurs under greenhouse conditions when nutrition and irrigation management are done improperly, this is exacerbated when heavy water is used for irrigation. Salinity affects tomato crops, so having tolerant materials to such conditions would be of great benefit. Mexico is rich in genetic diversity of this species, same that can be used to search for sources tolerant to salinity. The objectives of the study were to evaluate the physiological behavior of 34 populations of native tomatoes from Puebla and Veracruz and two commercial controls under saline conditions using five concentrations of sodium chloride (0, 0.25, 0.5, 0.75 and 1%), in order to identify outstanding germplasm tolerant to salinity in the germination stage. The experiment was performed at the Laboratory of seeds from the Postgraduate College in Agricultural Sciences in 2013. The evaluated variables were: germination percentage, germination rate, aerial dry matter and root dry matter. The results indicate that the seed vigor was negatively affected in 100% of the collections, germination in 78% and development of morphological structures of seedling as root, hypocotyl and cotyledons, the negative effect was 33%. Of the 36 genotypes tested, eight collections showed different degrees of tolerance. These populations can be used as potential sources for breeding.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords</b>: <i>Solanum lycopersicum</i> L., sodium chloride, salinity, germination.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La superficie de la rep&uacute;blica mexicana es de aproximadamente 200 millones de hect&aacute;reas y se destina a la agricultura aproximadamente 21 millones de hect&aacute;reas (10.5% del territorio nacional), de toda esta superficie 6.5 millones de hect&aacute;reas son de riego y 14.5 de temporal (CONAGUA, 2008). Del total de esta superficie irrigada se estima que entre 15% (970, 000 ha) y 21% (1 300 000 ha) del &aacute;rea est&aacute; afectada por exceso de sales (De la Pe&ntilde;a, 1993; Feuchter, 2000), lo cual es un problema serio en varias zonas de riego del pa&iacute;s que afecta a cultivos diversos, dentro de los cuales se encuentra el cultivo del jitomate. La probabilidad de encontrar variaci&oacute;n gen&eacute;tica para tolerancia a salinidad en esta especie es alta, ya que M&eacute;xico es considerado centro de domesticaci&oacute;n y de diversidad secundaria de la especie (Jenkins, 1948) y se encuentra distribuido en casi todo el territorio la variedad <i>cerasiforme</i> en su forma silvestre (Ch&aacute;vez&#45;Servia <i>et</i> <i>al</i>., 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El jitomate en M&eacute;xico es cultivado en zonas de riego, donde hay problemas de salinidad, por lo que tener materiales tolerantes a este estr&eacute;s abi&oacute;tico es fundamental para poderlo cultivar en estas zonas. Los principales estados productores de la especie son Sinaloa, Baja California, Michoac&aacute;n, Jalisco, San Luis Potos&iacute;, Baja California Sur, Quer&eacute;taro y Estado de M&eacute;xico (SAGARPA, 2010). En algunas regiones productoras de jitomate como Sinaloa, Baja California, Michoac&aacute;n y San Luis Potos&iacute; presentan problemas de salinidad (Ortega, 1991).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor&iacute;a de los cultivares comerciales de jitomate presentan una sensibilidad moderada a este problema, en todas las etapas de desarrollo de la planta incluida la germinaci&oacute;n, el desarrollo vegetativo y la reproducci&oacute;n. Esto trae como consecuencia una reducci&oacute;n significativa del rendimiento cuando es cultivado bajo estr&eacute;s salino (Bolar&iacute;n <i>et al</i>., 1993). Se han logrado avances en el desarrollo de cultivares de jitomate tolerantes a la salinidad mediante el mejoramiento convencional, con el uso de parientes silvestres como fuentes de genes para conferir tolerancia al problema (Ashraf, 1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tolerancia en alguna etapa del desarrollo de las plantas, generalmente no est&aacute; relacionada con la tolerancia de las otras, las etapas ontog&eacute;nicas espec&iacute;ficas como la germinaci&oacute;n, emergencia, desarrollo vegetativo y reproductivo deben ser evaluadas de manera separada, para identificar, caracterizar y utilizar los recursos gen&eacute;ticos con tolerancia a dicho estr&eacute;s (Foolad, 1999). En la germinaci&oacute;n de la semilla participan diferentes factores ambientales y el potencial gen&eacute;tico de la misma de todo esto en conjunto depender&aacute; su sobrevivencia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anat&oacute;micamente la semilla de jitomate est&aacute; cubierta por una testa, que encierra un embri&oacute;n curvo filiforme y un endospermo que pr&aacute;cticamente llena el lumen (Esau, 1953). Para que se lleve a cabo la germinaci&oacute;n, la fuerza de la extensi&oacute;n hidr&aacute;ulica del embri&oacute;n debe superar la fuerza de oposici&oacute;n de la cubierta de la semilla y los tejidos vivos del endospermo (Groot y Karsen, 1987). Liptay y Schopfer (1983) plantearon que el genotipo del embri&oacute;n, desempe&ntilde;a un papel importante en la determinaci&oacute;n del tiempo de germinaci&oacute;n del jitomate bajo condiciones de estr&eacute;s y &oacute;ptimas. Las diferencias que muestran las semillas de jitomate en su sensibilidad a las sales durante la germinaci&oacute;n reside en el potencial osm&oacute;tico o potencial de presi&oacute;n del embri&oacute;n germinando. Sin embargo, el estr&eacute;s osm&oacute;tico puede afectar negativamente la imbibici&oacute;n de la semilla; por lo tanto, retarda o debilita las fuerzas restrictivas del endospermo y la cubierta de la semilla y como resultado se reduce o inhibe la germinaci&oacute;n (Dahal <i>et al</i>., 1990). Los objetivos de este trabajo fueron evaluar el comportamiento fisiol&oacute;gico de 34 poblaciones nativas y dos testigos comerciales en cinco concentraciones salinas mediante la prueba de germinaci&oacute;n e identificar germoplasma mexicano tolerante a la salinidad.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material gen&eacute;tico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El material gen&eacute;tico estuvo constituido por 34 poblaciones provenientes de los estados de Puebla y Veracruz m&aacute;s dos testigos comerciales (Sun&#45;7705 y Super Sweet&#45;100).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar la tolerancia a la salinidad de las poblaciones se us&oacute; la prueba de germinaci&oacute;n con una soluci&oacute;n salina de NaCl a diferentes concentraciones en 2013. El experimento se desarroll&oacute; en el laboratorio de An&aacute;lisis de Semillas del Colegio de Postgraduados en Ciencias Agr&iacute;colas. Las concentraciones salinas empleadas en la prueba de germinaci&oacute;n fueron: 0%, 0.25% (42 mM), 0.5% (86 mM), 0.75% (128 mM) y 1% (171 mM) de NaCl. El experimento consisti&oacute; en un arreglo factorial de 36 * 5 tratamientos, con un dise&ntilde;o experimental completamente al azar con tres repeticiones. Cada unidad experimental estuvo compuesta de 50 semillas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las semillas fueron germinadas en cajas Petri con sanitas, a cada caja se le a&ntilde;adi&oacute; cuatro mL de soluci&oacute;n; posteriormente las cajas fueron colocadas en una c&aacute;mara artificial con humedad relativa de 87% y temperatura de 25 <sup>o</sup>C. Las c&aacute;maras artificiales fueron colocadas en una c&aacute;mara de germinaci&oacute;n a 26 <sup>o</sup>C y 50% de humedad relativa con luz fluorescente. A cada una de las soluciones, en una muestra de 30 mL, se les midi&oacute; la conductividad el&eacute;ctrica (CE) con un puente de conductividad MODEL 31 CONDUTIVITY BRIDGE.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Variables evaluadas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; la germinaci&oacute;n diaria, materia seca a&eacute;rea y materia seca de ra&iacute;z. La germinaci&oacute;n se contabiliz&oacute; cada 24 h durante 14 d&iacute;as. Se consider&oacute; a una semilla germinada cuando hab&iacute;a ocurrido la protusi&oacute;n de la rad&iacute;cula y &eacute;sta tuviera una longitud mayor o igual de 3 mm. Para las variables materia seca a&eacute;rea y de ra&iacute;z se tomaron 10 pl&aacute;ntulas al azar de cada repetici&oacute;n, se separ&oacute; la ra&iacute;z de la parte a&eacute;rea y se dejaron a secar en una estufa a una temperatura de 70 <sup>o</sup>C hasta peso constante, luego su peso fue tomado en una b&aacute;scula y registrado. Con los datos de las variables porcentaje de germinaci&oacute;n (G), materia seca a&eacute;rea (MSA) y materia seca de la ra&iacute;z (MSR) se hicieron an&aacute;lisis de varianza y de regresi&oacute;n lineal con el paquete estad&iacute;stico SAS (SAS; 2002). La variable velocidad de geminaci&oacute;n (VG) se obtuvo mediante la f&oacute;rmula <img src="/img/revistas/remexca/v5n6/a13vg.jpg" align="middle"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Donde: VG= velocidad de germinaci&oacute;n; X<sub>i</sub>= n&uacute;mero de semillas por d&iacute;a; y N<sub>i</sub>= n&uacute;mero de d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La velocidad de germinaci&oacute;n (VG) es una manera de evaluar el vigor de la semilla (Maguire, 1962).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Respuesta a las concentraciones de cloruro de sodio</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del an&aacute;lisis de varianzas de la regresi&oacute;n lineal mostraron que hubo un efecto de las concentraciones de cloruro de sodio en la germinaci&oacute;n altamente significativo para 14% del germoplasma evaluado (cinco genotipos) y significativo para 64% (22 colectas y Sun&#45;7705) (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Lo anterior indica que 22% del material gen&eacute;tico en estudio mostr&oacute; tolerancia a la salinidad durante la prueba de germinaci&oacute;n. Para la velocidad de germinaci&oacute;n, el efecto fue altamente significativo en 83% de las poblaciones que equivale a 28 genotipos nativos y los dos h&iacute;bridos testigos, y significativo 17% (siete genotipos) (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lo anterior indica que mientras el vigor fue afectado 100% del material gen&eacute;tico en estudio, la germinaci&oacute;n lo fue 78%. Este resultado se debe que el vigor de la semilla es un rasgo muy complejo en comparaci&oacute;n con la germinaci&oacute;n est&aacute;ndar que es una sola caracter&iacute;stica medible. El vigor es un concepto que describe varias caracter&iacute;sticas asociadas con el funcionamiento de los lotes o poblaciones de semillas. Adem&aacute;s, el vigor puede reflejar cambios directos con relaci&oacute;n a la velocidad y totalidad de la germinaci&oacute;n, as&iacute; como la tolerancia al estr&eacute;s ambiental o la capacidad de las pl&aacute;ntulas de superarlo. Tambi&eacute;n el vigor proporciona informaci&oacute;n adicional sobre la velocidad y uniformidad del crecimiento de las pl&aacute;ntulas y su capacidad de establecerse en un rango amplio de condiciones ambientales (Tekrony, 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En lo referente al desarrollo de las estructuras morfol&oacute;gicas, el efecto en la materia seca a&eacute;rea fue altamente significativo para 2% de las poblaciones (genotipo 17); significativo para 31% (10 genotipos y el Super Sweet&#45;100) y no significativo en 67% del material gen&eacute;tico en estudio (23 genotipos y Sun&#45;7705) (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). En el caso de materia seca de ra&iacute;z, dicho efecto fue altamente significativo en 2% (poblaci&oacute;n 52); significativo en 31% (11 genotipos) y no significativo 67% del germoplasma evaluado (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>). De manera global se observa que 33% de las poblaciones se afect&oacute; negativamente el desarrollo de las estructuras como hipoc&oacute;tilo, cotiledones y ra&iacute;z con las diferentes concentraciones de cloruro de sodio, mientras 67% de los 36 genotipos no fueron afectados por salinidad, lo cual indica que existi&oacute; suficiente variabilidad gen&eacute;tica en tolerancia a este estr&eacute;s abi&oacute;tico en estas caracter&iacute;sticas en el germoplasma evaluado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De los 36 materiales gen&eacute;ticos estudiados bajo salinidad, los genotipos 14, 38, 41 y 92 no fueron afectados de manera significativa en la germinaci&oacute;n, as&iacute; como tampoco en el desarrollo de las estructuras morfol&oacute;gicas, pero si se afect&oacute; su velocidad de germinaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). La tolerancia a la salinidad de las semillas en el proceso de germinaci&oacute;n es una medida de la habilidad de &eacute;stas para soportar los efectos de altas concentraciones de sales solubles en el medio. La presencia de sales en el medio disminuye el potencial h&iacute;drico, provocando una menor disponibilidad de agua para las semillas, de manera que &eacute;stas deben generar suficiente potencial osm&oacute;tico para mejorar el estatus h&iacute;drico de los embriones y permitir su crecimiento (Jones, 1986). Tambi&eacute;n es notorio que la mayor&iacute;a de las poblaciones fueron afectadas en diferentes niveles, esto puede deberse a los l&iacute;mites m&aacute;ximos de tolerancia a la salinidad en la germinaci&oacute;n del germoplasma diverso utilizado, ya que la tolerancia a la salinidad est&aacute; en funci&oacute;n de los genotipos y la variabilidad en su respuesta (Cuartero y Fern&aacute;ndez&#45;Mu&ntilde;oz, 1999).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estimaci&oacute;n de par&aacute;metros de regresi&oacute;n lineal simple para 36 poblaciones de jitomate bajo condiciones salinas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las ecuaciones de regresi&oacute;n lineal Y= &#946;0 + &#946;1 (X) para las variables germinaci&oacute;n (G), velocidad de germinaci&oacute;n (VG), materia seca a&eacute;rea (MSA) y materia seca de ra&iacute;z (MSR), permiten estimar el efecto que producen las diferentes concentraciones (0, 0.25, 0.5, 0.75, 1%) del cloruro de sodio en el germoplasma en estudio. En general en las cinco variables, la pendiente de la l&iacute;nea recta (&#946;1) es negativa para cada una de las variables en cada una de los 36 genotipos (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c1.jpg" target="_blank">Cuadros 1</a>, <a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c2.jpg" target="_blank">2</a>, <a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c3.jpg" target="_blank">3</a> y <a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c4.jpg" target="_blank">4</a>); es decir, que las diferentes concentraciones de cloruro de sodio afectan de manera negativa la germinaci&oacute;n, el vigor de semilla as&iacute; como el desarrollo de las estructuras de la pl&aacute;ntula evaluadas a trav&eacute;s de materia seca a&eacute;rea y de ra&iacute;z.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sin embargo, el efecto negativo fue diferente en cada una de los 36 genotipos, ya que los intervalos en cada una de las variables fue de la siguiente manera: el valor de &#946;1 para porcentaje de germinaci&oacute;n vari&oacute; de &#45;34.9 a &#45;116.8 (Pob. 22 y Pob. 20, respectivamente), para la velocidad de germinaci&oacute;n fue de &#45;11.48 a &#45;21.16 (Pob. 64 y Pob. 86, respectivamente), para la materia seca a&eacute;rea el rango fue de &#45;3.86 a &#45;20.23 (Pob. 53 y el h&iacute;brido Sun 7705, respectivamente) y para materia seca de ra&iacute;z fue de &#45;0.81 a &#45;3.49 (Pob. 92 y Sun 7705, respectivamente) (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>). En este sentido, Fageria <i>et al.</i> (2012) indican que los efectos negativos de la salinidad en la agricultura influyen en el desarrollo, crecimiento y el rendimiento de los cultivos y t&iacute;picamente, la disminuci&oacute;n del desarrollo de las plantas se produce de manera lineal, una vez que ha alcanzado el valor del umbral de la salinidad.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los tratamientos de las diferentes concentraciones de cloruro de sodio afectaron de manera significativa las variables evaluadas en las 36 poblaciones. Para las variables porcentaje de germinaci&oacute;n y materia seca de ra&iacute;z, la concentraci&oacute;n 0% no present&oacute; diferencias significativas comparada con la concentraci&oacute;n al 0.25%, mientras que con respecto a las otras tres concentraciones, s&iacute; mostraron diferencias significativas y un efecto negativo para estos caracteres (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c5.jpg" target="_blank">Cuadro 5</a>). Para velocidad de germinaci&oacute;n hubo diferencias significativas en los cinco tratamientos. Para la materia seca a&eacute;rea hubo diferencias significativas para las concentraciones de 0 y 0.25% y ambas fueron similares con la concentraci&oacute;n de 0.5%. La concentraci&oacute;n de 0.25% desarroll&oacute; mayor cantidad de materia seca a&eacute;rea. En el caso de los otros dos tratamientos (0.75 y 1%), el efecto negativo de las sales fue tan dr&aacute;stico que no se desarrollaron los hipoc&oacute;tilos, ni los cotiledones, por lo que no se contabiliz&oacute; la variable.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La variable materia seca de ra&iacute;z no mostr&oacute; diferencias significativas para las concentraciones de 0, 0.25 y 0.5%, pero las concentraciones de 0.75 y 1% si fueron significativamente diferentes. Estos resultados podr&iacute;an deberse a que condiciones de estr&eacute;s por salinidad, originan un d&eacute;ficit h&iacute;drico en la planta y obligan a que se sacrifique la acumulaci&oacute;n de biomasa de la parte a&eacute;rea y se deposite en la ra&iacute;z, con el fin de que este &oacute;rgano aumente su tama&ntilde;o y pueda explorar el suelo para hallar condiciones favorables (Casierra&#45;Posada y Rodr&iacute;guez, 2006). Las plantas en condiciones salinas establecen un balance energ&eacute;tico que consiste en una adaptaci&oacute;n osm&oacute;tica de sus c&eacute;lulas para seguir absorbiendo agua y este proceso requiere de mayor consumo de energ&iacute;a lo cual se hace a costa de un menor crecimiento (Berstein, 1961), afectando el crecimiento de forma irreversible, ya que las sales afectan la divisi&oacute;n celular y esto conlleva a un engrosamiento prematuro de la paredes celulares (Aceves, 1971).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De manera general se observ&oacute; que los 36 genotipos evaluados son afectados de forma negativa en la calidad fisiol&oacute;gica (germinaci&oacute;n y vigor), as&iacute; como en el desarrollo de las estructuras de la pl&aacute;ntula. De hecho, el efecto negativo de las sales en el crecimiento de las ra&iacute;ces en jitomate parece ser menos afectado en comparaci&oacute;n con el tallo (hip&oacute;cotilo) (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Hamed <i>et al</i>. (2011), encontraron que el incremento del peso seco de ra&iacute;z/v&aacute;stago en jitomate en condiciones de salinidad va acompa&ntilde;ada por cambios en la distribuci&oacute;n de asimilados entre la ra&iacute;z y el v&aacute;stago y que hay mayor proporci&oacute;n de asimilados en la ra&iacute;z en comparaci&oacute;n con el v&aacute;stago.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de las comparaciones de medias permiten diferenciar a los genotipos m&aacute;s sobresalientes o tolerantes al efecto negativo de las condiciones estresantes de las soluciones con diferentes concentraciones de cloruro de sodio (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>). Para la variable porcentaje de germinaci&oacute;n, seis poblaciones del estado Puebla m&aacute;s el testigo Super Sweet&#45;100 (19.4%) tuvieron una respuesta superior en promedio a las diferentes concentraciones de cloruro de sodio con respecto a los otros 29 genotipos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para velocidad de germinaci&oacute;n, una manera de medir el vigor, fueron cuatro genotipos del estado de Puebla y el h&iacute;brido Sun&#45;7705 (13.9%) superiores con respecto al resto de los genotipos. En lo que se refiere a la producci&oacute;n de materia seca a&eacute;rea, el h&iacute;brido Sun&#45;7705 fue el que desarroll&oacute; mejor sus estructuras, ninguna poblaci&oacute;n nativa fue similar o superior a este h&iacute;brido, aunque las poblaciones nativas sobresalientes fueron cuatro del estado de Puebla y dos de Veracruz (16.7%). En la producci&oacute;n de materia seca de ra&iacute;z sobresalieron dos poblaciones del estado de Puebla y el h&iacute;brido Sun&#45;7705. &Eacute;stos resultados muestran que hay mayor n&uacute;mero de poblaciones tolerantes a las condiciones salinas en la germinaci&oacute;n comparada con el n&uacute;mero de genotipos para vigor y desarrollo de estructuras morfol&oacute;gicas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una gran proporci&oacute;n de las poblaciones de Veracruz presentaron los resultados inferiores y que posiblemente por las caracter&iacute;sticas clim&aacute;ticas de su lugar de origen durante su evoluci&oacute;n no han estado expuestas a estr&eacute;s por salinidad. De acuerdo a los resultados de las comparaciones de medias (<a href="/img/revistas/remexca/v5n6/a13c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>), las poblaciones m&aacute;s sobresalientes en germinaci&oacute;n, vigor y producci&oacute;n de materia seca a&eacute;rea y de ra&iacute;z fueron el genotipo 22 y el h&iacute;brido Sun 7705; para germinaci&oacute;n, vigor y materia seca a&eacute;rea el genotipo 86; para germinaci&oacute;n y vigor los genotipos 92 y 38; para germinaci&oacute;n y materia seca de ra&iacute;z el genotipo 41; para germinaci&oacute;n los genotipos 27, 14 y el h&iacute;brido Super Sweet&#45;100 y para materia seca a&eacute;rea el genotipo 23 del estado de Puebla. Los genotipos que mostraron cierto grado de tolerancia a la salinidad pueden ser usados como fuentes potenciales para el mejoramiento gen&eacute;tico del jitomate (Amir <i>et al</i>., 2011; Hamed <i>et al</i>., 2011).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En total se identificaron ocho poblaciones de Puebla con cierto grado de tolerancia a la salinidad, seis de ellos, las poblaciones 22, 41, 38, 27, 14, 23 son originarias de la regi&oacute;n norte con un intervalo de altitud de 210 a 1 538 m, mientras que las poblaciones 86 y 92 son de la regi&oacute;n sur, colectadas a altitudes de 1 100 a 1 620 m (INEGI, 2004).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las diferentes concentraciones de cloruro de sodio afectaron de manera negativa y diferencial a cada uno de los 36 materiales gen&eacute;ticos en germinaci&oacute;n, vigor de semilla, as&iacute; como en el desarrollo de las estructuras de la pl&aacute;ntula evaluadas a trav&eacute;s de materia seca a&eacute;rea y de ra&iacute;z. &Eacute;sto demuestra que existi&oacute; variabilidad gen&eacute;tica en el germoplasma estudiado; ya que el efecto negativo (&#946;1) fue diferente para cada una de los genotipos en estudio. Para (%) de germinaci&oacute;n el intervalo fue de &#45;34.9 a &#45;116.8, para velocidad de germinaci&oacute;n fue de &#45;11.48 a &#45;21.1, para materia seca a&eacute;rea fue de &#45;3.86 a &#45;20.2 y para materia seca de ra&iacute;z fue de &#45;0.81 a &#45;3.49.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El vigor de las semillas fue afectado por la salinidad de manera negativa en 100% del germoplasma estudiado. El 22% del mismo presento tolerancia en la prueba de germinaci&oacute;n. Mientras 67% del material gen&eacute;tico en estudio mostro tolerancia a la salinidad durante el desarrollo de las estructuras morfol&oacute;gicas de pl&aacute;ntula como ra&iacute;z, hipoc&oacute;tilo y cotiledones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ocho colectas (22, 86, 92, 38, 41, 27, 14 y 23) se destacaron por su tolerancia a salinidad. La colecta 22 fue la mejor en germinaci&oacute;n, vigor y desarrollo de materia seca a&eacute;rea y de ra&iacute;z; la 86 se destac&oacute; en la prueba de germinaci&oacute;n, vigor y materia seca a&eacute;rea; las colectas 92 y 38 tuvieron mejor respuesta en germinaci&oacute;n y vigor; la 41 en germinaci&oacute;n y materia seca de ra&iacute;z; las colectas 27 y 14 solo en germinaci&oacute;n y finalmente la colecta 23 destac&oacute; en materia seca a&eacute;rea.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las poblaciones nativas de jitomate tolerantes a salinidad identificadas en este estudio pueden ser utilizadas como fuente de germoplasma para el mejoramiento gen&eacute;tico de variedades e h&iacute;bridos tolerantes a salinidad en la etapa de germinaci&oacute;n.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aceves, N. E. 1979. Ensalitramiento de suelos bajo riego. Colegio de Postgraduados en Ciencias Agr&iacute;colas. Chapingo, Texcoco, Estado de M&eacute;xico. 382 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814207&pid=S2007-0934201400060001300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Amir, N.; Muhammad, A.; Muhammad, A. P. and Irfan, A. 2011. Effect of halopriming on germination and seedling vigor of tomato. Afr. J. Agr. Res. 6(15):3551&#45;3559.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814209&pid=S2007-0934201400060001300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ashraf, M. 1994. Breeding for salinity tolerance in plants. Crit. Rev. Plant Sci. 13:17&#45;42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814211&pid=S2007-0934201400060001300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bernstein, L. 1961. Osmotic adjustment of plants to saline media I. Steady state. Amer. J. Bot. 48:909&#45;918.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814213&pid=S2007-0934201400060001300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bolar&iacute;n, M. C.; P&eacute;rez&#45;Alfocea, F.; Cano, E. A.; Esta&ntilde;o, M. T. and Caro, M. 1993. Growth, fruit yield, and ion concentration in tomato eco&#45;types after pre&#45;emergence salt treatments. J. Am. Soc. Hort. Sci. 118:655&#45;660.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814215&pid=S2007-0934201400060001300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Casierra&#45;Posada, F. y Rodr&iacute;guez, S. 2006. Tolerancia de plantas de feijoa (<i>Acca sellowiana</i> &#91;Berg&#93; Burret) a la salinidad por NaCl. Agron. Colomb. 24(2):258&#45;265.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814217&pid=S2007-0934201400060001300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Comisi&oacute;n Nacional de Agua (CONAGUA). 2008. Programa nacional h&iacute;drico 2007&#45;2012. SEMARNAT. Gobierno Federal. 163 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814219&pid=S2007-0934201400060001300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuartero, J. and Fern&aacute;ndez&#45;Mu&ntilde;oz, R. 1999. Tomato and salinity. Sci. Hortic. 78:83&#45;125.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814221&pid=S2007-0934201400060001300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ch&aacute;vez&#45;Servia, J. L.; Carrillo&#45;Rodr&iacute;guez, J. C.; Vera&#45;Guzm&aacute;n, A. M.; Rodr&iacute;guez&#45;Guzm&aacute;n, E. y Lobato&#45;Ortiz, R. 2011. Utilizaci&oacute;n actual y potencial del jitomate silvestre mexicano. Subsistema Nacional de Recursos Fitogen&eacute;ticos para la Alimentaci&oacute;n y la Agricultura (SINAREFI). Secretar&iacute;a de Agricultura, Ganader&iacute;a, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentaci&oacute;n (SAGARPA). CIIDIR&#45;Unidad Oaxaca del Instituto Polit&eacute;cnico Nacional e Instituto Tecnol&oacute;gico del Valle de Oaxaca. Oaxaca, M&eacute;xico. 72 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814223&pid=S2007-0934201400060001300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dahal, P.; BradfordK, K. J. and Jones, R. A. 1990. Effects of priming and endosperm and endosperm integrity on seed tomato genotypes: I. Germination at suboptimal temperature. J. Expt. Bot. 41:1431&#45;1440.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814225&pid=S2007-0934201400060001300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fageria, N. K.; Stone, L. F. and Baeta, dos S. A. 2012. Breeding for salinity tolerance. <i>In</i>: plant breeding for abiotic stress tolerance. Fritsche&#45;Neto, R.; Borem, A. (Eds.). Spinger. Verlag Berlin Heidelberg. 103&#45;122 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814227&pid=S2007-0934201400060001300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Feuchter, A. F. R. 2000. Recuperaci&oacute;n de suelos salinos agr&iacute;colas, mediante el establecimiento de praderas bajo cultivos alternativos. Diez acciones propuestas de Bioingenier&iacute;a sostenible. Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Centro regional Universitario del Noroeste. Cd. Obreg&oacute;n, Sonora: (<a href="http://www.zoetecnocampo.com/Documentos/01.htm" target="_blank">http://www.zoetecnocampo.com/Documentos/01.htm</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814229&pid=S2007-0934201400060001300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Foolad, M. R. 1999. Comparison of salt tolerance during seed germination and vegetative growth in tomato by QTL mapping. Genome 42:727&#45;734.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814231&pid=S2007-0934201400060001300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Groot, S. P. C. and Karsen, C. M. 1987. Gibberellins regulate seed germination in tomato by endosperm weakening: a study with gibberellin&#45;deficient mutant. Planta 171:525&#45;531.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814233&pid=S2007-0934201400060001300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hamed, K.; Hossein, N.; Mohammad, F. and Safieh, V. J. 2011. How salinity affect germination and emergence of tomato lines. J. Biol. Environ. Sci. 5(15):159&#45;163.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814235&pid=S2007-0934201400060001300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Instituto Nacional de Estad&iacute;stica Geograf&iacute;a e Inform&aacute;tica (INEGI). 2004: sistema fisiogr&aacute;fico DGGTENAL. Escrito de la Subdirecci&oacute;n de Actualizaci&oacute;n de Recursos Naturales: las provincias fisiogr&aacute;ficas de M&eacute;xico y sus subdivisiones. 56 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814237&pid=S2007-0934201400060001300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jenkins, J. A. 1948. The origin of the cultivated tomato. Econ. Bot. 2:379&#45;392.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814239&pid=S2007-0934201400060001300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jones, R. A. 1986. High salt tolerance potential in Lycopersicon species during germination. Euphytica; 35:575&#45;582.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814241&pid=S2007-0934201400060001300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Liptay, A. and Schopfer, P. 1983. Effect of water stress, seed coat restraint, and abscisic acid upon different germination capabilities of two tomato lines at low temperatura. Plant Physiol. 73:935&#45;938.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814243&pid=S2007-0934201400060001300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maguire, J. D. 1962. Speed of germination, aid in selection and evaluation of seedling emergence vigor. Crop Sci. 2:176&#45;177.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814245&pid=S2007-0934201400060001300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ortega, E. M. 1991. Manejo y uso de las aguas salinas bicarbonatadas y sulf&aacute;ticas para riego (Memoria). Centro de Hidrociencias. Colegio de Postgraduados en Ciencias Agr&iacute;colas. Montecillo, Texcoco, Estado de M&eacute;xico. 1&#45;20 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814247&pid=S2007-0934201400060001300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Secretar&iacute;a de Agricultura, Ganader&iacute;a, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentaci&oacute;n (SAGARPA). 2010. Monograf&iacute;a de cultivos&#45; jitomate. Subsecretar&iacute;a de Fomento a los agronegocios: <a href="http//www.sagarpa.gob.mx/agronegocios/Documentos" target="_blank">http//www.sagarpa.gob.mx/agronegocios/Documentos</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814249&pid=S2007-0934201400060001300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Statistical Analysis System Institute (SAS Institute). 2002. SAS Guide for Personal Computers, 9<sup>th</sup>, Cary, NC, USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814251&pid=S2007-0934201400060001300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">TeKrony, D. M. 2003. Precision is an essential component in seed vigour testing. Seed Sci. Technol. 31:435&#45;447.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7814253&pid=S2007-0934201400060001300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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