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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Técnicas de complejidad variable para evaluar la absorción de fármacos]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The drug absorption process after an oral administration mainly depends on the drug release from the dosage form, described by its dissolution kinetics, as well as the drug's solubility and permeability under physiological conditions. Nowadays, there is a practical need to improve the evaluation of oral drug bioavailability and it has been proposed that the drug intestinal absorption could be estimated through the compound's permeability determined in models which resemble the absorption process. Thus, the characteristics of the intestinal epithelium and the mechanism of drug transport are described. Different models to estimate intestinal absorption are discussed, their characteristics and predicting capabilities.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	     <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Revisi&oacute;n bibliogr&aacute;fica</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>T&eacute;cnicas de complejidad variable para evaluar la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Variable complexity techniques for assessing drug absorption</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Dea Herrera Ruiz, Efr&eacute;n Hern&aacute;ndez Baltazar, Julio Cesar Espinosa Lara, Ixchel de la Luz Mart&iacute;nez, Adela Ayulia Beltr&aacute;n Torres, Juan Manuel Mart&iacute;nez Alejo</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Facultad de Farmacia, Universidad Aut&oacute;noma del Estado de Morelos.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia</b></font></p>  	     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Dra. Dea Herrera Ruiz y Dr.    Efr&eacute;n Hern&aacute;ndez Baltazar     <br>   Facultad de Farmacia Universidad Aut&oacute;noma del Estado de Morelos    <br>   Av. Universidad 1001, Col. Chamilpa, Cuernavaca, Mor., M&eacute;xico, CP 62210        <br>   Tel.: 01(777)3297089, Ext. 7134 y 7135 Fax: 01(777)3297089    <br>   e&#45;mail:</i> <a href="mailto:dherrera@uaem.mx">dherrera@uaem.mx</a>; <a href="mailto:efrenhbmx@yahoo.com.mx">efrenhbmx@yahoo.com.mx</a></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fecha de recepci&oacute;n: 22 de septiembre de 2011    <br>Fecha de recepci&oacute;n de modificaciones: 10 de noviembre de 2011    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>Fecha de aceptaci&oacute;n: 17 de noviembre de 2011</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El proceso de absorci&oacute;n de un f&aacute;rmaco administrado oralmente depende principalmente de la liberaci&oacute;n del f&aacute;rmaco de la forma farmac&eacute;utica, descrito por la cin&eacute;tica de disoluci&oacute;n de &eacute;sta, as&iacute; como de la solubilidad y permeabilidad del f&aacute;rmaco en condiciones fisiol&oacute;gicas. Actualmente existe una necesidad pr&aacute;ctica por mejorar la evaluaci&oacute;n de la biodisponibilidad de f&aacute;rmacos administrados por v&iacute;a oral, y se ha propuesto que la absorci&oacute;n intestinal de un f&aacute;rmaco sea estimada mediante la permeabilidad del compuesto a trav&eacute;s de modelos que simulen el proceso de absorci&oacute;n. En este trabajo se describen las caracter&iacute;sticas del epitelio intestinal y los mecanismos de transporte de f&aacute;rmacos a trav&eacute;s de &eacute;ste, as&iacute; como los diferentes modelos para estimar la absorci&oacute;n intestinal, sus caracter&iacute;sticas y aportaciones en la predicci&oacute;n del grado y mecanismo de absorci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> absorci&oacute;n intestinal, permeabilidad, biodisponibilidad, PAMPA, Caco&#45;2, MDCK.&nbsp;</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The drug absorption process after an oral administration mainly depends on the drug release from the dosage form, described by its dissolution kinetics, as well as the drug's solubility and permeability under physiological conditions. Nowadays, there is a practical need to improve the evaluation of oral drug bioavailability and it has been proposed that the drug intestinal absorption could be estimated through the compound's permeability determined in models which resemble the absorption process. Thus, the characteristics of the intestinal epithelium and the mechanism of drug transport are described. Different models to estimate intestinal absorption are discussed, their characteristics and predicting capabilities.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> intestinal absorption, permeability, bioavailability, PAMPA, Caco&#45;2, MDCK.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La absorci&oacute;n de un principio activo por v&iacute;a oral implica, generalmente, el paso de las mol&eacute;culas de f&aacute;rmaco desde el intestino hacia la sangre a trav&eacute;s de una barrera fisiol&oacute;gica, la membrana intestinal. Para que este fen&oacute;meno ocurra, el f&aacute;rmaco primero debe ser liberado de la forma farmac&eacute;utica y posteriormente disolverse en los fluidos fisiol&oacute;gicos.<sup>1,2</sup> Con cerca del 80% de los medicamentos administrados por esta v&iacute;a, la oral es por mucho la m&aacute;s utilizada.<sup>3</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, se estima que el 40% de los compuestos que son candidatos a f&aacute;rmacos no logran llegar al mercado debido a propiedades biofarmac&eacute;uticas inadecuadas (solubilidad baja, permeabilidad y/o estabilidad metab&oacute;lica), las cuales llevan a una baja biodisponibilidad que se traduce en bajos niveles plasm&aacute;ticos y en un aumento en la variabilidad inter e intrasujeto.<sup>4</sup> Esto ha llevado a que las compa&ntilde;&iacute;as farmac&eacute;uticas eval&uacute;en dichas propiedades durante las etapas tempranas del desarrollo, caracterizando a los compuestos en paralelo con la investigaci&oacute;n de su efecto farmacol&oacute;gico para de esta forma optimizar la selecci&oacute;n de aquellos que presenten tanto propiedades biofarmac&eacute;uticas adecuadas como la mejor actividad biol&oacute;gica.<sup>5</sup> Aunado a lo anterior, para lograr el dise&ntilde;o de una forma de dosificaci&oacute;n apropiada es necesario conocer detalladamente las caracter&iacute;sticas del f&aacute;rmaco y su proceso de absorci&oacute;n.<sup>6</sup> Algunos autores opinan que la absorci&oacute;n intestinal de un f&aacute;rmaco depende, principalmente, de factores tales como la solubilidad del mismo f&aacute;rmaco, de su proceso de disoluci&oacute;n, de su permeabilidad a trav&eacute;s de la mucosa intestinal y del tiempo de tr&aacute;nsito intestinal; aunque, cabe resaltar que cuando la disoluci&oacute;n in vivo de una forma s&oacute;lida de liberaci&oacute;n inmediata es r&aacute;pida en relaci&oacute;n con el tr&aacute;nsito intestinal y el f&aacute;rmaco es de alta permeabilidad, tanto la velocidad y cantidad de f&aacute;rmaco absorbido raramente depender&aacute; de la disoluci&oacute;n del f&aacute;rmaco y/o del tiempo de tr&aacute;nsito gastrointestinal.<sup>7,8</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Debido a esto, se ha propuesto que la evaluaci&oacute;n de la absorci&oacute;n de un f&aacute;rmaco a trav&eacute;s del tracto gastrointestinal se determine mediante el establecimiento de la permeabilidad de dicho compuesto a trav&eacute;s de la pared gastrointestinal. Para este fin, no cabe duda que los estudios en animales y/o humanos son los m&aacute;s completos debido a que tienen la capacidad de evaluar la manera en que componentes fisiol&oacute;gicos, tales como los jugos g&aacute;stricos y la bilis, pueden afectar las propiedades de disoluci&oacute;n del f&aacute;rmaco, la precipitaci&oacute;n del mismo en el sitio de absorci&oacute;n, la degradaci&oacute;n qu&iacute;mica y/o bacteriana y su metabolismo en el lumen.<sup>9,10</sup> Sin embargo, estos estudios conllevan tambi&eacute;n algunas desventajas importantes, como que por ejemplo, requieren de un conjunto grande de compuestos en etapa experimental, generalmente necesitan de una mayor infraestructura para su realizaci&oacute;n, lo que representa un mayor costo, adem&aacute;s de que requieren el seguimiento de una serie de lineamientos y recomendaciones de tipo &eacute;tico debido a que el objeto de estudio son organismos vivos.<sup>11</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por lo anterior, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os se han desarrollado una serie de t&eacute;cnicas que permiten modelar los procesos de absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos de manera r&aacute;pida y confiable. El objetivo del presente art&iacute;culo es describir de forma general la morfolog&iacute;a del epitelio intestinal, los mecanismos involucrados en el proceso de absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos y de manera particular algunas t&eacute;cnicas que modelan los procesos de absorci&oacute;n de estos. Asimismo discutir algunas de las ventajas y desventajas de la aplicaci&oacute;n de estos modelos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>El Epitelio Intestinal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El intestino delgado es la secci&oacute;n del sistema gastrointestinal que permite la absorci&oacute;n de nutrientes y que limita la absorci&oacute;n de xenobi&oacute;ticos, enzimas digestivas y bacterias. Est&aacute; constituido por estructuras y c&eacute;lulas con caracter&iacute;sticas &uacute;nicas que le confieren una morfolog&iacute;a bastante compleja y especializada, sin embargo, toda esta estructura creada al interior del mismo tiene como objetivo ampliar el &aacute;rea disponible para que el proceso de absorci&oacute;n pueda llevarse a cabo de una manera sumamente eficaz.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La absorci&oacute;n de nutrientes y f&aacute;rmacos se lleva a cabo en la mucosa intestinal, la cual consta de tres capas: la mucosa muscularis, la l&aacute;mina propia y la capa de c&eacute;lulas epiteliales.<sup>11</sup> La mucosa muscularis se encuentra en la uni&oacute;n entre la mucosa y la submucosa. Es una l&aacute;mina continua de m&uacute;sculo uniforme con un espesor de 3 a 10 c&eacute;lulas, compuesta de capas circulares internas y longitudinales externas. Por su parte, la l&aacute;mina propia es el tejido conectivo dentro del villus que provee soporte estructural a la capa de c&eacute;lulas epiteliales, rodea a las criptas de Lieberkuhn y contiene numerosas c&eacute;lulas de defensa que interact&uacute;an con sustancias exteriores que llegan a esta capa desde el tracto gastrointestinal. A trav&eacute;s de sus capilares, la l&aacute;mina propia nutre a las c&eacute;lulas epiteliales y permite el transporte de las sustancias absorbidas hacia circulaci&oacute;n sist&eacute;mica. La capa de c&eacute;lulas epiteliales es una monocapa que contiene c&eacute;lulas madre que proliferan y migran a lo largo del eje cripta&#45;villus, la cuales conforme migran reciben diferentes se&ntilde;ales para diferenciarse generando as&iacute; a diferentes tipos de c&eacute;lulas. Est&aacute; constituida por c&eacute;lulas columnares, altamente polarizadas y con una membrana apical y una basolateral. La principal funci&oacute;n de esta capa de c&eacute;lulas es la absorci&oacute;n. Su superficie apical se caracteriza por tener microvellosidades estrechamente empacadas de 0.5 a 1.0 <i>&#956;</i>m de largo y 0.1 <i>&#956;</i>m de ancho, con prolongaciones de las cadenas laterales de oligosac&aacute;ridos de 0.5 a 2.0 <i>&#956;</i>m, dependiendo de la especie (<a href="../img/revistas/rmcf/v43n1/a3f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>).<sup>12</sup> El espesor de la membrana apical es de 10 a 11 nm m&aacute;s largo que la mayor&iacute;a de las membranas plasm&aacute;ticas de eucariontes, tiene un alto coeficiente molar prote&iacute;na&#45;l&iacute;pido y tambi&eacute;n una alta concentraci&oacute;n de glicol&iacute;pidos y colesterol. Por su parte, la membrana basolateral difiere de la apical tanto en su morfolog&iacute;a, composici&oacute;n bioqu&iacute;mica y funci&oacute;n, ya que mide unos 7 nm de ancho y contiene Na+&#45;K+&#45;ATPasa.<sup>7,13</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las c&eacute;lulas intestinales est&aacute;n unidas entre s&iacute; por complejos de uni&oacute;n intercelulares, miden de 0.1 a 0.6 <i>&#956;</i>m y act&uacute;an como barrera de difusi&oacute;n. Se componen de uniones estrechas, intermedias y desmosomas, siendo las primeras los componentes m&aacute;s significativos de los complejos de uni&oacute;n al localizarse en el extremo apical de la membrana lateral de c&eacute;lulas adyacentes y eliminar el espacio intercelular. Entre las microvellosidades de las c&eacute;lulas absorbentes y el lumen existe una capa de agua sin agitaci&oacute;n, que tiene un grosor que var&iacute;a entre 30 y 100 <i>&#956;</i>m. La capa de mucosa que se encuentra entre el lumen y la capa de c&eacute;lulas absorbentes contiene un gel de glicoprote&iacute;na y un 90% de oligosac&aacute;rido, siendo el pH de este microambiente de 5.2, el cual es independiente del pH luminal. M&aacute;s cerca de las c&eacute;lulas se encuentra el glicocalix, en donde se encuentran glicoprote&iacute;nas, enzimas digestivas y cadenas laterales de los oligosac&aacute;ridos celulares.<sup>7,8,14</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mecanismos de Transporte de F&aacute;rmacos a Nivel Intestinal</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez disueltas, las mol&eacute;culas de f&aacute;rmaco que se encuentra en el lumen intestinal deben difundir hasta ponerse en contacto con la regi&oacute;n apical de los enterocitos y posteriormente atravesar una serie de barreras para alcanzar la circulaci&oacute;n sist&eacute;mica.<sup>15</sup> La primera de estas barreras es la membrana intestinal, siendo probablemente la m&aacute;s importante de ellas debido a que es una barrera permeable selectiva.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cabe mencionar, que las fuerzas que dirigen a los diferentes compuestos desde la luz intestinal hasta ponerlos en contacto con la membrana intestinal son el gradiente de concentraci&oacute;n, la diferencia de potencial el&eacute;ctrico y los gradientes de presi&oacute;n hidrost&aacute;tica; aunque, cabe se&ntilde;alar que la resistencia y/o facilidad a la permeaci&oacute;n a trav&eacute;s de la mucosa intestinal se debe &uacute;nicamente a barreras f&iacute;sicas y bioqu&iacute;micas. La barrera f&iacute;sica es el resultado de las uniones estrechas y del car&aacute;cter lip&iacute;dico de la membrana celular, siendo las uniones estrechas la principal barrera f&iacute;sica que limita la absorci&oacute;n de los compuestos de inter&eacute;s farmac&eacute;utico debido a su peque&ntilde;o tama&ntilde;o de poro (de apenas 0.4&#45;0.8 nm en humanos) y a que corresponde s&oacute;lo al 0.01% del total del &aacute;rea superficial del intestino.<sup>13,16</sup> Por su parte, el componente bioqu&iacute;mico de la barrera de mucosa consiste en enzimas metabolizadoras de f&aacute;rmacos y de transportadores, siendo la isoenzima CYP3A4 la que representa a cerca del 60% del total de las enzimas del citocromo encontradas en el intestino.<sup>7</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez que los f&aacute;rmacos llegan al lumen intestinal, pueden presentar varios de los siguientes procesos de transporte:<sup>3,7</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Difusi&oacute;n pasiva.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Difusi&oacute;n transcelular (difusi&oacute;n simple).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Transporte paracelular (difusi&oacute;n v&iacute;a uniones estrechas).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Transporte mediado por acarreadores (difusi&oacute;n facilitada).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Difusi&oacute;n activa.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Transporte activo mediado por acarreadores (con gasto de energ&iacute;a).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Transporte por ves&iacute;culas (transocitosis que incluye a la pinocitosis).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mecanismos de Eflujo (prote&iacute;nas que expulsan a los f&aacute;rmacos).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#f2">Figura 2</a> ilustra estos mecanismos de transporte y algunos subtipos de estos. En los casos donde se involucra la presencia de transportadores, las posibilidades de paso a trav&eacute;s de la membrana pueden impactar la cantidad absorbida tanto de manera positiva (<a href="#f2">Figura 2C</a> y <a href="#f2">2D</a>), como negativa (<a href="#f2">Figura 2H</a>). A continuaci&oacute;n se presenta una descripci&oacute;n m&aacute;s amplia de cada uno de estos mecanismos.</font></p>  	     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="../img/revistas/rmcf/v43n1/a3f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Difusi&oacute;n Pasiva</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La difusi&oacute;n simple interviene en el paso de sustancias susceptibles de disolverse en los constituyentes de la membrana. El paso se realiza sin ning&uacute;n gasto de energ&iacute;a y seg&uacute;n un gradiente, que puede ser de mayor a menor concentraci&oacute;n o electroqu&iacute;mico, hasta llegar a un estado de equilibrio entre los dos medios. El tiempo necesario para alcanzar el equilibrio entre una parte y otra de la membrana obedece a la ley de difusi&oacute;n de Fick:</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="../img/revistas/rmcf/v43n1/a3e1.jpg"></font></p>  	     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">siendo <i>dm</i>/<i>Adt</i> el    flujo por unidad de &aacute;rea, P<sub>m</sub> la constante de permeabilidad,    y Ce y Ci, las concentraciones respectivas en los compartimentos exterior e    interior. Es importante precisar que s&oacute;lo la fracci&oacute;n libre del    f&aacute;rmaco interviene en el gradiente de concentraci&oacute;n.<sup>7</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>a) Difusi&oacute;n Transcelular</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Representa la principal v&iacute;a de transporte de los compuestos hidrof&oacute;bicos. Involucra el movimiento de las mol&eacute;culas de soluto a trav&eacute;s de la membrana apical, el citoplasma y la membrana basolateral.<sup>15</sup> Normalmente, la difusi&oacute;n de mol&eacute;culas peque&ntilde;as es un proceso r&aacute;pido, por lo que la tasa de permeabilidad est&aacute; determinada principalmente por la tasa de transporte a trav&eacute;s de la membrana apical.<sup>17</sup> Para que un f&aacute;rmaco sea transportado por esta v&iacute;a se requiere que sea una mol&eacute;cula razonablemente lipof&iacute;lica y de un tama&ntilde;o moderado, sin embargo, numerosos estudios indican que la gran mayor&iacute;a de los f&aacute;rmacos que presentan buena absorci&oacute;n utilizan predominantemente esta v&iacute;a,<sup>18</sup> consider&aacute;ndose actualmente que la tasa de transporte est&aacute; determinada en gran medida por la capacidad del compuesto de formar puentes de hidr&oacute;geno, por su lipofilicidad, su tama&ntilde;o y su carga.<sup>19</sup></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cabe resaltar que la modalidad de transporte por pares de iones (<a href="#f2">Figura 2F</a>) es un mecanismo propuesto para explicar el paso de ciertos compuestos muy fuertemente ionizados a trav&eacute;s de la membrana, donde la formaci&oacute;n de complejos neutros (pares de iones) con sustancias end&oacute;genas como la mucina, permiten la difusi&oacute;n del complejo neutro a trav&eacute;s de la membrana.<sup>20</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>b)&nbsp;Transporte Paracelular</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Constituye una v&iacute;a de transporte extracelular a trav&eacute;s del epitelio por medio de las uniones estrechas formadas entre las c&eacute;lulas. Los factores que intervienen en la difusi&oacute;n paracelular son el gradiente de potencial electroqu&iacute;mico (derivado de la diferencia en gradientes de concentraci&oacute;n), el potencial el&eacute;ctrico y la presi&oacute;n hidrost&aacute;tica.<sup>7</sup> Se considera que la difusi&oacute;n paracelular es un proceso pasivo que se rige por la Ley de Fick,<sup>15</sup> donde las mol&eacute;culas hidrof&iacute;licas en su mayor&iacute;a de bajo peso molecular (200 Da) pueden permear mediante este mecanismo, el cual cabe mencionar, tiene una tasa de transporte reducida; sin embargo, existe evidencia de que el di&aacute;metro de las uniones estrechas puede incrementarse mediante un proceso regulatorio celular. En este sentido, existen esfuerzos para incrementar la permeabilidad paracelular mediante la co&#45;administraci&oacute;n de agentes que modulen la apertura de las uniones estrechas.<sup>21,22,23</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>c)&nbsp;Transporte Mediado por Acarreadores</b> (Difusi&oacute;n Facilitada)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mucosa intestinal expresa un gran n&uacute;mero de acarreadores o transportadores que son los responsables de la absorci&oacute;n de nutrientes y vitaminas. Estos tienen caracter&iacute;sticas de saturabilidad y especificidad comparables a las de un transportador activo, pero en este el transporte se realiza en sentido del gradiente de concentraci&oacute;n y sin ning&uacute;n gasto de energ&iacute;a. Quiz&aacute;s el ejemplo m&aacute;s conocido es el transportador de glucosa, el cual presenta un cambio de conformaci&oacute;n despu&eacute;s de que una mol&eacute;cula de glucosa se une a &eacute;ste y se forma un poro por el cual entra la glucosa al citosol, para posteriormente recuperar su conformaci&oacute;n original despu&eacute;s de liberar a la glucosa en el interior de la c&eacute;lula.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><i>Transporte Activo</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El transporte activo necesita primordialmente energ&iacute;a, que puede ser cedida por medio de la hidr&oacute;lisis de ATP u otra fuente de energ&iacute;a. A diferencia del proceso de difusi&oacute;n, en el transporte activo la velocidad de transporte no depende del gradiente de concentraci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>a)&nbsp;Mediado por Acarreadores</b></font></p>  	     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este mecanismo requiere de un    transportador, que es una prote&iacute;na de membrana capaz de formar un complejo    con la mol&eacute;cula del f&aacute;rmaco, para as&iacute; atravesar la membrana    y posteriormente liberar al f&aacute;rmaco al otro lado de la membrana, a la    vez que el transportador retoma su conformaci&oacute;n original.<sup>24</sup>    Cabe mencionar que la funci&oacute;n natural de estos transportadores es extraer    del contenido luminal los nutrientes y otros compuestos esenciales para el organismo.    Dentro de las caracter&iacute;sticas m&aacute;s notables de estas prote&iacute;nas    destacan su especificidad, capacidad de saturaci&oacute;n y variabilidad de    expresi&oacute;n regional.<sup>25</sup> Algunos de los f&aacute;rmacos que son    transportados por este mecanismo son los antibi&oacute;ticos &#946;&#45;lact&aacute;micos    y los inhibidores de renina, los cuales se asemejan estructuralmente a los sustratos    naturales de estas prote&iacute;nas.<sup>26,27,28</sup> Una de las prote&iacute;nas    trasportadoras m&aacute;s estudiadas es el transportador de oligop&eacute;ptidos    PepT1.<sup>29</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>b)&nbsp;Transporte por Ves&iacute;culas</b> (Transocitosis que incluye a la Pinocitosis)</font></p>  	     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este tipo de transporte incluye    a los procesos de endocitosis de fase fluida o pinocitosis (FPE), endocitosis    mediada por receptores (RME) y transocitosis. En la FPE, las mol&eacute;culas    de soluto disueltas en el fluido luminal son incorporadas a las ves&iacute;culas    endoc&iacute;ticas originando invaginaciones que dan lugar a ves&iacute;culas    o pinosomas que migran a trav&eacute;s de la c&eacute;lula hacia los endosomas,    los cuales, subsecuentemente se fusionan con los lisosomas. Hoy se sabe que    algunos p&eacute;ptidos y prote&iacute;nas emplean esta v&iacute;a de transporte.<sup>30</sup>    Por su parte, la RME involucra la uni&oacute;n de la macromol&eacute;cula a    un receptor de membrana y la uni&oacute;n subsecuente del complejo receptor&#45;ligando    dentro de sacos cubiertos de clatrina. Posteriormente, se presenta un proceso    conocido como sorting en el cual los ligandos normalmente son destruidos por    los lisosomas mientras que los receptores pueden ser destruidos o reciclados    a la membrana celular.<sup>31</sup> La transocitosis, por otro lado, ocurre    cuando el ligando disuelto en la ves&iacute;cula endoc&iacute;tica (posterior    a la FPE o RME) atraviesa los lisosomas y es liberado a trav&eacute;s de la    membrana basolateral.<sup>32</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>c)&nbsp;Mecanismos de Eflujo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En contraste con los transportadores que promueven la absorci&oacute;n intestinal, existen otros transportadores conocidos como transportadores de eflujo que presentan el efecto contrario, es decir, se encargan de mediar la expulsi&oacute;n de compuestos del citoplasma celular hacia el lumen intestinal mediante un proceso llamado eflujo apical.<sup>7</sup> Los mecanismos de eflujo intestinal se atribuyen regularmente a prote&iacute;nas localizadas en la membrana apical pertenecientes a la familia ABC (ATP Binding Cassette), tales como la P&#45;glicoprote&iacute;na (Pgp) y a otras prote&iacute;nas asociadas a la resistencia m&uacute;ltiple a f&aacute;rmacos conocidas como MRPs o MDRs (Multidrug Resistance Proteins y Multi Drug Resistance, respectivamente).<sup>15,25,33</sup> La localizaci&oacute;n de los transportadores de eflujo en la membrana apical de enterocitos y colonocitos confiere al intestino la capacidad de limitar la absorci&oacute;n. Los transportadores de eflujo presentan baja selectividad y se consideran una limitante para la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos, por lo que el estudio de sus caracter&iacute;sticas y afinidades resulta de gran relevancia para la absorci&oacute;n de entidades terap&eacute;uticas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s de revisar los mecanismos involucrados en la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos, es claro entender que la absorci&oacute;n es un proceso muy complejo que involucra distintas alternativas para la absorci&oacute;n de los mismos. As&iacute;, los distintos modelos que simulan los diferentes mecanismos de transporte y las caracter&iacute;sticas de la barrera epitelial van desde propuestas sencillas hasta modelos de un alto grado de complejidad.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Modelos experimentales para estudiar la permeabilidad</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La habilidad de un compuesto administrado oralmente para absorberse a trav&eacute;s de la mucosa intestinal puede estar limitada por los componentes f&iacute;sicos y/o bioqu&iacute;micos de la barrera epitelial, por lo que los modelos de permeabilidad in vitro no s&oacute;lo deben predecir el potencial de absorci&oacute;n intestinal de un f&aacute;rmaco, sino tambi&eacute;n proporcionar informaci&oacute;n para comprender los mecanismos de absorci&oacute;n involucrados. Esto puede ser cumplido en la medida en que el modelo de permeabilidad incorpore la funcionalidad de los componentes f&iacute;sicos y bioqu&iacute;micos de la barrera intestinal,<sup>7</sup> ya que su grado de correlaci&oacute;n con la absorci&oacute;n intestinal depender&aacute; de la complejidad, costo y duraci&oacute;n del ensayo.<sup>34</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los modelos de permeaci&oacute;n pueden clasificarse en m&eacute;todos in s&iacute;lico, in vitro e in vivo, los cuales presentan diferente grado de correlaci&oacute;n con la absorci&oacute;n intestinal. Cada modelo requiere diferentes herramientas y/o materiales para hacer su estimaci&oacute;n de la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos, donde adem&aacute;s del diferente grado de inversi&oacute;n, cada uno de estos tiene un grado de complejidad variable.<sup>15</sup> La <a href="../img/revistas/rmcf/v43n1/a3t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a> hace un comparativo de las caracter&iacute;sticas de cada ensayo y su capacidad de modelar la absorci&oacute;n intestinal.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La absorci&oacute;n intestinal de un f&aacute;rmaco est&aacute; controlada por la velocidad de disoluci&oacute;n y solubilidad (determina qu&eacute; tan r&aacute;pido un f&aacute;rmaco alcanza una concentraci&oacute;n m&aacute;xima (C) en el fluido luminal), y el coeficiente de permeabilidad (el cual se relaciona con la velocidad a la cual el f&aacute;rmaco disuelto atravesar&aacute; la pared intestinal (P) para alcanzar la circulaci&oacute;n sangu&iacute;nea portal).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ambos factores, est&aacute;n incluidos en la primera ley de Fick aplicada a la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Modelos Experimentales <i>In S&iacute;lico</i></b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las herramientas de caracterizaci&oacute;n farmac&eacute;utica in s&iacute;lico tienen un impacto significativo en el descubrimiento de f&aacute;rmacos al ser utilizados como m&eacute;todos complementarios para ensayos in vitro e in vivo,<sup>35</sup> y son particularmente &uacute;tiles para el dise&ntilde;o de bibliotecas combinatorias e investigaciones virtuales previas a la s&iacute;ntesis. Se han desarrollado numerosas herramientas in s&iacute;lico para predecir propiedades como la solubilidad, permeabilidad, distribuci&oacute;n en barrera hematoencef&aacute;lica, eflujo, sistemas de transporte activo, metabolismo, toxicidad y propiedades farmacocin&eacute;ticas.<sup>36</sup> Los m&eacute;todos computacionales buscan predecir la absorci&oacute;n intestinal bas&aacute;ndose en la estructura qu&iacute;mica del f&aacute;rmaco involucrando desde aproximaciones de relaciones cuantitativas de estructura&#45;actividad (QSAR, por sus siglas en ingl&eacute;s) relativamente simples, hasta el uso de modelos farmacocin&eacute;ticos y/o farmacodin&aacute;micos fisiol&oacute;gicamente complejos.<sup>37,38</sup> Para ser validados, estos m&eacute;todos computacionales deben basarse en datos experimentales obtenidos para un amplio rango de compuestos estructuralmente diversos. Uno de los modelos m&aacute;s conocidos es el desarrollado por Lipinski y colaboradores,<sup>52</sup> denominado ROF (Rule Of Five), que est&aacute; basado en descriptores en 2 dimensiones. Modelos m&aacute;s sofisticados incluyen los de &aacute;rea de superficie polar y no polar (PSA y NPSA, de sus siglas en ingl&eacute;s) y paquetes de computo comerciales como QMPRplus, (Quantitative Molecular Permeability Relationships) Gastroplus e iDEA (In vitro Determination for the Estimation of ADME).<sup>39&#45;42</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Modelos Experimentales <i>In Vitro</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n exitosa de un modelo <i>in vitro</i> depende de en qu&eacute; medida dicho modelo incorpore las caracter&iacute;sticas relevantes de la barrera biol&oacute;gica <i>in vivo.</i> A pesar de las dificultades obvias asociadas al tratar de reproducir <i>in vitro</i> todas las caracter&iacute;sticas de la mucosa intestinal, varios sistemas han sido desarrollados para imitar, a diferentes niveles, las propiedades de barrera relevantes de la mucosa intestinal.<sup>43</sup> Estos sistemas incluyen:</font></p>  	    <blockquote> 		    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">1)&nbsp;M&eacute;todos fisicoqu&iacute;micos.</font></p>  		    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">2)&nbsp;M&eacute;todos con membranas artificiales.</font></p>  		    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">3)&nbsp;M&eacute;todos empleando l&iacute;neas celulares.</font></p>  		    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">4)&nbsp;Tejidos extra&iacute;dos.</font></p>  		    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">5)&nbsp;Enterocitos aislados.</font></p> 	</blockquote>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos modelos son de particular utilidad cuando la absorci&oacute;n limita la biodisponibilidad y cuando la permeabilidad limita la absorci&oacute;n del f&aacute;rmaco.<sup>44</sup></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>1)&nbsp;M&eacute;todos Fisicoqu&iacute;micos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aproximaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica mejor conocida para predecir la permeaci&oacute;n a trav&eacute;s de membranas es la determinaci&oacute;n de la lipofilicidad determinando el logaritmo del coeficiente de partici&oacute;n entre octanol y agua (logPo/w). Si bien las relaciones entre los valores de logPo/w y la absorci&oacute;n intestinal de f&aacute;rmacos est&aacute;n bien establecidos, esta aproximaci&oacute;n se ha vuelto controversial dadas las diferencias entre los coeficientes de partici&oacute;n octanol/agua y membrana/agua,<sup>45,46,47</sup> de forma tal que se han desarrollado modelos fisicoqu&iacute;micos m&aacute;s complejos para estudiar la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos, entre ellos, las membranas artificiales inmovilizadas y en paralelo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>2)&nbsp;M&eacute;todos con Membranas Artificiales</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La principal ventaja de utilizar membranas artificiales es su reproducibilidad, mientras que entre sus principales desventajas est&aacute;n la ausencia de enzimas y de transportadores; adem&aacute;s de que en su mayor&iacute;a estos m&eacute;todos no est&aacute;n conformados como bicapas lip&iacute;dicas. A pesar de sus desventajas, las membranas artificiales resultan de gran utilidad en el estudio de las relaciones existentes entre la estructura qu&iacute;mica de los f&aacute;rmacos y su lipofilicidad, debido a su rapidez y bajo costo.<sup>48</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Membranas Artificiales Inmovilizadas (MAI)</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las MAI est&aacute;n constituidas por columnas cromatogr&aacute;ficas de fase reversa en las cuales la cubierta hidrocarbonada del soporte s&oacute;lido es reemplazada por l&iacute;pidos para imitar el ambiente lip&iacute;dico de la membrana celular. El m&eacute;todo se fundamenta en la premisa de que la permeaci&oacute;n de solutos a trav&eacute;s de la membrana celular es dependiente de su partici&oacute;n en las capas lip&iacute;dicas.<sup>49</sup> Una de las principales ventajas de esta t&eacute;cnica es que, a diferencia de los ensayos de permeabilidad con cultivos celulares, &eacute;ste permite la realizaci&oacute;n de ensayos m&uacute;ltiples simult&aacute;neos y debido a que se elimina el uso de sistemas biol&oacute;gicos hace que los tiempos de ensayo sean m&aacute;s cortos,<sup>50</sup> adem&aacute;s de que ha mostrado una buena correlaci&oacute;n con los valores observados con las monocapas de c&eacute;lulas Caco&#45;2. La principal desventaja de esta t&eacute;cnica consiste en que no considera el papel del transporte paracelular, el mediado por acarreadores, el metabolismo y los transportadores de eflujo.<sup>7,51</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Ensayo de Permeaci&oacute;n con Membranas Artificiales en Paralelo (PAMPA)</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Eacute;ste es uno de los modelos de membranas artificiales m&aacute;s utilizados debido a que ha reportado una buena correlaci&oacute;n entre el porcentaje de transporte y la fracci&oacute;n absorbida en humanos para una serie de compuestos seleccionados.<sup>52,53</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Desde su introducci&oacute;n en 1998 por Kansy et al, este sistema ha atra&iacute;do considerablemente la atenci&oacute;n en el &aacute;rea farmac&eacute;utica debido a que puede proveer r&aacute;pidamente de informaci&oacute;n sobre la permeabilidad de f&aacute;rmacos cuya v&iacute;a de absorci&oacute;n sea por transporte pasivo (<a href="#f3">Figura 3</a>).<sup>54</sup> Este sistema es completamente artificial, sin poros ni sistemas de transporte activo, y presenta la ventaja sobre las MAI al no requerir cuantificar a los f&aacute;rmacos por CLAR (Cromatograf&iacute;a L&iacute;quida de Alta Resoluci&oacute;n). Sin embargo, &eacute;ste al igual que las anteriores no contempla las condiciones del metabolismo y otros mecanismos de transporte tales como el eflujo y el transporte paracelular.<sup>55,56</sup> Algunos de los factores a considerar al momento de implementar este modelo son que el an&aacute;lisis e interpretaci&oacute;n de los resultados debe hacerse de manera cuidadosa, se debe plantear correctamente la estrategia para utilizar, implementar e integrar las condiciones de an&aacute;lisis m&aacute;s &oacute;ptimas.<sup>57</sup> A pesar de esto, su simplicidad, costo, y amplio rango de pH de trabajo, ha hecho a este modelo atractivo para su implementaci&oacute;n rutinaria en el descubrimiento de f&aacute;rmacos,<sup>58</sup> por lo que se ha buscado mejorar continuamente la correlaci&oacute;n de &eacute;ste con los valores obtenidos en modelos celulares e in vivo.<sup>59</sup></font></p>  	     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="../img/revistas/rmcf/v43n1/a3f3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>3) Modelos empleando L&iacute;neas Celulares</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una de las principales ventajas de los cultivos celulares es que cuando se cultivan en forma de monocapas presentan un comportamiento polarizado que permite simular las condiciones del intestino. La mayor&iacute;a de estos modelos intestinales se obtienen de l&iacute;neas de c&eacute;lulas inmortalizadas que derivan de c&eacute;lulas normales y de tumores inducidos de c&aacute;ncer de colon humano. Estas &uacute;ltimas son muy utilizadas porque se diferencian y r&aacute;pidamente forman monocapas confluentes y polarizadas.<sup>60,61</sup> Una desventaja que presentan estos modelos es la heterogeneidad de las l&iacute;neas celulares utilizadas, as&iacute; como tambi&eacute;n las diferentes metodolog&iacute;as utilizadas para realizar las determinaciones, lo cual ha llevado a que un mismo f&aacute;rmaco presente diferentes valores de permeabilidad.<sup>62</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>L&iacute;neas celulares MDCK (Madin Darby Canine Kidney)</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta es una de las l&iacute;neas m&aacute;s estudiadas en cuanto a su gen&eacute;tica, composici&oacute;n lip&iacute;dica, expresi&oacute;n de prote&iacute;nas y otros par&aacute;metros; siendo utilizada en los &uacute;ltimos a&ntilde;os en estudios de transporte de mol&eacute;culas.<sup>63</sup> Esta l&iacute;nea celular establecida en los a&ntilde;os 50 presenta dos subclones: MDCK tipo I y tipo II.<sup>64</sup> Para los estudios de transporte se utilizan las tipo II, que al cultivarse en condiciones adecuadas, alcanzan confluencia en dos d&iacute;as y llegan a una fase estacionaria de crecimiento despu&eacute;s de siete d&iacute;as. Bajo condiciones est&aacute;ndar de cultivo forman monocapas polarizadas y desarrollan uniones estrechas similares a las intestinales.<sup>65</sup> A su vez, presenta numerosas ventajas sobre los cultivos de c&eacute;lulas Caco&#45;2, entre ellas, menores tiempos de cultivo, gran homogeneidad morfol&oacute;gica y resistencia el&eacute;ctrica transepitelial (TEER) parecida a la del intestino delgado (&#8776; 200&#45;300 &#937;/cm2).<sup>66</sup> Diversos estudios han demostrado una buena correlaci&oacute;n entre los coeficientes de permeabilidad en c&eacute;lulas MDCK y Caco&#45;2.<sup>67,68</sup> Los coeficientes de permeabilidad de compuestos hidrof&iacute;licos son usualmente menores en las l&iacute;neas celulares Caco&#45;2 que en c&eacute;lulas MDCK, lo cual es consistente con el hecho de que la TEER de las Caco&#45;2 es mayor que el de las MDCK. El origen canino de esta l&iacute;nea celular es considerado como una desventaja, adem&aacute;s de que la expresi&oacute;n de sus transportadores intestinales no est&aacute; totalmente caracterizada. Aun as&iacute;, actualmente se siguen desarrollando m&eacute;todos para mejorar la correlaci&oacute;n de los resultados obtenidos con este modelo con los obtenidos in vivo.<sup>69</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>L&iacute;neas celulares Caco&#45;2</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las c&eacute;lulas Caco&#45;2 son una l&iacute;nea celular de adenocarcinoma de colon humano que ha sido utilizada ampliamente para predecir la absorci&oacute;n intestinal de potenciales candidatos a f&aacute;rmacos.<sup>70</sup> Este modelo presenta caracter&iacute;sticas semejantes a las de intestino humano (uniones estrechas y microvillus), expresa enzimas intestinales (aminopeptidasas, estearasas, sulfatasas, y citocromo P450), y transportadores (de &aacute;cidos biliares, de amino&aacute;cidos, de biotina, de &aacute;cidos monocarbox&iacute;licos, PEPT1 y Pgp), simulando de manera muy completa los dos tipos de barreras para la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos: la bioqu&iacute;mica y la fisicoqu&iacute;mica (<a href="#f4">Figura 4</a>).</font></p>  	     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="../img/revistas/rmcf/v43n1/a3f4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta l&iacute;nea celular tiene la ventaja de que puede cultivarse sobre un soporte poroso o un filtro en el que se forma la monocapa celular polarizada en s&oacute;lo unos d&iacute;as y se diferencia en c&eacute;lulas intestinales de morfolog&iacute;a t&iacute;pica, que incluye la expresi&oacute;n de enzimas y la formaci&oacute;n de uniones estrechas. Esta l&iacute;nea ha reportado una alta correlaci&oacute;n con la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos en humanos (biodisponibilidad, absorci&oacute;n, efecto farmacol&oacute;gico),<sup>71</sup> por lo que su empleo se ha generalizado. Cabe mencionar que la heterogeneidad de las c&eacute;lulas Caco&#45;2 y las diferentes condiciones de cultivo utilizadas en cada laboratorio ha dado lugar a la selecci&oacute;n de diferentes poblaciones celulares que se conocen como tendencia fenot&iacute;pica, lo cual puede ser la causa de la gran variabilidad de resultados obtenidos por diferentes laboratorios.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Normalmente, las c&eacute;lulas se cultivan sobre un soporte de policarbonato. Crecen hasta una fase estacionaria despu&eacute;s de 10 d&iacute;as de cultivo y generalmente, los estudios de transporte se llevan a cabo despu&eacute;s de 21 d&iacute;as, cuando la expresi&oacute;n de transportadores y enzimas alcanza su m&aacute;ximo.<sup>72</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hoy en d&iacute;a existen nuevos protocolos que permiten alcanzar la diferenciaci&oacute;n de las c&eacute;lulas en un periodo de tiempo menor y en condiciones que facilitan su crecimiento. Asimismo se ha buscado optimizar la correlaci&oacute;n con los resultados in vivo, al cultivarlos en combinaci&oacute;n con otras l&iacute;neas celulares.<sup>73,74</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Resulta importante resaltar que los cultivos con l&iacute;neas Caco&#45;2 presentan algunas limitaciones que deben considerarse al momento de llevar a cabo los estudios. Dichas limitaciones se resumen en la <a href="../img/revistas/rmcf/v43n1/a3t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>.<sup>75</sup> Se han realizado estudios para tratar de mostrar la correlaci&oacute;n entre los estudios de permeaci&oacute;n en c&eacute;lulas Caco&#45;2 con estudios de absorci&oacute;n en ratas y de permeaci&oacute;n en humanos,<sup>76,77</sup> observ&aacute;ndose una buena correlaci&oacute;n para la mayor&iacute;a de los f&aacute;rmacos, siendo menor la correlaci&oacute;n para los f&aacute;rmacos transportados mayormente por v&iacute;a activa. Esto se puede explicar por el nivel variable de transportadores existente en los diferentes modelos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Otras l&iacute;neas celulares</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hasta el momento, las l&iacute;neas celulares m&aacute;s estudiadas, modificadas y utilizadas son las MDCK y las Caco&#45;2, sin embargo, se han desarrollado y estudiado otras l&iacute;neas celulares con el fin de contar con m&aacute;s opciones para la determinaci&oacute;n de la permeabilidad. Una de ellas, recientemente estudiada, ha sido la l&iacute;nea NCI&#45;N87, que tambi&eacute;n deriva de c&eacute;lulas carcinog&eacute;nicas humanas, y que ha sido propuesto recientemente como modelo para determinar la permeabilidad debido a los buenos resultados obtenidos.<sup>78</sup> A su vez, se han estudiado otras l&iacute;neas celulares, como la 2/4/A1 (cuya permeabilidad paracelular es equiparable a la que muestra el epitelio intestinal in vivo mostrando una buena correlaci&oacute;n con los datos de permeabilidad paracelular in vivo), las l&iacute;neas HT29, T84 e IEC&#45;18; sin embargo, el uso de &eacute;stas en la investigaci&oacute;n no se encuentra muy generalizado.<sup>79</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>4) Tejidos extra&iacute;dos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los tejidos intestinales extra&iacute;dos se han utilizado frecuentemente para estudiar la absorci&oacute;n intestinal de nutrientes y f&aacute;rmacos. En este sistema se aplica por un lado del tejido (mucosa o serosa) una soluci&oacute;n que contiene al f&aacute;rmaco. La tasa de absorci&oacute;n de f&aacute;rmaco se determina ya sea midiendo la cantidad desaparecida de f&aacute;rmaco de la soluci&oacute;n donadora o la aparici&oacute;n del mismo en el lado opuesto. Aunque var&iacute;an en complejidad y versatilidad, estas preparaciones de tejido comparten dos ventajas importantes: la integridad del tejido y la habilidad para determinar la absorci&oacute;n a trav&eacute;s de diferentes segmentos intestinales. Una desventaja en com&uacute;n es la viabilidad limitada de este tipo de preparaciones.<sup>7</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Perfusi&oacute;n en segmentos de intestino</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta metodolog&iacute;a consiste en perfundir regiones espec&iacute;ficas a lo largo del tracto intestinal, para lo cual se han desarrollado diferentes aproximaciones.<sup>80</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este sistema se calcula la permeabilidad al cuantificar la desaparici&oacute;n del compuesto del lumen intestinal donde, por lo general, se asume que el f&aacute;rmaco desaparecido es igual al f&aacute;rmaco absorbido.<sup>15</sup> Esta consideraci&oacute;n es v&aacute;lida cuando la captaci&oacute;n apical del f&aacute;rmaco es el paso limitante en la absorci&oacute;n del mismo, pero si se tiene en consideraci&oacute;n que la absorci&oacute;n del f&aacute;rmaco no es el &uacute;nico factor responsable de su desaparici&oacute;n esta consideraci&oacute;n podr&iacute;a ser enga&ntilde;osa.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">A diferencia de los animales completos, los intestinos perfundidos pueden usarse para estudiar diferencias segmentales en la absorci&oacute;n y metabolismo sin la interferencia de factores fisiol&oacute;gicos como el vaciamiento g&aacute;strico, el &aacute;rea superficial del segmento y/o el tiempo de tr&aacute;nsito intestinal. En general, esta t&eacute;cnica ofrece ventajas sobre los organismos completos mas no sobre sistemas <i>in vitro.</i> Algunas de sus desventajas son que requiere grandes cantidades del compuesto y que la determinaci&oacute;n de la absorci&oacute;n basada en la desaparici&oacute;n luminar es, como se mencion&oacute; anteriormente, potencialmente enga&ntilde;osa, adem&aacute;s de que el n&uacute;mero de segmentos intestinales que pueden obtenerse de un animal es limitado, sin embargo, tiene un gran valor para la elucidaci&oacute;n de mecanismos de transporte y para evaluar la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos cuya baja solubilidad requiere del uso de veh&iacute;culos complejos que no podr&iacute;an ser presentados en otros sistemas in vitro.<sup>7</sup> Cabe resaltar que &eacute;ste es el modelo que ofrece la forma m&aacute;s directa de medir la permeabilidad intestinal en humanos.<sup>80</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Intestino invertido</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Eacute;sta fue una de las primeras t&eacute;cnicas in vitro utilizadas para estudiar la absorci&oacute;n intestinal de f&aacute;rmacos.<sup>81</sup> Este modelo incluye a la mucosa y a las capas musculares subyacentes donde la presencia de la capa muscular puede inducir la acumulaci&oacute;n de f&aacute;rmaco y, en dado caso, dar lugar a una recuperaci&oacute;n pobre del mismo. Esta t&eacute;cnica fue muy popular hace algunas d&eacute;cadas, sin embargo, su uso en a&ntilde;os recientes se ha reducido en gran medida debido a las complicaciones que presenta en cuanto a la viabilidad de los tejidos por tiempos prolongados y a la poca reproducibilidad que se puede presentar, aun as&iacute;, todav&iacute;a se puede observar su implementaci&oacute;n en estudios para determinar la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos.<sup>7,9,82</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>5) Enterocitos aislados</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estas c&eacute;lulas se preparan cortando un segmento de intestino y tratando su superficie de mucosa con enzimas, agentes quelantes y/o mec&aacute;nicos, con el fin de disociar las c&eacute;lulas de los tejidos subyacentes. Esta t&eacute;cnica no es usada com&uacute;nmente porque su utilidad es limitada, el proceso de aislamiento de las c&eacute;lulas destruye a muchas de &eacute;stas y disminuye en gran medida su viabilidad.<sup>83</sup> Asimismo, al utilizarse en suspensi&oacute;n los enterocitos carecen de la polaridad que caracteriza a las c&eacute;lulas de la mucosa intestinal <i>in vivo.</i> Estas c&eacute;lulas pueden ser usadas para estudiar la captaci&oacute;n del f&aacute;rmaco pero no el transporte transepitelial o la polarizaci&oacute;n del transporte.<sup>7</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estudios <i>in vivo</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, se cree que la absorci&oacute;n de f&aacute;rmacos en animales es un buen predictor de la absorci&oacute;n en humanos, debido a que integran todos los factores biol&oacute;gicos que pueden afectar su absorci&oacute;n. Mientras que en los sistemas <i>in vitro</i> se debe establecer una correlaci&oacute;n con datos <i>in vivo,</i> este paso no es necesario cuando se usan animales. Una ventaja importante del empleo de animales es que las especies utilizadas en los estudios de absorci&oacute;n pueden utilizarse en las evaluaciones toxicol&oacute;gicas y farmacol&oacute;gicas, adem&aacute;s de que pueden emplearse para evaluar formulaciones complejas que ser&iacute;an muy dif&iacute;ciles de evaluar <i>in vitro.</i> Algunas de las desventajas de estos estudios incluyen la necesidad de cantidades relativamente grandes de material, la complejidad de los m&eacute;todos anal&iacute;ticos necesarios para el an&aacute;lisis de plasma, el consumo de tiempo, el intenso trabajo que se requiere para los experimentos y el hecho de que proveen poca informaci&oacute;n acerca de los mecanismos de absorci&oacute;n del f&aacute;rmaco.<sup>7</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los tiempos de vaciamiento g&aacute;strico son diferentes entre especies (en promedio en el humano, perro, conejo y rata son: 60, 40&#45;50, 30 y 10 min, respectivamente). Si un f&aacute;rmaco es absorbido principalmente en el intestino, este llegar&aacute; a la sangre m&aacute;s r&aacute;pido en la rata que en el humano, como resultado del vaciamiento g&aacute;strico, lo que favorece su absorci&oacute;n. Asimismo, el pH del tracto gastrointestinal puede ser diferente entre especies. Las ratas y el humano son buenos secretores de &aacute;cido, sin embargo el perro y gato secretan menores cantidades. Si la solubilidad del f&aacute;rmaco es pH dependiente, las diferencias en la solubilidad y velocidad con la que ocurra el proceso entre especies, modificara su absorci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso de ratas, debido a su amplio uso en los estudios farmacol&oacute;gicos y toxicol&oacute;gicos, ha llevado a que actualmente existan amplias bases de datos que pueden ser &uacute;tiles para realizar predicciones. Los ratones modificados gen&eacute;ticamente para generar &oacute;rganos humanizados resultan muy atractivos para los estudios tanto farmacol&oacute;gicos como farmacocin&eacute;ticos.<sup>84</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estrategia de evaluaci&oacute;n de f&aacute;rmacos</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El reciente desarrollo de las membranas en paralelo ha prove&iacute;do de un m&eacute;todo simple, de bajo costo y de amplia selectividad para evaluar la permeabilidad. Este sistema en conjunto con los ensayos de permeabilidad en l&iacute;neas celulares permite el diagn&oacute;stico a fondo de las causas de la baja absorci&oacute;n de un f&aacute;rmaco. Actualmente, existe una tendencia en la industria a usar membranas en paralelo como primera estrategia de investigaci&oacute;n de permeabilidad y usar las l&iacute;neas celulares como ensayos secundarios para estudios mecan&iacute;sticos y con prop&oacute;sitos de diagn&oacute;stico.<sup>35</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El empleo de los ensayos de permeabilidad en membranas artificiales y de l&iacute;neas celulares puede llevarse a cabo durante todas las etapas de desarrollo de un nuevo medicamento, ya que ambas t&eacute;cnicas proporcionan informaci&oacute;n relevante sobre la permeaci&oacute;n y juntas proporcionan informaci&oacute;n mecan&iacute;stica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s, la estrategia de emplear de manera conjunta los resultados de estudios de permeabilidad con PAMPA y con c&eacute;lulas Caco&#45;2, permite una estimaci&oacute;n temprana de los principales mecanismos de absorci&oacute;n predominantes para una mol&eacute;cula candidata a f&aacute;rmaco (<a href="#f5">Figura 5</a>). Cabe se&ntilde;alar que PAMPA y Caco&#45;2 no deben ser considerados como m&eacute;todos de permeabilidad competitivos, ya que las caracter&iacute;sticas de las PAMPA: rapidez, bajo costo y estudios de permeabilidad sencillos (difusi&oacute;n pasiva), son de gran valor en el descubrimiento de f&aacute;rmacos; mientras que las caracter&iacute;sticas de las c&eacute;lulas Caco&#45;2, con mayor detalle de los mecanismos de permeabilidad, funcionan mejor para estudios de mayor profundidad. Una buena correlaci&oacute;n entre PAMPA y Caco&#45;2 indica un predominio de la difusi&oacute;n pasiva durante la permeaci&oacute;n, mientras que la falta de correlaci&oacute;n indica efectos significativos en la absorci&oacute;n (transporte activo, paracelular, efectos de gradiente, etc.) o en la excreci&oacute;n (eflujo, efectos de gradiente, metabolismo).<sup>35</sup></font></p>  	     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="../img/revistas/rmcf/v43n1/a3f5.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Perspectivas en el desarrollo de nuevos f&aacute;rmacos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por varios a&ntilde;os, la estrategia de la industria farmac&eacute;utica para el proceso de descubrimiento de un nuevo f&aacute;rmaco ha consistido en hacer, lo m&aacute;s pronto posible, predicciones acerca de las propiedades relacionadas con la ADME. Se ha propuesto que dichas propiedades puedan ser precedidas por un tamizado farmacol&oacute;gico,<sup>85</sup> sin embargo, para alcanzar dicha meta, se requiere de un sistema que prediga dichas propiedades ADME con un alto nivel de confianza, ya sea por la utilizaci&oacute;n de m&eacute;todos <i>in s&iacute;lico,</i> estudios en PAMPA y/o en l&iacute;neas celulares.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las decisiones sobre el potencial de absorci&oacute;n de los nuevos candidatos a f&aacute;rmacos deber&aacute;n estar basadas en varios sistemas en paralelo de alto desempe&ntilde;o que eval&uacute;en cada mecanismo de absorci&oacute;n o en un sistema sofisticado que incorpore a cada mecanismo de absorci&oacute;n. En este &uacute;ltimo caso, el mayor desaf&iacute;o es obtener una alta eficiencia y desempe&ntilde;o.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los "modelos tradicionales" para la evaluaci&oacute;n del potencial de absorci&oacute;n, tales como los estudios en animales y estudios <i>in situ</i> de perfusi&oacute;n intestinal continuar&aacute;n siendo herramientas invaluables debido a que han demostrado resultados confiables en la predicci&oacute;n de la absorci&oacute;n intestinal en humanos. A su vez, la estandarizaci&oacute;n de los modelos de absorci&oacute;n es deseable para poder generar bases de datos de absorci&oacute;n, las cuales puedan ser compartidas entre grupos de investigaci&oacute;n para continuar as&iacute; con el desarrollo de modelos de absorci&oacute;n de alto desempe&ntilde;o.<sup>86</sup></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Internacionalmente, se ha establecido la importancia de determinar el grado de solubilidad y permeaci&oacute;n de f&aacute;rmacos como un elemento primordial para establecer su clasificaci&oacute;n y con esto, evidenciar una t&eacute;cnica alternativa para valorar la intercambiabilidad de los medicamentos.<sup>87,88</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A partir de los modelos de absorci&oacute;n presentados a lo largo de este trabajo, se puede determinar la permeabilidad de un f&aacute;rmaco considerando que dichos modelos presenten un alto grado de aproximaci&oacute;n al fen&oacute;meno de absorci&oacute;n. La inclusi&oacute;n sistematizada de los estudios de permeabilidad como modelos de la absorci&oacute;n en el desarrollo de medicamentos representar&iacute;a un aporte para la eficacia, seguridad y desempe&ntilde;o de los productos farmac&eacute;uticos que se comercializan o se quieran comercializar en el pa&iacute;s. De la misma manera, la implementaci&oacute;n de este tipo de pruebas podr&iacute;a repercutir en la sustituci&oacute;n de algunos estudios de bioequivalencia, tal como sucede en otros pa&iacute;ses como Estados Unidos y Europa, haciendo el registro legal de algunos productos m&aacute;s r&aacute;pido y menos costoso.<sup>87,88,89</sup></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Juan M. Mart&iacute;nez Alejo agradece el apoyo CONACYT para realizar sus estudios de doctorado. Los investigadores agradecen el apoyo a trav&eacute;s del proyecto CB&#45;2007&#45;83440.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1.&nbsp;Wilson C, Washington N, Washington C. Cell membranes, epithelial barriers and drug absorption. En: Physiological Pharmaceutics. New York: CRC Press; 2001. pp. 1&#45;18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908717&pid=S1870-0195201200010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2.&nbsp;Dahan A, Miller J, Amidon G. Prediction of solubility and permeability class membership: provisional BCS classification of the world's top oral drugs. AAPS J. 2009; 11(4):740&#45;746.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908719&pid=S1870-0195201200010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3.&nbsp;Lipper R. How can we optimize selection of drug development candidates from many compounds at the discovery stage? Mod Drug Disc. 1999; 2:55&#45;60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908721&pid=S1870-0195201200010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4.&nbsp;Venkatesh S, Lipper R. Role of the development scientist in compound lead selection and optimization. J Pharm Sci. 2000; 89:145&#45;1544.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908723&pid=S1870-0195201200010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5.&nbsp;Kerns E. High throughput physicochemical profiling for drug discovery. J Pharm Sci. 2001; 90:1838&#45;1858.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908725&pid=S1870-0195201200010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6.&nbsp;Aungst B. Intestinal permeation enhancers. J Pharm Sci. 2000; 89:429&#45;442.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908727&pid=S1870-0195201200010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7.&nbsp;Hidalgo I. Assessing the absorption of new pharmaceuticals. Curr Top Med Chem. 2001; 1:385&#45;401.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908729&pid=S1870-0195201200010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8.&nbsp;Dressman J, Lennern&auml;s H, editores. Oral drug absorption: prediction and assesment. Serie: Drugs and pharmaceuticals sciences. In vitro methods for assesment permeability. New York: Marcel Dekker; 1997.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908731&pid=S1870-0195201200010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9.&nbsp;Yang Z, Manitpisitkul P, Sawchuk R. In situ studies of regional absorption of lobucavir and ganciclovir from rabbit intestine and predictions of dose&#45;limited absorption and associated variability in humans. J Pharm Sci. 2006; 95(10):2276&#45;2292.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908733&pid=S1870-0195201200010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10.&nbsp;Lennern&auml;s H. Human instestinal permeability. J Pharm Sci. 1998; 87(4):403&#45;410.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908735&pid=S1870-0195201200010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11.&nbsp;Joyce N, Haire M, Palade G. Morphological and biochemical evidence for a contractile cell network within the rat intestinal mucosa. Gastro. 1987; 92:68&#45;81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908737&pid=S1870-0195201200010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12.&nbsp;Avdeef A. Absorption and drug development: solubility, permeability, and charge State. 1<sup>a</sup> Ed. New Jersey: Wiley&#45;Interscience; 2003, p. 17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908739&pid=S1870-0195201200010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13.&nbsp;Madara J, Pappenheimer J. Structural basis for physiological regulation of paracellular pathways in intestinal epithelia. J Membr Biol. 1987; 100:149&#45;164.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908741&pid=S1870-0195201200010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14.&nbsp;McCracken V, Lorenz R. The gastrointestinal ecosystem: a precarious alliance among epithelium, immunity and microbiota. Cell Microbiol. 2001; 3(1):1&#45;11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908743&pid=S1870-0195201200010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Stenberg P, Bergstr&ocirc;m    C, Luthman K, Artursson P. Theoretical predictions of drug absorption in drug    discovery and development. Clin Pharmacokinet. 2002; 41(11):877&#45;899.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908745&pid=S1870-0195201200010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Pappenheimer J, Reiss K. Contribution of solvent drag through intercellular junctions to absorption of nutrients by the small intestine of the rat. J Membr Biol. 1987; 100:123&#45;136.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908747&pid=S1870-0195201200010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17.&nbsp;Murashini S. Absorption enhancers. Crit Rev Ther Drug Carrier Syst. 1990; 7:1&#45;33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908749&pid=S1870-0195201200010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18.&nbsp;Stenberg P, Luthman K, Artursson P. Virtual screening of intestinal drug permeability. J Contr Rel. 2000; 65:231&#45;43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908751&pid=S1870-0195201200010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19.&nbsp;Kr&acirc;mer S. Absorption prediction from physicochemical parameters. Pharmaceut Sci Tech Today. 1999; 2:373&#45;80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908753&pid=S1870-0195201200010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20.&nbsp;Field M. Intestinal ion transport and the pathophysiology of diarrhea. J Clin Invest. 2003; 7:931&#45;943.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908755&pid=S1870-0195201200010000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21.&nbsp;Ward P, Tippin T, Thakker D. Enhancing paracellular permeability by modulating epithelial tight junctions. Pharm Sci Technol To. 2000; 3(10):346&#45;358.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908757&pid=S1870-0195201200010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22.&nbsp;Ahrne S, Johansson M. Effect of lactobacilli on paracellular permeability in the gut. Nutrients. 2011; 3(1):104&#45;117.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908759&pid=S1870-0195201200010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23.&nbsp;Hanson P, Moran A, Butler K. Paracellular permeability is increased by basal lipopolysaccharide in a primary culture of colonic epithelial cells; an effect prevented by an activator of Toll&#45;like receptor&#45;2. Innate Inmun. 2011; 17(3):269&#45;282.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908761&pid=S1870-0195201200010000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24.&nbsp;Cao X, Yu L, Sun D. Drug absorption principles. En: Krishna R, Yu L, editores, Biopharmaceutics applications in drug development. New York: Springer; 2008. pp. 75&#45;100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908763&pid=S1870-0195201200010000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25.&nbsp;Carl S, Herrera&#45;Ruiz D, Bhardwaj R, Gudmundsson O, Knipp G. Mammalian oligopeptide transporters. En: You G, Morris ME, editores. Drug transporters. 1st ed. New Jersey: John Wiley and Sons; 2007. pp.105&#45;146.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908765&pid=S1870-0195201200010000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26.&nbsp;Humphrey M, Ringrose P. Peptides and related drugs. A review of their absorption, metabolism, and excretion. Drug Metab Rev. 1986; 17:283&#45;310.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908767&pid=S1870-0195201200010000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27.&nbsp;Hu M, Amidon G. Passive and carrier&#45;mediated intestinal absorption components of captopril. J Pharm Sci. 1998; 77:1007&#45;1011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908769&pid=S1870-0195201200010000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28.&nbsp;Kramer W, Girbig F, Gutjahr U, Kleemann H, Leipe I, Urbach H, Wagner A. Interaction of rennin inhibitors with the intestinal uptake system for oligopeptides and beta&#45;lactam antibiotics. Biochim Biophys Acta. 1990; 1027:25&#45;30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908771&pid=S1870-0195201200010000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29.&nbsp;Herrera&#45;Ruiz D, Knipp G. Current perspectives on established and putative mammalian oligopeptide transporters. J Pharm Sci. 2003; 92(4):691&#45;714.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908773&pid=S1870-0195201200010000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30.&nbsp;Clark S. The ingestion of proteins and colloidal materials by columnar absorptive cells of the small intestine in suckling rats and mice. J Biophys Biochem Cytol. 1959; 5:41&#45;50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908775&pid=S1870-0195201200010000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31.&nbsp;Rodewald R, Kraehenbuhl J. Receptor&#45;mediated endocytosis of IgG. J Cell Bio. 1984; 99:159S&#45;164S.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908777&pid=S1870-0195201200010000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32.&nbsp;Mostov K, Simister N. Transcytosis. Cell, 1985; 43:389&#45;390.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908779&pid=S1870-0195201200010000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33.&nbsp;Lauretta M, Simon L, Barry H. The ABCs of drug transport in intestine and liver: efflux proteins limiting drug absorption and bioavailability. Eur J Pharm Sci. 2004; 21:25&#45;51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908781&pid=S1870-0195201200010000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">34.&nbsp;Castella M, Reist M, Mayer J, turban J, Testa B, Boursier C, Walther B, Delbos J, Carrupt P. Development of an in vitro rat intestine segmental perfusion model to investigate permeability and predict oral fraction absorbed. Pharm Res. 2006; 23(7):1543&#45;1553.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908783&pid=S1870-0195201200010000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">35.&nbsp;Di L, Kerns E. Profiling drug&#45;like properties in discovery research. Curr Opin Chem Biol. 2003; 7:402&#45;408.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908785&pid=S1870-0195201200010000300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">36. Clark D. Computational methods for the prediction of ADME and toxicity. Adv Drug Deliv Rev. 2002; 54:253&#45;254.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908787&pid=S1870-0195201200010000300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">37.&nbsp;Mudra D, Jin J, Borchardt R. Absorption barriers in the rat intestinal mucosa: 2. Application of physiologically based mathematical models to quantify mechanisms of drug permeation and metabolism. J Pharm Sci. 2010; 99(2):999&#45;1015.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908789&pid=S1870-0195201200010000300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">38.&nbsp;Poulin P, Jones R, Jones H, Gibson C, Rowland M, Chien J, Ring B, Adkison K, Ku M, He H, Vuppugalla R, Marathe P, Fischer V, Dutta S, Sinha V, Bj&ouml;rnsson T, Lav&eacute; T, Yates J. PHRMA CPCDC initiative on predictive models of human pharmacokinetics, part 5: prediction of plasma concentration&#45;time profiles in human by using the physiologically&#45;based pharmacokinetic modeling approach. J Pharm Sci. 2011. DOI 10.1002/jps.22550.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908791&pid=S1870-0195201200010000300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">39.&nbsp;Bohets H, Annaert P, Mannens G, Van&#45;Beijsterveldt L, Anciaux K, Verboven P, Meuldermans W, Lavrijsen K. Strategies for absorption screening in drug discovery and development. Curr Top Med Chem. 2001; 1:367&#45;383.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908793&pid=S1870-0195201200010000300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">40.&nbsp;Parrott N, Lave T. Applications of physiologically based absorption models in drug discovery and development. Mol Pharm. 2008; 5(5):760&#45;775.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908795&pid=S1870-0195201200010000300040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">41.&nbsp;Heikkinen A, Korjamo T, M&ouml;nkk&ouml;nen J. Modelling of drug disposition kinetics in in vitro intestinal absorption cell models. Basic Clin Pharmacol. 2009; 106:180&#45;188.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908797&pid=S1870-0195201200010000300041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">42.&nbsp;Rowland M, Peck C, Tucker G. Physiologically&#45;based pharmacokinetics in drug development and regulatory science. Annu Rev Pharmacol toxicol. 2011; 51:45&#45;73.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908799&pid=S1870-0195201200010000300042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">43.&nbsp;Volpe D. Application of method suitability for drug permeability classification. AAPS J. 2010; 12(4):670&#45;678.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908801&pid=S1870-0195201200010000300043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">44.&nbsp;Stewart B, Chan O, Lu H, Reyner E, Schmid H, Hamilton H, Steinbaugh B, Taylor M. Comparison of Intestinal Permeabilities Determined in Multiple in vitro and in situ Models: Relationship to Absorption in Humans. Pharm Res. 1995; 12(5):693&#45;699.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908803&pid=S1870-0195201200010000300044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">45.&nbsp;Austin R, Barton P, Davis A, Fessey R, Wenlock M. Partitioning of ionizing molecules between aqueous buffers and phospholipids vesicle. J Pharm Sci. 1995; 84:1180&#45;1183.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908805&pid=S1870-0195201200010000300045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">46.&nbsp;Herbette L, Rhodes D, Mason R. New approaches to drug design and delivery based on drug&#45;membrane interactions. Drug Des Del. 1991; 7:75&#45;118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908807&pid=S1870-0195201200010000300046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">47.&nbsp;Mason R, Rhodes D, Herbette L. Reevaluating equilibrium and kinetic binding parameters from lipophilic drugs based on a structural model for drug interaction with biological membranes. J Med Chem. 1991; 34:869&#45;877.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908809&pid=S1870-0195201200010000300047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">48.&nbsp;Luciani D, Nguyen L, Yazdanian M. Is PAMPA a useful tool for discovery? J Pharm Sci. 2007; 96(11):2886&#45;2892.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908811&pid=S1870-0195201200010000300048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">49.&nbsp;Kansy M, Senner F, Gubernator K. Physicochemical high throughput screening: Parallel artificial membrane permeability assay in the description of passive absorption processes. J Med Chem. 1998; 41:1007&#45;1010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908813&pid=S1870-0195201200010000300049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">50.&nbsp;Avdeef A, Strafford M, Block E, Balogh M, Chambliss W, Khan I. Drug absorption in vitro model: filter&#45;immobilized artificial membranes 2. Studies of the permeability properties of lactones in Piper methysticum forst. Eur J Pharm Sci. 2001; 14: 271&#45;280.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908815&pid=S1870-0195201200010000300050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">51.&nbsp;Aungst B, Nguyen N, Bulgarelli J, Oates&#45;Lenz K. The influence of donor and reservoir additives on Caco&#45;2 permeability and secretory transport of HIV protease inhibitors and other lipophilic compounds. Pharm Res. 2000; 17:1175&#45;1180.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908817&pid=S1870-0195201200010000300051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">52.&nbsp;Lipinski C, Lombardo F, Dominy B, Feeney P. Experimental and computational approaches to estimate solubility and permeability in drug discovery and development settings. Adv Drug Deliv Rev. 2001; 46:3&#45;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908819&pid=S1870-0195201200010000300052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">53.&nbsp;Hwang K, Martin N, Jiang L, Zhu C. Permeation prediction of M100240 using the parallel artificial membrane permeability assay. J Pharm Pharm Sci. 2003; 6(3):315&#45;320.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908821&pid=S1870-0195201200010000300053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">54.&nbsp;Kansy M, Senner F, Gubernator K. Physicochemical high throughput screening: Parallel artificial membrane permeability assay in the description of passive absorption processes. J Med Chem. 1998; 41:1007&#45;1010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908823&pid=S1870-0195201200010000300054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">55.&nbsp;Thompson M, Krull U, Worsfold P. The structure and electrochemical properties of a polymer&#45;supported lipid biosensor. Anal Chim Acta. 1980; 117:133&#45;145.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908825&pid=S1870-0195201200010000300055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">56.&nbsp;Thompson M, Lennox R, McClelland R. Structure and electrochemical properties of microfiltration filter&#45;lipid membrane systems. Anal Chem. 1982; 54:76&#45;81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908827&pid=S1870-0195201200010000300056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">57.&nbsp;Avdeef A, Bendels S, Di L, Faller B, Kansky M, Sugano K, Yamauchi Y. PAMPA&#45;critical factors for better predictions of absorption. J Pharm Sci. 2007; 96(11):2893&#45;2909.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908829&pid=S1870-0195201200010000300057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">58.&nbsp;Hwang K, Martin N, Jiang L, Zhu C. Permeation prediction of M100240 using the parallel artificial membrane permeability assay. J Pharm Pharm Sci. 2003; 6(3):315&#45;320.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908831&pid=S1870-0195201200010000300058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">59.&nbsp;Chen X, Murawski A, Patel K, Crespi C, Balimane P. A novel design of artificial membrane for improving the PAMPA model. Pharm Res. 2008; 25(7):1511&#45;1520.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908833&pid=S1870-0195201200010000300059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">60.&nbsp;Burton P, Toodwin T. Solubility and permeability measurement and applications in drug discovery. Comb Chem High T Scr. 2010; 13:101&#45;111.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908835&pid=S1870-0195201200010000300060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">61.&nbsp;Avdeef A, Tam K. How well can the Caco&#45;2/Madin&#45;Darby Canine Kidney models predict effective human jejunal permeability? J Med Chem. 2010; 53:3566&#45;3584.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908837&pid=S1870-0195201200010000300061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">62. Volpe D. Variability in Caco&#45;2 and MDCK cell&#45;based intestinal permeability assays. J Pharm Sci. 2008; 97(2):712&#45;725.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908839&pid=S1870-0195201200010000300062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">63. Irvine J, Takahashi I, Lockhart K, Cheong J, Tolan J, Selick H, Grove J. MDCK cells: a tool for membrane permeability screening. J Pharm Sci. 1999; 88:28&#45;33.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908841&pid=S1870-0195201200010000300063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">64.&nbsp;Braun A et. al. Cell cultures as tools in biopharmacy. Eur J Pharm Sci. 2000; 2:S51&#45;S60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908843&pid=S1870-0195201200010000300064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">65.&nbsp;Taub M, Kritensen L, Frokjaer S. Optimized conditions for MDCK permeability and turbidimetric solubility studies using compounds representative of BCS classes I&#45;IV. Eur J Pharm Sci. 2002; 15:331&#45;40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908845&pid=S1870-0195201200010000300065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">66.&nbsp;Richardson J, Scalera V, Simmons N. Identification of two strains of MDCK cells which resemble separate nephron tubule segments. Biochim Biophys Acta, 1981; 673: 26&#45;36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908847&pid=S1870-0195201200010000300066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">67.&nbsp;Kim D, Burton P, Bochardt R. A correlation between the permeability characteristics of a series of peptides using an in vitro cell culture model (Caco&#45;2) and those using an in situ perfused rat ileum model of the intestinal mucosa. Pharm Res. 1993; 10:1710&#45;1714.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908849&pid=S1870-0195201200010000300067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">68.&nbsp;Hidalgo I, Grass G, Hillgreen K, Borchardt R. A new side&#45;by&#45;side diffusion cell for studying transport across epithelial cell monolayers. In Vitro Cell Dev B. 1992; 28A:578&#45;580.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908851&pid=S1870-0195201200010000300068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">69.&nbsp;Di L, Whitney C, Umland J, Zhang H, zhan X, Gebhard D, Lai Y, Federico J, Davidson R, Smith R, Reyner E, Lee C, Feng B, Rotter C, Varma M, Kempshall S, Fenner K, El&#45;Kattan a, Liston T, Troutman M. Development of a new permeability assay using low&#45;efflux MDCKII cells. J Pharm Sci. 2011; doi:10.1002/jps.22674.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908853&pid=S1870-0195201200010000300069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">70.&nbsp;Hilgers A, Corandi A, Burton P, Caco&#45;2 cell monolayers as a model for drug transport across intestinal mucosa. Pharm Res. 1990; 7:902&#45;910.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908855&pid=S1870-0195201200010000300070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">71.Stewart B, Chan O, Lu R, Reyner E, Schmid H, Hamilton H, Steinbauch B, Taylor M. Comparison of intestinal permeabilities determined in multiple in vitro and in situ models: relationship to absorption in humans. Pharm Res. 1995; 12:693&#45;699.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908857&pid=S1870-0195201200010000300071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">72.&nbsp;Anderle P, Niederer E, Rubas W, Hilgendorf C, Spahn&#45;Langguth H, Wunderli&#45;Allenspach H, Merkle H, Langguth P. P&#45;Glycoprotein (P&#45;gp) mediated efflux in Caco&#45;2 cell monolayers: the influence of culturing conditions and drug exposure on P&#45;gp expression levels. J Pharm Sci. 1998; 87:757&#45;762.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908859&pid=S1870-0195201200010000300072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">73.&nbsp;Skolnik S, Lin X, Wang J, Chen X, He T, Zhang B. towards prediction of in vivo intestinal absorption using a 96&#45;well Caco&#45;2 assay. J Pharm Sci. 2010; 99(7):3246&#45;3265.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908861&pid=S1870-0195201200010000300073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">74.&nbsp;Hilgendorf C, Spahn H, Regardh C, Lipka E, Amidon g, Langguth. Caco&#45;2 versus Caco&#45;2/HT29&#45;MTX co&#45;cultured cell lines: permeabilities via diffusion, inside&#45; and outside&#45;directed carrier&#45;mediated transport. J Pharm Sci. 2000; 89:63&#45;75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908863&pid=S1870-0195201200010000300074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">75.&nbsp;Ingels F, Augustijns P. Biological, pharmaceutical, and analytical considerations with respect to the transport media used in the absorption screening system, Caco&#45;2. J Pharm Sci. 2003; 92:1545&#45;1558.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908865&pid=S1870-0195201200010000300075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">76.&nbsp;Bermejo M, Avdeef A, Ruiz A, Nalda R, Ruell J, Tsinman O, Gonz&aacute;lez I, Fern&aacute;ndez C, S&aacute;nchez G, Garrigues T, Merino V. PAMPA &#45; a drug absorption in vitro model: 7. Comparing rat in situ, Caco&#45;2, and PAMPA permeability of fluoroquinolones. Eur J Pharm Sci. 2004; 21:429&#151;441.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908867&pid=S1870-0195201200010000300076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">77.&nbsp;Alsenz J. and Haenel E. Development of a 7&#45;day, 96&#45;well Caco&#45;2 permeability assay with high&#45;throughput direct UV compound analysis. Pharm Res. 2003; 20(12):1961&#45;1969.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908869&pid=S1870-0195201200010000300077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">78.&nbsp;Lemieux M, bouchard F, Gosselin P, Paquin J, Mateescu M. The NCI&#45;N87 cell line as a gastric epithelial barrier model for drug permeability assay. Biochem Bioph Res Co. 2011, doi:10.1016/j.bbrc.2011.07.106.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908871&pid=S1870-0195201200010000300078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">79.&nbsp;Ungell A, Artursson P. Drug transport and absorption. En: Van de Waterbeemd H, Testa B, editors. Drug bioavailability, estimation of solubility, permeability, absorption and bioavailability. 2nd ed. Winheim: Wiley&#45;VCH; 2009:133&#45;160.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908873&pid=S1870-0195201200010000300079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">80.&nbsp;Lennern&auml;s H. Human intestinal permeability. J Pharm Sci. 1998; 87(4):403&#45;409.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908875&pid=S1870-0195201200010000300080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">81.&nbsp;Leppert P, Fix J. Use of everted intestinal rings for in vitro examination of oral absorption potential. J Pharm Sci. 1994; 83:976&#45;981.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908877&pid=S1870-0195201200010000300081&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">82.&nbsp;<a href="http://www.biomodels-group.com/synCro_p_bp.jpg" target="_blank">www.biomodels&#45;group.com/synCro_p_bp.jpg</a> (consultada 01 de agosto de 2011).</font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">83.&nbsp;Pinkus L. Separation and use of enterocytes. In Jakoby, W.B. ed., Methods in Enzymology. New York: Academic Press. 1975; 77:154&#45;162.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908880&pid=S1870-0195201200010000300082&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">84.&nbsp;Logan, C. Use of animals for the determination of absorption and bioavailability. En: Van de Waterbeemd H, Testa B, editores. Drug bioavailability, estimation of solubility, permeability, absorption and bioavailability. 2nd ed. Weinheim: Wiley&#45;VCH; 2009. p. 161&#45;184.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908882&pid=S1870-0195201200010000300083&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">85.&nbsp;Lipinski C. Drug&#45;like properties and the causes of poor solubility and poor permeability. J Pharmacol Toxicol Meth. 2000; 44:235&#45;249.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908884&pid=S1870-0195201200010000300084&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">86.&nbsp;Bohets H, Annaert P, Mannens G, Van Beijsterveldt L, Anciaux K, Verboven P, Meuldermans W, Lavrijsen K. Strategies for absorption screening in drug discovery and development. Curr Top Med Chem. 2001; 1:367&#45;383.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908886&pid=S1870-0195201200010000300085&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">87.&nbsp;World Health Organization. Proposal to waive in vivo bioequivalence requirements for WHO model list of essential medicines immediate&#45;release, solid oral dosage forms. Technical Report 2010 (937), 40th Report, Annex 8 of WHO Expert committee on specifications for pharmaceutical preparations.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908888&pid=S1870-0195201200010000300086&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">88.&nbsp;FDA&#45;CDER. Guidance for industry: Waiver of in vivo bioavailability and bioequivalence studies for immediate&#45;release solid oral dosage forms based on a biopharmaceutics classification system. 2000. URL: <a href="http://www.fda.gov/cder/guidance/3618fnl.pdf" target="_blank">http://www.fda.gov/cder/guidance/3618fnl.pdf</a> (Consultada Junio 2011).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908890&pid=S1870-0195201200010000300087&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">89.&nbsp;Rhodes C. Some observations on current and possible future developments in bioequivalency testing. Drug Dev Ind Pharm. 1999; 25(4):559&#45;562.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908892&pid=S1870-0195201200010000300088&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">90. Balimane PV, Pace E, Chong    S, Zhu M, Jemal M, Van Pelt CK. A novel high&#45;throughput automated chip&#45;based    nanoelectrospray tandem mass spectrometric method for PAMPA sample analysis.    J Pharm Biomed Anal. 2005;39:8&#45;16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7908894&pid=S1870-0195201200010000300089&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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