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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Producción de péptidos fijadores de calcio y hierro por Lactococcus lactis subsp. cremoris NCFB 712]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Lactococcus lactis is a bacteria with a high potential of bioactive peptide production. One of the most important activities of these peptides is metal chelating activity especially of calcium, iron and zinc. The aim of this work was evaluated the effect of pH on calcium and iron chelating peptides production in fermentations by Lactoccocus lactis subsp. cremoris NCFB 712. It was observed that during fermentation with pH control, the production of calcium binding peptides (0.28 mmol Ca2+ mg-¹ protein) was improved, with respect to fermentation without pH control (0.23 mmol Ca2+ mg-¹ protein). There is a correlation between proteolytic activity and calcium-binding activity by the supernatants of fermentations with or without pH control. As for the iron-binding activity was observed an increase in the fermentation with pH control with respect to fermentation without control, which was maintained as the initial binding activity characteristic of the milk proteins. It was found that the molecular weights of some of the peptides generated match with the sequence reported molecular weights and calcium and iron binding.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Biotecnolog&iacute;a</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Producci&oacute;n de p&eacute;ptidos fijadores de calcio y hierro por <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Calcium and iron binding peptides production by <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>C. Figueroa&#45;Hern&aacute;ndez<sup>1</sup>*, A. Cruz&#45;Guerrero<sup>1</sup>, G. Rodr&iacute;guez&#45;Serrano<sup>1</sup>, L. G&oacute;mez&#45;Ruiz<sup>1</sup>, M. Garc&iacute;a&#45;Garibay<sup>1,2</sup> y J. Jim&eacute;nez&#45;Guzm&aacute;n<sup>1</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Departamento de Biotecnolog&iacute;a Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana, Iztapalapa., Av. San Rafael Atlixco No. 186 Col. Vicentina, M&eacute;xico D.F. 09340, M&eacute;xico.</i>* Autora para la correspondencia. E&#45;mail: <a href="mailto:claudiafigueroa26@gmail.com">claudiafigueroa26@gmail.com</a> <i>Tel. +(52 55) 5804&#45;4720; Fax: +(52 55) 5804&#45;4712</i></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Departamento de Ciencias de la Alimentaci&oacute;n, Divisi&oacute;n de Ciencias Biol&oacute;gicas y de la Salud, Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana, Unidad Lerma. Av. Hidalgo Poniente 46, Colonia La Estaci&oacute;n, CP 52006, Lerma de Villada, Edo. de M&eacute;xico, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido 28 de Mayo 2012;    <br> 	Aceptado 5 de Julio 2012</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Lactococcus lactis</i> es una bacteria que presenta un alto potencial de generaci&oacute;n de p&eacute;ptidos bioactivos. Una de las actividades m&aacute;s importantes que ejercen los p&eacute;ptidos bioactivos es la fijaci&oacute;n de minerales como el calcio, hierro y zinc. El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto del pH en la producci&oacute;n de p&eacute;ptidos fijadores de calcio y hierro en fermentaciones con <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712. Se observ&oacute; que en la fermentaci&oacute;n con control de pH se favoreci&oacute; la producci&oacute;n de p&eacute;ptidos fijadores de calcio (0.28 mmoles de Ca<sup>2+</sup> mg&#45;<sup>1</sup> de prote&iacute;na), con respecto a la fermentaci&oacute;n sin control de pH (0.23 mmoles de Ca<sup>2+</sup> mg&#45;<sup>1</sup> de prote&iacute;na). Existe una correlaci&oacute;n entre la actividad proteol&iacute;tica y el calcio fijado por los sobrenadantes de las fermentaciones con y sin control de pH. En cuanto a la actividad fijadora de hierro se observ&oacute; un aumento en la fermentaci&oacute;n con control de pH con respecto a la fermentaci&oacute;n sin control, en la cual se mantuvo la actividad fijadora inicial propia de las prote&iacute;nas de la leche. Se encontr&oacute; que los pesos moleculares de algunos de los p&eacute;ptidos generados coinciden con los pesos moleculares de secuencias reportadas como fijadoras de calcio y hierro.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> p&eacute;ptidos bioactivos, <i>Lactococcus lactis,</i> hierro fijado, calcio fijado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Lactococcus lactis</i> is a bacteria with a high potential of bioactive peptide production. One of the most important activities of these peptides is metal chelating activity especially of calcium, iron and zinc. The aim of this work was evaluated the effect of pH on calcium and iron chelating peptides production in fermentations by <i>Lactoccocus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712. It was observed that during fermentation with pH control, the production of calcium binding peptides (0.28 mmol Ca<sup>2+</sup> mg&#45;<sup>1</sup> protein) was improved, with respect to fermentation without pH control (0.23 mmol Ca<sup>2+</sup> mg&#45;<sup>1</sup> protein). There is a correlation between proteolytic activity and calcium&#45;binding activity by the supernatants of fermentations with or without pH control. As for the iron&#45;binding activity was observed an increase in the fermentation with pH control with respect to fermentation without control, which was maintained as the initial binding activity characteristic of the milk proteins. It was found that the molecular weights of some of the peptides generated match with the sequence reported molecular weights and calcium and iron binding.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> bioactive peptides, <i>Lactococcus lactis,</i> iron&#45;binding, calcium&#45;binding.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>1 Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La deficiencia en la ingesta de algunos minerales como el calcio, hierro y zinc es un problema de salud a nivel mundial. Se ha visto que deficiencias en la ingesta de hierro pueden afectar a la mitad de la poblaci&oacute;n mundial, present&aacute;ndose en un 35% en los ni&ntilde;os y en un 42% en las mujeres. La deficiencia en la ingesta de hierro provoca problemas en el funcionamiento del sistema inmune (Bougl&eacute; y Bouhallab, 2006), mientras que la deficiencia en la ingesta de calcio puede provocar el desarrollo de osteoporosis. La osteoporosis afecta al 20% de las mujeres postmenop&aacute;usicas en EE.UU y a 7.8 millones a nivel mundial (Heaney, 2000). Es por ello que se buscan alternativas que permitan aumentar la fijaci&oacute;n de minerales en el cuerpo. Una de las alternativas son los p&eacute;ptidos fijadores de minerales. Los p&eacute;ptidos fijadores de minerales o caseinofosfop&eacute;ptidos (CPP) tienen la habilidad de aumentar la absorci&oacute;n del calcio y otros minerales divalentes como el hierro, el zinc y el magnesio ya que tienen la capacidad de formar complejos solubles con &eacute;stos. La actividad biol&oacute;gica de estos p&eacute;ptidos se debe a que contienen en su estructura tres serinas fosfatadas (SerP) formando la estructura ani&oacute;nica SerP&#45;SerP&#45;SerP&#45;Glu&#45;Glu (Kitts, 2006). La alta concentraci&oacute;n de cargas negativas de los CPP en especial, la de los grupos fosfatos fijados a los residuos de serina, son los sitios potenciales para la uni&oacute;n de los minerales. Se ha visto que la mayor&iacute;a de los p&eacute;ptidos fijadores de minerales son generados a partir de las case&iacute;nas pero tambi&eacute;n pueden ser producidos a partir de algunas prote&iacute;nas del suero como la <i>&#946;</i>&#45;lactoglobulina y la <i>&#945;</i>&#45;lactoalb&uacute;mina (Vegarud <i>y col.,</i> 2000). Estos p&eacute;ptidos se encuentran encriptados en la prote&iacute;nas de la leche y deben ser liberados para ser bioactivos (Vasiljevic y Shah, 2008), siendo la fermentaci&oacute;n de la leche con bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas proteol&iacute;ticas y algunas bacterias probi&oacute;ticas, uno de los m&eacute;todos para la obtenci&oacute;n de secuencias pept&iacute;dicas bioactivas (Figueroa&#45;Gonz&aacute;lez, 2010; Gonz&aacute;lez&#45;Olivares, 2011). Se han encontrado una gran cantidad de p&eacute;ptidos bioactivos en quesos y leches fermentadas, ya que durante la elaboraci&oacute;n de estos productos, las bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas utilizadas como cultivos iniciadores, degradan las prote&iacute;nas de la leche, debido a que cuentan con un sistema proteol&iacute;tico. Este sistema consta de tres componentes principales: la proteinasa ligada a pared celular (CEP o PrtP), sistemas de transporte de oligop&eacute;ptidos y amino&aacute;cidos y una gran cantidad de peptidasas, la gran mayor&iacute;a de ellas, situadas intracelularmente (Hayes <i>y col,</i> 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dos de los g&eacute;neros bacterianos m&aacute;s utilizados para la generaci&oacute;n de p&eacute;ptidos bioactivos durante el proceso de fermentaci&oacute;n de la leche son <i>Lactobacillus helveticus</i> y <i>Lactococcus lactis.</i> &Eacute;ste &uacute;ltimo es utilizado en la producci&oacute;n de diversos quesos y leches fermentadas. La mayor&iacute;a de los trabajos de producci&oacute;n de p&eacute;ptidos bioactivos, a partir del sistema proteol&iacute;tico de las bacterias &aacute;cido l&aacute;cticas, se enfocan a la producci&oacute;n de p&eacute;ptidos antihipertensivos y existen pocos trabajos que estudian la generaci&oacute;n de p&eacute;ptidos que presentan otro tipo de actividad, como la actividad fijadora de minerales. Por lo que el objetivo de este trabajo fue evaluar la producci&oacute;n de p&eacute;ptidos fijadores de calcio y hierro a partir de la fermentaci&oacute;n con <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712, bajo diferentes condiciones de pH. Se realiz&oacute; la fermentaci&oacute;n bajo dos condiciones de pH, una en la que se dej&oacute; evolucionar libremente el pH (fermentaci&oacute;n sin control de pH) y otra manteniendo el pH a 6.2, valor reportado como &oacute;ptimo para la proteinasa de pared celular (Kunji <i>y col.,</i> 1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>2 Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>2.1&nbsp; &nbsp; Microorganismo</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se emple&oacute; la cepa <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712 (Colecci&oacute;n Nacional de Bacterias en Alimentos, Reino Unido), la cual fue conservada en medio litmus milk (Difco<sup>TM</sup>, EUA) a 4&deg;C. El inoculo fue crecido en leche descremada en polvo (Alpura, M&eacute;xico) por 24 h a 30&deg;C obteniendo una concentraci&oacute;n final de 10<sup>8</sup> ufc/mL.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>2.2&nbsp; &nbsp; Fermentaci&oacute;n</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evaluaron dos condiciones de fermentaci&oacute;n en funci&oacute;n del pH: una manteniendo el pH a 6.2 (adicionando NaOH 10 N cada dos horas) y otra dejando que el pH disminuyera por efecto de los &aacute;cidos producidos por el microorganismo. La fermentaci&oacute;n se llev&oacute; a cabo en matraces Erlenmeyer de 1L con 600 mL de leche reconstituida al 20% (Figueroa&#45;Hern&aacute;ndez, 2007). La leche se pasteuriz&oacute; a 121&deg;C durante 5 minutos. El medio de fermentaci&oacute;n fue inoculado al 5% (v/v). Las fermentaciones se llevaron a cabo a 30&deg;C durante 28 h. Se tomaron muestras a las 0, 8, 16, 24 y 28 h. Se ajust&oacute; el pH de cada muestra a 9 (para solubilizar la case&iacute;na) y se centrifugaron a 25000xg por 30 min a 4&deg;C (centr&iacute;fuga Beckman J2&#45;MI, EUA), los sobrenadantes obtenidos se almacenaron a &#45;20&deg;C para realizar los an&aacute;lisis posteriores. Las fermentaciones fueron realizadas por duplicado y los an&aacute;lisis de los sobrenadantes por triplicado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>2.3&nbsp; &nbsp; Determinaci&oacute;n de calcio fijado</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para cuantificar la capacidad de fijaci&oacute;n de calcio de los hidrolizados de las fermentaciones se emple&oacute; la t&eacute;cnica reportada por Brown y Rydvist (1981) con ligeras modificaciones. Se mezclaron 2 mL de cloruro de calcio 5 mM con 1 mL de la muestra diluida (1:10) con soluci&oacute;n amortiguadora de fosfatos 0.05 M (pH 8). Se incub&oacute; la mezcla durante 30 min con agitaci&oacute;n de 100 rpm a 22&deg;C. Posteriormente se tom&oacute; una al&iacute;cuota de 10 <i>&#956;</i>L y se le adicion&oacute; 1 mL del reactivo de calcio arsenazo III (Diagnostic Chemical Limited, Canad&aacute;), finalmente se midi&oacute; la absorbancia a 650 nm (espectrofot&oacute;metro Shimadzu UV&#45;160, Jap&oacute;n) y se cuantific&oacute; el calcio no fijado. El calcio total se determin&oacute; tomando 10 <i>&#956;</i>L de cloruro de calcio 5 mM y se le adicion&oacute; 1 mL del reactivo de calcio arsenazo III. Se elabor&oacute; una curva patr&oacute;n de calcio (0&#45;100<i>&#956;</i>g mL&#45;<sup>1</sup>). El calcio fijado se determin&oacute; con la ecuaci&oacute;n 1.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmiq/v11n2/a5e1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde:</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>C</i><sub>0</sub> = Concentraci&oacute;n de calcio total</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>C</i><sub>1</sub> = Concentraci&oacute;n de calcio no fijado</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>2.4&nbsp; &nbsp; Determinaci&oacute;n de hierro fijado</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para cuantificar la capacidad de fijaci&oacute;n de hierro de los hidrolizados de las fermentaciones se us&oacute; la metodolog&iacute;a reportada por Hwang <i>y col.</i> (2001) con modificaciones menores: se tom&oacute; 0.1 mL de muestra y se mezcl&oacute; con 0.6 mL de agua desionizada, se adicion&oacute; 0.1 mL de FeCl<sub>2</sub>&#45;4H<sub>2</sub>0 (0.2mM). Se incub&oacute; a temperatura ambiente por 30 s. Se adicionaron 0.2 mL de ferrozina 1 mM (Sigma&#45;Aldrich, EUA). La mezcla de reacci&oacute;n se agit&oacute; y se dejo reposar por 10 minutos a temperatura ambiente. Se midi&oacute; la absorbancia a 562 nm y se calcul&oacute; la concentraci&oacute;n de hierro no fijado. Para la determinaci&oacute;n de hierro total se prepar&oacute; un testigo con todos los reactivos utilizados con excepci&oacute;n de la muestra. El hierro fijado por los hidrolizados se determin&oacute; con la ecuaci&oacute;n 2.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmiq/v11n2/a5e2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde:</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>C</i><sub>0</sub> = Concentraci&oacute;n de hierro total</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>C</i><sub>1</sub> <i>=</i> Concentraci&oacute;n de hierro no fijado</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>2.5 Determinaci&oacute;n de prote&iacute;na</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de prote&iacute;na se realiz&oacute; por el m&eacute;todo de Lowry (1951) con algunas modificaciones. Se mezclaron 100 <i>&#956;</i>L de la muestra con 100 <i>&#956;</i>L de buffer de fosfatos (0.1M), se le adicion&oacute; un lml de reactivo de Lowry, el cual fue previamente preparado con 49 mL de Na<sub>2</sub>CO<sub>3</sub> al 2% en NaOH 0.1 M, 0.5 mL de CuSCm al 1% y 0.5 mL de tartrato de sodio y potasio (NaKC<sub>4</sub>H<sub>4</sub>O<sub>6</sub>) al 1%. La soluci&oacute;n fue incubada a temperatura ambiente durante 30 minutos. Posteriormente se le adicionaron 100 <i>&#956;</i>L de reactivo de Folin (Hycel, M&eacute;xico). La reacci&oacute;n nuevamente fue incubada durante 30 minutos a temperatura ambiente. Finalmente se ley&oacute; la absorbancia a 595 nm. Se elabor&oacute; una curva patr&oacute;n de seroalb&uacute;mina bovina (0&#45;100 <i>&#956;</i>g mL<sup>&#45;1</sup>).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>2.6 Determinaci&oacute;n de actividadproteol&iacute;tica</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se determin&oacute; por el incremento de grupos amino libres (Adler, 1979). Se mezclaron 2 mL de buffer de fosfatos pH 8.2 con 250 <i>&#956;</i>L de muestra, posteriormente la mezcla fue agitada vigorosamente y se le adicionaron 2 mL de la soluci&oacute;n de &aacute;cido trinitrobencensulf&oacute;nico (TNBS) al 0.1% (Fluka, Buchs, Suiza). La mezcla de reacci&oacute;n fue agitada y se incub&oacute; a una temperatura de 50&deg;C durante 60 minutos. Los tubos de reacci&oacute;n se mantuvieron aislados de la luz. Para detener la reacci&oacute;n se adicionaron 4 mL de HC1 0.1N. Se ley&oacute; la absorbancia a 340 nm. Se elabor&oacute; una curva patr&oacute;n utilizando una soluci&oacute;n de glicina 3mM con 1% de SDS.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>2.7 Estimaci&oacute;n del peso molecular de los p&eacute;ptidos generados</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; una cromatograf&iacute;a de exclusi&oacute;n molecular para estimar el peso molecular de los p&eacute;ptidos generados durante las fermentaciones con un cromatografo (Lab Alliance, EUA) y un detector de arreglo de diodos UV&#45;Visible (SpectraSystem UV6000 LP, EUA). La columna utilizada fue la BioSep SEC&#45;S&#45;2000 con un tama&ntilde;o de 300 x 7.80 mm (Phenomenex&reg;, EUA). Se utiliz&oacute; un buffer de fosfatos (0.1M, pH 6.8) como fase m&oacute;vil. El flujo de trabajo utilizado fue de 0.9 mL min<sup>&#45;1</sup>.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>2.8 An&aacute;lisis estad&iacute;stico</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realizaron pruebas de an&aacute;lisis de varianza (&#945;=0.05) con el programa estad&iacute;stico NCSS 2000 (Hintze, 2001) para determinar si exist&iacute;an diferencias significativas en el porcentaje de hierro fijado y la concentraci&oacute;n de calcio fijado durante las fermentaciones. Se estim&oacute; la correlaci&oacute;n existente entre la actividad proteol&iacute;tica y la concentraci&oacute;n de calcio fijado o el porcentaje de hierro fijado por los p&eacute;ptidos producidos durante las fermentaciones con el programa Office Excel 2007 (Microsoft, EUA).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>3 Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>3.1 Producci&oacute;n de p&eacute;ptidos fijadores de calcio</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se llevaron a cabo fermentaciones con dos diferentes condiciones de pH con <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712, a una de ellas se le control&oacute; el pH, al valor &oacute;ptimo de la proteinasa ligada a pared celular (pH = 6.2) (Kunji <i>y col.,</i> 1996), mientras que el pH en la fermentaci&oacute;n sin control vari&oacute; de 6.44 a 5.01 a las 28 h de fermentaci&oacute;n (<a href="#f1">Fig. 1</a>). Se evalu&oacute; el grado de fijaci&oacute;n de calcio de los sobrenadantes obtenidos de las fermentaciones, y se observ&oacute; un aumento en la concentraci&oacute;n de calcio que puede ser fijado por las muestras de la fermentaci&oacute;n con control de pH a partir de la octava hora de fermentaci&oacute;n hasta las 24 h. Este mismo efecto se observ&oacute; en la fermentaci&oacute;n sin control de pH pero en menor proporci&oacute;n. Esto se corrobor&oacute; al realizar el an&aacute;lisis estad&iacute;stico encontr&aacute;ndose que la concentraci&oacute;n de calcio fijado por los sobrenadantes de las fermentaciones es significativamente diferente a las 16, 24 y 28 h, siendo mayor la concentraci&oacute;n de calcio fijado en la fermentaci&oacute;n con control de pH. Las m&aacute;ximas concentraciones de calcio fijado fueron de 0.28 mmoles de Ca<sup>2+</sup> mg&#45;<sup>1</sup> de prote&iacute;na en la fermentaci&oacute;n con control de pH y de 0.23 mmoles de Ca<sup>2+</sup> mg&#45;<sup>1</sup> de prote&iacute;na para la fermentaci&oacute;n sin control de pH, ambos valores se alcanzaron a las 24 h de fermentaci&oacute;n. Se ha visto que el grado de fijaci&oacute;n de calcio al p&eacute;ptido se encuentra muy relacionada con el grado de fosforilaci&oacute;n de la case&iacute;na de la que se obtuvo el p&eacute;ptido, selecci&oacute;n de la enzima con la cual fueron obtenidos los fragmentos pept&iacute;dicos y de las condiciones en las que se llevan a cabo los estudios de interacci&oacute;n p&eacute;ptido&#45;mineral como: el pH, temperatura y fuerza i&oacute;nica (Kitts, 2006).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmiq/v11n2/a5f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En un trabajo realizado por Kim y Lim (2004) donde se estudi&oacute; el hidrolizado tr&iacute;ptico de prote&iacute;nas del suero de la leche, se encontr&oacute; que se producen p&eacute;ptidos fijadores de calcio con pesos moleculares entre 3.4 y 1.4 kDa. Los p&eacute;ptidos pueden fijar entre 0.1 a 2 mmoles de Ca<sup>2+</sup> mg&#45;<sup>1</sup> de prote&iacute;na. Por lo que las concentraciones de calcio fijado encontradas en esta investigaci&oacute;n con <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712 se encuentran dentro del intervalo de valores reportado por dichos autores.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dimitrov (2009) realiz&oacute; un estudio para determinar la capacidad fijadora de calcio de sobrenadantes ultrafiltrados de leches fermentadas con cepas de bacterias l&aacute;cticas, encontrando cepas que presentaban fracciones pept&iacute;dicas con mayor capacidad de fijaci&oacute;n de calcio, entre las cepas que mostraron tener una mayor actividad se hallaban cepas de <i>Lactobacillus helveticus, Lactococcus lactis</i> y <i>Lactobacillus casei;</i> la m&aacute;xima concentraci&oacute;n de calcio fijado por los sobrenadantes de <i>Lactococcus lactis</i> fue de 20.68 mmoles de Ca<sup>2+</sup> mL<sup>&#45;1</sup>. Se calcularon los valores de calcio fijado en las fermentaciones realizadas con <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712, los cuales van de 3.36 a 23.8 mmoles de Ca<sup>2+</sup> mL<sup>&#45;1</sup> en la fermentaci&oacute;n con control de pH y de 3.70 a 15.52 mmoles de Ca<sup>2+</sup> mL<sup>&#45;1</sup> para la fermentaci&oacute;n sin control de pH. Se observ&oacute; que los valores m&aacute;ximos obtenidos de calcio fijado por los sobrenadantes de las fermentaciones con control de pH son muy similares al obtenido por la cepa de <i>Lactococcus lactis</i> reportada por Dimitrov (2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se determin&oacute; la correlaci&oacute;n entre el calcio fijado y la actividad proteol&iacute;tica, debido a que se ha reportado que puede existir una correlaci&oacute;n entre la actividad proteol&iacute;tica y la actividad biol&oacute;gica de los p&eacute;ptidos (Pihlanto <i>y col.,</i> 2010). Se encontr&oacute; una correlaci&oacute;n de 0.967 para la fermentaci&oacute;n con control de pH (<a href="#f2">Fig. 2</a>) y de 0.830 para la fermentaci&oacute;n sin control de pH (<a href="#f3">Fig. 3</a>). Esto nos indica que la producci&oacute;n de p&eacute;ptidos fijadores de calcio est&aacute; relacionada con la actividad proteol&iacute;tica de la proteinasa de pared celular de <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmiq/v11n2/a5f2.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmiq/v11n2/a5f3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>3.2 Producci&oacute;n de p&eacute;ptidos fijadores de hierro</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se determin&oacute; el grado de fijaci&oacute;n del hierro de los sobrenadantes de las fermentaciones realizadas con <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712 (<a href="#f4">Fig. 4</a>), y se observ&oacute; que en las fermentaciones realizadas con control de pH se obtuvo un mayor porcentaje de hierro fijado que en las fermentaciones sin control de pH, lo cual se confirm&oacute; al realizar el an&aacute;lisis estad&iacute;stico encontr&aacute;ndose que existen diferencias significativas entre ambas fermentaciones en la concentraci&oacute;n de hierro fijado a las 8, 16 y 28 h.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmiq/v11n2/a5f4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el inicio de la fermentaci&oacute;n se observ&oacute; un alto porcentaje de hierro fijado (30%), debido a que la leche contiene prote&iacute;nas que tienen la capacidad de ligar hierro, como la <i>&#945;</i>&#45;lactoalb&uacute;mina, la <i>&#946;</i>&#45;lactoglobulina y la lactoferrina. Los porcentajes m&aacute;ximos de hierro fijado en las fermentaciones con control de pH y sin control son 60 y 38 % respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existen pocos trabajos acerca de la capacidad de fijaci&oacute;n de hierro por p&eacute;ptidos generados durante la fermentaci&oacute;n o hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica de las prote&iacute;nas de la leche. Farvin <i>y col.</i> (2010) demostraron que las fracciones pept&iacute;dicas del yogurt ten&iacute;an la capacidad de fijar hierro (7.7%), sin embargo utilizaron otra t&eacute;cnica para la determinaci&oacute;n de hierro y la cantidad de prote&iacute;na de los sobrenadantes utilizados era menor al encontrado en las fermentaciones realizadas en esta investigaci&oacute;n con <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Liu <i>y col.</i> (2005) determinaron la capacidad fijadora de hierro de los sobrenadantes de las muestras obtenidas a diferentes tiempos durante la elaboraci&oacute;n de k&eacute;fir con leche de vaca y soya cuyo contenido proteico era 10 mg mL<sup>&#45;1</sup>. En este estudio no se encontraron incrementos significativos en la actividad fijadora de hierro de las muestras de k&eacute;fir cuando son comparadas con las muestras sin fermentar (26%). Aunque no se puede comparar la actividad fijadora de hierro obtenido por los sobrenadantes del k&eacute;fir con los obtenidos por los sobrenadantes las fermentaciones de esta investigaci&oacute;n con <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712 si se observa claramente que las fermentaciones con control de pH presentan una mejor actividad fijadora de hierro, lo cual no se observa en las fermentaciones realizadas sin control de pH.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otro lado, se encontr&oacute; que en este caso no existe correlaci&oacute;n entre la actividad proteol&iacute;tica y el porcentaje de hierro fijado. Esto se debe a que la capacidad fijadora de las prote&iacute;nas presentes, observada desde el inicio de la fermentaci&oacute;n, es m&aacute;s alta que la de los p&eacute;ptidos producidos (<a href="#f4">Fig. 4</a>).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>3.3 Comparaci&oacute;n de los p&eacute;ptidos encontrados con p&eacute;ptidos fijadores de minerales reportados</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por medio de la cromatograf&iacute;a de exclusi&oacute;n molecular se estim&oacute; el peso molecular de los p&eacute;ptidos generados durante las fermentaciones realizadas con <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712. En la <a href="#f5">Fig. 5</a> se observa el cromatograma del sobrenadante obtenido a la 28 h en ambas fermentaciones, en donde se pudo observar que los perfiles pept&iacute;dicos de las fermentaciones realizadas mostraban diferencias sobre todo en la concentraci&oacute;n de algunos de los p&eacute;ptidos producidos durante la fermentaci&oacute;n, aunque tambi&eacute;n se observaron diferencias en los pesos moleculares de los p&eacute;ptidos generados en ambas fermentaciones. Los pesos moleculares de los p&eacute;ptidos producidos en las fermentaciones fueron comparados con p&eacute;ptidos fijadores de minerales reportados, encontr&aacute;ndose varias coincidencias (<a href="/img/revistas/rmiq/v11n2/a5t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>). En la <a href="/img/revistas/rmiq/v11n2/a5t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a> se hace una compilaci&oacute;n de los reportes m&aacute;s relevantes al respecto y como se puede observar dentro de los fragmentos pept&iacute;dicos de las fermentaciones realizadas con control de pH, se encuentran dos fragmentos fijadores de minerales muy com&uacute;nmente producidos por medio de la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica con pepsina o tripsina a partir de la case&iacute;na, que son las secuencias <i>&#946;</i>&#45;CN(1&#45;25) y <i>&#945;<sub>s</sub></i><sub>1</sub>&#45;CN(59&#45;79). Estos fragmentos contienen en su secuencia el triplete am&oacute;nico SerP&#45;SerP&#45;SerP, que se reporta como responsable de la uni&oacute;n de los minerales divalentes al p&eacute;ptido (Kitts, 2006). Sin embargo se ha visto que existen otros sitios potenciales para la fijaci&oacute;n de los minerales dentro de la estructura de los p&eacute;ptidos, como los grupos carbox&iacute;licos libres del &aacute;cido glut&aacute;mico y asp&aacute;rtico, pero su actividad es menor (Kitts, 2006).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rmiq/v11n2/a5f5.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se debe mencionar que tambi&eacute;n existen secuencias pept&iacute;dicas que coinciden con p&eacute;ptidos fijadores de minerales derivados de la prote&iacute;nas del suero, los cuales han sido estudiados en los &uacute;ltimos a&ntilde;os como fuentes de p&eacute;ptidos fijadores de minerales ya que tambi&eacute;n se ha visto que las prote&iacute;nas del suero de la leche presentan sitios en donde se puede fijar el calcio, estos sitios se encuentran en la <i>&#946;</i>&#45;lactoglobulina <i>(&#946;&#45;</i>LG) y la <i>&#945;</i>&#45;lactoalb&uacute;mina (<i>&#945;</i>&#45;LA). En la <i>&#945;</i>&#45;LA existe un sitio que tiene una alta afinidad por el calcio, los amino&aacute;cidos en donde se fija este mineral son la asparagina y la lisina (Kim y Lim, 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este trabajo se encontr&oacute; que durante la fermentaci&oacute;n con <i>Lactococcus lactis</i> subsp <i>cremoris</i> NCFB 712 se generaron secuencias pept&iacute;dicas que tienen la capacidad de fijar hierro y calcio. Con respecto a las fermentaciones efectuadas para evaluar la actividad fijadora de calcio se observ&oacute; que en los sobrenadantes de las fermentaciones con control de pH se produjo un incremento en esta actividad. Tambi&eacute;n se determin&oacute; que existe una correlaci&oacute;n entre la actividad proteol&iacute;tica y el calcio fijado encontr&aacute;ndose una mayor correlaci&oacute;n con los sobrenadantes de las fermentaciones con control de pH. En cuanto a la actividad fijadora de hierro, se observ&oacute; que en las fermentaciones con control de pH se increment&oacute; la actividad con respecto a las fermentaciones realizadas sin control, en las que se mantuvo la actividad propia de la leche. Los pesos moleculares de algunos p&eacute;ptidos producidos durante las fermentaciones con <i>Lactococcus lactis</i> subsp. <i>cremoris</i> NCFB 712 coincidieron con algunas secuencias fijadoras de calcio y hierro reportadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adler, J. (1979). Determination of the degree of hydrolysis of food protein hydrolysates by trinitrobenzenesulfonic acid. <i>Journal of Agricultural and Food Chemistry 27,</i> 1256&#45;1261.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559481&pid=S1665-2738201200020000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aimutis, W. (2004). Bioactive peptides of milk proteins with particular focus on anticariogenesis. <i>Journal of Nutrition 134,</i> 989&#45;995.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559483&pid=S1665-2738201200020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bougl&eacute;, D. y Bouhallab, S. (2006). Mineral&#45;Binding proteins and peptides and bioavailability of trace elements. En: <i>Nutraceutical Proteins and Peptides in Health and Disease.</i> Y. Mine y F Shadihi, eds., Pp. 29&#45;40 Taylor y Francis. USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559485&pid=S1665-2738201200020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brown M. y Rydvist, B. (1981). Arsenazo III&#45;Ca<sup>2+</sup>. Effect of pH, ionic strength and arsenazo III concentration on equilibrium binding evaluated with Ca<sup>2+</sup> ion&#45;sensitive electrodes and absorbance measurements. <i>Biophysical Journal 36,</i> 117&#45;137.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559487&pid=S1665-2738201200020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cross, K., Huq, L., Palamara, J., Perich, J. y Reynolds, E. (2005). Physicochemical characterization of casein p'hosphopeptide&#45;amorphous calcium phosphate nanocomplexes. <i>The Journal of Biological Chemistry 280,</i> 15362&#45;15369.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559489&pid=S1665-2738201200020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cross, K., Huq, L., Bicknell, W. y Reynolds, E. (2001). Cation&#45;dependent structural features of beta&#45;casein&#45;(1&#45;25). <i>Biochemical Journal 356,</i> 277&#45;286.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559491&pid=S1665-2738201200020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dimitro v, Z. (2009). Characterization of bioactive peptides with calcium&#45;binding activity released by specially designed cheese starter. <i>Biotechnology &amp; Biotechnology EQ,</i> 927&#45;930.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559493&pid=S1665-2738201200020000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Farvin, K., Bar&oacute;n, C, Nielsen, N. y Jacobsen, C. (2010). Antioxidant activity of yoghurt peptides: Part <i>1&#45;in vitro</i> assays and evaluation in <i>&#969;&#45;3</i> enriched milk. <i>Food Chemistry 123,</i> 1081<b>&#45;</b>1089.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559495&pid=S1665-2738201200020000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Figueroa&#45;Gonz&aacute;lez, I., Hen&aacute;ndez&#45;S&aacute;nchez, H., Rodr&iacute;guez&#45;Serrano, G., G&oacute;mez&#45;Ruiz L., Garc&iacute;a&#45;Garibay M. y Cruz&#45;Guerrero A. (2010). Antimicrobial effect of <i>Lactobacillus casei Shirota</i> co&#45;cultivated with <i>Escherichia coli</i> UAM0403. <i>Revista Mexicana de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica</i> 9,11&#45;16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559497&pid=S1665-2738201200020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Figueroa&#45;Hern&aacute;ndez, C. (2007) Utilizaci&oacute;n del sistema proteol&iacute;tico de <i>Lactococcus lactis</i> para la generaci&oacute;n de p&eacute;ptidos potencialmente bioactivos. Tesis de Maestr&iacute;a en Biotecnolog&iacute;a, Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana&#45;Iztapalapa, M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559499&pid=S1665-2738201200020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez&#45;Olivarez, L., Jim&eacute;nez&#45;Guzm&aacute;n, J., Cruz&#45;Guerrero, A., Rodr&iacute;guez&#45;Serrano, G., G&oacute;mez&#45;Ruiz, L. y Garc&iacute;a&#45;Garibay, M. (2011). Liberaci&oacute;n de p&eacute;ptidos bioactivos por bacterias l&aacute;cticas en leches fermentadas comerciales. <i>Revista Mexicana de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica</i> 70,179&#45;188</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559501&pid=S1665-2738201200020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hayes, M., Ross, P., Fitzgerald, G. y Stanton, C. (2007). Putting microbes to work: Dairy fermentation, cell factories and bioactive peptides. Part I: Overview. <i>Biotechnology Journal 2,</i> 426&#45;434.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559502&pid=S1665-2738201200020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Heaney, R. (2000). Calcium, dairy produc&iacute;s and osteoporosis. <i>Journal of the American College of Nutrition 19,</i> 83S&#45;99S.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559504&pid=S1665-2738201200020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hintze, J. (2001). <i>NCSS Quick start &amp; self&#45;help manual.</i> Disponible en:<a href="http://www.ncss.com/pdf/manuals/quickstart.pdf" target="_blank">www.ncss.com/pdf/manuals/quickstart.pdf</a>. Accesado: 11 agosto 2011.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559506&pid=S1665-2738201200020000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hwang, J., Shue, Y. y Chang, H. (2001). Antioxidant activity of roasted and defatted peanut kernels. <i>Food Research International 34,</i> 639&#45;647.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559508&pid=S1665-2738201200020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kim, S. y Lim, J. (2004). Calcium&#45;binding peptides derived from tryptic hydrolysates of cheese whey protein. <i>Asian&#45;Australasian Journal of Animal Science 17,</i> 1459&#45;1464.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559510&pid=S1665-2738201200020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kitts, D. (2006). Calcium binding Peptides. En: <i>Nutraceutical proteins and peptides in health and disease</i> (Y. Mine y F Shadihi, eds), Pp 65&#45;78 Taylor y Francis. USA.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559512&pid=S1665-2738201200020000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kunji, E., Mierau, I., Poolman, B., Konings, W., Venema, G. y Kok, J. (1996). The proteolytic system of lactic acid bacteria. <i>Antonie Van Leeuwenhoek 70,</i> 187&#45;227.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559514&pid=S1665-2738201200020000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Liu, J., Chen, M. y Lin, C. (2005). Antimutagenic and antioxidant properties of milk&#45;kefir and soy milk&#45; kefir. <i>Journal of Agricultural and Food Chemistry 53,</i> 2467&#45;2474.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559516&pid=S1665-2738201200020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lowry, O., Rosebrough, N., Farr, A. y Randall, R. (1951). Protein measurement with the Folin phenol reagent. <i>Journal of Biological Chemistry 193,</i> 265&#45;275.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559518&pid=S1665-2738201200020000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Meisel, H. y Fitzgerald, R. (2003). Biofunctional peptides from milk proteins: mineral binding and cytomodulatory effects. <i>Current Pharmaceutical Design 9,</i> 1289&#45;1295.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559520&pid=S1665-2738201200020000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pihlanto, A., Virtanen, T. y Korhonen, H. (2010). Angiotensin I converting enzyme (ACE) inhibitory activity and antihypertensive effect of fermented milk. <i>International Dairy Journal 20,</i> 3&#45;10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559522&pid=S1665-2738201200020000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vasiljevic, T, y Shah, N. (2008). Probiotics&#45; from Metchnikoff to bioactives. <i>International Dairy Journal 18,</i> 714&#45;728.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559524&pid=S1665-2738201200020000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vegarud, G., Langsrud, T. y Svenning, C. (2000). Mineral&#45;binding milk proteins and peptides; occurrence, biochemical and technological characteristics. <i>British Journal of Nutrition 84,</i> S91&#45;S98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559526&pid=S1665-2738201200020000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zidane, F., Mateos, A., Cakir&#45;Kiefer, C, Mielo, L. y Corbier, C. (2011). Binding of divalent metals ions to 1&#45;25 &#946;&#45;caseinophosphopeptide: an isothermical titration calorimetry study. <i>Food Chemistry 132,</i> 391&#45;398.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8559528&pid=S1665-2738201200020000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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