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<publisher-name><![CDATA[Instituto Nacional de Cardiología Ignacio Chávez]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Función del retículo sarcoplásmico y su papel en las enfermedades cardíacas]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Nacional Autónoma de México Facultad de Medicina Departamento de Bioquímica y Biología Molecular]]></institution>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Retículo sarcoplásmico]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Investigaci&oacute;n b&aacute;sica</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><i><b>Funci&oacute;n del ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico y su papel en las enfermedades card&iacute;acas</b></i></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Function and role of the sarcoplasmic reticulum in heart disease</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Jos&eacute; Luis Reyes&#150;Ju&aacute;rez,* &Aacute;ngel Zarain&#150;Herzberg*</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>* Departamento de Bioqu&iacute;mica y Biolog&iacute;a Molecular, Facultad de Medicina, UNAM, M&eacute;xico D.F.</i></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia</b>:    <br>   <i>&Aacute;ngel Zarain&#150;Herzberg.     <br>   Departamento de Bioqu&iacute;mica y Biolog&iacute;a Molecular.    <br>   Facultad de Medicina, UNAM    <br>   Apartado Postal 70&#150;159, M&eacute;xico, D.F. 04510    <br>   Tel. (5255) 5623&#150;2258 FAX: (5255) 5616&#150;2419</i>    <br>   <b> E&#150;mail:</b> <a href="mailto:zarain@servidor.unam.mx">zarain@servidor.unam.mx</a></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico (RS) es el principal almac&eacute;n de calcio intracelular en el m&uacute;sculo estriado y participa de forma importante en la regulaci&oacute;n del proceso acoplamiento&#150;excitaci&oacute;n&#150;contracci&oacute;n (AEC) en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico y card&iacute;aco, regulando las concentraciones intracelulares de calcio durante la contracci&oacute;n y la relajaci&oacute;n muscular. Esta regulaci&oacute;n est&aacute; dada por la interacci&oacute;n de las principales prote&iacute;nas del RS que son el canal de liberaci&oacute;n de calcio o receptor de rianodina, la ATPasa de Ca<sup>2+</sup>, fosfolamban y calsecuestrina. Por la relevancia del AEC en la fisiopatolog&iacute;a de varias enfermedades card&iacute;acas, se ha estudiado extensamente el papel que mantiene el RS y sus distintos componentes proteicos en distintas patolog&iacute;as, principalmente en la hipertrofia card&iacute;aca, la insuficiencia card&iacute;aca y en las arritmias hereditarias. Por lo anterior, las prote&iacute;nas del RS constituyen un &aacute;rea de gran inter&eacute;s para el desarrollo de nuevas terapias, por lo que resulta de gran importancia el comprender la funci&oacute;n del RS. En este art&iacute;culo de revisi&oacute;n se analiza la estructura y funci&oacute;n de las principales prote&iacute;nas del RS, su papel en los procesos de contracci&oacute;n y relajaci&oacute;n muscular, as&iacute; como los cambios en expresi&oacute;n y funci&oacute;n que ocurren en diferentes patolog&iacute;as card&iacute;acas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>Ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico. Coraz&oacute;n. Cardiomiocito. Hipertrofia. Insuficiencia card&iacute;aca. Arritmias.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Summary</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The sarcoplasmic reticulum (SR) constitutes the main intracellular calcium store in striated muscle and plays an important role in the regulation of excitation&#150;contraction&#150;coupling (ECC) and of intracellular calcium concentrations during contraction and relaxation. The regulation of ECC occurs due to the interaction among the main proteins of the SR that are the calcium release channel or ryanodine receptor, the Ca<sup>2+</sup>&#150;ATPase, phospholamban and calsequestrin. Due to the importance of ECC in the physiopathology of a number of cardiac diseases, the role of the SR and its components has been widely investigated in some pathologies, specifically cardiac hypertrophy, heart failure, and hereditary arrhythmias. Therefore, the SR proteins constitute an area of research of great interest for the development of new genetic and pharmacologic therapies; from this derives the importance of understanding the function of the SR. This review analyzes the expression, structure, and function of the main SR proteins, their role on myocardial contraction and relaxation and in the changes that occur in cardiac pathologies.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b>Sarcoplasmic reticulum. Cardiomyocyte. Cardiac hypertrophy. Heart failure. Arrhythmias.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La contracci&oacute;n muscular es un proceso altamente regulado, que depende de la concentraci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> libre en el citoplasma (&#91;Ca<sup>2</sup><sup>+</sup> &#93;<sub>&iexcl;</sub> y que en el m&uacute;sculo estriado se encuentra regulada primordialmente por el ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico (RS) que funciona como un almac&eacute;n de altas concentraciones de Ca<sup>2+</sup> (0.5 a 2 mM). El RS es un extenso sistema de membranas intracelulares que rodea a cada miofibrilla, a manera de una cisterna llena de calcio. Cada miofibrilla se divide en estructuras sarcom&eacute;ricas y el RS tambi&eacute;n se divide en compartimentos especializados.<sup>1 </sup>Cada segmento de RS inicia y termina en una cisterna terminal, que junto con la estructura membranal llamada t&uacute;bulo transverso (t&uacute;bulo T) conforman las estructuras denominadas como tr&iacute;adas o RS de uni&oacute;n (JRS). En el m&uacute;sculo card&iacute;aco la tr&iacute;ada no est&aacute; tan organizada con relaci&oacute;n al t&uacute;bulo T como lo est&aacute; en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, aunque las caracter&iacute;sticas estructurales esenciales de esta estructura se mantienen.<sup>2,3</sup> Existen relativamente menos t&uacute;bulos transversos en las c&eacute;lulas card&iacute;acas, pero en general son de mayor di&aacute;metro, normalmente s&oacute;lo est&aacute;n asociados en uno de sus lados a una cisterna terminal, por lo que las estructuras de tr&iacute;adas son raras. Estas caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas sugieren que el acoplamiento entre la excitaci&oacute;n y contracci&oacute;n muscular (AEC) ocurre casi exclusivamente por se&ntilde;ales originadas en las uniones tri&aacute;dicas en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico, mientras que en el cardiomiocito la liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> del RS es inducida por el Ca<sup>2+ </sup>que entra por los canales tipo L voltaje dependientes.<sup>4,5</sup> Las regiones del RS que no se encuentran en la cercan&iacute;a de los t&uacute;bulos T, se conocen como RS longitudinal (LRS) y est&aacute; constituido por membranas tubulares ramificadas en el interior de la c&eacute;lula cuya funci&oacute;n primordial es el transporte activo de Ca<sup>2+</sup> al interior del RS durante la relajaci&oacute;n muscular.<sup>6</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las principales prote&iacute;nas que regulan la captaci&oacute;n, almacenaje y liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> en el RS tanto de m&uacute;sculo esquel&eacute;tico como card&iacute;aco son la ATPasa de Ca<sup>2+</sup> (SERC A), una prote&iacute;na de alta capacidad de uni&oacute;n a Ca<sup>2+</sup> llamada calsecuestrina (CSQ) y el canal de liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> tambi&eacute;n conocido como receptor de rianodina (R y R).<sup>7&#150;</sup><sup>10</sup> En el cardiomiocito, el AEC comienza cuando un est&iacute;mulo despolarizante en el t&uacute;bulo T activa al canal de calcio sensible a voltaje del sarcolema (receptor de dihidropiridina, DHPR), el cual permite la entrada de peque&ntilde;as cantidades Ca<sup>2+</sup> extracelular al citoplasma induciendo al canal R y R para que libere Ca<sup>2+</sup> del interior del RS para elevar la concentraci&oacute;n de &#91;Ca <sup>2+</sup>&#93;. de &#150;20 nM hasta ~1 <i>&micro;M. </i>La fuerza de contracci&oacute;n muscular est&aacute; regulada por la uni&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> a la troponina C, que desencadena el entrecruzamiento de actina y miosina.<sup>11</sup> Durante la relajaci&oacute;n muscular, el Ca<sup>2+</sup> es transportado del citoplasma al RS principalmente por la ATPasa de Ca<sup>2+</sup> (60&#150;70%) y transportado al exterior por el intercambiador Na<sup>+</sup>/Ca<sup>2+</sup> (NCX) (30&#150;40%). Por tanto, la contracci&oacute;n y la relajaci&oacute;n en miocitos card&iacute;acos es regulada por las concentraciones de&#91;Ca<sup>2+</sup>&#93;<sub>&iexcl;</sub>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El manejo anormal del calcio por el cardiomiocito, contribuye de manera predominante a la disfunci&oacute;n contr&aacute;ctil observada en la hipertrofia card&iacute;aca severa y en la insuficiencia card&iacute;aca. Ambos, la contracci&oacute;n y la relajaci&oacute;n muscular se encuentran alteradas en los miocitos card&iacute;acos de seres humanos y de modelos animales de insuficiencia card&iacute;aca.<sup>12&#150;16</sup> Se ha demostrado que la disminuci&oacute;n en la velocidad de acortamiento del miocito card&iacute;aco durante la contracci&oacute;n se correlaciona tanto a la actividad reducida de ATPasa miofibrilar,<sup>17</sup> as&iacute; como a una concentraci&oacute;n disminuida de &#91;Ca<sup>2</sup><sup>+</sup>&#93;<sub>&iexcl;</sub>.<sup>18&#150;</sup><sup>20</sup> Por lo tanto, es razonable asumir que <i>in vivo </i>el contenido de calcio del RS es bajo en la insuficiencia card&iacute;aca y contribuye a la disminuci&oacute;n de contractilidad y generaci&oacute;n de fuerza del cardiomiocito.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Investigaciones recientes, indican que cambios en los movimientos de Ca<sup>2+</sup> en el cardiomiocito es uno de los mecanismos m&aacute;s importantes en las alteraciones contr&aacute;ctiles del coraz&oacute;n enfermo.<sup>21</sup> El manejo alterado de Ca<sup>2+</sup> se traduce como una funci&oacute;n mioc&aacute;rdica sist&oacute;lica y/o diast&oacute;lica an&oacute;mala, como disparador de arritmias y es m&aacute;s evidente en frecuencias card&iacute;acas elevadas. En esta revisi&oacute;n, se examina la funci&oacute;n de las prote&iacute;nas del RS en el AEC y las alteraciones del RS que han sido relacionadas con algunas enfermedades card&iacute;acas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Prote&iacute;nas del ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los principales componentes proteicos del ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico han sido bien caracterizados, particularmente los del JRS debido a la importancia de esta regi&oacute;n en la fisiolog&iacute;a de la contracci&oacute;n; los componentes de mayor importancia son el canal de liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> o receptor de rianodina (R y R), la prote&iacute;na calsecuestrina (CSQ), y algunas otras como la juntina y la triadina que participan en el anclaje de CSQ a la membrana del RS, adem&aacute;s de participar en la regulaci&oacute;n del R y R; existen otras prote&iacute;nas como la calstabina 2 que se une al R y R en su cara citopl&aacute;smica y contribuye a su regulaci&oacute;n<sup>22</sup> <i><a href="#f1">(Figs. 1</a> y<a href="/img/revistas/acm/v76s4/a3f2.jpg" target="_blank"> 2)</a>. </i>El otro componente de gran importancia en la estructura y funci&oacute;n del RS es la ATPasa de Ca<sup>2+</sup> del RS (SERCA) junto con su prote&iacute;na reguladora fosfolamban (PLB),<sup>23</sup> que se encuentra predominantemente en la zona del LRS. A continuaci&oacute;n, se revisan individualmente cada una de las prote&iacute;nas anteriormente mencionadas.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/acm/v76s4/a3f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>El canal de liberaci&oacute;n de calcio</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El canal de liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup>del ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico (RyR) es un componente central del AEC, que controla la salida de Ca<sup>2+</sup> del RS, la cual activa y regula la contracci&oacute;n muscular. La estructura, funci&oacute;n y regulaci&oacute;n de los RyR han sido descritas a lo largo de la &uacute;ltima d&eacute;cada.<sup>24 </sup>Los RyR pertenecen a una familia de canales de liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> altamente conservada evolutivamente. Se han descrito tres isoformas de RyR codificadas por tres genes distintos <i>(Ryrl, Ryr2, Ryr3); </i>la isoforma RyRl que se encuentra en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico de contracci&oacute;n r&aacute;pida, la isoforma RyR2 que se expresa en m&uacute;sculo card&iacute;aco y cerebro, y la isoforma RyR3 que se expresa en m&uacute;sculo liso y cerebro.<sup>25&#150;27</sup> Los RyRs se encuentran formando el canal de liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> en tetr&aacute;meros, en esta conformaci&oacute;n es el canal i&oacute;nico de mayor dimensi&oacute;n descrito con un peso &#150;2000 kDa.<sup>22</sup> Aproximadamente, 90% de cada una de las subunidades del canal, se encuentran formando una regi&oacute;n amino&#150;terminal, que protruye hacia el citosol y que tiene funciones reguladoras;<sup>24</sup> esta regi&oacute;n inicialmente fue descrita como los "pies" del RyR por microscop&iacute;a electr&oacute;nica y habitualmente se encuentra en gran proximidad (120 &Aacute;) a los t&uacute;bulos T y los canales tipo L de Ca<sup>2+</sup>(DHPR).<sup>28,29</sup>La regi&oacute;n amino&#150;terminal contiene varios dominios reguladores que controlan las propiedades de apertura del poro carboxilo&#150;terminal, tambi&eacute;n la regi&oacute;n amino&#150;terminal le confiere propiedades de prote&iacute;na de andamiaje al RyR localizando numerosas prote&iacute;nas reguladoras clave del complejo. Cada una de las subunidades del RyR contiene sitios de uni&oacute;n para calmodulina (CaM), calstabina 2 (previamente conocida como prote&iacute;na de uni&oacute;n a FK&#150;506; FKBP1&#150;B), prote&iacute;na cinasa A (PKA), fosfatasas 1 y 2 (PP1/PP2) y sorcina.<sup>16</sup> En la superficie luminal del RS se unen la calsecuestrina, triadina y juntina<sup>30</sup> <i><a href="#f1">(Fig. 1)</a>.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La regulaci&oacute;n del RyR durante el ejercicio o estr&eacute;s es mediada por la activaci&oacute;n de receptores adren&eacute;rgicos&#150;&beta; acoplados a prote&iacute;nas G, que median la activaci&oacute;n de la adenilato ciclasa, lo que resulta en un incremento en los niveles de AMPc, lo que a su vez deriva en una activaci&oacute;n de la PKA; la PKA entonces fosforila al RyR en un dominio conservado de cremallera de leucina/isoleucina;<sup>31</sup> esta fosforilaci&oacute;n provoca que la calstabina 2 se disocie del complejo del canal, este fen&oacute;meno se asocia con una mayor probabilidad de apertura del canal RyR, y un aumento en la sensibilidad a la activaci&oacute;n dependiente de Ca<sup>2+</sup>.<sup>32,33</sup> La integraci&oacute;n de la activaci&oacute;n simp&aacute;tica y la activaci&oacute;n card&iacute;aca por fosforilaci&oacute;n del RyR mediada por PKA, es un mecanismo conservado evolutivamente que permite una adaptaci&oacute;n r&aacute;pida del gasto card&iacute;aco durante el ejercicio o estr&eacute;s s&uacute;bito (la respuesta lucha&#150;huida).<sup>34</sup> Las PP1/PP2 median la defosforilaci&oacute;n del RyR, permitiendo que calstabina 2 se vuelva a unir a RyR y restablecer las propiedades de apertura del canal. Tambi&eacute;n, se ha observado que la PP1 disminuye la actividad del RyR. Se ha propuesto que la PP1 al estar unida al RyR, confiere estabilidad al RyR y promueve la apertura y cierre acoplados de grupos de RyRs que funcionan como unidades de liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup>.<sup>16</sup> Por lo anterior, se sugiere que el desacoplamiento de RyR contribuye significativamente a la disminuci&oacute;n del AEC observado en la insuficiencia card&iacute;aca.<sup>16</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>La calsecuestrina</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La calsecuestrina (CSQ) es la prote&iacute;na m&aacute;s abundante en el interior del RS, en donde constituye la principal prote&iacute;na que une Ca<sup>2+</sup> y es capaz de almacenar calcio en una cantidad suficiente (0.5 a 2 mM) para permitir contracciones repetidas.<sup>22 </sup>Se encuentra asociada a la membrana del RS en la zonas de uni&oacute;n (JRS) en proximidad de los "pies" del RyR.<sup>6</sup> Existen dos isoformas descritas de CSQ codificadas por genes distintos <i>(Casql </i>y <i>Casq2), </i>la isoforma CSQ1 se encuentra en m&uacute;sculo esquel&eacute;tico de contracci&oacute;n r&aacute;pida (100%), y tambi&eacute;n en m&uacute;sculo esquel&eacute;tico de contracci&oacute;n lenta (75% del total de CSQ); la isoforma CSQ2 se encuentra en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico de contracci&oacute;n lenta (25% del total de CSQ) y en el m&uacute;sculo card&iacute;aco (100% del total de CSQ), comparten una gran similitud de amino&aacute;cidos entre las dos isoformas (84%) y alrededor de 80% a nivel del mRNA, y hasta el momento no se han descrito diferencias funcionales.<sup>22,35</sup> La estructura y propiedades de la CSQ han sido descritas extensamente, es una glicoprote&iacute;na ac&iacute;dica, que es capaz de formar pol&iacute;meros lineales en respuesta a incrementos de la concentraci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup>. Se encuentra localizada exclusivamente en las cisternas del JRS, no se ha encontrado en el LRS,<sup>6 </sup>se le observa en la proximidad de la membrana del RS aunque no est&aacute; anclada a &eacute;sta, sino que se encuentra asociada a las prote&iacute;nas juntina y triadina, que junto con el RyR forman un complejo multiproteico.<sup>30</sup> Se ha descrito que su funci&oacute;n principal es como amortiguador de &#91;Ca<sup>2+</sup>&#93; para evitar que las altas concentraciones que se encuentran de este ion al interior del RS se precipiten. La CSQ tiene una gran capacidad para ligar Ca<sup>2+</sup> (40&#150;50 mol Ca<sup>2+</sup>/mol CSQ) con una afinidad intermedia (Kd ~1 mM).<sup>36</sup> Adem&aacute;s de este papel como amortiguador de Ca<sup>2+</sup>, tambi&eacute;n se ha descrito la capacidad de la CSQ para regular la funci&oacute;n de la liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup>del RyR.<sup>37,38</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recientemente, se ha descrito que la disociaci&oacute;n de CSQ del complejo RyR/triadina/juntina es suficiente para que el canal se active;<sup>39</sup> en contraste, se ha demostrado que la interacci&oacute;n entre CSQ y el RyR independiente de triadina y juntina, activa el canal. Hasta el momento, no se han descrito las condiciones fisiol&oacute;gicas en las que CSQ interact&uacute;a con el RyR directamente o v&iacute;a triadina/juntina <i><a href="#f1">(Fig. 1)</a>.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha demostrado, que la concentraci&oacute;n luminal de Ca<sup>2+</sup> afecta directamente el nivel de activaci&oacute;n del RyR y que el nivel de Ca<sup>2+</sup> liberado es dependiente del nivel de "carga" de Ca<sup>2+</sup> del RS.<sup>38,40</sup> Al aumentar o disminuir la "carga" de Ca<sup>2+</sup> del RS se aumenta o disminuye, respectivamente, la sensibilidad a la despolarizaci&oacute;n por Ca<sup>2+</sup>. Es en este aspecto, donde se ha encontrado una funci&oacute;n adicional para la CSQ, debido a que se ha descrito que la respuesta del RyR a cambios en la concentraci&oacute;n luminal de Ca<sup>2+</sup> es mayor cuando la CSQ est&aacute; asociada al complejo de RyR.<sup>22,37,40</sup> Tambi&eacute;n, se ha observado que los canales son sensibles a cambios de la concentraci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> luminal s&oacute;lo en la presencia de triadina/juntina/CSQ, por lo tanto, la CSQ puede regular la liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> por una interacci&oacute;n directa con el RyR, o regulando el tama&ntilde;o del almac&eacute;n funcional de Ca<sup>2+</sup> en el RS.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A pesar de que no se han encontrado variaciones en la cantidad o en la actividad de CSQ en la hipertrofia card&iacute;aca por sobrecarga de presi&oacute;n y en la insuficiencia card&iacute;aca, se ha observado en ratones transg&eacute;nicos que sobreexpresan CSQ2 en el coraz&oacute;n, el desarrollo de hipertrofia card&iacute;aca e insuficiencia card&iacute;aca,<sup>41</sup> lo que se sugiere que la CSQ2 puede tener un papel que a&uacute;n no ha sido determinado en el AEC que interviene en la patog&eacute;nesis de la hipertrofia card&iacute;aca.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como se mencion&oacute; previamente, la CSQ no se encuentra anclada a la membrana del RS, sino que por medio de interacciones con la triadina y la juntina se asocia al RyR, las cuatro prote&iacute;nas forman un complejo central para la liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup>.<sup>24</sup> La triadina fue la primera de las prote&iacute;nas de anclaje en ser descrita, es una glicoprote&iacute;na de 95 kDa, que se encuentra embebida en la membrana del JRS, la mayor parte de la prote&iacute;na se encuentra en la luz del RS; la triadina por si misma es capaz de inhibir al RyR al unirse al dominio citopl&aacute;smico de &eacute;ste, pero no tiene ning&uacute;n efecto al unirse al dominio luminal del canal, debido a esto se cree que las interacciones normales entre RyR y triadina no afectan la actividad del canal.<sup>42,43</sup> En ratones, se ha observado que la sobreexpresi&oacute;n de triadina se asocia con hipertrofia card&iacute;aca, relajaci&oacute;n anormal y contractilidad disminuida en frecuencias de estimulaci&oacute;n menores a la frecuencia card&iacute;aca normal.<sup>44,45</sup> La sobreexpresi&oacute;n de triadina tambi&eacute;n se asocia con una reducci&oacute;n de los niveles de juntina y RyR; y aunque el papel fisiol&oacute;gico de la triadina no ha sido bien elucidado, es evidente que est&aacute; muy relacionado con la expresi&oacute;n de otras prote&iacute;nas que participan en el manejo de Ca<sup>2+</sup> y que tiene un papel relevante en la liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> por el RS.<sup>44</sup> La juntina es otra prote&iacute;na de anclaje al RS para la CSQ y de interacci&oacute;n con el RS, fue descrita varios a&ntilde;os despu&eacute;s que la triadina y ha sido mucho menos estudiada, es m&aacute;s peque&ntilde;a que la triadina, con una masa molecular de 26 kDa.<sup>22</sup> En contraste con la triadina, s&oacute;lo el dominio luminar se une al RyR y esta interacci&oacute;n no requiere Ca<sup>2+</sup>. En estudios donde se ha sobreexpresado juntina para tratar de elucidar su papel fisiol&oacute;gico, se ha observado una contracci&oacute;n muscular alterada, un adelgazamiento del JSR, compactaci&oacute;n de la CSQ y un incremento en las uniones del RS y los t&uacute;bulosT.<sup>46</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>La ATPasa de Ca<sup>2+</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las ATPasas de Ca<sup>2+</sup> del RS (SERCAs) son prote&iacute;nas de ~110 kDa y pertenecen a la familia de enzimas altamente conservadas (ATPasas tipo E1&#150;E2), son enzimas dependientes de ATP que transportan Ca<sup>2+</sup> activamente hacia el interior del RS.<sup>47</sup> La familia de bombas de calcio SERCA consta de tres genes hom&oacute;logos llamados SERCA1, SERCA2 y SERCA3.<sup>48&#150;</sup><sup>50</sup> El gen SERCA1 <i>(ATP2A1) </i>se expresa en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico de contracci&oacute;n r&aacute;pida y codifica un pre&#150;ARNm que por empalme alternativo produce dos isoformas cuya expresi&oacute;n se regula durante el desarrollo, la SERCA la o isoforma adulta y la SERCA lb o isoforma neonatal.<sup>48</sup> El gen SERCA2 <i>(ATP2A2) </i>codifica para tres isoformas producidas por mecanismos de empalme alternativo del transcrito primario llamadas SERCA2a, SERCA2b y SERCA2c, que tambi&eacute;n se expresan de manera tejido espec&iacute;fica.<sup>49</sup> La isoforma SERCA2a se expresa predominantemente en el m&uacute;sculo card&iacute;aco y en menor cantidad en el m&uacute;sculo esquel&eacute;tico de contracci&oacute;n lenta, aunque tambi&eacute;n se expresa en niveles m&aacute;s bajos en el m&uacute;sculo liso y tejidos no musculares.<sup>51</sup> La isoforma SERCA2b se expresa de forma ubicua en la mayor&iacute;a de los tipos celulares principalmente en m&uacute;sculo liso y c&eacute;lulas no musculares. La isoforma SERCA2c descubierta recientemente, se ha reportado que se expresa durante la diferenciaci&oacute;n monoc&iacute;tica.<sup>52</sup> El gen SERCA3 <i>(ATP2A3) </i>codifica para seis isoformas producidos por empalme alternativo del pre&#150;ARNm que se expresan predominante en las c&eacute;lulas epiteliales y de origen hematopoy&eacute;tico.<sup>53</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">SERCA2a se encuentra principalmente en el LRS, y participa en el bombeo de Ca<sup>2+</sup> del citoplasma hacia el interior del RS durante la relajaci&oacute;n muscular. SERCA2a cataliza el gradiente electrog&eacute;nico de 2 iones de Ca<sup>2+</sup> por una mol&eacute;cula de ATP hidrolizada; SERCA2a tiene una afinidad alta por Ca<sup>2+</sup> (K  &#150;0.1 <i>&micro;M) </i>y es capaz de mantener la concentraci&oacute;n citos&oacute;lica en reposo de 10&#150;20 nM.<sup>11,54</sup> La densidad de SERCA2a en el RS es muy alta (30,000//&micro;m<sup>2</sup>) y el 80% del contenido de prote&iacute;nas es SERCA2a, debido a esto s&oacute;lo son necesarios 1 &oacute; 2 ciclos de transporte de Ca<sup>2+</sup> para recuperar la concentraci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> citopl&aacute;smica durante la relajaci&oacute;n muscular.<sup>11</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el cardiomiocito, SERCA2a es regulada por fosfolamban (PLB), una prote&iacute;na de 52 amino&aacute;cidos con un peso de 6.1 kDa, que forma un homopent&aacute;mero que tiene tres dominios citos&oacute;licos, el dominio la (amino&aacute;cidos 1&#150;20) donde se encuentran los sitios para fosforilaci&oacute;n por PKA (Ser 16) y por la cinasa de Ca/CaM (Thr 17), el dominio Ib (amino&aacute;cidos 21&#150;30) es rico en amino&aacute;cidos anudados y el dominio II que atraviesa la membrana del RS. Cuando PLB se encuentra defosforilado es un inhibidor de la actividad de SERCA2, se ha demostrado que la fosforilaci&oacute;n por la cinasa dependiente de Ca<sup>2+</sup>/Calmodulina (CaMKII) resulta en un incremento de la actividad de SERCA. La fosforilaci&oacute;n de PLB, est&aacute; dada normalmente por la activaci&oacute;n de receptores &beta;&#150;adren&eacute;rgicos, que se encuentran acoplados a prote&iacute;nas G y a trav&eacute;s de la activaci&oacute;n de la adenilil ciclasa se incrementan los niveles de AMPc que activan a la PKA, la cual tiene como uno de sus blancos a PLB. La fosforilaci&oacute;n de PLB reduce su interacci&oacute;n con SERCA2, lo que resulta en aumento de la Vmax de SERCA2 para el transporte de Ca<sup>2+</sup>.<sup>23,55</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>El acoplamiento excitaci&oacute;n contracci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El acoplamiento entre la excitaci&oacute;n y contracci&oacute;n muscular (AEC) es el mecanismo que acopla la despolarizaci&oacute;n del sarcolema con la liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> del RS, es un proceso que depende de la interacci&oacute;n entre los canales de Ca<sup>2+</sup> dependientes de voltaje tipo L (DHPR) y los canales de liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> del RS (RyR). La liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> por el RS es esencial en la actividad card&iacute;aca y es el activador directo de los miofilamentos que llevan a cabo la contracci&oacute;n; el manejo incorrecto de &#91;Ca<sup>2+</sup>&#93; por los cardiomiocitos es una de las principales causas de disfunci&oacute;n contr&aacute;ctil y arritmias en condiciones patol&oacute;gicas.<sup>56,57</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante el potencial de acci&oacute;n, el Ca<sup>2+</sup> entra a la c&eacute;lula por la activaci&oacute;n de los canales tipo L (DHPR) debida a la despolarizaci&oacute;n, lo que provoca una corriente entrante de Ca<sup>2+</sup> (I<sub>Ca</sub>), la entrada de una cantidad peque&ntilde;a de Ca<sup>2+</sup> es detectada por el canal RyR y resulta en la activaci&oacute;n de &eacute;ste, lo que permite que los RyRs se abran y permitan la salida de una cantidad masiva y r&aacute;pida de Ca<sup>2+</sup> del RS, la combinaci&oacute;n del Ca<sup>2+</sup> entrante por el canal DHPR y el liberado del RS incrementa r&aacute;pidamente la &#91;Ca<sup>2+</sup>&#93;<sub>i</sub> que permite la uni&oacute;n del Ca<sup>2+</sup> con la troponina C, lo que a su vez permite la activaci&oacute;n de la maquinaria contr&aacute;ctil.<sup>58</sup> Recientemente se han descrito otros dos mecanismos que pueden inducir la liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> del RS; el primero es a trav&eacute;s de canales tipo T de Ca<sup>2+</sup>, el segundo es por medio del NCX, al invertir el flujo y generar una entrada de Ca<sup>2+</sup> tanto por un aumento de la concentraci&oacute;n de Na<sup>+</sup> citos&oacute;lico y/o por una despolarizaci&oacute;n; sin embargo ambos mecanismos son menos efectivos en provocar la liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> por el RS, en comparaci&oacute;n con el DHPR y su papel fisiol&oacute;gico es poco claro.<sup>59</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los canales DHPR son activados por la despolarizaci&oacute;n y son inactivados en una forma Ca<sup>2+</sup> dependiente, lo que limita la cantidad de Ca<sup>2+</sup> que entra a la c&eacute;lula por el potencial de acci&oacute;n, esta inactivaci&oacute;n dependiente de Ca<sup>2+</sup> es mediada por CaM unida al extremo carboxilo&#150;terminal del canal DHPR. Generalmente, la zona donde se encuentran los canales DHPR est&aacute; en proximidad al JRS, donde se encuentran los canales RyR, con lo que funcionalmente se facilita la activaci&oacute;n de &eacute;stos, la apertura de un canal DHPR asociado a un canal RyR (coupl&oacute;n) asociando 2&#150;4 iones Ca<sup>2+</sup> al RyR es suficiente para activar totalmente el proceso de liberaci&oacute;n en ese couplon, los RyR que se encuentran en la periferia de un couplon, pueden activarse ya sea por una concentraci&oacute;n local alta de Ca<sup>2+</sup> (&gt;10 <i>&micro;M) </i>o por un acoplamiento con el RyR del coupl&oacute;n, con lo que se tiene un mecanismo de todo o nada, pero debido a que la concentraci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> entrante decae r&aacute;pidamente entre couplones, conlleva a que la activaci&oacute;n no se propague; un mecanismo que funciona para generar un margen de seguridad es la asociaci&oacute;n de m&aacute;s de un canal de RyR por coupl&oacute;n (10&#150;25 DHPR/ 100 RyR) con lo que se asegura que cada coupl&oacute;n dispare y propague el impulso inicial<sup>56,57</sup> <i><a href="/img/revistas/acm/v76s4/a3f2.jpg" target="_blank">(Fig. 2)</a>. </i>Una vez que se ha llevado a cabo la contracci&oacute;n muscular, es necesario que la &#91;Ca<sup>2+</sup>&#93;, regrese a sus niveles en reposo (10&#150;20 nM), para permitir la relajaci&oacute;n muscular, en el proceso de retirar el Ca<sup>2+</sup> del citoplasma, hay 2 mecanismos fundamentales en mam&iacute;feros, uno est&aacute; dado por SERCA2a mencionado previamente, que se encarga de transportar activamente el Ca<sup>2+</sup> al interior del RS, el otro mecanismo de importancia es el intercambiador de Na+/Ca<sup>2+</sup> (NCX), el cual desplaza por gradientes Ca<sup>2+</sup> hacia el exterior de la c&eacute;lula, y desplaza Na<sup>+</sup> al interior de la c&eacute;lula. Existen adem&aacute;s otros mecanismos que pueden contribuir al movimiento del Ca<sup>2+</sup>, como son las ATPasas de Ca<sup>2+</sup> de la membrana plasm&aacute;tica (PM&#150;CAs) y los transportadores mitocondriales de Ca<sup>2+</sup>, sin embargo su contribuci&oacute;n para restituir la concentraci&oacute;n normal de Ca<sup>2+</sup> intracelular &#91;Ca<sup>2+</sup>&#93;<sub>i</sub> total en la relajaci&oacute;n durante condiciones fisiol&oacute;gicas normales es m&iacute;nima. En condiciones fisiol&oacute;gicas en el coraz&oacute;n humano, SER&#150;CA2 desplaza &#150;60% del Ca<sup>2+</sup> de vuelta al interior de RS y el NCX moviliza &#150;40% del Ca<sup>2+</sup> restante al espacio extracelular, aunque estos porcentajes var&iacute;an de especie a especie y pueden modificarse en condiciones patol&oacute;gicas.<sup>56,57</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> del RS inducida por Ca<sup>2+ </sup>(LCIC) en cardiomiocito es un mecanismo de retroalimentaci&oacute;n positiva, pero su inactivaci&oacute;n es necesaria para la recarga diast&oacute;lica, por lo que se han propuesto tres mecanismos para esta inactivaci&oacute;n: 1) la depleci&oacute;n del RS de Ca<sup>2+</sup>, 2) la inactivaci&oacute;n o adaptaci&oacute;n del RyR y 3) el agotamiento estoc&aacute;stico. El agotamiento estoc&aacute;stico se refiere a que todos los canales DHPR y RyR se cierran simult&aacute;neamente, la corriente entrante de Ca<sup>2+</sup> decae r&aacute;pidamente y se interrumpe el proceso de liberaci&oacute;n; este mecanismo es poco probable de ocurrir debido al n&uacute;mero de canales que se activan normalmente. La depleci&oacute;n local de Ca<sup>2+</sup> no es capaz de explicar en su totalidad la inactivaci&oacute;n de la LCIC debido a que se han observado que despu&eacute;s de tiempos prolongados (&gt; 200 ms) la cantidad de Ca<sup>2+ </sup>liberado por el RS no disminuye. Se han propuesto dos formas de inactivaci&oacute;n de RyR, ambas dependientes de Ca<sup>2+</sup>, una es la inactivaci&oacute;n por absorci&oacute;n en la que el RyR es incapaz de reabrirse hasta que se recupera, y la otra es por adaptaci&oacute;n en la que despu&eacute;s de activarse, las probabilidades de apertura del canal son menores, pero a&uacute;n es posible que se abra ante una corriente mayor de Ca<sup>2+</sup> entrante. Hasta el momento no se ha determinado si s&oacute;lo uno de estos mecanismos es relevante y existen pocos estudios que arrojen datos concluyentes.<sup>56&#150;59</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Papel del ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico en las enfermedades card&iacute;acas</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como se mencion&oacute; anteriormente el RS tiene un papel fundamental en el proceso de AEC, debido a esto se han realizado varios estudios para elucidar el papel de los distintos componentes antes mencionados en el desarrollo y progresi&oacute;n de las enfermedades card&iacute;acas, su papel particularmente ha sido estudiado en la hipertrofia card&iacute;aca, la insuficiencia card&iacute;aca (IC) y en las arritmias.<sup>21,60 </sup>A continuaci&oacute;n se revisa el conocimiento actual del papel del RS en estas patolog&iacute;as.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Hipertrofia e insuficiencia card&iacute;aca</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La insuficiencia card&iacute;aca es un desorden complejo que lleva a una alteraci&oacute;n del bombeo de la sangre a los tejidos para satisfacer las demandas metab&oacute;licas del cuerpo, en un coraz&oacute;n que ha sufrido un est&iacute;mulo nocivo (ej. hipertensi&oacute;n, isquemia mioc&aacute;rdica, miocardiopat&iacute;a dilatada) la IC se desarrolla si la lesi&oacute;n persiste por un per&iacute;odo prolongado.<sup>61</sup> La mayor parte de los datos se&ntilde;alan que esto es como consecuencia de una depresi&oacute;n de la contractilidad del miocardio que no es compensada por un aumento de la masa muscular. Por esta raz&oacute;n, el proceso contr&aacute;ctil en el coraz&oacute;n insuficiente ha sido estudiado ampliamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las bases celulares y moleculares de la IC han sido estudiadas extensamente, y aunque no existe una teor&iacute;a patog&eacute;nica &uacute;nica, se han descrito m&uacute;ltiples alteraciones bioqu&iacute;micas. Existe un consenso que la eficiencia de bomba del coraz&oacute;n, se encuentra reducida en la IC sist&oacute;lica, que ocurre en la enfermedad isqu&eacute;mica y en la miocardiopat&iacute;a dilatada, el trabajo del ventr&iacute;culo izquierdo est&aacute; disminuido aun cuando su consumo energ&eacute;tico es cerca de lo normal.<sup>61</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existe evidencia importante de que en la IC se presentan cambios en prote&iacute;nas sarcom&eacute;ricas, estos datos incluyen cambios tanto a nivel de expresi&oacute;n de ARNm como de prote&iacute;na de las isoformas de la cadena pesada de miosina &alpha; y &beta;, alteraciones en la expresi&oacute;n de troponina T y de isoformas de la cadena ligera de miosina l;<sup>62&#150;65 </sup>en cada uno de estos casos el cambio de expresi&oacute;n representa una inducci&oacute;n de la actividad de ATPasa de la miosina de los miofilamentos y en la velocidad de contracci&oacute;n.<sup>66</sup> Aunque este cambio en la velocidad de contracci&oacute;n pudiera interpretarse como un cambio adaptativo energ&eacute;ticamente favorable, el resultado final es un aumento en la tensi&oacute;n de la pared y una activaci&oacute;n neurohumoral y de citocinas da&ntilde;inas, secundarias a la reducci&oacute;n del volumen sist&oacute;lico y un incremento en el volumen ventricular telediast&oacute;lico.<sup>67</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una gran cantidad de evidencia ha demostrado que el movimiento intracelular de Ca<sup>2+</sup> alterado juega un papel central en el desarrollo de la IC.<sup>16 </sup>Estudios recientes, han mostrado una relaci&oacute;n estrecha entre alteraciones del manejo del Ca<sup>2+</sup>y la progresi&oacute;n de la IC, en varios casos las alteraciones del manejo del Ca<sup>2+</sup>preceden a la depresi&oacute;n mec&aacute;nica. Se cree que una gran parte del d&eacute;ficit contr&aacute;ctil es debido a una disminuci&oacute;n de la cantidad de Ca<sup>2+</sup> liberado, y un factor central limitando la cantidad de Ca<sup>2+</sup> liberado es la disminuci&oacute;n del contenido de Ca<sup>2+</sup>del RS.<sup>21,68 </sup>Las alteraciones en el AEC se encuentran en varias formas de IC, las anormalidades de receptores, bombas y prote&iacute;nas responsables de los movimientos intracelulares han sido descritos en la IC; el resultado de estas alteraciones es una prolongaci&oacute;n de los transientes de Ca<sup>2+</sup>y un aumento de la concentraci&oacute;n diast&oacute;lica de Ca<sup>2+</sup>, lo que funcionalmente se traduce en una relajaci&oacute;n inadecuada y en una contracci&oacute;n insuficiente por la depleci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> al interior del RS.<sup>69</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor parte de los casos de IC est&aacute;n precedidos por una hipertrofia celular y ventricular, que inicialmente representa un mecanismo de adaptaci&oacute;n al estr&eacute;s hemodin&aacute;mico, entre los beneficios de esta hipertrofia se encuentra el aumento de elementos contr&aacute;ctiles, una disminuci&oacute;n en la tensi&oacute;n de la pared por el incremento del grosor de &eacute;sta en la hipertrofia conc&eacute;ntrica, as&iacute; como un aumento del volumen sist&oacute;lico por el aumento del volumen telediast&oacute;lico en la hipertrofia exc&eacute;ntrica.<sup>TM</sup> La persistencia del est&iacute;mulo estresante, desencadena en una hipertrofia patol&oacute;gica, que es cuando se acompa&ntilde;a la hipertrofia de una disfunci&oacute;n en la contracci&oacute;n.<sup>71</sup> Esta condici&oacute;n se da cuando el estr&eacute;s hemodin&aacute;mico es censado por los miocitos card&iacute;acos y conlleva cambios en la expresi&oacute;n de genes. Se ha propuesto que la deformaci&oacute;n mec&aacute;nica activa los canales i&oacute;nicos del sarcolema; debido a que el Ca<sup>2+</sup> intracelular es un regulador de la hipertrofia, en gran medida por la activaci&oacute;n de la v&iacute;a de la fosfatasa calcineurina, la activaci&oacute;n de estos canales puede ser uno de los est&iacute;mulos para la generaci&oacute;n de hipertrofia patol&oacute;gica.<sup>72</sup> Existen otras v&iacute;as para la generaci&oacute;n de hipertrofia, aunque se ha demostrado que la activaci&oacute;n de la v&iacute;a de calcineurina/NFAT est&aacute; asociada a la aparici&oacute;n de hipertrofia patol&oacute;gica.<sup>73</sup> Varios grupos de investigaci&oacute;n han documentado en modelos animales de hipertrofia card&iacute;aca patol&oacute;gica severa inducida por sobrecarga de presi&oacute;n y en pacientes con insuficiencia card&iacute;aca, que la expresi&oacute;n de SERCA2 se encuentra disminuida y que los niveles disminuidos del ARNm de SER&#150;CA2 representan una transcripci&oacute;n reducida del gen. <sup>74&#150;76</sup> Por lo tanto se puede sugerir que una transcripci&oacute;n disminuida del gen SERCA2 conduce a una regulaci&oacute;n alterada de la concentraci&oacute;n de &#91;Ca<sup>2+</sup>&#93;<sub>i</sub> miopl&aacute;smico, y en &uacute;ltima instancia a la activaci&oacute;n de la v&iacute;a de calcineurina/NFAT para la inducci&oacute;n de la hipertrofia card&iacute;aca.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de Ca<sup>2+</sup>dentro del RS, es un reflejo del balance entre la recaptura de Ca<sup>2+</sup>del RS por SERCA2 y la extrusi&oacute;n de Ca<sup>2+</sup>por el RyR, por lo que el contenido reducido de Ca<sup>2+</sup>es debido a una menor cantidad de Ca<sup>2+</sup> bombeado al interior del RS ya sea por disminuci&oacute;n de la actividad o de la cantidad de SERC A2, o tambi&eacute;n puede deberse a una fuga de Ca<sup>2+</sup> por los canales RyR. Ambas hip&oacute;tesis han sido respaldadas por datos experimentales. Los movimientos transmembranales de calcio tambi&eacute;n pueden afectar el contenido total del Ca<sup>2+</sup>del RS, ya sea por una entrada menor por los canales de Ca<sup>2+</sup>de DHPR, o por una mayor actividad del NCX, en este sentido la mayor parte de los estudios ha indicado que la actividad de los canales DHPR est&aacute; poco afectada en la IC. Por otra parte, la mayor parte de los estudios indican que existe un incremento en la expresi&oacute;n y la funci&oacute;n del NCX, este incremento de funci&oacute;n del NCX puede competir con SERC A2 durante la relajaci&oacute;n, retirando m&aacute;s Ca<sup>2+</sup>del citosol y evitando que el RS se recargue completamente. Un fen&oacute;meno que recientemente ha atra&iacute;do atenci&oacute;n es la fuga diast&oacute;lica de Ca<sup>2+</sup> sin un est&iacute;mulo, debido a un aumento en la probabilidad estoc&aacute;stica de apertura del canal<sup>77 </sup><i><a href="/img/revistas/acm/v76s4/a3f3.jpg" target="_blank">(Fig. 3)</a>.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La disminuci&oacute;n de SERCA2 ya sea en su expresi&oacute;n o en su funci&oacute;n, aunque no est&aacute; completamente consensuada, es sostenida por la mayor parte de los estudios, PLB que es el regulador natural de SERCA2, se ha encontrado que est&aacute; reducido en su expresi&oacute;n, aunque algunos estudios no han encontrado cambios en su expresi&oacute;n, sin embargo, la relaci&oacute;n SERCA2/PLB siempre se encuentra disminuida, lo que se traduce en una disminuci&oacute;n de la funci&oacute;n de SER&#150;CA2 en la IC. Durante la hipertrofia card&iacute;aca y la IC, tambi&eacute;n se observan cambios en la regulaci&oacute;n de SERCA2, derivado de la estimulaci&oacute;n adren&eacute;rgica cr&oacute;nica que se observa en estas patolog&iacute;as, hay un aumento en la activaci&oacute;n de los receptores adren&eacute;rgicos&#150;&alpha; que est&aacute;n acoplados a prote&iacute;nas Gq, las cuales a su vez activan a la fosfolipasa C, que aumenta los niveles de diacilglicerol, activando a la prote&iacute;na cinasa <i>C&#150;&alpha;</i> (PKC&#150; <i>&alpha;), </i>que es capaz de fosforilar al inhibidor de la fosfatasa&#150;1 (I&#150;PP1), disoci&aacute;ndolo de &eacute;sta y permitiendo que PP1 defosforile a PLB, lo que contribuye a una disminuci&oacute;n de la actividad de SERCA<sup>16,</sup><sup>78,</sup><sup>79</sup> <i><a href="/img/revistas/acm/v76s4/a3f3.jpg" target="_blank">(Fig. 3</a> y <a href="#t1">Tabla I)</a>.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/acm/v76s4/a3t1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como se mencion&oacute; anteriormente, el complejo macromolecular del RyR incluye a la PKA, PP1, PP2a y calstabina 2; se ha reportado que en la IC el RyR se encuentra hiperfosforilado por PKA, lo que es atribuido al estado hiperadren&eacute;rgico y a la p&eacute;rdida de las fosfatasas asociadas al RyR (PP1/ PP2a), el estado hiperfosforilado provoca la disociaci&oacute;n del calstabina 2, la cual como se mencion&oacute; anteriormente confiere estabilidad al RyR y al no estar unida al canal RyR, este &uacute;ltimo tiene una mayor probabilidad de aperturas y una menor conductancia, lo que resulta en un aumento del flujo i&oacute;nico; esto se manifiesta con fuga diast&oacute;lica de Ca<sup>2+</sup> del RS y la consecuente reducci&oacute;n del contenido de Ca<sup>2+</sup> total del RS.<sup>60,80&#150;82</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos en relaci&oacute;n al papel de SERCA2/PLB en la IC, tambi&eacute;n son apoyados por datos arrojados de modelos animales en los que se han utilizado terapias experimentales para la IC, que tienen como objetivos a SERCA2 y/o PLB y se ha encontrado mejor&iacute;a o incluso regresi&oacute;n de la IC. Las terapias experimentales que han arrojado estos datos, principalmente han sido la transferencia de genes quim&eacute;ricos para sobreexpresar SERCA2a por medio de vectores adenovirales deficientes en replicaci&oacute;n, lo que se traduce en un incremento en la cantidad de Ca<sup>2+</sup>recaptura&#150;do por el RS<sup>83,84</sup> y una mejor&iacute;a en la contractilidad; en este sentido tambi&eacute;n se han realizado intervenciones con f&aacute;rmacos como es el etomoxir,<sup>75</sup> que aumenta la expresi&oacute;n de SERCA2. Otra intervenci&oacute;n en este mismo componente del AEC ha sido la transferencia de ARNm antisentido de PLB para disminuir su expresi&oacute;n, lo que tambi&eacute;n ha arrojado datos favorables mejorando la cantidad de Ca<sup>2+</sup> en el RS y la contractilidad,<sup>85&#150;87</sup> debido a estas observaciones, tanto SER&#150;CA2 y PLB se erigen como blancos importantes en nuevas terapias para la hipertrofia card&iacute;aca y la IC.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Las arritmias</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las arritmias ventriculares fatales ocurren principalmente en pacientes con IC, pero tambi&eacute;n pueden presentarse en pacientes aparentemente sanos con un coraz&oacute;n sin anomal&iacute;as estructurales, as&iacute; como con s&iacute;ndromes arritmog&eacute;nicos hereditarios.<sup>88,89</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mecanismo de estas arritmias ha sido extensamente investigado y se ha propuesto que la generaci&oacute;n del impulso que inicia las arritmias ventriculares puede originarse por reentrada o por un actividad disparada (ocurre a continuaci&oacute;n de un potencial de acci&oacute;n previo). Los impulsos disparados resultan de despolarizaciones de la membrana, tambi&eacute;n llamadas "trasdespolarizaciones", y se han descrito dos tipos, las tempranas (TDP) y las tard&iacute;as (TDT).<sup>90&#150;</sup><sup>92</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las TDP se generan durante el potencial de acci&oacute;n, son definidas con oscilaciones en el nivel de meseta del potencial de membrana o durante la fase 3 de la despolarizaci&oacute;n; generalmente ocurren durante una repolarizaci&oacute;n prolongada por alteraciones en las corrientes de K<sup>+</sup>, prolongaci&oacute;n del intervalo QT por f&aacute;rmacos, anormalidades metab&oacute;licas (hipokalemia) o alteraciones estructurales del coraz&oacute;n (hipertrofia). Se ha propuesto la hip&oacute;tesis de que son generadas por la reapertura de canales tipo L o canales de Na<sup>+ </sup>durante la fase de meseta del potencial de acci&oacute;n.<sup>91,</sup><sup>92</sup> Por otra parte las TDT se definen como una oscilaci&oacute;n del potencial de membrana que se presenta despu&eacute;s de la repolarizaci&oacute;n completa de un potencial de acci&oacute;n, es m&aacute;s com&uacute;n que se presenten durante frecuencias card&iacute;acas incrementadas, tono simp&aacute;tico aumentado o sobrecarga intracelular de Ca<sup>2+</sup>.<sup>90</sup></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la IC, las condiciones estructurales y electrofisiol&oacute;gicas alteradas del cardiomiocito proveen de la base para una contracci&oacute;n inadecuada o arritmias fatales en los pacientes con esta entidad.<sup>34,93</sup> De estas alteraciones, una de las m&aacute;s documentadas tanto en humanos como en modelos animales es la prolongaci&oacute;n en el tiempo del potencial de acci&oacute;n durante frecuencias card&iacute;acas bajas; en esta condici&oacute;n se observan cambios en las corrientes de salida y un retraso en las corrientes rectificadoras de K<sup>+</sup>, adem&aacute;s de una repolarizaci&oacute;n retardada, hay un aumento en la dispersi&oacute;n de la duraci&oacute;n del potencial de acci&oacute;n y una refractoriedad que puede predisponer a arritmias reentrantes.<sup>94</sup> Hay que se&ntilde;alar que la reentrada no es el &uacute;nico mecanismo que provoca arritmias en pacientes con IC, ya que en pacientes con IC por isquemia tambi&eacute;n es importante la actividad disparada, en este caso involucra tanto TDP como TDT, la actividad aumentada del NCX puede estar involucrada en la g&eacute;nesis de las TDP por un incremento de la carga de Ca<sup>2+</sup> por la funci&oacute;n invertida por la prolongaci&oacute;n del potencial de acci&oacute;n o por la liberaci&oacute;n espont&aacute;nea de Ca<sup>2+</sup> por el RS, la cual inicia una corriente de entrada; en el caso de las TDT se piensa que disparan arritmias no reentrantes en IC.<sup>95,</sup><sup>96</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la IC, tambi&eacute;n se han descrito arritmias generadas por alteraciones en el RyR, como ya se mencion&oacute; el RyR es estabilizado por calstabina 2, y durante la IC hay una estimulaci&oacute;n &beta;&#150;adren&eacute;rgica cr&oacute;nica, que se asocia a un estado activado de PKA que fosforila al RyR evitando la uni&oacute;n de calstabina 2, y una disminuci&oacute;n de los niveles de las fosfatasas PP1 y PP2; todo esto da como resultado un aumento en la sensibilidad del RyR a Ca<sup>2+ </sup> y un desplazamiento hacia la izquierda, lo que provoca que la liberaci&oacute;n por el RyR haga m&aacute;s susceptible la aparici&oacute;n de arritmias ventriculares.<sup>77,97,98</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recientemente mutaciones en el canal RyR, han sido asociadas a muerte s&uacute;bita card&iacute;aca en corazones estructuralmente normales. Se describi&oacute; inicialmente en familias italianas y finlandesas con historia de muerte s&uacute;bita, un patr&oacute;n reproducible de arritmias ventriculares durante estr&eacute;s o ejercicio. Estas entidades han sido denominadas como taquicardia ventricular polim&oacute;rfica familiar (TVPF), adem&aacute;s se han descrito otras 20 mutaciones en el gen de RyR que se han asociado con la taquicardia ventricular polim&oacute;rfica inducida por catecolaminas (TVPC);<sup>99,100</sup> ambas se caracterizan por taquicardias ventriculares bidireccionales o polim&oacute;rficas inducidas por el ejercicio. Ambas tienen una mortalidad de 50% a los 30 a&ntilde;os, siendo la muerte s&uacute;bita su manifestaci&oacute;n inicial m&aacute;s frecuente. Otra condici&oacute;n asociada a mutaciones del RyR pero de diferente forma cl&iacute;nica es la displasia/miocardiopat&iacute;a ventricular derecha arritmog&eacute;nica tipo 2 (D/ MVDA2), que se manifiesta por reemplazo progresivo de la pared ventricular derecha con tejido fibroso y graso;<sup>101</sup> y tiene en com&uacute;n con la TVPF y TVPC arritmias inducidas por ejercicio y muerte s&uacute;bita. Tambi&eacute;n se han asociado mutaciones en el gen de CSQ2 con la TVPC.<sup>24</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mecanismo molecular asociado a estas entidades, ha sido se&ntilde;alado como una disminuci&oacute;n en la afinidad del RyR por calstabina 2, que es m&aacute;s notoria durante la estimulaci&oacute;n adren&eacute;rgica y la subsiguiente fosforilaci&oacute;n del RyR por PKA y que aunada a la disminuci&oacute;n de la afinidad por calstabina 2, provoca una mayor disociaci&oacute;n, y por lo tanto el canal de RyR es mucho menos estable, y m&aacute;s susceptible de generar liberaciones aberrantes de Ca<sup>2+</sup>que se traduzcan en arritmias.<sup>22,89,102,103</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ret&iacute;culo sarcopl&aacute;smico es un organelo de las c&eacute;lulas musculares estriadas que ha sido extensamente estudiado y que tiene un papel central en el proceso del AEC, donde varios de sus componentes mantienen funciones esenciales para el desarrollo de la contracci&oacute;n mioc&aacute;rdica. La expresi&oacute;n y funci&oacute;n de las prote&iacute;nas del RS se encuentra regulada finamente, en particular los dos componentes de mayor importancia que son el canal de liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup> (RyR) y la ATPasa de Ca<sup>2+</sup> (SERCA2a), que junto con los canales de Ca<sup>2+</sup>voltaje dependientes (DHPR) y el intercambiador de Na<sup>+</sup> y Ca<sup>2+</sup> (NCX), son los componentes centrales que disparan la contracci&oacute;n muscular. Adem&aacute;s la calsecuestrina, triadina y juntina presentes en la luz del RS participan activamente en el proceso de liberaci&oacute;n de Ca<sup>2+</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Debido a este papel fundamental, se ha demostrado que las prote&iacute;nas del RS tambi&eacute;n juegan un papel muy importante en el desarrollo y progresi&oacute;n de enfermedades card&iacute;acas, donde la hipertrofia y la insuficiencia card&iacute;aca han sido las m&aacute;s estudiadas. La mejor comprensi&oacute;n de la estructura y funci&oacute;n y expresi&oacute;n de las prote&iacute;nas del RS dan la pauta para comprender la fisiopatolog&iacute;a de la hipertrofia card&iacute;aca por exceso de presi&oacute;n, la IC y las arritmias, as&iacute; como el potencial que representan para futuras intervenciones terap&eacute;uticas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Agradecemos los valiosos comentarios de los Drs. Jaime Mas Oliva y Edmundo Ch&aacute;vez Cossio durante la preparaci&oacute;n de este manuscrito. Este trabajo fue apoyado por los donativos de SEP&#150;CONACYT 42801, y PAPIIT&#150;UNAM, IN215002, M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Jorgensen AO, Kalnins VI, Zubrzycka E, MacLennan DH: <i>Assembly of the sarcoplasmic reticulum. Localization by immunofluorescence of sarcoplasmic reticulum proteins in differentiating rat skeletal muscle cell cultures. </i>J Cell Biol 1977; 74: 287&#150;298.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056802&pid=S1405-9940200600080000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2.&nbsp;Page E: <i>Quantitative ultrastructural analysis in cardiac membrane physiology. </i>Am J Physiol 1978; 235: C147&#150;158.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056803&pid=S1405-9940200600080000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3.&nbsp;Van Winkle WB, Entman ML: <i>Comparative aspects of cardiac and skeletal muscle sarcoplasmic reticulum. </i>Life Sci 1979; 25: 1189&#150;1200.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056804&pid=S1405-9940200600080000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4.&nbsp;Fabiato A, Fabiato F: <i>Calcium and cardiac excitation&#150;contraction coupling. </i>Annu Rev Physiol 1979; 41: 473&#150;484.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056805&pid=S1405-9940200600080000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5.&nbsp;Fabiato A: <i>Calcium&#150;induced release of calcium from the cardiac sarcoplasmic reticulum. </i>Am J Physiol 1983; 245: Cl&#150;14.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056806&pid=S1405-9940200600080000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6.&nbsp;Franzini&#150;Armstrong C, Protasi F, Tijskens P: <i>The assembly of calcium release units in cardiac muscle. </i>Ann N Y Acad Sci 2005; 1047: 76&#150;85.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056807&pid=S1405-9940200600080000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7.&nbsp;Michalak M, MacLennan DH: <i>Assembly of the sarcoplasmic reticulum. Biosynthesis of the high affinity calcium binding protein in rat skeletal muscle cell cultures. </i>J Biol Chem 1980; 255: 1327&#150;1334.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056808&pid=S1405-9940200600080000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8.&nbsp;Brandt NR, Brunschwig JP, Lattanzio FA: <i>A functional identification of cardiac junctional sarcoplasmic reticulum. </i>Biochem Biophys Res Commun 1985; 128: 739&#150;745.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056809&pid=S1405-9940200600080000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9.&nbsp;Jorgensen AO, Shen AC, Campbell KP: <i>Ultrastructural localization of calsequestrin in adult rat atrial and ventricular muscle cells. </i>J Cell Biol 1985; 101: 257&#150;268.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056810&pid=S1405-9940200600080000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Wientzek M, Katz S: <i>Isolation and characterization of purified sarcoplasmic reticulum membranes from isolated adult rat ventricular myocytes. </i>J Mol Cell Cardiol 1991; 23: 1149&#150;1163.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056811&pid=S1405-9940200600080000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Martonosi AN, Pikula S: <i>The network of calcium regulation in muscle. </i>Acta Biochim Pol 2003; 50: 1&#150;30.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056812&pid=S1405-9940200600080000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Dhalla NS, Das PK, Sharma GP: <i>Subcellular basis of cardiac contractile failure. </i>J Mol Cell Cardiol 1978; 10: 363&#150;385.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056813&pid=S1405-9940200600080000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Schwartz K, Chassagne C, Boheler, KR: <i>The molecular biology of heart failure. </i>J Am Coll Cardiol 1993; 22: 30A&#150;33A.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056814&pid=S1405-9940200600080000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Arai M, Matsui H, Periasamy M: <i>Sarcoplasmic reticulum gene expression in cardiac hypertrophy and heart failure. </i>Circ Res 1994; 74: 555&#150;564.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056815&pid=S1405-9940200600080000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Dillmann WH: <i>Regulation of expression of cardiac sarcoplasmic reticulum proteins under pathophysiological conditions. </i>Mol Cell Biochem 1996; 157: 125&#150;128.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056816&pid=S1405-9940200600080000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Hasenfuss G, Pieske B: <i>Calcium cycling in congestive heart failure. </i>J Mol Cell Cardiol 2002; 34: 951&#150;969.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056817&pid=S1405-9940200600080000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Alpert NR, Brosseau C, Federico A, Krenz M, Robbins J, Warshaw DM: <i>Molecular mechanics of mouse cardiac myosin isoforms. </i>Am J Physiol Heart Circ Physiol 2002; 283: H1446&#150;1454.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056818&pid=S1405-9940200600080000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Vannier C, Chevassus H, Vassort G: <i>Ca&#150;dependence of isometric force kinetics in single skinned ventricular cardiomyocytes from rats. </i>Cardiovasc Res 1996; 32: 580&#150;586.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056819&pid=S1405-9940200600080000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Palmer S, Kentish JC: <i>Roles of Ca2 </i>+ <i>and cross bridge kinetics in determining the maximum rates of Ca2+ activation and relaxation in rat and guinea pig skinned trabeculae. </i>Circ Res 1998; 83: 179&#150;186.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056820&pid=S1405-9940200600080000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Baker AJ, Figueredo VM, Keung EC, Camacho SA: <i>Ca2+ regulates the kinetics of tension development in intact cardiac muscle. </i>Am J Physiol 1998; 275: H744&#150;750.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056821&pid=S1405-9940200600080000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Benitah JP, Gomez AM, Virsolvy A, Richard S: <i>New perspectives on the key role of calcium in the progression of heart disease. </i>J Muscle Res Cell Motil 2003; 24: 275&#150;283.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056822&pid=S1405-9940200600080000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Beard NA, Laver DR, Dulhunty AF: <i>Calsequestrin and the calcium release channel of skeletal and cardiac muscle. </i>Prog Biophys Mol Biol 2004; 85: 33&#150;69.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056823&pid=S1405-9940200600080000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Brittsan AG, Kranias EG: <i>Phospholamban and cardiac contractile function. </i>J Mol Cell Cardiol 2000; 32: 2131&#150;2139.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056824&pid=S1405-9940200600080000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Lehnart SE, Wehrens XH, Kushnir A, Marks AR: <i>Cardiac ryanodine receptor function and </i><i>regulation in heart disease. </i>Ann N Y Acad Sci 2004; 1015: 144&#150;159.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056825&pid=S1405-9940200600080000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Marks AR, Tempst P, Hwang KS, Taubman MB, Inui M, Chadwick C, et al: <i>Molecular cloning and characterization of the ryanodine receptor/ junctional channel complex cDNA from skeletal muscle sarcoplasmic reticulum. </i>Proc Natl Acad Sci USA 1989; 86: 8683&#150;8687.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056826&pid=S1405-9940200600080000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Otsu K, Willard HF, Khanna VK, Zorzato F, Green NM, MacLennan DH: <i>Molecular cloning of cDNA encoding the Ca2+ release channel (ryanodine receptor) of rabbit cardiac muscle sarcoplasmic reticulum. </i>J Biol Chem 1990; 265: 13472&#150;13483.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056827&pid=S1405-9940200600080000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Takeshima H, Yamazawa T, Ikemoto T, Takekura H, Nishi M, Noda T, et al: <i>Ca(2+)&#150;induced Ca2+ release in myocytes from dyspedic mice lacking the type&#150;1 ryanodine receptor. </i>EMBO J 1995; 14: 2999&#150;3006.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056828&pid=S1405-9940200600080000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">28. Wagenknecht T, Samso M: <i>Three&#150;dimensional reconstruction of ryanodine receptors. </i>Front Biosci 2002; 7: d 1464&#150;1474.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056829&pid=S1405-9940200600080000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Franzini&#150;Armstrong C, Jorgensen AO: <i>Structure and development of E&#150;C coupling units inskeletal muscle. </i>Annu Rev Physiol 1994; 56: 509&#150;534.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056830&pid=S1405-9940200600080000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Zhang L, Kelley J, Schmeisser G, Kobayashi YM, Jones LR: <i>Complex formation between junctin, triadin, calsequestrin, and the ryanodine receptor. Proteins of the cardiac junctional sarcoplasmic reticulum membrane. </i>J Biol Chem 1997; 272: 23389&#150;23397.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056831&pid=S1405-9940200600080000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Marx SO, Reiken S, Hisamatsu Y, Gaburjakova M, Gaburjakova J, Yang YM, et al: <i>Phosphorylation&#150;dependent regulation of ryanodine receptors: a novel role for leucine/isoleucine zippers. </i>J Cell Biol 2001; 153: 699&#150;708.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056832&pid=S1405-9940200600080000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Dorn GW, 2nd, Force T: <i>Proteinkinase cascades in the regulation of cardiac hypertrophy. </i>J Clin Invest 2005; 115: 527&#150;537.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056833&pid=S1405-9940200600080000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33. Marx SO, Reiken S, Hisamatsu Y, Jayaraman T,Burkhoff D,  Rosemblit N,  ET AL:  <i>PKA phosphorylation dissociates FKBP 12.6 from the calcium release channel (ryanodine receptor): defective regulation infailing hearts. </i>Cell 2000; 101: 365&#150;376.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056834&pid=S1405-9940200600080000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">34. Wehrens XH, Marks AR: <i>Altered function and regulation of cardiac ryanodine receptors in cardiac disease. </i>Trends Biochem Sci 2003; 28: 671&#150;678.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056835&pid=S1405-9940200600080000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">35. Yano K, Zarain&#150;Herzberg A: <i>Sarcoplasmic reticulum calsequestrins: structural and functional properties. </i>Mol Cell Biochem 1994; 135: 61&#150;70.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056836&pid=S1405-9940200600080000300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">36. Fryer MW, Stephenson DG: <i>Total and sarcoplasmic reticulum calcium contents of skinned fibres from rat skeletal muscle. </i>J Physiol 1996; 493(Pt 2): 357&#150;370.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056837&pid=S1405-9940200600080000300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">37. Ikemoto N, Ronjat M, Meszaros LG, Koshita M: <i>Postulated role of calsequestrin in the regulation of calcium release from sarcoplasmic reticulum. </i>Biochemistry 1989; 28: 6764&#150;6771.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056838&pid=S1405-9940200600080000300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">38. Kawasaki T, Kasai M: <i>Regulation of calcium channel in sarcoplasmic reticulum by calsequestrin. </i>Biochem Biophys Res Commun 1994; 199: 1120&#150;1127.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056839&pid=S1405-9940200600080000300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">39. Beard NA, Sakowska MM, Dulhunty AF, Laver DR: <i>Calsequestrin is an inhibitor of skeletal muscle ryanodine receptor calcium release channels. </i>Biophys J 2002; 82: 310&#150;320.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056840&pid=S1405-9940200600080000300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">40. Ikemoto N, Antoniu B, Kang JJ, Meszaros LG, Ronjat M: <i>Intravesicular calcium transient during calcium release from sarcoplasmic reticulum. </i>Biochemistry 1991; 30: 5230&#150;5237.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056841&pid=S1405-9940200600080000300040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">41. Schmidt AG, Kadambi VJ, Ball N, Sato Y, Walsh RA, Kranias EG, et al. <i>Cardiac&#150;specific overexpression of calsequestrin results in left ventricular hypertrophy, depressed force&#150;frequency relation and pulsus alternans in vivo. </i>J Mol Cell Cardiol 2000; 32: 1735&#150;1744.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056842&pid=S1405-9940200600080000300041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">42. Knudson CM, Stang KK, Jorgensen AO, Campbell KP: <i>Biochemical characterization of ultrastructural localization of a major junctional sarcoplasmic reticulum glycoprotein (triadin). </i>J Biol Chem 1993; 268: 12637&#150;12645.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056843&pid=S1405-9940200600080000300042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">43. Knudson CM, Stang KK, Moomaw CR, Slaughter CA, Campbell KP: <i>Primary structure and topological analysis of a skeletal muscle&#150;specific junctional sarcoplasmic reticulum glycoprotein (triadin). </i>J Biol Chem 1993; 268: 12646&#150;12654.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056844&pid=S1405-9940200600080000300043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">44. Jones LR, Zhang L, Sanborn K, Jorgensen AO, Kelley J: <i>Purification, primary structure, and immunological characterization of the 26&#150;kDa calsequestrin binding protein (junctin) from cardiac junctional sarcoplasmic reticulum. </i>J Biol Chem 1995; 270: 30787&#150;30796.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056845&pid=S1405-9940200600080000300044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">45.&nbsp;Kirchhefer U, Neumann J, Baba HA, Begrow F,Kobayashi YM, Reinke U, etal: <i>Cardiac hypertrophy and impaired relaxation in transgenic mice overexpressing triadin 1. </i>J Biol Chem 2001; 276: 4142&#150;4149.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056846&pid=S1405-9940200600080000300045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">46. Zhang L, Franzini&#150;Armstrong C, Ramesh V, Jones LR: <i>Structural alterations in cardiac calcium release units resulting from overexpression of junctin. </i>J Mol Cell Cardiol 2001; 33: 233&#150;247.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056847&pid=S1405-9940200600080000300046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">47. MacLennan DH, Abu&#150;Abed M, Kang C: <i>Structure&#150;function relationships in Ca(2+) cycling proteins. </i>J Mol Cell Cardiol 2002; 34: 897&#150;918.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056848&pid=S1405-9940200600080000300047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">48. Korczak B, Zarain&#150;Herzberg A, Brandl CJ, Ingles CJ, Green NM, MacLennan DH: <i>Structure of the rabbit fast&#150;twitch skeletal muscle Ca2+-ATPase gene. J </i>Biol Chem 1988; 263:4813&#150;4819.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056849&pid=S1405-9940200600080000300048&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">49. Zarain&#150;Herzberg A, Alvarez&#150;Fernandez G: <i>Sarco(endo)plasmic reticulum Ca2+&#150;ATPase&#150;2 gene: structure and transcriptional regulation of the human gene. </i>Scientific World Journal 2002; 2: 1469&#150;1483.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056850&pid=S1405-9940200600080000300049&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">50. Dode L, De Greef C, Mountian I, Attard M, Town MM, Casteels R, et al: <i>Structure of the human sarco/endoplasmic reticulum Ca2 + &#150;ATPase 3 gene. Promoter analysis and alternati</i><i>ve splicing of the SERCA3 pre&#150;mRNA. </i>J Biol Chem 1998; 273: 13982&#150;13994.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056851&pid=S1405-9940200600080000300050&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">51. Lytton J, Zarain&#150;Herzberg A, Periasamy M, MacLennan DH: <i>Molecular cloning of the mammalian smooth muscle sarco(endo)plasmic reticulum Ca2+&#150;ATPase. </i>J Biol Chem 1989; 264: 7059&#150;7065.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056852&pid=S1405-9940200600080000300051&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">52. Gelebart P, Martin V, Enouf J, Papp B: <i>Identification of a new SERCA2 splice variant regulated during monocytic differentiation. </i>Biochem Biophys Res Commun 2003; 303: 676&#150;684.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056853&pid=S1405-9940200600080000300052&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">53. Bobe R, Bredoux R, Corvazier E, Andersen JP, Clausen JD, Dode L, et al: <i>Identification, expression, function, and localization of a novel (sixth) isoform of the human sarco/endoplasmic reticulum Ca2+ATPase 3 gene. </i>J Biol Chem 2004; 279: 24297&#150;24306.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056854&pid=S1405-9940200600080000300053&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">54. MacLennan DH, Rice WJ, Green NM: <i>The mechanism of Ca2+ transport by sarco(endo)plasmic reticulum Ca2+&#150;ATPases. </i>J Biol Chem 1997; 272: 28815&#150;28818.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056855&pid=S1405-9940200600080000300054&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">55. MacLennan DH, Kranias EG: <i>Phospholamban: a crucial regulator of cardiac contractility. </i>Nat Rev Mol Cell Biol 2003; 4: 566&#150;577.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056856&pid=S1405-9940200600080000300055&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">56. Bers DM: <i>Cardiac excitation&#150;contraction </i><i>coupling. </i>Nature 2002; 415: 198&#150;205.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056857&pid=S1405-9940200600080000300056&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">57. Shannon TR, Bers DM: <i>Integrated Ca2+ management in cardiac myocytes. </i>Ann N Y Acad Sci 2004; 1015: 28&#150;38.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056858&pid=S1405-9940200600080000300057&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">58. Kamishima T, Quayle JM: <i>Ca2+&#150;induced Ca2+ release in cardiac and smooth muscle cells. </i>Biochem Soc Trans 2003; 31: 943&#150;946.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056859&pid=S1405-9940200600080000300058&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">59.&nbsp;Richard S, Perrier E, Fauconnier J, Perrier R, Pereira L, Gomez AM, et al: <i>'Ca(2+)&#150;induced Ca(2+) entry' or how the L&#150;type Ca(2+) channel remodels its own signalling pathway in cardiac cells. </i>Prog Biophys Mol Biol 2006; 90: 118&#150;135.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056860&pid=S1405-9940200600080000300059&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">60. Yano M, Ikeda Y, Matsuzaki M: <i>Altered intracellular Ca2+ handling in heart failure. </i>J Clin Invest 2005; 115: 556&#150;564.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056861&pid=S1405-9940200600080000300060&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">61. Braunwald E, Bristow MR: <i>Congestive heart failure: fifty years of progress. </i>Circulation 2000;102: IV14&#150;23.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056862&pid=S1405-9940200600080000300061&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">62. Lowes BD, Minobe W, Abraham WT, Rizeq MN, Bohlmeyer TJ, Quaife RA, et al: <i>Changes in gene expression in the intact human heart. Downregulation of alpha&#150;myosin heavy chain in hypertrophied, failing ventricular myocardium. </i>J Clin Invest 1997; 100: 2315&#150;2324.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056863&pid=S1405-9940200600080000300062&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">63.&nbsp;Miyata S, Minobe W, Bristow MR, Leinwand LA: <i>Myosin heavy chain isoform expression in the failing and nonfailing human heart. </i>Circ Res 2000; 86: 386&#150;390.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056864&pid=S1405-9940200600080000300063&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">64.&nbsp;Morano I, Hadicke K, Haase H, Bohm M, Erdmann E, Schaub MC: <i>Changes in essential myosin light chain isoform expression provide a molecular basis for isometric force regulation in the failing human heart. </i>J Mol Cell Cardiol 1997; 29:1177&#150;1187.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056865&pid=S1405-9940200600080000300064&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">65.&nbsp;Nakao K, Minobe W, Roden R, Bristow MR, Leinwand LA: <i>Myosin heavy chain gene expression in human heart failure. </i>J Clin Invest 1997; 100: 2362&#150;2370.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056866&pid=S1405-9940200600080000300065&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">66.&nbsp;Pagani ED, Alousi AA, Grant AM, Older TM, Dziuban SW Jr, Allen PD: <i>Changes in myofibrillar content and Mg&#150;ATPase activity in ventricular tissues from patients with heart failure caused by coronary artery disease, cardiomyopathy, or mitral valve insufficiency. </i>Circ Res 1988; 63: 380&#150;385.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056867&pid=S1405-9940200600080000300066&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">67. Alpert NR, Mulieri LA, Litten RZ: <i>Functional significance of altered myosin adenosine triphosphatase activity in enlarged hearts. </i>Am J Cardiol 1979; 44: 946&#150;953.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056868&pid=S1405-9940200600080000300067&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">68. Houser SR, Margulies KB: <i>Is depressed myocyte contractility centrally involved in heart failure? </i>Circ Res 2003; 92: 350&#150;358.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056869&pid=S1405-9940200600080000300068&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">69. Beuckelmann DJ, Nabauer M, Erdmann E: <i>Intracellular calcium handling in isolated ventricular myocytes from patients with terminal heart failure. </i>Circulation 1992; 85: 1046&#150;1055.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056870&pid=S1405-9940200600080000300069&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">70. Grossman W, Jones D, McLaurin LP: <i>Wall stress and patterns of hypertrophy in the human left ventricle. </i>J Clin Invest 1975; 56: 56&#150;64.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056871&pid=S1405-9940200600080000300070&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">71. Gerdes AM, Kellerman SE, Moore J A, Muffly KE, Clark LC, Reaves PY, et al: <i>Structural remodeling of cardiac myocytes in patients with ischemic cardiomyopathy. </i>Circulation 1992; 86: 426&#150;430.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056872&pid=S1405-9940200600080000300071&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">72. Zhu W, Zou Y, Shiojima I, Kudoh S, Aikawa R, Hayashi D, et al: <i>Ca2+/calmodulin&#150;dependent kinase II and calcineurin play critical roles in endothelin&#150;1 &#150;induced cardiomyocyte hypertrophy. </i>J Biol Chem 2000; 275: 15239&#150;15245.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056873&pid=S1405-9940200600080000300072&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">73. Wilkins BJ, Dai YS, Bueno OF, Parsons SA, Xu J, Plank DM, et al. <i>Calcineurin/NFAT coupling participates in pathological, but not physiological, cardiac hypertrophy. </i>Circ Res 2004; 94: 110&#150;118.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056874&pid=S1405-9940200600080000300073&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">74. Gomez AM, Valdivia HH, Cheng H, Lederer MR, Santana LF, Cannell MB, et al: <i>Defective excitation&#150;contraction coupling in experimental cardiac hypertrophy and heart failure. </i>Science 1997; 276: 800&#150;806.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056875&pid=S1405-9940200600080000300074&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">75. Zarain&#150;Herzberg A, Rupp H, Elimban V, Dhalla NS: <i>Modification of sarcoplasmic reticulum gene expression in pressure overload cardiac hypertrophy by etomoxir. </i>Faseb J 1996; 10: 1303&#150;1309.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056876&pid=S1405-9940200600080000300075&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">76. Takizawa T, Arai M, Yoguchi A, Tomaru K, Kurabayashi M, Nagai R: <i>Transcription of the SER&#150;CA2 gene is decreased in pressure&#150;overloaded hearts: A study using in vivo direct gene transfer into living myocardium. </i>J Mol Cell Cardiol 1999; 31:2167&#150;2174.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056877&pid=S1405-9940200600080000300076&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">77. Bers DM, Eisner DA, Valdivia HH: <i>Sarcoplasmic reticulum Ca2+ and heart failure: roles of diastolic leak and Ca2+ transport. </i>Circ Res 2003; 93: 487 &#150;490.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056878&pid=S1405-9940200600080000300077&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">78. Lehnart SE, Schillinger W, Pieske B, Prestle J, Just H, Hasenfuss G: <i>Sarcoplasmic reticulum proteins in heart failure. </i>Ann NY Acad Sci 1998; 853:220&#150;230.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056879&pid=S1405-9940200600080000300078&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">79. Meyer M, Schillinger W, Pieske B, Holubarsch C, Heilmann C, Posival H, et al: <i>Alterations of sarcoplasmic reticulum proteins in failing human dilated cardiomyopathy. </i>Circulation 1995; 92: 778&#150;784.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056880&pid=S1405-9940200600080000300079&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">80. Bers DM: <i>Macromolecular complexes regulating cardiac ryanodine receptor function. </i>J Mol Cell Cardiol 2004; 37: 417&#150;429.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056881&pid=S1405-9940200600080000300080&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">81. Lindner M, Erdmann E, Beuckelmann DJ: <i>Calcium content of the sarcoplasmic reticulum in isolated ventricular myocytes from patients with terminal heart failure. </i>J Mol Cell Cardiol 1998; 30: 743&#150;749.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056882&pid=S1405-9940200600080000300081&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">82. Brillantes AB, Ondrias K, Scott A, Kobrinsky E, Ondriasova E, Moschella MC, et al: <i>Stabilization of calcium release channel (ryanodine receptor) function by FK506&#150;binding protein. </i>Cell 1994; 77: 513&#150;523.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056883&pid=S1405-9940200600080000300082&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">83. Miyamoto MI, del Monte F, Schmidt U, DiSalvo TS, Kang ZB, Matsui T, et al: <i>Adenoviral gene transfer of SERCA2a improves left&#150;ventricular function in aortic&#150;banded rats in transition to heart failure. </i>Proc Natl Acad Sci USA 2000; 97: 793&#150;798.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056884&pid=S1405-9940200600080000300083&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">84. Del Monte F, Williams E, Lebeche D, Schmidt U, Rosenzweig A, Gwathmey JK, et al: <i>Improvement in survival and cardiac metabolism after gene transfer of sarcoplasmic reticulum Ca(2+)&#150;ATPase in a rat model of heart failure. </i>Circulation 2001; 104: 1424&#150;1429.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056885&pid=S1405-9940200600080000300084&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">85. Sato Y, Kiriazis H, Yatani A, Schmidt AG, Hahn H, Ferguson DG, et al: <i>Rescue of contractile parameters and myocyte hypertrophy in calsequestrin overexpressing myocardium by phospholamban ablation. </i>J Biol Chem 2001; 276: 9392&#150;9399.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056886&pid=S1405-9940200600080000300085&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">86. Minamisawa S, Hoshijima M, Chu G, Ward CA, Frank K, Gu Y, et al: <i>Chronic phospholambansarcoplasmic reticulum calcium ATPase interaction is the critical calcium cycling defect in dilated cardiomyopathy. </i>Cell 1999; 99: 313&#150;322.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056887&pid=S1405-9940200600080000300086&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">87. Iwanaga Y, Hoshijima M, Gu Y, Iwatate M, Dieterle T, Ikeda Y, et al: <i>Chronicphospholamban inhibition prevents progressive cardiac dysfunction and pathological remodeling after infarction in rats. </i>J Clin Invest 2004; 113: 727&#150;736.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056888&pid=S1405-9940200600080000300087&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">88. Farr MA, Basson CT: <i>Sparking the failing heart. </i>N Engl J Med 2004; 351: 185&#150;187.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056889&pid=S1405-9940200600080000300088&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">89. Laitinen PJ, Brown KM, Piippo K, Swan H, Devaney JM, Brahmbhatt B, et al: <i>Mutations of the cardiac ryanodine receptor (RyR2) gene in familial polymorphic ventricular tachycardia. </i>Circulation 2001; 103: 485&#150;490.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056890&pid=S1405-9940200600080000300089&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">90. Scoote M, Williams AJ: <i>The cardiac ryanodine receptor (calcium release channel): emerging role </i><i>in heart failure and arrhythmia pathogenesis. </i>Cardiovasc Res 2002; 56: 359&#150;372.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056891&pid=S1405-9940200600080000300090&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">91. January CT, Riddle JM: <i>Early afterdepolarizations: mechanism of induction and block. A role for L&#150;type Ca2+ current. </i>Circ Res 1989; 64: 977&#150;990.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056892&pid=S1405-9940200600080000300091&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">92. Volders PG, Vos MA, Szabo B, Sipido KR, de Groot SH, Gorgels AP, et al. <i>Progress in the understanding of cardiac early afterdepolarizations and torsades de pointes: time to revise current concepts. </i>Cardiovasc Res 2000; 46: 376&#150;392.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056893&pid=S1405-9940200600080000300092&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">93. Tomaselli GF, Marban E: <i>Electrophysiological remodeling in hypertrophy and heart failure. </i>Cardiovasc Res 1999; 42: 270&#150;283.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056894&pid=S1405-9940200600080000300093&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">94. Pak PH, Nuss HB, Tunin RS, Kaab S, Tomaselli GF, Marban E, et al: <i>Repolarization abnormalities, arrhythmia and sudden death in canine tachycardia&#150;induced cardiomyopathy. </i>J Am Coll Cardiol 1997; 30: 576&#150;584.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056895&pid=S1405-9940200600080000300094&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">95. Pogwizd SM, Bers DM: <i>Cellular basis of triggered arrhythmias in heart failure. </i>Trends Cardiovasc Med 2004; 14: 61&#150;66.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056896&pid=S1405-9940200600080000300095&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">96. Pogwizd SM, Hoyt RH, Saffitz JE, Corr PB, Cox JL, Cain ME: <i>Reentrant and focal mechanisms underlying ventricular tachycardia in the human heart. </i>Circulation 1992; 86: 1872&#150;1887.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056897&pid=S1405-9940200600080000300096&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">97. Wehrens XH, Lehnart SE, Huang F, Vest JA, Reiken SR, Mohler PJ, et al: <i>FKBP12.6 deficiency and defective calcium release channel (ryanodine receptor) function linked to exercise&#150;induced sudden cardiac death. </i>Cell 2003; 113: 829&#150;840.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056898&pid=S1405-9940200600080000300097&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">98. Schlotthauer K, Bers DM: <i>Sarcoplasmic reticulum Ca(2+) release causes myocyte depolarization. Underlying mechanism and threshold for triggered action potentials. </i>Circ Res 2000; 87: 774&#150;780.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056899&pid=S1405-9940200600080000300098&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">99. Priori SG, Napolitano C, Memmi M, Colombi B, Drago F, Gasparini M, et al: <i>Clinical and molecular characterization of patients with catecholaminergic polymorphic ventricular tachycardia. </i>Circulation 2002; 106: 69&#150;74.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056900&pid=S1405-9940200600080000300099&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">100.&nbsp;Priori SG, Napolitano C, Tiso N, Memmi M, Vignati G, Bloise R, et al. <i>Mutations in the cardiac ryanodine receptor gene (hRyR2) underlie catecholaminergic polymorphic ventricular tachycardia. </i>Circulation 2001; 103: 196&#150;200.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056901&pid=S1405-9940200600080000300100&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">101.&nbsp;Tiso N, Stephan DA, Nava A, Bagattin A, Devaney JM, Stanchi F, et al: <i>Identification of mutations in the cardiac ryanodine receptor gene in families affected with arrhythmogenic right ventricular cardiomyopathy type 2 (ARVD2). </i>Hum Mol Genet 2001; 10: 189&#150;194.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056902&pid=S1405-9940200600080000300101&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">102.&nbsp;Kontula K, Laitinen PJ, Lehtonen A, Toivonen L, Viltasalo M, Swan H: <i>Catecholaminergic polymorphic ventricular tachycardia: recent mechanistic insights. </i>Cardiovasc Res 2005; 67: 379&#150;387.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056903&pid=S1405-9940200600080000300102&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">103.&nbsp; Tiso N, Salamon M, Bagattin A, Danieli GA, Argenton F, Bortolussi M: <i>The binding of the RyR2 calcium channel to its gating protein FKBP12.6 is oppositely affected byARVD2 and VTSIP mutations. </i>Biochem Biophys Res Commun 2002; 299:594&#150;598.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1056904&pid=S1405-9940200600080000300103&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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