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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Tomografía por emisión de positrones (PET): Una herramienta útil para el estudio del metabolismo cardiaco]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Positron emission tomography (PET): A useful tool for the assessment of cardiac metabolism]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Under normal conditions, myocardial metabolism is based on the oxidation of fatty acids and in a lesser extent carbohydrates. Cardiac function depends upon an adequate supplement of adenosine triphosphate(ATP) by these substrates. However, the main source of energy is susceptible to change upon a various physiologic (exercise) as well as pathologic (ischemia-reperfusion) conditions. Recently, carnitine has gained attention as a modulator of fatty acids and carbohydrates metabolism by means of modifying intramitochondrial Acetyl-CoA/CoA ratio. Disturbances in fatty acids and carbohydrates metabolism in the myocardium have been associated with cardiovascular diseases (chronic ischemic disease, ventricular hypertrophy and dilated cardiomyopathy). The evaluation of cardiac metabolism attains great value regarding diagnosis, treatment and prognosis of these diseases. Currently, positron emission tomography (PET) is one of the preferred methods to evaluate cardiac energy metabolism in clinical practice. In PET images the tracers most commonly used are "C-palmitate, "C-acetate y 18Fluoro-2-deoxyglucose (FDG), the first two are employed to assess fatty acids oxidation and FDG is used to evaluate carbohydrates metabolism.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">REVISI&Oacute;N DE TEMAS CARDIOL&Oacute;GICOS</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Tomograf</b></font><font face="verdana" size="4"><b>&iacute;</b></font><font face="verdana" size="4"><b>a por emisi&oacute;n de positrones (PET):</b> <b>Una herramienta &uacute;til para el estudio del metabolismo cardiaco</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Positron emission tomography (PET): A useful tool for the assessment of cardiac metabolism</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Erick Alex&aacute;nderson,*** Diana G&oacute;mez&#45;Mart&iacute;n,** Israel Benito,** Leonel Ru&iacute;z&#45;Ram&iacute;rez,** Alejandro Ricalde,** Aloha Meave*</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>* Departamento de Medicina Nuclear y Resonancia Magn&eacute;tica, Instituto Nacional de Cardiolog&iacute;a "Ignacio Ch&aacute;vez".</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>** Unidad PET&#45;Ciclotr&oacute;n. Planta Baja del Edificio de Investigaci&oacute;n, Facultad de Medicina, UNAM, Ciudad Universitaria.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Correspondencia    <br> 	</font><font face="verdana" size="2">Dr. Erick Alex&aacute;nderson Rosas. Instituto Nacional de Cardiolog&iacute;a "Ignacio Ch&aacute;vez". (INCICH, Juan Badiano No. 1, Col. Secci&oacute;n XVI, Tlalpan 14080 M&eacute;xico, D.F.). Tel: 5272&#45;2886; Fax: 5 272&#45;2678. E&#45;mail: <a href="mailto:alexanderick@yahoo.com">alexanderick@yahoo.com</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 17 de junio de 2003    <br> 	Aceptado: 24 de septiembre de 2003</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En condiciones normales el metabolismo energ&eacute;tico del coraz&oacute;n se basa en la oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos y en menor proporci&oacute;n de carbohidratos. La funci&oacute;n cardiaca depende del suplemento adecuado de trifosfato de adenosina (ATP) proveniente de dichos sustratos. Sin embargo, la fuente principal de energ&iacute;a est&aacute; sujeta a modificaci&oacute;n porfactorestanto fisiol&oacute;gicos (ejercicio) como patol&oacute;gicos (isquemia&#45;reperfusi&oacute;n). Recientemente, se ha puesto gran atenci&oacute;n al papel de la carnitina como regulador del metabolismo de &aacute;cidos grasos y carbohidratos mediante la modulaci&oacute;n de la relaci&oacute;n intramitocondrial de acetil&#45;CoA/CoA. Las alteraciones en el metabolismo de carbohidratos y &aacute;cidos grasos a nivel mioc&aacute;rdico se han asociado al desarrollo de diversas patolog&iacute;as cardiovasculares (cardiopat&iacute;a isqu&eacute;mica, hipertrofia ventricular, y miocardiopat&iacute;a dilatada) por lo cual el estudio del metabolismo cardiaco cobra gran relevancia para el diagn&oacute;stico, y pron&oacute;stico de estas patolog&iacute;as. Dentro de la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica, la tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (PET) es una de las t&eacute;cnicas m&aacute;s empleadas para la evaluaci&oacute;n del metabolismo cardiaco. Los radiotrazadores m&aacute;s ampliamente empleados en imagen PET son "C&#45;palmitato, "C&#45;acetato y <sup>18</sup>Fluoro&#45;2&#45;desoxiglucosa (FDG), los dos primeros se emplean para el estudio del metabolismo oxidativo de los &aacute;cidos grasos y la FDG nos permite estudiar el metabolismo de carbohidratos.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Metabolismo cardiaco, Tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones, 18&#45;FDG.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Summary</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Under normal conditions, myocardial metabolism is based on the oxidation of fatty acids and in a lesser extent carbohydrates. Cardiac function depends upon an adequate supplement of adenosine triphosphate(ATP) by these substrates. However, the main source of energy is susceptible to change upon a various physiologic (exercise) as well as pathologic (ischemia&#45;reperfusion) conditions. Recently, carnitine has gained attention as a modulator of fatty acids and carbohydrates metabolism by means of modifying intramitochondrial Acetyl&#45;CoA/CoA ratio. Disturbances in fatty acids and carbohydrates metabolism in the myocardium have been associated with cardiovascular diseases (chronic ischemic disease, ventricular hypertrophy and dilated cardiomyopathy). The evaluation of cardiac metabolism attains great value regarding diagnosis, treatment and prognosis of these diseases. Currently, positron emission tomography (PET) is one of the preferred methods to evaluate cardiac energy metabolism in clinical practice. In PET images the tracers most commonly used are "C&#45;palmitate, "C&#45;acetate y <sup>18</sup>Fluoro&#45;2&#45;deoxyglucose (FDG), the first two are employed to assess fatty acids oxidation and FDG is used to evaluate carbohydrates metabolism.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> Cardiac metabolism, Positron emission tomography, 18&#45;FDG.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este art&iacute;culo de revisi&oacute;n es enfocarse en los puntos clave del metabolismo cardiaco, sus principales v&iacute;as (gluc&oacute;lisis, oxidaci&oacute;n de carbohidratos, oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos, ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos, entre otras) y factores moduladores (carnitina) para poder comprender la asociaci&oacute;n existente entre el desarrollo de diversas patolog&iacute;as cardiovasculares (cardiopat&iacute;a isqu&eacute;mica, hipertrofia ventricular, miocardiopat&iacute;a dilatada, y miocardiopat&iacute;a diab&eacute;tica, entre otras) y las alteraciones en el metabolismo energ&eacute;tico del coraz&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n del metabolismo card&iacute;aco cobra gran relevancia dentro de la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica cardiol&oacute;gica. Actualmente la tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (PET) es uno de los m&eacute;todos de imagen que ofrece mayor precisi&oacute;n y confiabilidad dentro del estudio de las diferentes v&iacute;as metab&oacute;licas en coraz&oacute;n. El metabolismo oxidativo de diversos sustratos energ&eacute;ticos provee al coraz&oacute;n de la energ&iacute;a requerida para mantener el metabolismo basal y hacer posible la contracci&oacute;n de las miofibrillas card&iacute;acas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El coraz&oacute;n obtiene la mayor parte de sus requerimientos energ&eacute;ticos (70&#45;80%) a trav&eacute;s de la oxidaci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos. El resto de la energ&iacute;a requerida proviene de la oxidaci&oacute;n de glucosa y lactato. La tasa de actividad de estas v&iacute;as metab&oacute;licas se encuentra acoplada a la tasa del trabajo contr&aacute;ctil que depende a su vez del suplemento de ox&iacute;geno y de la tasa de fosforilaci&oacute;n oxidativa.<sup>1</sup></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fuente energ&eacute;tica puede cambiar en relaci&oacute;n a diversos factores, tales como la disponibilidad de los sustratos, las demandas energ&eacute;ticas, el suplemento de ox&iacute;geno y las condiciones metab&oacute;licas del individuo.<sup>2</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La disponibilidad de los sustratos de energ&iacute;a depende de varios factores, entre ellos: flujo sangu&iacute;neo, influencias hormonales, concentraci&oacute;n en los vasos aferentes, demanda de ox&iacute;geno y carga de trabajo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En un metabolismo aer&oacute;bico, el ox&iacute;geno se desempe&ntilde;a como el &uacute;ltimo receptor de electrones de las v&iacute;as metab&oacute;licas del miocardio.<sup>3</sup> La funci&oacute;n cardiaca en condiciones normales depende del adecuado suplemento de ox&iacute;geno y sustratos oxidables empleados para la producci&oacute;n del ATP necesario para cubrir las demandas energ&eacute;ticas mioc&aacute;rdicas. El consumo de ox&iacute;geno refleja el metabolismo mitocondrial y la producci&oacute;n de ATP. Este concepto es importante para el estudio de dicho metabolismo.<sup>4</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La energ&iacute;a del metabolismo basal es requerida para mantener la integridad celular, es decir, para la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas y el mantenimiento de la membrana celular.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Oxidaci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los &aacute;cidos grasos libres son considerados como el sustrato preferido del metabolismo mioc&aacute;rdico. Los &aacute;cidos grasos requeridos provienen de mol&eacute;culas de &aacute;cidos grasos libres unidos a alb&uacute;mina, &eacute;steres de colesterol dentro de quilomicrones y lipoprote&iacute;nas de muy baja densidad (VLDL) circulantes.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez dentro de la c&eacute;lula mioc&aacute;rdica, los &aacute;cidos grasos son metabolizados a una acil&#45;CoA (&aacute;cido graso activado) la cual es transferida a la mitocondria a trav&eacute;s de diversas enzimas, tales como la carnitina palmitoil transferasa&#45;1(CPT&#45;1). Dentro de la matriz mitocondrial la acil&#45;CoA ingresa a la v&iacute;a de la &szlig;&#45;oxidaci&oacute;n, cuyo producto final es la acetil&#45;CoA, la cual se incorpora al ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos (Ciclo de Krebs).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gluc&oacute;lisis</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La gluc&oacute;lisis es la v&iacute;a por la que la glucosa se transforma a piruvato, con la producci&oacute;n neta de 2 moles de ATP por mol de glucosa.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La glucosa es transportada dentro de la c&eacute;lula mioc&aacute;rdica por transportadores como GLuT&#45;1 y GLUT&#45;4. Intracelularmente la glucosa es r&aacute;pidamente fosforilada a glucosa seis fosfato, la cual puede entrar posteriormente tanto a la glic&oacute;lisis como a la s&iacute;ntesis de gluc&oacute;geno.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dentro de la gluc&oacute;lisis existen varios sistemas enzim&aacute;ticos con funci&oacute;n reguladora, tales como la 6&#45;fosfofructocinasa, la cual es inhibida por concentraciones elevadas de ATP, de citrato y de &aacute;cidos grasos de cadena larga, pero es estimulada por el ADP o por el AMP.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La gluc&oacute;lisis desempe&ntilde;a un papel de mecanismo de emergencia capaz de producir energ&iacute;a durante per&iacute;odos cortos en los que no se dispone de ox&iacute;geno.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Oxidaci&oacute;n de carbohidratos (Glucosa, lactato)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s de los &aacute;cidos grasos, la otra fuente de acetil&#45;CoA para el ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos es la oxidaci&oacute;n de los carbohidratos, particularmente glucosa y lactato. Cuando el organismo es alimentado por carbohidratos, la lip&oacute;lisis es inhibida por la insulina y subsecuentemente la oxidaci&oacute;n de los carbohidratos se incrementa. En este caso los carbohidratos pueden utilizar el 100% del ox&iacute;geno mioc&aacute;rdico (glucosa 70% y lactato 30%). Durante el ejercicio intenso (65% de la captaci&oacute;n m&aacute;xima de ox&iacute;geno de un individuo), la producci&oacute;n de lactato se convierte en el mayor combustible del coraz&oacute;n, respondiendo por el 60 al 70% del consumo mioc&aacute;rdico de ox&iacute;geno.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bajo condiciones aer&oacute;bicas, la mayor&iacute;a del piruvato es convertido a acetil&#45;CoA, el cual entra al ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos.<sup>5</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La oxidaci&oacute;n de carbohidratos constituye la v&iacute;a metab&oacute;lica que une a la gluc&oacute;lisis con el ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos. El acoplamiento entre la gluc&oacute;lisis y la oxidaci&oacute;n de carbohidratos es de gran importancia para mantener de manera adecuada el metabolismo energ&eacute;tico mioc&aacute;rdico.<sup>1</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos (Ciclo de Krebs)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una mol&eacute;cula de acetil&#45;CoA que entra a este ciclo, produce tres mol&eacute;culas de NADH, una de FADH<sub>2</sub>, y una de GTP, el cual es tambi&eacute;n un compuesto de alta energ&iacute;a. El NADH y el FADH<sub>2</sub> son oxidados en la cadena respiratoria de electrones produciendo 11 mol&eacute;culas de ATP. En este ciclo, confluyen las v&iacute;as metab&oacute;licas encaminadas a la oxidaci&oacute;n de las mol&eacute;culas combustibles.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Regulaci&oacute;n de la oxidaci&oacute;n de carbohidratos y &aacute;cidos grasos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El metabolismo oxidativo del coraz&oacute;n se encuentra finamente regulado por diversos factores que modifican la actividad de enzimas clave en cada una de las v&iacute;as metab&oacute;licas previamente referidas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La activaci&oacute;n de la carnitinina palmitoil transferasa&#45;1 (CPT&#45;1) es el paso limitante para la transferencia de los grupos acilo al interior mitocondrial, en donde se realiza la &szlig;&#45;oxidaci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos, esta enzima emplea como cofactor a la carnitina y es inhibida por la malonil&#45;CoA, factores que regulan de manera concertada la oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos.<sup>1,6,7</sup> Por su parte el complejo enzim&aacute;tico piruvato deshidrogenasa (PDH) cataliza el paso limitante irreversible en la oxidaci&oacute;n de los carbohidratos; su fosforilaci&oacute;n depende de la concentraci&oacute;n mitocondrial de sus sustratos (CoA, NAD+, piruvato) y productos (acetil&#45;CoA y NADH).<sup>1,2,6,8</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La carnitina es un compuesto de bajo peso molecular que se obtiene tanto de la dieta como a partir de los amino&aacute;cidos esenciales lisina y metionina y desarrolla un papel clave en la regulaci&oacute;n de la oxidaci&oacute;n mitocondrial de &aacute;cidos grasos mediante la acci&oacute;n de diversas aciltransferasas, regulaci&oacute;n del radio Acetil&#45;CoA/CoA intramitocondrial, modulaci&oacute;n del metabolismo de amino&aacute;cidos ramificados, remoci&oacute;n de grupos acilo y oxidaci&oacute;n peroxisomal de &aacute;cidos grasos.<sup>1,2,9,10</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha propuesto que existe una regulaci&oacute;n conjunta entre metabolismo de la glucosa y la oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos, llevada a cabo principalmente por la carnitina, mediante modulaci&oacute;n del radio Acetil&#45;CoA/CoA intramitocondrial.<sup>1,2,9,11</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La carnitina es capaz de activar la oxidaci&oacute;n de carbohidratos mediante la disminuci&oacute;n de la relaci&oacute;n Acetil&#45;CoA/CoA ocasionando activaci&oacute;n del complejo enzim&aacute;tico PDH<sup>1,2</sup> <i>(<a href="/img/revistas/acm/v74n3/a10f1.jpg" target="_blank">Fig. 1</a>).</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha demostrado que tasas elevadas de oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos que ocasionan elevaci&oacute;n de los niveles mitocondriales de acetil&#45;CoA y NADH son capaces de inhibir al complejo PDH mediante fosforilaci&oacute;n catalizada por la PDH kinasa.<sup>1,2,8</sup></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cambios adaptativos en el metabolismo mioc&aacute;rdico. Isquemia y reperfusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La oxidaci&oacute;n preferencial de sustratos energ&eacute;ticos en el coraz&oacute;n se modifica en relaci&oacute;n a diversas condiciones tanto fisiol&oacute;gicas (etapa del desarrollo, ejercicio intenso) como patol&oacute;gicas (ayuno prolongado, isquemia y reperfusi&oacute;n).<sup>2,12</sup> El resultado de la isquemia, es la reducci&oacute;n en la disponibilidad de ox&iacute;geno para mantener el metabolismo oxidativo, lo cual resulta en una disminuci&oacute;n en la producci&oacute;n neta de ATP, pudiendo llegar a da&ntilde;ar el m&uacute;sculo card&iacute;aco, ocasionando disminuci&oacute;n en el trabajo mec&aacute;nico.<sup>1,2,13&#45;15</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la isquemia, la gluc&oacute;lisis anaerobia se convierte en una fuente principal de ATP debido a la depresi&oacute;n del metabolismo oxidativo mitocondrial.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El grado de isquemia determina los cambios metab&oacute;licos asociados, una reducci&oacute;n severa en el flujo mioc&aacute;rdico ocasiona una disminuci&oacute;n de sustratos a trav&eacute;s del complejo PDH, sin embargo, con una reducci&oacute;n parcial del flujo se incrementa la gluc&oacute;lisis y la producci&oacute;n de lactato.<sup>2</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En un episodio isqu&eacute;mico, el grado de da&ntilde;o tisular se correlaciona de manera inversa con la actividad glucol&iacute;tica antes y durante dicho episodio. El estudio realizado por Vanoverschelde JL y cols.<sup>16</sup> demuestra que la estimulaci&oacute;n de la v&iacute;a glucol&iacute;tica es capaz de limitar el da&ntilde;o relacionado con la isquemia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la isquemia se presenta un desacoplamiento entre la gluc&oacute;lisis y la oxidaci&oacute;n de glucosa, con lo cual una mayor cantidad de piruvato se convierte a lactato, as&iacute; mismo, predomina un ambiente &aacute;cido debido al incremento en los iones H+ provenientes de la hidr&oacute;lisis del ATP derivado de la gluc&oacute;lisis, lo cual afecta la integridad funcional y estructural de los miocitos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dentro de los cambios en el metabolismo de &aacute;cidos grasos se ha reportado un incremento en las cifras tisulares de acilcarnitina, la cual es capaz de da&ntilde;ar la integridad funcional de las membranas de los miocitos debido a su naturaleza amfif&iacute;lica y que se asocia a disminuci&oacute;n en los niveles totales de carnitina, con alteraci&oacute;n concomitante en la regulaci&oacute;n del metabolismo oxidativo mitocondrial de los &aacute;cidos grasos.<sup>1,2,17</sup> La disminuci&oacute;n en el metabolismo oxidativo de los &aacute;cidos grasos durante episodios isqu&eacute;micos se ha asociado a una disminuci&oacute;n en la actividad de la enzima CPT&#45;1 por incremento en los niveles de malonil&#45;CoA.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Durante la reperfusi&oacute;n, la oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos vuelve a retomar relevancia dentro de los sustratos energ&eacute;ticos, present&aacute;ndose una disminuci&oacute;n en la oxidaci&oacute;n de carbohidratos.<sup>18</sup> La activaci&oacute;n del sistema enzim&aacute;tico 5'&#45;AMP&#45; prote&iacute;na cinasa activada (AMPK) se ha relacionado tanto con un incremento en la &szlig;&#45;oxidaci&oacute;n durante la reperfusi&oacute;n como con un aumento en la captaci&oacute;n de glucosa y gluc&oacute;lisis durante la isquemia.<sup>19</sup> El incremento en el metabolismo oxidativo de la glucosa se ha asociado a una mejor&iacute;a significativa en la funci&oacute;n contr&aacute;ctil durante la reperfusi&oacute;n.<sup>20</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Patolog&iacute;as cardiovasculares asociadas a alteraciones en el metabolismo energ&eacute;tico del coraz&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha demostrado en modelos animales y en humanos, que tanto la hipertrofia ventricular como la miocardiopat&iacute;a dilatada se asocian a una disminuci&oacute;n significativa en el transporte y en la oxidaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos, as&iacute; como alteraci&oacute;n en el complejo enzim&aacute;tico del Ciclo de Krebs.<sup>2,14</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La miocardiopat&iacute;a diab&eacute;tica se relaciona con disminuci&oacute;n en la captaci&oacute;n y oxidaci&oacute;n de glucosa secundaria a una menor expresi&oacute;n de los transportadores GLUT&#45;1 y GLUT&#45;4 y a la inhibici&oacute;n del complejo Piruvato deshidrogenasa (PDH).<sup>11</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otra patolog&iacute;a que impacta claramente en el metabolismo es la cardiopat&iacute;a isqu&eacute;mica, la cual se caracteriza por una disminuci&oacute;n significativa del metabolismo oxidativo de los carbohidratos y de la actividad enzim&aacute;tica del ciclo de Krebs, as&iacute; como desacoplamiento entre la gluc&oacute;lisis y la oxidaci&oacute;n de carbohidratos y alteraciones en el metabolismo oxidativo de los &aacute;cidos grasos.<sup>2</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n del metabolismo card&iacute;aco</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las alteraciones en el metabolismo de carbohidratos y &aacute;cidos grasos a nivel mioc&aacute;rdico se han asociado al desarrollo de diversas patolog&iacute;as cardiovasculares (cardiopat&iacute;a isqu&eacute;mica, miocardiopat&iacute;a diab&eacute;tica, hipertrofia ventricular y miocardiopat&iacute;a dilatada, entre otras) por lo cual el estudio del metabolismo card&iacute;aco cobra gran relevancia para el diagn&oacute;stico, tratamiento y pron&oacute;stico de estas patolog&iacute;as.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis bioqu&iacute;mico de los intermediarios metab&oacute;licos (fosfatos de alta energ&iacute;a, ATP) mediante t&eacute;cnicas de espectrofotometr&iacute;a o cromatograf&iacute;a, as&iacute; como la medici&oacute;n de la actividad y cin&eacute;tica de sistemas enzim&aacute;ticos clave se han empleado ampliamente para la evaluaci&oacute;n del metabolismo energ&eacute;tico del coraz&oacute;n, principalmente en el &aacute;rea de investigaci&oacute;n b&aacute;sica.<sup>21</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dentro de la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica, los m&eacute;todos de imagenolog&iacute;a tales como: tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (PET), tomograf&iacute;a computada por emisi&oacute;n de fot&oacute;n &uacute;nico (SPECT) y resonancia magn&eacute;tica (RMC) actualmente son las t&eacute;cnicas m&aacute;s empleadas para la evaluaci&oacute;n del metabolismo card&iacute;aco.<sup>21,22</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (PET)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (PET) constituye una importante herramienta diagn&oacute;stica &uacute;nica en su tipo en cuanto a imagen cardiovascular se refiere, sin embargo es en la actualidad un m&eacute;todo de baja disponibilidad y elevado costo que requiere una infraestructura de soporte considerable. La aplicaci&oacute;n cl&iacute;nica m&aacute;s importante en cardiolog&iacute;a consiste en la evaluaci&oacute;n de la viabilidad, metabolismo y perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica. Los trazadores usados actualmente para estudios del metabolismo son <sup>11</sup>C&#45;palmitato, <sup>11</sup>C&#45;acetato y <sup>18</sup>Fluoro&#45;2&#45;desoxiglucosa (FDG) <i>(<a href="#f2">Fig. 2</a>).</i></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/acm/v74n3/a10f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mediante el empleo del PET con diferentes radiotrazadores (<sup>11</sup>C&#45;palmitato, <sup>11</sup>C&#45;acetato y 18&#45;FDG) pueden estudiarse alteraciones de diversos procesos metab&oacute;licos que se correlacionan con el desarrollo de patolog&iacute;a card&iacute;aca (cardiopat&iacute;a isqu&eacute;mica, miocardiopat&iacute;a dilatada, hipertrofia ventricular) <i>(<a href="/img/revistas/acm/v74n3/a10t1.jpg" target="_blank">Tabla I</a>).</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Un importante criterio a tomar en cuenta para encontrar el radion&uacute;clido adecuado es la vida media la cual debe corresponder con el proceso biol&oacute;gico que ser&aacute; estudiado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El carbono forma parte de todos los compuestos org&aacute;nicos, por lo tanto el uso potencial de <sup>11</sup>C, en cuanto a su aplicaci&oacute;n en cl&iacute;nica a partir de su s&iacute;ntesis es ilimitada sin mencionar que la ventana de vida media que nos da el <sup>11</sup>C es apropiado para el estudio de m&uacute;ltiples etapas en los procesos biol&oacute;gicos.<sup>23</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando se asume que el trazador puede experimentar cambios metab&oacute;licos durante el tiempo de la investigaci&oacute;n, la posici&oacute;n del marcaje es importante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando se emplea el &#91;<sup>18</sup>F&#93;&#45;FDG, la posici&oacute;n de marcaje es espec&iacute;fica, porque el metabolismo del trazador inhibe despu&eacute;s la etapa de la fosforilaci&oacute;n.<sup>24,25</sup> Si se emplea <sup>11</sup>C&#45;glucosa marcada espec&iacute;ficamente en la posici&oacute;n 1 y 6, puede ser posible obtener informaci&oacute;n acerca de diferentes etapas del metabolismo de la glucosa y distinguir entre estas rutas.<sup>26&#45;28</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La distribuci&oacute;n de los radiotrazadores en el miocardio est&aacute; determinada por un n&uacute;mero de factores que incluyen la fracci&oacute;n del trazador que cruza la membrana capilar en un solo bolo de inyecci&oacute;n (fracci&oacute;n de extracci&oacute;n) y la transferencia del trazador en el miocardio.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><sup>11</sup>C palmitato</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como ya se mencion&oacute;, la principal v&iacute;a metab&oacute;lica de los &aacute;cidos grasos es la &szlig; oxidaci&oacute;n, convirtiendo los &aacute;cidos grasos en unidades de acetil&#45;CoA para su subsecuente oxidaci&oacute;n en el ciclo del &aacute;cido c&iacute;trico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El <sup>11</sup>C palmitato es usado como marcador regional del metabolismo de &aacute;cidos grasos en miocardio normal e isqu&eacute;mico en la mayor&iacute;a de los estudios PET.<sup>4,29</sup> Su fracci&oacute;n de extracci&oacute;n de primer paso es de aproximadamente 0.67. El <sup>11</sup>C palmitato entra a la c&eacute;lula por transporte pasivo y es despu&eacute;s metabolizado dentro del miocito. Despu&eacute;s de una inyecci&oacute;n intravenosa del <sup>11</sup>C palmitato, las concentraciones m&aacute;ximas en el miocardio son obtenidas aproximadamente despu&eacute;s de 5 minutos y se pueden obtener im&aacute;genes din&aacute;micas en los subsecuentes 40 a 60 minutos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el miocardio normal, el aclaramiento del trazador es t&iacute;picamente bioexponencial, el primer componente r&aacute;pido, representa la oxidaci&oacute;n del palmitato y el segundo componente, m&aacute;s lento, refleja una incorporaci&oacute;n del trazador en el almac&eacute;n lip&iacute;dico intracelular. Durante isquemia aguda, cuando la oxidaci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos en la mitocondria est&aacute; restringida, el primer componente de la curva de aclaramiento se reduce y el segundo componente se incrementa relativamente.<sup>30</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al principio, las investigaciones sobre el metabolismo oxidativo del coraz&oacute;n usaron trazadores implicados en el metabolismo de los &aacute;cidos grasos como el <sup>11</sup>C palmitato, sin embargo, los procesos asociados con el transporte de los &aacute;cidos grasos, la &szlig;&#45;oxidaci&oacute;n y el intercambio con la reserva intracelular de triglic&eacute;ridos, confundieron los resultados obtenidos. Por eso, recientemente se ha preferido usar <sup>11</sup>C acetato como trazador del metabolismo oxidativo ya que &eacute;ste entra pr&aacute;cticamente de manera directa al ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sin embargo, su uso est&aacute; lejos de ser desechado ya que la combinaci&oacute;n de acetatos marcados con &aacute;cidos grasos como el palmitato ofrecen nuevas perspectivas de estudio, tales como la distinci&oacute;n entre el ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos y la &szlig; oxidaci&oacute;n en un mismo estudio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><sup>11</sup>C acetato</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El acetato puede ser considerado como un &aacute;cido graso de cadena corta, sirviendo como el producto final de las principales fuentes de energ&iacute;a para el ciclo del &aacute;cido c&iacute;trico como lo son la &szlig; oxidaci&oacute;n de los &aacute;cidos grasos y la gluc&oacute;lisis por la oxidaci&oacute;n del piruvato, por lo tanto, al marcarlo con <sup>11</sup>C en la posici&oacute;n carboxilo, ha probado ser un &uacute;til trazador PET al ser un intermediario directo entrando como acetil&#45;CoA en el ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos y siendo oxidado posteriormente a CO<sub>2</sub> y agua.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cin&eacute;tica del acetato marcado con <sup>11</sup>C est&aacute; directamente ligada a la carga de trabajo del coraz&oacute;n (frecuencia cardiaca x presi&oacute;n sist&oacute;lica) y al consumo de ox&iacute;geno mioc&aacute;rdico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es importante mencionar que la posici&oacute;n de marcaje ya sea en la posici&oacute;n carboxilo o en la metilo va a determinar cu&aacute;ntas veces el compuesto marcado repetir&aacute; el ciclo del &aacute;cido c&iacute;trico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El sustrato es usado como trazador de regiones mioc&aacute;rdicas del metabolismo oxidativo.<sup>31,32</sup> La distribuci&oacute;n inicial del <sup>11</sup>C acetato es proporcional al flujo sangu&iacute;neo y el aclaramiento a partir del pool sangu&iacute;neo es r&aacute;pido, por lo tanto las im&aacute;genes tomadas tempranamente despu&eacute;s de la administraci&oacute;n del trazador, pueden ser usadas para estudiar la perfusi&oacute;n mioc&aacute;rdica cualitativamente y semicuantitativamente. Este proceso est&aacute; linealmente relacionado al consumo de ox&iacute;geno del miocardio.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n de modelos din&aacute;micos de adquisici&oacute;n de im&aacute;genes permiten la caracterizaci&oacute;n del metabolismo oxidativo mioc&aacute;rdico bajo diferentes cargas de trabajo. Tales estudios no est&aacute;n incluidos en la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica com&uacute;n hasta el momento, aunque cada vez hay m&aacute;s evidencia de que el uso del <sup>11</sup>C&#45;acetato nos puede brindar informaci&oacute;n muy valiosa en el c&aacute;lculo de la respuesta mioc&aacute;rdica a la revascularizaci&oacute;n en pacientes con cardiopat&iacute;a isqu&eacute;mica, as&iacute; como para evaluar la eficiencia metab&oacute;lica en pacientes con miocardiopat&iacute;a dilatada o en la enfermedad valvular.<sup>23,26,31,32</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&szlig;<b>&#45;123&#45;iodometil&#45;iodofenil &aacute;cido pentadecanoico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">As&iacute; mismo, se pueden estudiar &aacute;cidos grasos modificados tales como &szlig;&#45;123&#45;iodometil&#45;iodofenil &aacute;cido pentadecanoico, el cual es captado de manera preferencial por el miocardio. Esta t&eacute;cnica se ha empleado para el estudio del metabolismo de &aacute;cidos grasos en pacientes con miocardiopat&iacute;a dilatada idiop&aacute;tica. Las zonas de baja perfusi&oacute;n se asocian a tasas bajas de captaci&oacute;n de &aacute;cidos grasos, lo cual correlaciona con el desarrollo de factores adversos a nivel hemodin&aacute;mico e histopatol&oacute;gico.<sup>33</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b><sup>18</sup>F&#45;2&#45;fluoro&#45;2&#45;desoxiglucosa (FDG)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <sup>18</sup>F&#45;2&#45;fluoro&#45;2&#45;desoxiglucosa (FDG) es el trazador m&aacute;s extensamente empleado en estudios PET. La FDG es un an&aacute;logo de glucosa que es metabolizado de manera similar a la glucosa en el miocardio. Despu&eacute;s de la difusi&oacute;n a trav&eacute;s de la membrana celular, es fosforilado dentro de la c&eacute;lula al FDG 6&#45;fosfato, el cual es atrapado en el interior de la c&eacute;lula mioc&aacute;rdica, y como no es un sustrato adecuado para seguir el metabolismo en la v&iacute;a de la gluc&oacute;lisis o en la s&iacute;ntesis de gluc&oacute;geno y es relativamente impermeable a la membrana del miocito, se mantiene en altas concentraciones dentro del miocardio por un intervalo de tiempo de 40 a 60 minutos, lo que brinda condiciones ideales para la obtenci&oacute;n de im&aacute;genes.<sup>21,22</sup></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La utilizaci&oacute;n de la glucosa por el miocardio depende en gran parte de la concentraci&oacute;n del sustrato en el plasma y el estado prandial del individuo, la captaci&oacute;n de FDG es heterog&eacute;nea en estado de ayuno. Se puede emplear la t&eacute;cnica de fijaci&oacute;n de insulina "clamp de insulina", donde la insulina, glucosa y potasio son infundidas intravenosamente para obtener niveles plasm&aacute;ticos constantes antes y durante la imagen.<sup>22</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dentro de la evaluaci&oacute;n integral del paciente isqu&eacute;mico, la determinaci&oacute;n de la presencia de miocardio viable es de gran relevancia. El miocardio en estado de hibernaci&oacute;n presenta predominantemente un metabolismo anaerobio de la glucosa, mostrando un incremento en la utilizaci&oacute;n perif&eacute;rica de glucosa ex&oacute;gena, lo cual es evaluado por el PET mediante el empleo del an&aacute;logo de glucosa FDG.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El miocardio hibernante se identifica mediante la presencia de un &laquo;patr&oacute;n discordante flujo&#45;metabolismo&raquo; caracterizado por una captaci&oacute;n de FDG normal o incrementada en presencia de defectos de perfusi&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos provenientes de estos estudios poseen gran valor pron&oacute;stico, pues son capaces de predecir la mejor&iacute;a de la funci&oacute;n ventricular posterior a revascularizaci&oacute;n en pacientes con disfunci&oacute;n ventricular izquierda y enfermedad arterial coronaria.<sup>22</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tambi&eacute;n es posible estudiar el metabolismo de la glucosa en pacientes con miocardiopat&iacute;a asociada a diabetes mellitus, en los cuales se encuentra alterada tanto la captaci&oacute;n como la oxidaci&oacute;n.<sup>11</sup></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una de las principales metas de la investigaci&oacute;n realizada con m&eacute;todos PET es lograr entender la relaci&oacute;n existente entre la perfusi&oacute;n, el metabolismo de la glucosa y de los &aacute;cidos grasos y la funci&oacute;n contr&aacute;ctil.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resonancia magn&eacute;tica cardiovascular</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una de las t&eacute;cnicas m&aacute;s innovadoras dentro de la evaluaci&oacute;n del metabolismo card&iacute;aco es la resonancia magn&eacute;tica cardiovascular (RMC) que permite la evaluaci&oacute;n de la estructura molecular y concentraci&oacute;n de diversos intermediarios metab&oacute;licos. Los sustratos m&aacute;s com&uacute;nmente empleados son <sup>31</sup>P y <sup>13</sup>C.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La RMC con <sup>31</sup>P se emplea para la medici&oacute;n de niveles de fosfatos de alta energ&iacute;a (ATP, fosfato inorg&aacute;nico, entre otros), ADP citos&oacute;lico libre, actividad del sistema enzim&aacute;tico creatin&#45;kinasa, como medida de la reserva contr&aacute;ctil en diversas patolog&iacute;as tales como insuficiencia card&iacute;aca y miocardiopat&iacute;a hipertr&oacute;fica.<sup>21</sup></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El empleo de <sup>13</sup>C permite la evaluaci&oacute;n del intercambio de metabolitos mioc&aacute;rdicos, cuantificaci&oacute;n de intermediarios metab&oacute;licos, la actividad del ciclo de los &aacute;cidos tricarbox&iacute;licos, la captaci&oacute;n de glucosa y el metabolismo del gluc&oacute;geno.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dentro de las limitaciones de esta t&eacute;cnica se encuentran el elevado costo de la misma y las dificultades t&eacute;cnicas del an&aacute;lisis cin&eacute;tico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Actualmente la evaluaci&oacute;n del metabolismo cardiaco mediante t&eacute;cnicas de imagenolog&iacute;a como la tomograf&iacute;a por emisi&oacute;n de positrones (PET) nos permite el estudio no invasivo de los diversos procesos metab&oacute;licos, cuya alteraci&oacute;n se ha asociado al desarrollo de patolog&iacute;as cardiovasculares, tales como cardiopat&iacute;a isqu&eacute;mica, hipertrofia ventricular y miocardiopat&iacute;a dilatada, validando su uso dentro de la pr&aacute;ctica cl&iacute;nica, especialmente dentro de la evaluaci&oacute;n diagn&oacute;stica y pron&oacute;stica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Calvani M, Reda E, Arrigoni&#45;Martelli E: <i>Regulation by carnitine of myocardial fatty acid and carbohydrate metabolism under normal and pathological conditions.</i> Basic Res Cardiol 2000; 95: 75&#45;83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027002&pid=S1405-9940200400030001000001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Carvajal K, Moreno&#45;S&aacute;nchez R: <i>Heart Metabolic Disturbances in Cardiovascular Diseases.</i> Arch Med Res 2003; 34: 89&#45;99.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027004&pid=S1405-9940200400030001000002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Neely J, Morgan H: <i>Relationship between carbohydrate and lipid metabolism and energy balance of the heart.</i> Rev Physiol 1974;36: 413&#45;59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027006&pid=S1405-9940200400030001000003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Taegtmeyer H: <i>Energy metabolism of the heart : from basic concepts to clinical applications.</i> Curr Probl Cardiol 1994; 19: 59&#45;113.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027008&pid=S1405-9940200400030001000004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. Depre C, Vanoverschelde JL, Taegtmeyer H: <i>Glucose for the heart.</i> Circulation 1999; 99: 578&#45;88.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027010&pid=S1405-9940200400030001000005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. McGarry JD, Millis SE, Long CS, Foster DW: <i>Observations on the affinity for carnitine, and malonyl&#45;CoA sensitivity, of carnitine palmitoyl&#45;transferase 1 in animal and human tissues.</i> Biochem J 1983; 214: 21&#45;8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027012&pid=S1405-9940200400030001000006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. De Vries Y, Arvidson DN, Waterham HR, Cregg JM, Woldegiogis G: <i>Functional characterization of mitochondrial carnitine palmitoyl&#45;transferases I and II expressed in the yeast Pichia pastors.</i> Biochemistry 1997; 36: 5285&#45;92</font>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027014&pid=S1405-9940200400030001000007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Stanley WC, Lopaschuk GD, Hall JL, McCormack JG: <i>Regulation of myocardial carbohydrate metabolism under normal and ischaemic conditions. Potential for pharmacological interventions</i>. Cardiovasc Res 1997; 33: 243&#45;57.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027016&pid=S1405-9940200400030001000008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Lysiak W, Lilly K, DiLisa F, Toth PP, Bieber LL: <i>Quantification of the effect of L&#45;carnitine on the levels of acid&#45;soluble short&#45;chain acyl CoA and CoA in rat heart and liver mitochondria.</i> J Biol Chem 1988; 263: 1511&#45;6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027018&pid=S1405-9940200400030001000009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Hoppel C: <i>The role of carnitine in normal and altered fatty acid metabolism.</i> Am J Kidney Dis 2003; 41 (4 Suppl 5): S4&#45;S12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027020&pid=S1405-9940200400030001000010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Randle PJ, Priestman DA, Mistry S, Halsall A: <i>Mechanisms modifying glucose oxidation in diabetes mellitus.</i> Diabetologia 1994; 37: S155&#45;S161.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027022&pid=S1405-9940200400030001000011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12. Bartelds B, Gratama JWC, Knoester H, Takens J, Smid GB, Aarnoudse JG, et al: <i>Perinatal changes in myocardial supply and flux of fatty acids, carbohydrates, and ketone bodies in lambs.</i> Am J Physiol 1998; 274: H1962&#45;H1969.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027024&pid=S1405-9940200400030001000012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Rumsey W, Abbot B, Bertelsen D, Msallamaci K, Nelson D, Erecinska M: <i>Adaptation to hypoxia alters energy metabolism in rat heart.</i> Am J Physiol 1999; 276: H7&#45;H80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027026&pid=S1405-9940200400030001000013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Wambolt RB, Henning SL, English DR, Dyachkova Y, Lopaschuk GD, Allard MF: <i>Glucose utilization and glycogen turnover accelerated in hypertrophied rat hearts during severe</i> <i>low&#45;flow ischemia.</i> J Moll Cell Cardiol 1999; 31: 493&#45;502.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027028&pid=S1405-9940200400030001000014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Renstrom B, Liedtke AJ, Nellis SH: <i>Mechanism of substrate preference for oxidative metabolism during early myocardial reperfusion.</i> Am J Physiol 1990; 259: H317&#45;H323.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027030&pid=S1405-9940200400030001000015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Vanoverschelde JL, Janier MF, Bakke JE, Marshall DR, Bergmann SR: <i>Rate of glycolisis during ischemia determines extent of ischemic injury and functional recovery after reperfusion.</i> Am J Physiol 1994; 267: H1785&#45;H1794.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027032&pid=S1405-9940200400030001000016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Lamers JMJ: <i>Amphiphilic interactions of long&#45;chain fatty acylcarnitines with membranes: potential involvement in ischemic injury. En: DeJong JW, Ferrari R (eds): The Carnitine System.</i> Kluwer Acad Publishers, Dordrecht, The Netherlands, pp 83&#45;100.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027034&pid=S1405-9940200400030001000017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Kudo N, Barr AJ, Barr RL, Desai S, Lopaschuk GD: <i>High rates of fatty acid oxidation during reperfusion of ischemic hearts are associated with a decrease in malonyl&#45;CoA levels due to an increase in 5'&#45;AMP&#45;activated protein kinase inhibition of acetyl&#45;CoA carboxylase.</i> J Biol Chem 1995; 270: 17513&#45;20.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027036&pid=S1405-9940200400030001000018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">19. Sambandam N, Lopaschuk GD: <i>AMP&#45;activated protein kinase (AMPK) control of fatty acid and glucose metabolism in the ischemic heart.</i> Prog Lipid Res 2003; 42: 238&#45;56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027038&pid=S1405-9940200400030001000019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Lopaschuk GD: <i>Regulation of carbohydrate metabolism in ischemia and reperfusion.</i> Am Heart J 2000; 139: S115&#45;9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027040&pid=S1405-9940200400030001000020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Lopaschuk GD: <i>Advantages and limitations of experimental techniques used to measure cardiac energy metabolism.</i> J Nucl Cardiol 1997; 4: 316&#45;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027042&pid=S1405-9940200400030001000021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Visser FC: <i>Imaging of cardiac metabolism using radiolabelled glucose, fatty acids and acetate.</i> Coron Artery Dis 2001; 12 (Suppl 1): S12&#45;8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027044&pid=S1405-9940200400030001000022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Klein LJ, Visser FC, Knaapen P, Peters JH, Teule GJ, Visser CA, Lammertsma AA: <i>Carbon&#45;11 acetate as a tracer of myocardial oxygen consumption.</i> Eur J Nucl Med 2001; 28: 651&#45;8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027046&pid=S1405-9940200400030001000023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Czernin J, Porenta G, Brunken RC, Krivokapich J, Chen K, Bennett R, et al: <i>Regional blood flow, oxidative metabolism, and glucose utilization in patients with recent myocardial infarction.</i> Circulation 1993; 88: 884&#45;95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027048&pid=S1405-9940200400030001000024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Katoh C, Ruotsalainen U, Laine H, Alenius S, Iida H, Nuutila P, et al: <i>Iterative reconstruction based on median root prior in quantification of myocardial blood flow and oxygen metabolism.</i> J Nucl Med 1999; 40: 862&#45;7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027050&pid=S1405-9940200400030001000025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Armbrecht JJ, Buxton DB, Brunken RC, Phelps ME, Schelbert HR: <i>Regional myocardial oxygen consumption determined noninvasively in humans with &#91;1&#45;<sup>11</sup>C&#93; acetate and dynamic positron emission tomography.</i> Circulation 1989; 80: 863&#45;72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027052&pid=S1405-9940200400030001000026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">27. Vanoverschelde JL, Melin JA , Bol A, Vanbutsele R, Cogneau M, Labar D, et al: <i>Regional oxidative metabolism in patients after recovery from reperfused anterior infarction. 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Bengel FM, Permanetter B, Ungerer M, Nekolla S, Schwaiger M: <i>Non&#45;invasive estimation of myocardial efficiency using positron emission tomography and carbon &#45;11 acetate: comparison between the normal and failing human heart.</i> Eur J Nucl Med 2000;27:319&#45;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027056&pid=S1405-9940200400030001000028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Maki MT, Haaparanta M, Nuutila P, Oikonen V, Luotolahti M, Eskola O, et al: <i>Free fatty acid uptake in the myocardium and skeletal muscle using fluorine&#45;18 fluoro&#45;6&#45;thia&#45;heptadecanoic acid.</i> J Nucl Med 1998; 39: 1320&#45;7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027058&pid=S1405-9940200400030001000029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Schelbert HR, Henze E, Schon HR, Keen R, Hansen H, Selin C, et al: <i>Carbon &#45;11 palmitate for the noninvasive evaluation of regional myocardial fatty acid metabolism with positron computed tomography. III. In vivo demonstration of the effects of substrate availability on myocardial metabolism.</i> Am Heart J 1983;105:492&#45;504.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027060&pid=S1405-9940200400030001000030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">31. Chan SY, Brunken RC, Phelps ME, Schelbert HR: <i>Use of the metabolic tracer carbon&#45;11&#45;acetate for evaluation of regional myocardial perfusion.</i> J Nucl Med 1991; 32: 665&#45;72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027062&pid=S1405-9940200400030001000031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">32. Brown M, Marshall DR, Sobel BE, Bergmann SR: <i>Delineation of myocardial oxygen utilization with carbon&#45;11&#45;labelled acetate.</i> Circulation 1987; 3: 687&#45;96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027064&pid=S1405-9940200400030001000032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">33. Yazaki Y, Isobe M, Takahashi W, Kitabayashi H, Nishiyama O, Sekiguchi M, Takemura T: <i>Assessment of myocardial fatty acid metabolic abnormalities in patients with idiopathic dilated cardiomyopathy using 1231BMIPP SPECT: correlation with clinicopathological findings and clinical course.</i> Heart 1999; 81:153&#45;9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1027066&pid=S1405-9940200400030001000033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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