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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Morfogénesis in vitro de peciolos de Jatropha curcas L.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Jatropha curcas is a species with a biodiesel production potential. The supply of elite planting material is critical due to traditional spread disadvantages. Plant tissue culture is an alternative to obtain quality plant material for planting. For these reasons, the objective of this study was to evaluate the feasibility of three phenological ages of petioles (1st, 2nd and 3rd node), and the effect of polyvinylpyrrolidone (PVP) on explants viability of the INI-3 and INI-6 genotypes of J. curcas and the petioles morphogenetic expression of the INI-6 genotype in two culture media (Yasuda and MS) with different doses of TDZ, BA and AIB. The in vitro establishment evaluated the PVP of the INI-3 and INI-6 genotypes with a completely randomized design (CRD) in a 2x2 factorial arrangement and 90 repetitions per treatment. The evaluated variables were viability and callus presence; viability was assessed with the Chi-square test (X²) and the callus weight by an ANOVA. During the induction stage, two media culture added with TDZ, BA and AIB were evaluated in the INI-6 genotype due to their increased viability, in a DCA with a 2x2x2x3 factorial arrangement. Three replications, where the evaluated variable was the callus presence, using a logistic regression analysis (LRA). The results show that the viability is independent from the genotype, according to the X² value (p=0.700), but dependent of the petiole type (p=0.019) and PVP addition (p = 0.001). The presence and callus production were influenced by the genotype expressed in the X² and callus weight by an ANOVA. The induction stage showed that the AIB and TDZ are related to the callus presence based on the LRA.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Fitociencia</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Morfog&eacute;nesis</b> <b><i>in vitro</i></b> <b>de peciolos de</b> <b><i>Jatropha curcas</i></b> <b>L.</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b><i>In vitro</i> petiole morphogenesis of <i>Jatropha curcas</i> L.</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Iv&aacute;n L. Peque&ntilde;o&#45;Granado<sup>1</sup>, M. Carmen Ojeda&#45;Zacar&iacute;as<sup>1*</sup>, Emilio Olivares&#45;S&aacute;enz<sup>1</sup>, Francisco Zavala&#45;Garc&iacute;a<sup>1</sup>, Omar G. Alvarado&#45;Gomez<sup>1</sup>, Leobardo Iracheta&#45;Donjuan<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n. Facultad de Agronom&iacute;a. Unidad Mar&iacute;n, Carretera Zuazua&#45;Mar&iacute;n km 17.5 del municipio de Mar&iacute;n, Nuevo Le&oacute;n, M&eacute;xico. * Autor responsable.</i> (<a href="mailto:ojedacz@yahoo.com.mx">ojedacz@yahoo.com.mx</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup> <i>Instituto Nacional Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias, Campo Experimental Rosario Izapa, km 18 de la carretera Tapachula a Cacahoat&aacute;n, 30870 Tuxtla Chico, Chiapas, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: julio, 2014.    <br> 	Aprobado: junio, 2015.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Jatropha curcas</i> es una especie con potencial para elaborar biodi&eacute;sel y el suministro de material elite para siembra es cr&iacute;tico debido a desventajas de propagaci&oacute;n tradicional. El cultivo de tejidos vegetales es una alternativa para obtener material vegetal de calidad para siembra. Por lo tanto, el objetivo de este estudio fue evaluar la viabilidad de tres edades fenol&oacute;gicas de peciolo (1.<sup>er</sup>, 2.&deg; y 3.<sup>er</sup> nudo), as&iacute; como el efecto de la polivinilpirrolidona (PVP) sobre la viabilidad de explantes de los genotipos INI&#45;3 e INI&#45;6 de <i>J. curcas</i> y la expresi&oacute;n morfog&eacute;nica de peciolos del genotipo INI&#45;6 en dos medios de cultivos (Yasuda y MS) con diferentes dosis de TDZ, BA y AIB. El establecimiento <i>in vitro</i> evalu&oacute; la PVP en genotipos INI&#45;3 y INI&#45;6 con un dise&ntilde;o completamente al azar (DCA) con arreglo factorial 2x2 y 90 repeticiones por tratamiento. Las variables evaluadas fueron viabilidad y presencia de callo; la viabilidad se evalu&oacute; por prueba de Ji&#45;cuadrada (X<sup>2</sup>) y el peso del callo por ANDEVA. En la etapa de inducci&oacute;n se analizaron dos medios de cultivo adicionados con TDZ, BA y AIB en explantes del genotipo INI&#45;6 debido a su mayor viabilidad, en un DCA con arreglo factorial 2x2x2x3, tres repeticiones, donde la variable evaluada fue presencia de callo mediante un an&aacute;lisis de regresi&oacute;n log&iacute;stica (ARL). Los resultados mostraron que la viabilidad es independientes del genotipo, de acuerdo al valor de X<sup>2</sup> (p=0.700), pero dependiente del tipo de peciolo (p=0.019) e incorporaci&oacute;n de PVP (p=0.001). La presencia y producci&oacute;n de callo fueron influenciadas por el genotipo expresado en el X<sup>2</sup> y peso de callo por un ANOVA. La etapa de inducci&oacute;n mostr&oacute; que el AIB y TDZ est&aacute;n relacionados con la presencia de callo con base en el ARL.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> Euphorbiacea, cultivo de tejidos vegetales, peciolo, PVP, callo.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Jatropha curcas</i> is a species with a biodiesel production potential. The supply of elite planting material is critical due to traditional spread disadvantages. Plant tissue culture is an alternative to obtain quality plant material for planting. For these reasons, the objective of this study was to evaluate the feasibility of three phenological ages of petioles (1st, 2nd and 3rd node), and the effect of polyvinylpyrrolidone (PVP) on explants viability of the INI&#45;3 and INI&#45;6 genotypes of <i>J. curcas</i> and the petioles morphogenetic expression of the INI&#45;6 genotype in two culture media (Yasuda and MS) with different doses of TDZ, BA and AIB. The <i>in vitro</i> establishment evaluated the PVP of the INI&#45;3 and INI&#45;6 genotypes with a completely randomized design (CRD) in a 2x2 factorial arrangement and 90 repetitions per treatment. The evaluated variables were viability and callus presence; viability was assessed with the Chi&#45;square test (X<sup>2</sup>) and the callus weight by an ANOVA. During the induction stage, two media culture added with TDZ, BA and AIB were evaluated in the INI&#45;6 genotype due to their increased viability, in a DCA with a 2x2x2x3 factorial arrangement. Three replications, where the evaluated variable was the callus presence, using a logistic regression analysis (LRA). The results show that the viability is independent from the genotype, according to the X<sup>2</sup> value (p=0.700), but dependent of the petiole type (p=0.019) and PVP addition (p = 0.001). The presence and callus production were influenced by the genotype expressed in the X<sup>2</sup> and callus weight by an ANOVA. The induction stage showed that the AIB and TDZ are related to the callus presence based on the LRA.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords:</b> <i>Euphorbiacea,</i> plant tissue culture, petiole, PVP, callus.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El cultivo <i>in vitro</i> de plantas o cultivo de tejidos vegetales se utiliza principalmente en estudios celulares y con fines de propagaci&oacute;n clonal (Yesil&#45;Celiktas y Vardar&#45;Sukan, 2013), y es factor importante en cultivos agr&iacute;colas donde la calidad del material vegetal de siembra es un aspecto significativo en la producci&oacute;n (De Filippis, 2012). En cultivos agr&iacute;colas es importante usar material vegetal clonal, como en <i>Jatropha curcas,</i> porque el suministro de material elite para siembra es un problema cr&iacute;tico para transformar la especie en un cultivo viable (Jingura, 2012), debido a las desventajas de la propagaci&oacute;n clonal mediante el uso de estacas (Sujatha <i>et al.,</i> 2005; Brittaine y Lutaladio, 2010; Mukherjee <i>et al.,</i> 2011; Tomar <i>et al.,</i> 2014). <i>Jatropha curcas</i> es una especie que sobresale en la producci&oacute;n de semillas con 46 a 64 % de aceite (Martinez&#45;Herrera <i>et al.,</i> 2010), y con potencial para la elaboraci&oacute;n de biodi&eacute;sel (Ceasar y Ignacimuthu, 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las t&eacute;cnicas del cultivo <i>in vitro</i> se recomienda utilizar peciolos debido a su mayor resistencia a la variaci&oacute;n gen&eacute;tica (Pierik, 1991), y usar el medio de cultivo MS (Murashige y Skoog, 1962) porque estimula y mejora la respuesta de los tejidos de <i>J. curcas,</i> por lo cual es el m&aacute;s usado en estudios de regeneraci&oacute;n de la especie (Ceasar y Ignacimuthu, 2011; Mukherjee <i>et al.</i> , 2011). La regeneraci&oacute;n <i>in vitro</i> de <i>J. curcas</i> se realiza usando peciolos <i>in vivo</i> (Sujatha y Mukta, 1996; Kumar y Reddy, 2010) e <i>in vitro</i> (Kumar y Reddy, 2010) y peciolos cotiled&oacute;nares <i>in vivo</i> e <i>in vitro</i> (Kumar <i>et al.,</i> 2010; Kumar y Reddy, 2012). En <i>J. curcas,</i> Kumar y Reddy (2010, 2012) reportan una significativa respuesta de brotes adventicios, la cual es directamente proporcional a la concentraci&oacute;n de TDZ empleado en el medio de cultivo con una concentraci&oacute;n m&aacute;xima de 9.08 <i>&#956;</i>M<i>.</i> Sin embargo, en arce plateado (<i>Acer saccharinum</i> L.), dosis de 0.1 a 10 <i>&#956;</i>M el TDZ produce excesivo crecimiento de callo y detenci&oacute;n del desarrollo de brotes (Preece <i>et</i> al., 1991). Adem&aacute;s dosis altas de TDZ (1000 <i>&#956;</i>M) en fresno blanco <i>(Fraxinus americana)</i> pueden detener el crecimiento de callo y ser letales (Preece y Bates, 1992). El TDZ se usa para inducir la brotaci&oacute;n adventicia y lateral en <i>Cercis candensis, Fraxinus americana, Malus domestica, Theobroma cacao, Juglans nigra,</i> y <i>Prunus persica</i> (Huetteman y Preece, 1993). Asimismo, <i>J. curcas</i> presenta la inducci&oacute;n de brotes mediante el uso de BAP en combinaci&oacute;n con AIB (Sujatha y Mukta, 1996). No obstante, la mayor&iacute;a de estos estudios fueron realizados con genotipos hind&uacute;s de <i>J. curcas</i> y material proveniente de pl&aacute;ntulas con rendimientos desconocidos, por lo cual se deben estudiar los factores que afectan la regeneraci&oacute;n de <i>J. curcas</i> en genotipos mexicanos de alto rendimiento porque hay amplias variaciones gen&eacute;ticas entre genotipos (Basha y Sujatha, 2007), y la regeneraci&oacute;n de esta especie es genotipo&#45;dependiente (Kumar y Reddy, 2010; Mukherjee <i>et al.,</i> 2011; Kumar y Reddy, 2012).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De igual importancia, el oscurecimiento de tejidos es una grave problem&aacute;tica en el cultivo <i>in vitro</i> de especies le&ntilde;osas y en particular al evaluar tejidos maduros (De Filippis, 2014). Adem&aacute;s, se usa PVP como enjuague al explante o incorporado al medio de cultivo para prevenir el oscurecimiento de tejidos (Krishna <i>et al.,</i> 2008; Azofeifa, 2009), y se utiliza en la reducci&oacute;n de oscurecimiento en <i>Abelmoschus esculentus</i> (Ganesan <i>et al.</i> , 2007) y <i>Mangifera indica</i> (Chavan <i>et al.,</i> 2000; Krishna <i>et al.,</i> 2008). Asimismo, Varshney y Johnson (2010) reportan la regeneraci&oacute;n vegetal hasta un 90 % en medios adicionados con PVP y &aacute;cido c&iacute;trico adem&aacute;s de reguladores de crecimiento en <i>J. curcas.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por lo tanto, el objetivo de este estudio fue evaluar la viabilidad de tres edades fenol&oacute;gicas de peciolo (1.<sup>er</sup>, 2.&deg; y 3.<sup>er</sup> nudo), el efecto de la polivinilpirrolidona sobre la viabilidad de explantes de los genotipos INI&#45;3 e INI&#45;6 de <i>J. curcas</i> y la expresi&oacute;n morfog&eacute;nica de peciolos del genotipo INI&#45;6 en dos medios de cultivos (Yasuda y MS) adicionados con diferentes dosis de reguladores de crecimiento (TDZ, BA y AIB).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta investigaci&oacute;n se realiz&oacute; en el Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a Vegetal de la Facultad de Agronom&iacute;a, unidad Mar&iacute;n de la Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n (UANL), ubicado en la carretera Zuazua&#45;Mar&iacute;n km 17.5 del municipio de Mar&iacute;n, Nuevo Le&oacute;n, M&eacute;xico (25&deg; 25' 27" N, 100&deg; 03' 19" O, y 393 msnm), desde agosto del 2012 a marzo del 2014. El material vegetal fue recolectado de &aacute;rboles adultos en producci&oacute;n de <i>J. curcas</i> de los genotipos INI&#45;6 y INI&#45;3, del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP), Campo Experimental Rosario Izapa, km 18 de la carretera Tapachula a Cacahoat&aacute;n, 30870 Tuxtla Chico, Chiapas, M&eacute;xico (14&deg; 30' y 15&deg; 00' N, 92&deg; 00' y 92 30' O, y 435 msnm).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>T&eacute;cnica de desinfecci&oacute;n del material vegetal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La predesinfecci&oacute;n consisti&oacute; en seleccionar material vegetal de peciolos de hojas en &oacute;ptimas condiciones de &aacute;rboles adultos en campo, del primer al tercer nudo tomando como referencia de la parte apical de la rama a la base de esta. Los peciolos fueron clasificados en 1.<sup>er</sup>, 2.&deg; y 3.<sup>er</sup> nudo de edad fenol&oacute;gica, para determinar la capacidad de viabilidad del explante al agente desinfectante. Este material vegetal fue lavado con jab&oacute;n l&iacute;quido y agua potable, se transfiri&oacute; a una soluci&oacute;n antioxidante (sacarosa 30 g L<sup>&#45;1</sup> y &aacute;cido L&#45;asc&oacute;rbico 100 mg L<sup>&#45;1</sup>) por 20 min, luego una inmersi&oacute;n en fungicida&#45;bactericida compuesta de Amistar<sup>&reg;</sup> (azoxistrobin 50 %) 1.0 g L<sup>&#45;1</sup>, Bavistin<sup>&reg;</sup> (carbendazim 50 %) 1.0 g L<sup>&#45;1</sup>, Novobacter<sup>&reg;</sup> (oxitetraciclina 5 %) 1.0 g L<sup>&#45;1</sup> por 20 min, finalizando con un enjuague de agua potable. La desinfecci&oacute;n se realiz&oacute; en una campana de flujo laminar mediante la inmersi&oacute;n de explantes en etanol al 70 %, por 30 s, seguido de la inmersi&oacute;n en hipoclorito de sodio al 3.24% (Cloralex<sup>&reg;</sup>), adicionado con 0.1 % de tween&#45;20, m&aacute;s tres enjuagues con agua bidestilada est&eacute;ril.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Etapa de establecimiento as&eacute;ptico de explantes</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la siembra se utilizaron secciones de peciolo de 1.5 cm de longitud y establecidos en posici&oacute;n horizontal en medio basal MS m&aacute;s sacarosa 30 g L<sup>&#45;1</sup>, glutati&oacute;n reducido (Sigma) 25 mg L<sup>&#45;1</sup>, &aacute;cido asc&oacute;rbico (Sigma) 20 mg L<sup>&#45;1</sup>, CuSO<sub>4</sub> 25 mg L<sup>&#45;1</sup>, BA (Sigma) 3.0 mg L<sup>&#45;1</sup>, Phytagel (Sigma) 4.5 g L<sup>&#45;1</sup>, con o sin la adici&oacute;n de 500 mg L<sup>&#45;1</sup> de PVP (Sigma), como factor de estudio. El pH del medio de cultivo fue ajustado a 5.8&plusmn;0.02 usando 1 N KOH o HCl y esterilizado previamente a 1.2 kg cm<sup>&#45;2</sup> de presi&oacute;n a 121 &deg;C durante 20 min. Concluida la siembra las unidades experimentales fueron incubadas en condiciones controladas de 26&plusmn; 2 &deg;C en oscuridad por 15 d. El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar con un arreglo factorial 2x2: factor A, los genotipos INI&#45;3 e INI&#45;6; factor B, las dosis de PVP, testigo y 500 mg L<sup>&#45;</sup> <sup>1</sup>; con 90 repeticiones por tratamiento y un explante por unidad experimental.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las diferencias estad&iacute;sticas entre explantes viables fueron analizadas mediante una comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de proporciones, la cual equivale a una comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias por Tukey en un an&aacute;lisis de varianza de una v&iacute;a (Zar, 2010). Las variables evaluadas en la etapa de establecimiento fueron: porcentaje de viabilidad, presencia de callo, peso fresco de callo y su relaci&oacute;n con los factores genotipo y PVP. Las variables cualitativas fueron: viabilidad de explantes y presencia de callo, y fueron evaluadas mediante una prueba de Ji&#45;cuadrada, mientras que la variable cuantitativa peso de callo se evalu&oacute; con un an&aacute;lisis de varianza. Los datos fueron analizados utilizando SPSS versi&oacute;n 20.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Inducci&oacute;n morfog&eacute;nica en explantes cultivados <i>in vitro</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los explantes viables sin presencia de callo del genotipo INI&#45;6 fueron subcultivados en los medios b&aacute;sicos Yasuda (Yasuda <i>et al.,</i> 1985) y MS enriquecidos 30 g L<sup>&#45;1</sup> de sacarosa y 4.5 g L<sup>&#45;1</sup> Phytagel&trade;, m&aacute;s TDZ 1.5 y 3.0 mg L<sup>&#45;1</sup>, BA 1.5 y 3.0 mg L<sup>&#45;1</sup> y AIB 0, 0.5 y 1.0 mg L<sup>&#45;1</sup>. S&oacute;lo se us&oacute; el genotipo INI&#45;6 por presentar el mayor porcentaje de explantes viables. El medio Yasuda se us&oacute; para evaluar la respuesta de tejidos <i>in vitro</i> de <i>J. curcas</i> sobre una presentaci&oacute;n reducida en sales minerales en comparaci&oacute;n con el medio MS. Los explantes fueron incubados a 26 &plusmn;2 &deg;C y un fotoperiodo de 16 h luz con l&aacute;mparas fluorescentes a una intensidad lum&iacute;nica de 35&#45;40 <i>&#956;</i>mol m<sup>&#45;2</sup> s<sup>&#45;1</sup>. El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar con un arreglo factorial 2x2x2x3, con 24 tratamientos y tres repeticiones, donde el factor A: medios de cultivo, factor B: niveles de TDZ, factor C: niveles de BAP, factor D: niveles de AIB (<a href="#c1">Cuadro 1</a>). La unidad experimental fue frascos de vidrio (66 mm x 59 mm) con 15 mL de medio de cultivo conteniendo tres explantes por repetici&oacute;n. La variable presencia de callo fue evaluada con un an&aacute;lisis de regresi&oacute;n log&iacute;stica despu&eacute;s de ocho semanas <i>in vitro</i> del cultivo.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v49n7/a6c1.jpg"></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Etapa de establecimiento as&eacute;ptico de explantes</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Relaci&oacute;n peciolo&#45;viabilidad</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las frecuencias de explantes viables entre explantes de peciolos del 1.<sup>er</sup>, 2.&deg; y 3.<sup>er</sup> nudo en base a la yema terminal presentaron una relaci&oacute;n dependiente en el an&aacute;lisis de Ji&#45;cuadrada, por lo cual se realiz&oacute; una comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de proporciones (CMP) que expres&oacute; que la mayor proporci&oacute;n de explantes viables se present&oacute; en el segundo nudo con 93.33 %, seguido del primer nudo con 86.95 % de viabilidad, y el tercer nudo con 65.38 % (<a href="#f1">Figura 1</a>). Estos resultados son similares a los publicados por Misra <i>et al.</i> (2010) en explantes de hojas de <i>J. curcas</i> donde los explantes del segundo nudo presentaron el mayor porcentaje de respuesta <i>in vitro.</i></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v49n7/a6f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Letras distintas en las columnas de la figura muestran diferencias estad&iacute;sticas significativas entre porcentajes (X<sup>2</sup>, p&le;0.05). Las medidas se presentan con media &plusmn; error est&aacute;ndar. Los porcentajes fueron calculados a partir de las frecuencias de explantes viables.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Relaci&oacute;n viabilidad&#45;genotipo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de viabilidad de explantes present&oacute; diferencia entre genotipos, mostrando un mayor porcentaje el genotipo INI&#45;6 (40.2 y 82.3 %) en comparaci&oacute;n con el genotipo INI&#45;3 (30.4 y 70.9 %) en el testigo y 500 mg L<sup>&#45;1</sup> de PVP) (<a href="#c2">Cuadro 2</a>). Con base en los resultados se realiz&oacute; una tabla de contingencia con una prueba de Ji&#45;cuadrada para determinar si la viabilidad es dependiente de los genotipos de estudio. El resultado fue que las variables estudiadas son independientes y no hay una relaci&oacute;n significativa entre los genotipos y el porcentaje de viabilidad (<a href="#c3">Cuadro 3</a>).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v49n7/a6c2.jpg"></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v49n7/a6c3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Relaci&oacute;n viabilidad&#45;PVP</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los porcentajes de viabilidad aumentaron en el tratamiento con PVP comparado con el tratamiento testigo (<a href="#c3">Cuadro 3</a>), por lo cual se realiz&oacute; una tabla de contingencia con una prueba de Ji&#45;cuadrada para determinar si existe relaci&oacute;n entre la viabilidad y la adici&oacute;n de PVP. El resultado fue una relaci&oacute;n dependiente entre las variables (<a href="#c4">Cuadro 4</a>), lo cual indica que la adici&oacute;n de PVP a medio de cultivo favorece las frecuencias de explantes viables en ambos genotipos.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c4"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v49n7/a6c4.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Relaci&oacute;n PVP&#45;callo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La PVP se encuentra relacionada con la presencia de callo (<a href="#c3">Cuadro 3</a>), por lo cual su incorporaci&oacute;n al medio de establecimiento provoc&oacute; la proliferaci&oacute;n de callo en ambos genotipos de estudio (<a href="#c3">Cuadro 3</a>). La presencia de callo blanco fue evidente a los 15 d de cultivo en las &aacute;reas de corte de peciolos, lo cual concuerda con lo publicado por Reustle y Natter (1994), quienes muestran que la aplicaci&oacute;n de PVP en el inicio del cultivo es esencial para la formaci&oacute;n de micro&#45;callo en protoplastos de vid <i>(Vitis</i> sp.).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Relaci&oacute;n callo&#45;genotipo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las frecuencias de explantes con presencia de callo difieren entre los genotipos de estudio y el resultado fue un porcentaje mayor de inducci&oacute;n de callo en el genotipo INI&#45;3 (70.9 %), a diferencia del genotipo INI&#45;6 (50.6 %), por lo cual se realiz&oacute; una tabla de contingencia con una prueba de Ji&#45;cuadrada para comprobar la relaci&oacute;n entre genotipo e inducci&oacute;n de callo en explantes, y el resultado fue una relaci&oacute;n dependiente (<a href="#c3">Cuadro 3</a>). Lo anterior es similar a los resultados publicados por Kumar y Reddy (2010) quienes evaluaron peciolos y peciolos cotiledonares, y encontraron diferencias en el porcentaje de inducci&oacute;n de brotes entre genotipos de <i>J. curcas.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de PVP sobre la producci&oacute;n de callo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La producci&oacute;n de callo fue diferente entre los genotipos de estudio a los 15 d de cultivo en medio de establecimiento con PVP. El peso fresco fue mayor en el genotipo INI&#45;3 (90.3 mg) que en el genotipo INI&#45;6 (39.4 mg) y mediante un an&aacute;lisis de varianza se encontr&oacute; una diferencia significativa (p&le;0.01) entre ellos (<a href="#c4">Cuadro 4</a>). Estos resultados indican que tanto la inducci&oacute;n como la producci&oacute;n de callo fresco en <i>J. curcas</i> son influenciados por el genotipo, lo cual es similar a lo reportado por Basha y Sujatha (2007), quienes mencionan que la dependencia genot&iacute;pica es uno de los factores m&aacute;s grandes que afectan la regeneraci&oacute;n de <i>J. curcas.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Inducci&oacute;n morfog&eacute;nica en explantes cultivados <i>in vitro</i></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En esta etapa solamente los explantes as&eacute;pticos del genotipo INI&#45;6 fueron evaluados <i>in vitro</i> a las ocho semanas porque presentaron el mayor porcentaje de viabilidad, con una apariencia hinchada y en algunos tratamientos la presencia de callo (<a href="#c5">Cuadro 5</a>), y solamente se pudo observar el desarrollo de protuberancias en explantes. Al realizar un an&aacute;lisis de regresi&oacute;n log&iacute;stica sobre las frecuencias de explantes con callo se encontr&oacute; que los factores AIB y TDZ est&aacute;n relacionados estad&iacute;sticamente con la variable callo (<a href="/img/revistas/agro/v49n7/a6c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>), y las estimaciones del modelo se ajustan a un nivel aceptable con base en la prueba de Hosmer y Lemeshow. Adem&aacute;s, la prueba de Omnibus sobre los coeficientes del modelo mostr&oacute; que estos son estad&iacute;sticamente diferente de cero (<a href="/img/revistas/agro/v49n7/a6c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c5"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v49n7/a6c5.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados son similares a los mencionados por Sujatha y Mukta (1996), quienes evaluaron explantes de hoja en <i>J. curcas</i> y muestran que la ausencia de AIB reduce significativamente la formaci&oacute;n de callo. Seg&uacute;n Basalma <i>et al.</i> (2008), hay capacidad conjunta del AIB y TDZ para la formaci&oacute;n de callo en c&aacute;rtamo (Carthamus tinctorius L.), mientras que Landi y Mezzetti (2006) reportan 99.3 % de presencia de callo en hojas de diferentes especies de <i>Fragaria</i> en medios adicionados con 4.54 <i>&#956;</i>M de TDZ y 0.98 <i>&#956;</i>M de AIB. Khurana&#45;Kaul et al. (2010) encontraron estructuras nodulares en explantes de hoja de <i>J. curcas</i> cultivados en matraces Erlenmeyer de 100 cm<sup>3</sup> con medio MS adicionado con 0.90 <i>&#956;</i>M de TDZ y 0.98 <i>&#956;</i>M AIB; adem&aacute;s, definen estas estructuras como posibles brotes no bien diferenciados.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso de la PVP en el medio de establecimiento aument&oacute; la frecuencia de explantes viables con respecto al testigo en los genotipos INI&#45;6 e INI&#45;3, en tanto que el genotipo INI&#45;6 present&oacute; el mayor porcentaje de viabilidad en comparaci&oacute;n al genotipo INI&#45;3. La PVP en esta misma etapa indujo la producci&oacute;n de callo en ambos genotipos, y el genotipo INI&#45;3 mostr&oacute; un mayor porcentaje de explantes con callo respecto al genotipo INI&#45;6. Tambi&eacute;n la producci&oacute;n de callo es afectada por el genotipo porque el genotipo INI&#45;3 produjo m&aacute;s callo por explante que el genotipo INI&#45;6. Esta respuesta podr&iacute;a ser un m&eacute;todo eficiente para aumentar la viabilidad de explantes e inducir la producci&oacute;n de callo en el establecimiento <i>in vitro.</i> En la etapa de inducci&oacute;n los factores AIB y TDZ afectan significativamente la presencia de callo en el genotipo INI&#45;6 despu&eacute;s de ocho semanas del cultivo <i>in vitro,</i> lo cual explica la importancia del manejo de estos reguladores de crecimiento en el control de la producci&oacute;n de callo en este genotipo de <i>J. curcas.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnolog&iacute;a (CONACYT) y al Programa de Apoyo a la Investigaci&oacute;n Cient&iacute;fica y Tecnol&oacute;gica de la Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n (PAICYT&#45;UANL) por el apoyo financiero para la realizaci&oacute;n de esta investigaci&oacute;n. Al Laboratorio de Biotecnolog&iacute;a Vegetal de la Facultad de Agronom&iacute;a (unidad Mar&iacute;n) de la Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo le&oacute;n (UANL) por las facilidades y apoyos en infraestructura y equipo cient&iacute;fico.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Azofeifa A. 2009. Problemas de oxidaci&oacute;n y oscurecimiento de explantes cultivados <i>in vitro.</i> Agromeso 20: 153&#45;175.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603816&pid=S1405-3195201500070000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Basalma D., S. Uranbey, S. Mirici, and &Ouml;. Kolsarici 2008. TDZ x IBA induced shoot regeneration from cotyledonary leaves and <i>in vitro</i> multiplication in safflower <i>(Carthamus tinctorius</i> L.). Afr. J. Biotechnol. 7: 960&#45;966.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603818&pid=S1405-3195201500070000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Basha, S. D., and M. Sujatha. 2007. Inter and intra&#45;population variability of <i>Jatropha curcas</i> (L.) characterized by RAPD and ISSR markers and development of population&#45;specific SCAR markers. Euphytica 156: 375&#45;386.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603820&pid=S1405-3195201500070000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brittaine, R., and N. Lutaladio. 2010. <i>Jatropha:</i> A smallholder bioenergy crop. The potential for pro&#45;poor development, integr crop manag. FAO. Rome, Italy. 96 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603822&pid=S1405-3195201500070000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ceasar, S. A., and S. Ignacimuthu. 2011. Applications of biotechnology and biochemical engineering for the improvement of <i>Jatropha</i> and biodiesel: A review. Renew. Sust. Energ. Rev. 15: 5176&#45;5185.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603824&pid=S1405-3195201500070000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chavan S. S., S. S. Ranade, A. C. Deore, R. S. Deshpande and B. L. Dhonukshe 2000. Ann. Plant Physiol. 14: 178&#45;181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603826&pid=S1405-3195201500070000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">De Filippis, L. F. 2012. Breeding for biotic stress tolerance in plants. <i>In:</i> Ashraf M., M. &Ouml;zt&uuml;rk, M. S. A. Ahmad and A. Aksoy (eds). Crop Production for Agricultural Improvement. Springer Netherlands. pp: 145&#45;200.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603828&pid=S1405-3195201500070000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">De Filippis L. F. 2014. Crop improvement through tissue culture. <i>In:</i> Ahmad P., Wani, M. R., Azooz, M. M. and Tran, L.&#45;S. P.s (eds.). Improvement of crops in the era of climatic changes. Springer New York. pp: 289&#45;346.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603830&pid=S1405-3195201500070000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ganesan M., R. Chandrasekar, B. D. Ranjitha Kumari and N. Jayabalan 2007. Somatic embryogenesis and plant regeneration of abelmoschus esculentus through suspension culture. Biol. Plant. 51: 414&#45;420.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603832&pid=S1405-3195201500070000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Huetteman C. A. and J. E. Preece 1993. Thidiazuron: A potent cytokinin for woody plant tissue culture. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 33: 105&#45;119.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603834&pid=S1405-3195201500070000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jingura, R. 2012. Socio&#45;economy, agro&#45;ecological zones, agronomic practices and farming system of <i>Jatropha curcas</i> L. In sub&#45;saharan africa. <i>In:</i> Carels N., M. Sujatha, and B. Bahadur (eds). <i>Jatropha,</i> Challenges for a New Energy Crop. Springer New York. pp: 53&#45;69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603836&pid=S1405-3195201500070000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Khurana&#45;Kaul V., S. Kachhwaha and S. L. Kothari 2010. Direct shoot regeneration from leaf explants of <i>Jatropha curcas</i> in response to thidiazuron and high copper contents in the medium. Biol. Plant. 54: 369&#45;372.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603838&pid=S1405-3195201500070000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Krishna H., R. K. Sairam, S. K. Singh, V. B. Patel, R. R. Sharma, M. Grover, L. Nain and A. Sachdev 2008. Mango explant browning: Effect of ontogenic age, mycorrhization and pre&#45;treatments. Sci. Hortic. 118: 132&#45;138.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603840&pid=S1405-3195201500070000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kumar, N., and M. P. Reddy. 2010. Plant regeneration through the direct induction of shoot buds from petiole explants of <i>Jatropha curcas:</i> A biofuel plant. Ann. Appl. Biol. 156: 367&#45;375.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603842&pid=S1405-3195201500070000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kumar, N., and M. P. Reddy. 2012. Thidiazuron (TDZ) induced plant regeneration from cotyledonary petiole explants of elite genotypes of <i>Jatropha curcas:</i> A candidate biodiesel plant. Ind. Crop. Prod. 39: 62&#45;68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603844&pid=S1405-3195201500070000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kumar, N., K. G. Vijay Anand, and M. P. Reddy. 2010. <i>In vitro</i> plant regeneration of non&#45;toxic <i>Jatropha curcas</i> L.: Direct shoot organogenesis from cotyledonary petiole explants. J. Crop Sci. Biotechnol. 13: 189&#45;194.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603846&pid=S1405-3195201500070000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Landi L. and B. Mezzetti 2006. TDZ, auxin and genotype effects on leaf organogenesis in <i>Fragaria.</i> Plant Cell Rep. 25: 281&#45;288.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603848&pid=S1405-3195201500070000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Martinez&#45;Herrera, J., A. L. Martinez&#45;Ayala, H. Makkar, G. Francis, and K. Becker. 2010. Agroclimatic conditions, chemical and nutritional characterization of different provenances of <i>Jatropha curcas</i> L. From Mexico. Eur. J. Sci. Res. 3: 396&#45;407.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603850&pid=S1405-3195201500070000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Misra, P., N. Gupta, D. Toppo, V. Pandey, M. Mishra, and R. Tuli. 2010. Establishment of long&#45;term proliferating shoot cultures of elite <i>Jatropha curcas</i> L. By controlling endophytic bacterial contamination. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 100: 189&#45;197.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603852&pid=S1405-3195201500070000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mukherjee, P., A. Varshney, T. S. Johnson and T. B. Jha. 2011. <i>Jatropha curcas:</i> A review on biotechnological status and challenges. Plant Biotechnol. Rep. 5: 197&#45;215.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603854&pid=S1405-3195201500070000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Murashige, T., and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473&#45;497.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603856&pid=S1405-3195201500070000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pierik, R. L. M. 1991. Commercial aspects of micropropagation. <i>In:</i> Prakash, J., and R. L. M. Pierik (eds). Horticulture &#151; New Technologies and Applications. Springer Netherlands. pp: 141&#45;153.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603858&pid=S1405-3195201500070000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Preece J. and S. Bates. 1992. <i>In vitro</i> studies with white ash <i>(Fraxinus americana)</i> nodules. <i>In:</i> Ahuja M. R.s (ed.). Woody plant biotechnology. Springer US. pp: 37&#45;44.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603860&pid=S1405-3195201500070000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Preece J. E., C. A. Huetteman, W. C. Ashby and P. L. Roth 1991. Micro&#45;and cutting propagation of silver maple. I. Results with adult and juvenile propagules. J. Am. Soc. Hortic. Sci. 116: 142&#45;148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603862&pid=S1405-3195201500070000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Reustle, G., and I. Natter. 1994. Effect of polyvinylpyrrolidone and activated charcoal on formation of microcallus from grapevine protoplasts <i>(Vitis</i> sp.). Vitis 33: 117&#45;121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603864&pid=S1405-3195201500070000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sujatha, M., H. P. S. Makkar, and K. Becker. 2005. Shoot bud proliferation from axillary nodes and leaf sections of non&#45;toxic <i>Jatropha curcas</i> L. Plant Growth Regul. 47: 83&#45;90.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603866&pid=S1405-3195201500070000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sujatha, M., and N. Mukta. 1996. Morphogenesis and plant regeneration from tissue cultures of <i>Jatropha curcas.</i> Plant Cell Tiss. Org. Cult. 44: 135&#45;141.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603868&pid=S1405-3195201500070000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tomar, N. S., M. A. Ahanger and R. M. Agarwal. 2014. <i>Jatropha curcas:</i> An overview. <i>In:</i> Ahmad, P., and M. R.Wani (eds). Physiological Mechanisms and Adaptation Strategies in Plants under Changing Environment. Springer New York. pp: 361&#45;383.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603870&pid=S1405-3195201500070000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Varshney A. and T. S. Johnson 2010. Efficient plant regeneration from immature embryo cultures of <i>Jatropha curcas,</i> a biodiesel plant. Plant Biotechnol. Rep. 4: 139&#45;148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603872&pid=S1405-3195201500070000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yasuda, T., Y. Fujii, and T. Yamaguchi. 1985. Embryogenic callus induction from <i>Coffea arabica</i> leaf explants by benzyladenine. Plant Cell Physiol. 26: 595&#45;597.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603874&pid=S1405-3195201500070000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yesil&#45;Celiktas, O., and F. Vardar&#45;Sukan. 2013. Downstream processes for plant cell and tissue culture. <i>In:</i> Chandra, S., H. Lata, and A. Varma (eds). Biotechnology for Medicinal Plants. Springer Berlin Heidelberg. pp: 1&#45;27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603876&pid=S1405-3195201500070000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zar, J. H. 1999. Biostatistical Analysis. 4 th. Ed. Prentice Hall, New Jersey. 944 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=603878&pid=S1405-3195201500070000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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