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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Análisis de ácidos fenólicos y actividad antioxidante de extractos acuosos de variedades de jamaica (Hibiscus sabdariffa L.) con cálices de colores diversos]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Analysis of phenolic acids and antioxidant activity of aqueous extracts of jamaica (Hibiscus sabdariffa L.) varieties with calyxes of different colors]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The growing market of functional beverages requires characterize specifically the sources of bio-actives to select those with the highest quantity of the compound needed in the formulation. The composition of phenolic acids and the content of anthocyanins and proanthocyanidins, from aqueous extracts of the calyxes of three varieties of jamaica (Hibiscus sabdariffa L.) were assessed using HPLC-DAD: dark red (Sudan), light red (Criolla Nayarit) and white (Alma Blanca). Antioxidant activity was also determined. The experimental design was completely randomized with three replications. The highest contents of total phenolic acids were detected in Sudan and Alma Blanca (10.71±0.29 and 8.22±0.30 mg GAE g-1 DM). The fraction of free phenolic acids (FPA) was abundant and was highly complex in the calyxes of the three colors. Chlorogenic acid and its two isomers were predominant in the FPA, and the glycosylated phenolic acids (GPA) accounted for 77.4 to 81.5 % of the total phenolic acids in the three varieties. The white Alma Blanca calyxes contained more caffeic and protocatechuic acid derivatives than the red calyxes of the other varieties. The highest antioxidant activity (p&#8804;0.05) was found in the Sudan extract (CI50=113.3 &#956;g mL-1). The color of the calyxes can indicate the predominant type of phenols in H. sabdariffa L. and aid in the selection of varieties for formulations with particular nutraceutical properties.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Ciencia de los alimentos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>An&aacute;lisis de &aacute;cidos fen&oacute;licos y actividad antioxidante de extractos acuosos de variedades de jamaica (<i>Hibiscus sabdariffa</i> L.) con c&aacute;lices de colores diversos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Analysis of phenolic acids and antioxidant activity of aqueous extracts of jamaica (<i>Hibiscus sabdariffa</i> L.) varieties with calyxes of different colors</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Alberto Reyes&#45;Luengas<sup>1</sup>, Yolanda Salinas&#45;Moreno<sup>2*</sup>, Manuel E. Ovando&#45;Cruz<sup>3</sup>, Ram&oacute;n I. Arteaga&#45;Garibay<sup>4</sup>, Marcos D. Mart&iacute;nez&#45;Pe&ntilde;a<sup>4</sup></b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Departamento de Ingenier&iacute;a Agroindustrial. Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. 56200. Km 13.5 Carretera Los Reyes&#45;Texcoco. Chapingo, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Laboratorio de Calidad de Cultivos para uso Humano y Pecuario. Campo Experimental Centro Altos de Jalisco. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP). 47600. Km 8, Carretera Tepatitl&aacute;n&#45;Lagos de Moreno. Tepatitl&aacute;n de Morelos, Jalisco. *Autor responsable.</i> (<a href="mailto:yolasm@gmail.com">yolasm@gmail.com</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>3</i></sup> <i>Campo Experimental Valles Centrales. INIFAP. Melchor Ocampo No. 7, Colonia Agencia Municipal, Santo Domingo Barrio Bajo 7, Etla, Oaxaca.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>4</sup> Laboratorio de Recursos Gen&eacute;ticos Microbianos. Centro Nacional de Recursos Gen&eacute;ticos. INIFAP. 47600. Boulevard de la biodiversidad No 400 Tepatitl&aacute;n de Morelos, Jalisco.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: mayo, 2014.    <br> 	Aprobado: marzo, 2015.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El creciente mercado de bebidas funcionales requiere la caracterizaci&oacute;n espec&iacute;fica de las fuentes de bioactivos, para seleccionar aquellas con la mayor cantidad del compuesto necesario en la formulaci&oacute;n. La composici&oacute;n de &aacute;cidos fen&oacute;licos y contenido de antocianinas y proantocianidinas, de extractos acuosos de tres variedades de jamaica (<i>Hibiscus</i> <i>sabdariffa</i> L.), con rojo oscuro (Sud&aacute;n), rojo claro (Criolla Nayarit) y blanco (Alma Blanca) en sus c&aacute;lices, fueron evaluados mediante HPLC&#45;DAD. Adem&aacute;s, se determin&oacute; su actividad antioxidante. El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar y con tres repeticiones. El contenido mayor de &aacute;cidos fen&oacute;licos totales se detect&oacute; en Sud&aacute;n y Alma Blanca (10.71&plusmn;0.29 y 8.22&plusmn;0.30 mg EAG g<sup>&#45;1</sup> MS). La fracci&oacute;n de &aacute;cidos fen&oacute;licos libres (AFL) fue abundante y con complejidad alta en los c&aacute;lices de los tres colores. El &aacute;cido clorog&eacute;nico y sus dos is&oacute;meros predominaron en las fracciones AFL y los &aacute;cidos fen&oacute;licos glucosilados (AFG) representaron entre 77.4 y 81.5 % del total de &aacute;cidos fen&oacute;licos en las tres variedades. Los c&aacute;lices blancos ten&iacute;an la cantidad mayor de &aacute;cido cafeico y derivados de protocat&eacute;quico. La actividad antioxidante mayor (p&#8804;0.05) se present&oacute; en el extracto de Sud&aacute;n (IC<sub>50</sub>=113.3 <i>&#956;</i>g mL<sup>&#45;1</sup>). El color de los c&aacute;lices puede ser un indicador del tipo predominante de fenoles en <i>H.</i> <i>sabdariffa</i> L. y ayudar en la selecci&oacute;n de variedades para obtener formulaciones con propiedades nutrac&eacute;uticas particulares.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: <em>Hibiscus sabdariffa L.</em>, fenoles, antocianinas, c&aacute;lices, color, actividad antioxidante.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The growing market of functional beverages requires characterize specifically the sources of bio&#45;actives to select those with the highest quantity of the compound needed in the formulation. The composition of phenolic acids and the content of anthocyanins and proanthocyanidins, from aqueous extracts of the calyxes of three varieties of jamaica (<i>Hibiscus sabdariffa</i> L.) were assessed using HPLC&#45;DAD: dark red (Sudan), light red (Criolla Nayarit) and white (Alma Blanca). Antioxidant activity was also determined. The experimental design was completely randomized with three replications. The highest contents of total phenolic acids were detected in Sudan and Alma Blanca (10.71&plusmn;0.29 and 8.22&plusmn;0.30 mg GAE g<sup>&#45;1</sup> DM). The fraction of free phenolic acids (FPA) was abundant and was highly complex in the calyxes of the three colors. Chlorogenic acid and its two isomers were predominant in the FPA, and the glycosylated phenolic acids (GPA) accounted for 77.4 to 81.5 % of the total phenolic acids in the three varieties. The white Alma Blanca calyxes contained more caffeic and protocatechuic acid derivatives than the red calyxes of the other varieties. The highest antioxidant activity (p&#8804;0.05) was found in the Sudan extract (CI<sub>50</sub>=113.3 <i>&#956;</i>g mL<sup>&#45;1</sup>). The color of the calyxes can indicate the predominant type of phenols in <i>H. sabdariffa</i> L. and aid in the selection of varieties for formulations with particular nutraceutical properties.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words</b>: <em>Hibiscus sabdariffa L.</em>, phenols, calyx, color, antioxidant activity.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La jamaica (<i>Hibiscus sabdariffa</i> L.), o flor de jamaica como se le conoce en M&eacute;xico, es una planta anual cultivada en los climas tropicales y subtropicales del mundo. Sus c&aacute;lices se aprovechan para elaborar bebidas fr&iacute;as o calientes, mermeladas, salsas, y aderezos. En la medicina tradicional, los extractos acuosos de la decocci&oacute;n de los c&aacute;lices deshidratados de jamaica se utilizan para el control de la presi&oacute;n arterial, alteraciones hep&aacute;ticas o fiebre (Ali <i>et al</i>., 2005). Estos beneficios terap&eacute;uticos se atribuyen a la diversidad de los fitoqu&iacute;micos de los c&aacute;lices (Rodr&iacute;guez&#45;Medina <i>et al</i>., 2009; Ramirez&#45;Rodriguez <i>et al</i>., 2011; Hopkins <i>et al</i>., 2013), en los que predominan los fenoles. Entre los fenoles m&aacute;s abundantes est&aacute;n las antocianinas (Tsai <i>et al</i>., 2002), que son responsables del color rojo brillante de los extractos de los c&aacute;lices y son estudiadas ampliamente (Galicia&#45;Flores <i>et al</i>., 2008; Ram&iacute;rez&#45;Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los &aacute;cidos fen&oacute;licos son otro grupo importante de compuestos en los c&aacute;lices de la jamaica y se encuentran en forma libre o conjugada. En frutas y hortalizas est&aacute;n principalmente en forma libre (Shahidi y Naczk, 2004), y en los cereales predominan en forma conjugada o ligada (Liu, 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En extractos acuosos de jamaica se identific&oacute; el &aacute;cido clorog&eacute;nico y sus is&oacute;meros I y II como los &aacute;cidos fen&oacute;licos principales (Fern&aacute;ndez&#45;Arroyo <i>et</i> <i>al</i>., 2011; Ramirez&#45;Rodriguez <i>et al</i>., 2011), junto con los derivados de los &aacute;cidos protocat&eacute;quico y g&aacute;lico (Ramirez&#45;Rodriguez <i>et al</i>., 2011) y el &aacute;cido cafeico (Huang <i>et al</i>., 2009). Otros fenoles del tipo flavonoide, como quercetina y sus gluc&oacute;sidos, y los gluc&oacute;sidos de miricetina (Fern&aacute;ndez&#45;Arroyo <i>et al</i>. 2011; Ramirez&#45;Rodriguez <i>et al</i>. 2011) y proantocianidinas (S&aacute;yago&#45;Ayerdi <i>et al</i>., 2007), del tipo catequina, epigalocatequina y epigalocatequin&#45;galato (Huang <i>et al</i>., 2009) tambi&eacute;n est&aacute;n identificados en la flor de jamaica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El color de los c&aacute;lices de jamaica est&aacute; asociado al contenido y tipo de fenoles. Los c&aacute;lices oscuros tienen m&aacute;s antocianinas que los c&aacute;lices claros, pero los blancos o verdes carecen de estos flavonoides (Christian y Jackson, 2009) o est&aacute;n en cantidades m&iacute;nimas (Salinas&#45;Moreno <i>et al</i>., 2012). La caracterizaci&oacute;n de los &aacute;cidos fen&oacute;licos de extractos acuosos de jamaica es limitada (Rodr&iacute;quez&#45;Medina <i>et al</i>., 2009; Ram&iacute;rez&#45;Rodr&iacute;guez <i>et al</i>., 2011) y se ha realizado en variedades con c&aacute;lices coloridos, por lo que se desconoce la composici&oacute;n de los blancos.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad antioxidante asociada a las bebidas elaboradas a partir de la decocci&oacute;n acuosa de los c&aacute;lices de jamaica (Prenesti <i>et al</i>., 2007) se atribuye a los fenoles que contienen, y destacan las antocianinas (S&aacute;yago&#45;Ayerdi <i>et al</i>., 2007) y los &aacute;cidos fen&oacute;licos. De estos &uacute;ltimos, el &aacute;cido clorog&eacute;nico y sus derivados son los m&aacute;s importantes (Fern&aacute;ndez&#45;Arroyo <i>et</i> <i>al</i>., 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El mercado creciente de las bebidas funcionales requiere caracterizar los fenoles de cada variante, para elegir la m&aacute;s adecuada para el dise&ntilde;o de bebidas con caracter&iacute;sticas nutrace&uacute;ticas particulares.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por lo tanto, los objetivos del presente estudio fueron: 1) analizar los &aacute;cidos fen&oacute;licos solubles (libres y conjugados) en los extractos acuosos de variedades de jamaica con color diferente de c&aacute;lices mediante HPLC&#45;DAD; 2) cuantificar flavonoides del tipo antocianinas y proantocianidinas; y, 3) determinar la actividad antioxidante de los extractos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y M&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material biol&oacute;gico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variedades de jamaica Sud&aacute;n, con c&aacute;lices rojo oscuro, Criolla Nayarit con c&aacute;lices rojo claro y Alma Blanca con c&aacute;lices blancos fueron estudiadas. Sud&aacute;n y Alma Blanca fueron cultivadas en Santa Mar&iacute;a Cortijo, Jamiltepec, estado de Oaxaca; la Criolla Nayarit, fue cultivada en Huajicori, estado de Nayarit.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Preparaci&oacute;n de los extractos acuosos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los extractos se prepararon con 2.5 g de c&aacute;lices secos y 100 mL de agua destilada. La mezcla hirvi&oacute; 15 min, se separ&oacute; el l&iacute;quido de los c&aacute;lices por decantaci&oacute;n y la extracci&oacute;n se repiti&oacute; en las mismas condiciones. Los extractos se juntaron, la soluci&oacute;n se filtr&oacute; con papel Whatman No. 4 y se afor&oacute; a 200 mL con agua destilada. Las siguientes variables se evaluaron en este extracto.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&Aacute;cidos fen&oacute;licos</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los &aacute;cidos fen&oacute;licos libres, glucosilados y esterificados se determinaron con el m&eacute;todo de Bakan <i>et al</i>. (2003). Para determinar los &aacute;cidos fen&oacute;licos libres se realizaron dos extracciones l&iacute;quido&#45;l&iacute;quido con 15 mL de acetato de etilo a 20 mL del extracto acuoso, despu&eacute;s de ajustar su pH a 2, con HCl 2N. Las dos fases org&aacute;nicas se juntaron y concentraron a sequedad en un rota&#45;evaporador (Heidolph instruments, mod. Laborata 4010 digital, Germany). El residuo se resuspendi&oacute; en 2 mL de metanol grado HPLC. Las muestras se mantuvieron en frascos &aacute;mbar a &#45;20 &deg;C hasta su an&aacute;lisis. La fase acuosa restante se afor&oacute; a 20 mL con agua destilada y se dividi&oacute; en dos vol&uacute;menes iguales.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la fracci&oacute;n de &aacute;cidos fen&oacute;licos glucosilados (AFG), a uno de los vol&uacute;menes se adicionaron 10 mL de HCl 2N y se coloc&oacute; 1 h a 4 &deg;C; el otro volumen se emple&oacute; para la fracci&oacute;n de &aacute;cidos fen&oacute;licos esterificados (AFE), al cual se a&ntilde;adieron 10 mL de NaOH 2N, se dej&oacute; reaccionar 3 h en oscuridad. Despu&eacute;s se ajust&oacute; a 2 el pH de los extractos y se procesaron en la misma forma que los &aacute;cidos fen&oacute;licos libres. Los &aacute;cidos fen&oacute;licos totales en cada fracci&oacute;n se cuantificaron mediante la prueba Folin Ciocalteu (Singleton y Rossi, 1965). A 100 <i>&#956;</i>L del extracto acuoso se adicionaron 125 <i>&#956;</i>L de reactivo de Folin&#45;Ciocalteu 1N, se agit&oacute; y se dej&oacute; reaccionar 6 min en oscuridad. La reacci&oacute;n se neutraliz&oacute; con 1250 <i>&#956;</i>L de Na<sub>2</sub>CO<sub>3</sub> al 19 % y se afor&oacute; a 3 mL con agua destilada. La muestra se agit&oacute; y qued&oacute; en oscuridad 90 min. La absorbancia se midi&oacute; en un espectrofot&oacute;metro (PerkinElmer, Lamda 25 UV/Vis, USA) a 760 nm. Una curva est&aacute;ndar de &aacute;cido g&aacute;lico (20 a 100 <i>&#956;</i>g L<sup>&#45;</sup><sup>1</sup>) fue realizada, y los resultados se expresaron en mg equivalentes de &aacute;cido g&aacute;lico por g de MS (mg EAG g<sup>&#45;1</sup> MS).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de &aacute;cidos fen&oacute;licos por cromatograf&iacute;a</b> <b>l&iacute;quida de alta resoluci&oacute;n acoplada a detector</b> <b>con arreglo de diodos (HPLC&#45;DAD)</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los &aacute;cidos fen&oacute;licos se analizaron con un equipo PerkinElmer serie 200 (USA), integrado por bomba cuaternaria, degasificador, detector de UV/Vis con arreglo de diodos (DAD), con auto&#45;muestreador y columna anal&iacute;tica Hypersil ODS.2 (250&times;46 mm), con tama&ntilde;o de part&iacute;cula de 5 <i>&#956;</i>m. El m&eacute;todo de Glowniak <i>et al</i>. (1996) fue usado, y como fase m&oacute;vil se emple&oacute; una mezcla de metanol: &aacute;cido ac&eacute;tico: agua (25:1:75 v/v/v). La velocidad de flujo fue 1 mL min<sup>&#45;1</sup>, el tiempo de corrida 22 min y el volumen de inyecci&oacute;n 10 mL. La detecci&oacute;n se realiz&oacute; a 254 nm (derivados de <i>p</i>&#45;hidroxibenzoico) y 320 nm (derivados de hidroxicin&aacute;mico). La temperatura de la columna se mantuvo en 30 &deg;C.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El detector con arreglo de diodos se us&oacute; para obtener el espectro de UV de cada pico del cromatograma de &aacute;cidos fen&oacute;licos. La identificaci&oacute;n se realiz&oacute; por comparaci&oacute;n de los tiempos de retenci&oacute;n con los est&aacute;ndares comerciales y sus respectivos espectros en UV. Para identificar cu&aacute;l de los picos en el cromatograma correspond&iacute;a al &aacute;cido clorog&eacute;nico, se agreg&oacute; a la muestra una pizca del est&aacute;ndar comercial. Una vez ubicado el pico correspondiente al &aacute;cido clorog&eacute;nico, se us&oacute; la literatura y una librer&iacute;a de espectros de UV de los diferentes &aacute;cidos fen&oacute;licos reportados en <i>Hibiscus sabdariffa</i> L., y se identificaron los derivados de &aacute;cidos. Para la cuantificaci&oacute;n se prepararon curvas patr&oacute;n de los &aacute;cidos caf&eacute;ico, clorog&eacute;nico, fer&uacute;lico, g&aacute;lico, protocat&eacute;quico, <i>p</i>&#45;cum&aacute;rico, <i>p</i>&#45;hidroxibenzoico y sir&iacute;ngico (Sigma, MN) en las mismas condiciones que las muestras.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fenoles extractables totales y antocianinas totales</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para cuantificar los fenoles extractables totales (FET) se us&oacute; el m&eacute;todo de Folin&#45;Ciocalteu (Singleton y Rossi, 1965). Las antocianinas totales se determinaron al medir la absorbancia de los extractos acuosos en un espectrofot&oacute;metro (Perkin Elmer Lambda 25 UV/Vis, USA) de acuerdo con lo descrito por Abdel&#45;Aal y Hucl (1999), y las adaptaciones de Salinas&#45;Moreno <i>et al</i>. (2005). Una curva patr&oacute;n de cianidina 3&#45;gluc&oacute;sido (Polyphenols, Nw) fue realizada y los resultados se expresaron en mg equivalentes de cianidina&#45;3&#45;gluc&oacute;sido por g de MS (mg C3GE g<sup>&#45;1</sup> MS).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Proantocianidinas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las proantocianidinas se evaluaron con el m&eacute;todo de Wallace y Giusti (2010). Una al&iacute;cuota de 20 <i>&#956;</i>L de la muestra se hizo reaccionar con 2380 <i>&#956;</i>L de metanol y 100 <i>&#956;</i>L de soluci&oacute;n de DMAC (4&#45;dimetilamino cinamaldehido al 2 % en una mezcla 1:1 (v/v) de metanol y &aacute;cido sulf&uacute;rico 6 N). La reacci&oacute;n dur&oacute; 25 min a temperatura ambiente, en oscuridad, y se ley&oacute; la absorbancia a 640 nm; la concentraci&oacute;n fue calculada con una curva patr&oacute;n de catequina (Sigma, MN). Los resultados se expresaron en <i>&#956;</i>g equivalentes de catequina por mg de MS (<i>&#956;</i>g EC mg<sup>&#45;1</sup> de MS).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad antioxidante</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar la actividad antioxidante se us&oacute; el m&eacute;todo del radical libre 2,2&#45;difenil&#45;1&#45;picrilhidrazil (DPPH) (Sigma Aldrich Co<sup>&reg;</sup>) descrito por Soler&#45;Rivas <i>et al</i>. (2000) con una soluci&oacute;n 100 <i>&#956;</i>M de DPPH en metanol al 80 %. En una cubeta de cuarzo se colocaron 100 mL de extracto y 2.9 mL de DPPH. La absorbancia se monitore&oacute; cada 5 min por 30 min a una longitud de onda de 515 nm. La absorbancia de referencia (<i>A</i><sub>0</sub>) fue obtenida al sustituir el volumen de extracto por metanol al 80 %.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de reducci&oacute;n de DPPH se obtuvo de la expresi&oacute;n: <i>DPPH</i> (%)=(<i>A</i><sub>0</sub>&#45;<i>An</i>)100 / <i>A</i><sub>0</sub>, donde <i>A</i><sub>0</sub> y <i>A</i><sub><i>n</i></sub> fueron las absorbancias de referencia y de la muestra, respectivamente. Los datos se usaron para determinar el par&aacute;metro IC<sub>50</sub>, que representa la concentraci&oacute;n (<i>&#956;</i>g mL<sup>&#45;</sup><sup>1</sup>) de compuestos fen&oacute;licos requerida para reducir 50 % del radical libre DPPH (Einbond <i>et al</i>., 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Dise&ntilde;o experimental y an&aacute;lisis estad&iacute;sticos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar. Con los datos de composici&oacute;n fen&oacute;lica se realiz&oacute; un ANDEVA y pruebas de comparaci&oacute;n de medias (Tukey; p&#8804;0.05). Todas las determinaciones se realizaron por triplicado. Los an&aacute;lisis se efectuaron con SAS System versi&oacute;n 9.0.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y Discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>&Aacute;cidos fen&oacute;licos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de &aacute;cidos fen&oacute;licos totales (AFT) fue diferente entre las variedades analizadas. Sud&aacute;n tuvo el contenido mayor (p&#8804;0.05) y Criolla Nayarit el menor (10.71&plusmn;0.29 y 6.57&plusmn;0.24 mg EAG g<sup>&#45;1</sup> MS). Los c&aacute;lices blancos de Alma Blanca tuvieron contenido mayor (p&#8804;0.05) de AFT que los de Criolla Nayarit, coloreados y con antocianinas (<a href="#f1">Figura 1</a>). La fracci&oacute;n m&aacute;s abundante de &aacute;cidos fen&oacute;licos en las variedades analizadas fue la de los &aacute;cidos fen&oacute;licos libres (AFL). Un patr&oacute;n similar fue reportado para frutas y verduras (Shahidi y Naczk, 2004). Los AFL en las variedades Sud&aacute;n y Alma Blanca fueron similares (p&gt;0.05), pero mayores que en Criolla Nayarit. El contenido mayor (p&#8804;0.05) de &aacute;cidos fen&oacute;licos glucosilados (AFG) correspondi&oacute; a Sud&aacute;n y el menor lo tuvieron Criolla Nayarit y Alma Blanca. La fracci&oacute;n AFE fue la menor de las tres, con el contenido mayor (p&#8804;0.05) en Sud&aacute;n y el menor en Alma Blanca.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v49n3/a04f1.jpg"></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fracci&oacute;n AFL mostr&oacute; entre 12 y 13 picos de &aacute;cidos fen&oacute;licos o de sus derivados. La identidad de los derivados se obtuvo al comparar sus respectivos espectros en UV con los est&aacute;ndares comerciales y hubo coincidencia del espectro, pero no as&iacute; del tiempo de retenci&oacute;n (<a href="/img/revistas/agro/v49n3/a04f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la fracci&oacute;n de AFL el &aacute;cido clorog&eacute;nico y sus is&oacute;meros I (&aacute;cido 5&#45;cafeoil qu&iacute;nico) y II (&aacute;cido 4&#45;cafeoil qu&iacute;nico) fueron los m&aacute;s abundantes, los sigui&oacute; el cafeico y los derivados del &aacute;cido protocat&eacute;quico (<a href="/img/revistas/agro/v49n3/a04c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Alma Blanca destac&oacute; por sus contenidos elevados de &aacute;cido caf&eacute;ico y derivados de protocat&eacute;quico. Los contenidos de &aacute;cido clorog&eacute;nico y sus is&oacute;meros fueron menores que 1924, 2755 y 1041 <i>&#956;</i>g g<sup>&#45;</sup><sup>1</sup> de clorog&eacute;nico, is&oacute;mero I e is&oacute;mero II en extractos acuosos de c&aacute;lices molidos de jamaica reportados por Fern&aacute;ndez&#45;Arroyo <i>et al</i>. (2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las variedades de c&aacute;lices coloridos tuvieron derivados de &aacute;cido g&aacute;lico, ausentes en Alma Blanca, en cantidades m&aacute;s altas que los derivados del protocat&eacute;quico. Tambi&eacute;n hubo derivados de los &aacute;cidos <i>p</i>&#45;cum&aacute;rico y fer&uacute;lico en cantidades peque&ntilde;as. El contenido de &aacute;cidos fen&oacute;licos totales fue parecido en Alma Blanca y Sudan y m&aacute;s alto que en Criolla Nayarit. Los valores obtenidos por HPLC fueron similares a los cuantificados con el m&eacute;todo de Folin&#45;Ciocalteau (<a href="#f1">Figura 1</a>). Alma Blanca tuvo un contenido alto de derivados del &aacute;cido <i>p</i>&#45;hidroxibenzoico, respecto a las variedades con c&aacute;lices color rojo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;cido clorog&eacute;nico y sus is&oacute;meros (I y II) tambi&eacute;n predominaron en la fracci&oacute;n de AFG, similar a la fracci&oacute;n de AFL en la proporci&oacute;n mayor del clorog&eacute;nico sobre sus is&oacute;meros. Adem&aacute;s el contenido de estos &aacute;cidos tuvo el orden Sud&aacute;n&gt;Alma Blanca&gt;Criolla Nayarit. El &aacute;cido cafeico fue el segundo m&aacute;s importante en la fracci&oacute;n AFG y las variedades tuvieron el mismo orden por su contenido en los AFL. La variedad Sud&aacute;n mantuvo la presencia de derivados del &aacute;cido sir&iacute;ngico en esta fracci&oacute;n, como en la de AFL; las otras variedades no tuvieron derivados de este &aacute;cido.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los AFE representaron todos aquellos &aacute;cidos fen&oacute;licos no ligados a componentes de pared celular, pero poseen alguna mol&eacute;cula unida a su estructura mediante enlace &eacute;ster (Liu, 2007). En las variedades analizadas destac&oacute; la cantidad de derivados de sir&iacute;ngico y <i>p</i>&#45;hidroxibenzoico. Las variedades coloridas tuvieron cantidad alta de &aacute;cido cafeico, que podr&iacute;a provenir de la hidr&oacute;lisis del &aacute;cido clorog&eacute;nico, que es inestable al pH alcalino al que el extracto se somete para su an&aacute;lisis. La variedad Criolla Nayarit tuvo un contenido alto de derivados de protocat&eacute;quico, Sud&aacute;n tuvo un valor varias veces menor y en Alma Blanca no se detect&oacute; en la fracci&oacute;n AFE. La variedad Sudan tuvo derivados de &aacute;cido sir&iacute;ngico en las tres fracciones de &aacute;cidos fen&oacute;licos analizadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la fracci&oacute;n AFL de las variedades analizadas el &aacute;cido clorog&eacute;nico represent&oacute; 39.1, 43.9 y 37.1 % del total en Alma Blanca, Sud&aacute;n y Criolla Nayarit. Al considerar los is&oacute;meros, la proporci&oacute;n creci&oacute; hasta 77.4, 81.5 y 81.2 % en ellas. En Alma Blanca el &aacute;cido cafeico fue el cuarto en importancia (10.3 %), pero en las variedades coloridas los derivados del &aacute;cido g&aacute;lico ocuparon esa posici&oacute;n. La predominancia del &aacute;cido clorog&eacute;nico y sus is&oacute;meros en los extractos acuosos analizados coincidi&oacute; con lo informado por Rodr&iacute;guez&#45;Medina <i>et al</i>. (2009) y Ram&iacute;rez&#45;Rodr&iacute;guez <i>et al</i>. (2011), quienes obtuvieron el mismo resultado con t&eacute;cnicas de HPLC&#45;MS. Pero este resultado contrast&oacute; con lo observado por Huang <i>et al</i>. (2009), ya que identificaron una fracci&oacute;n de <i>Hibiscus</i> spp rica en polifenoles, con &aacute;cidos protocat&eacute;quico (24.2 %) y cafeico (19.9 %) como los m&aacute;s abundantes. Las divergencias podr&iacute;an deberse al disolvente usado para obtener los extractos, pues el etanol, en contraste con el agua, favorece la extracci&oacute;n del protocat&eacute;quico (Chao y Yin, 2009). Adem&aacute;s, la gen&eacute;tica de los materiales usados en cada caso puede ser diferente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entre los &aacute;cidos fen&oacute;licos en los c&aacute;lices de jamaica, el protocat&eacute;quico es el m&aacute;s estudiado por sus efectos como antioxidante que puede proteger de la oxidaci&oacute;n a las c&eacute;lulas hep&aacute;ticas de ratas (Tseng <i>et al</i>., 1996), e inducir apoptosis en c&eacute;lulas afectadas por leucemia en humanos (Tseng <i>et al</i>., 2000). Adem&aacute;s, el &aacute;cido clorog&eacute;nico se ha relacionado con una reducci&oacute;n significativa de las presiones sist&oacute;lica y diast&oacute;lica (Watanabe <i>et al</i>., 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fenoles extractables totales, antocianinas y proantocianidinas en los c&aacute;lices de jamaica</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los FET de una matriz vegetal o alimento son todos aquellos factibles de solubilizarse y ser extra&iacute;dos con el disolvente usado (Saura&#45;Calixto <i>et al</i>., 2007). En el estudio presente el contenido de FET fue estad&iacute;sticamente diferente (p&#8804;0.05) entre las variedades analizadas. El contenido mayor correspondi&oacute; a Sud&aacute;n y el menor a Alma Blanca (<a href="/img/revistas/agro/v49n3/a04c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). El contenido de FET en los tres genotipos fue similar al reportado en variedades con colores de c&aacute;lices semejantes (Christian y Jackson, 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de antocianinas totales fue mayor en Sud&aacute;n y menor en Alma Blanca (p&#8804;0.05). Las variedades con color diferente al blanco presentaron valores similares (3 a 25 mg EC3G g<sup>&#45;</sup><sup>1</sup> MS) a los obtenidos por Juliani <i>et al</i>. (2009) en variedades cultivadas en Senegal. En Alma Blanca el contenido fue mayor que lo informado por Christian y Jackson, (2009). En las variedades con c&aacute;lices rojos, la intensidad del color est&aacute; relacionada con su contenido de antocianinas (Christian y Jackson, 2009; Salinas <i>et al</i>., 2012). La variedad Sud&aacute;n, con c&aacute;lices oscuros, present&oacute; 2.4 veces m&aacute;s antocianinas que Criolla Nayarit, con c&aacute;lices claros. Las antocianinas en los FET en las variedades con c&aacute;lices rojos representaron 30 %, y en la de c&aacute;lices blancos 2 %. Seg&uacute;n S&aacute;yago&#45;Ayerdi <i>et al</i>. (2007), cerca de 30 y 60 % de los FET en jamaica de c&aacute;lices rojos, son antocianinas y &aacute;cidos fen&oacute;licos.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las proantocianidinas (PAs) fueron los fenoles menos abundantes en los extractos analizados. El mayor contenido se observ&oacute; en la variedad Sud&aacute;n (p&#8804;0.05) y el menor en Alma Blanca. Su presencia en c&aacute;lices de jamaica fue reportada por Obouayeba <i>et al</i>. (2014) al monitorear los fitoqu&iacute;micos en extractos acuosos de jamaica. El m&eacute;todo anal&iacute;tico utilizado (DMAC) detecta con mayor precisi&oacute;n mon&oacute;meros de flavan&#45;3&#45;ols, y reacciona s&oacute;lo con unidades terminales, sin discriminar mon&oacute;meros, d&iacute;meros o tr&iacute;meros (Hummer y Schreier, 2008). As&iacute;, las PAs en las jamaicas analizadas pueden ser de tipo flavanoles, porque Huang <i>et al.</i> (2009) reportaron presencia de catequina, epigalocatequina y epigalocatequin&#45;galato en un extracto concentrado de jamaica. Las proantocianidinas se consideran fenoles con actividad antioxidante que ayudan en la prevenci&oacute;n de problemas cardiovasculares, porque protegen el m&uacute;sculo card&iacute;aco (Natella <i>et al</i>., 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad antioxidante</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El IC<sub>50</sub> es la concentraci&oacute;n del extracto que reduce 50 % del radical libre. Los valores bajos de IC<sub>50</sub> se asocian con el poder antioxidante mayor (Einbond <i>et al</i>., 2004). El patr&oacute;n de la reducci&oacute;n del radical DPPH mostrado por Alma Blanca y Criolla Nayarit fue distinto al de Sud&aacute;n (<a href="#f3">Figura 3</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v49n3/a04f3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La reducci&oacute;n por los extractos de Alma Blanca y Criolla Nayarit fue casi lineal, en tanto que la de Sudan fue exponencial. La variedad Sud&aacute;n present&oacute; IC<sub>50</sub> menor que Alma Blanca y Criolla Nayarit, es decir, tiene poder antioxidante mayor, atribuido a su contenido alto de antocianinas, m&aacute;s que a sus &aacute;cidos fen&oacute;licos, que fueron similares a los de Alma Blanca. El IC<sub>50</sub> de los extractos de Criolla Nayarit y Alma Blanca fue similar (p&gt;0.05). La actividad antioxidante de Alma Blanca se atribuye a los &aacute;cidos fen&oacute;licos, pues pr&aacute;cticamente carece de antocianinas. La variabilidad entre m&eacute;todos para medir la actividad antioxidante en extractos acuosos de jamaica y la forma de expresar los datos, dificulta la comparaci&oacute;n de resultados. Seg&uacute;n P&eacute;rez&#45;Ram&iacute;rez <i>et al</i>. (2015) el IC<sub>50</sub> para una bebida de jamaica fue 13.6 mg de c&aacute;lices secos mL<sup>&#45;1</sup> y los c&aacute;lculos con la concentraci&oacute;n de FET de la variedad Sud&aacute;n dan un IC<sub>50</sub> de 478.4 ug mL<sup>&#45;1</sup>; por lo tanto, con poder antioxidante mayor. Los resultados mostraron el potencial antioxidante (&aacute;cidos fen&oacute;licos) de las variedades de <i>Hibiscus</i> spp. de c&aacute;lices blancos similar al de las variedades con c&aacute;lices de otro color.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Conclusiones</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Independientemente de su color, los c&aacute;lices son fuente abundante de &aacute;cidos fen&oacute;licos y otros flavonoides con actividad antioxidante. El color de los c&aacute;lices puede ser un indicador del tipo predominante de fenoles y ayudar a la selecci&oacute;n de las variedades para obtener formulaciones con propiedades nutrac&eacute;uticas particulares.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura Citada</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Abdel&#45;Aal, E.&#45;S. M., and P. Hucl. 1999. A rapid method for quantifying total anthocyanins in blue aleurone and purple pericarp wheat. Cereal Chem. 76: 350&#45;354.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597703&pid=S1405-3195201500030000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ali, B. H., N. A. Wabel, and G. Blunden. 2005. Phytochemical, pharmacological and toxicological aspects of <i>Hibiscus</i> <i>sabdariffa</i> L.: A review. Phytother. Res. 19: 369&#45;375.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597705&pid=S1405-3195201500030000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bakan, B. A., C. Bily, D. Melcion, B. Cahagnier, B. C. Regnault&#45;Roger, B. J. R. Philogene, and D. Richard&#45;Molard. 2003. Possible role of plant phenolics in the production of trichothecenes by <i>Fusarium graminearum</i> strains on different fractions of maize kernels. J. Agric. Food Chem. 51: 2826&#45;2831.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597707&pid=S1405-3195201500030000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chao, Y&#45;C., and M.&#45;C. Yin. 2009. Antibacterial effects of roselle calyx extracts and protocatechuic acid in ground beef and apple juice. Foodborne Pathog. Dis. 6: 201&#45;206.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597709&pid=S1405-3195201500030000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Christian, K. R., and J. C. Jackson. 2009. Changes in total phenolic and monomeric anthocyanin composition and antioxidant activity of three varieties of sorrel (<i>Hibiscus sabdariffa</i>) during maturity. J. Food Compos. Anal. 22: 663&#45;667.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597711&pid=S1405-3195201500030000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Einbond, S. L., A. K. Reynertson, L. Xiao&#45;Dong, J. M. Basile, and J. E. Kennelly. 2004. Anthocyanin antioxidants from edible fruits. Food Chem. 84: 23&#45;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597713&pid=S1405-3195201500030000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fern&aacute;ndez&#45;Arroyo, S., I. C. Rodr&iacute;guez&#45;Medina, R. Beltr&aacute;n&#45;Deb&oacute;n, F. Pasini, J. Joven, V. Micol, A. Segura&#45;Carretero, and A. Fern&aacute;ndez&#45;Guti&eacute;rrez. 2011. Quantification of the polyphenolic fraction and <i>in vitro</i> antioxidant and <i>in vivo</i> anti&#45;hyperlipemic activities of <i>Hibiscus sabdariffa</i> aqueous extract. Food Res. Inter. 44: 1490&#45;1495.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597715&pid=S1405-3195201500030000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Galicia&#45;Flores, L. A., Y. Salinas&#45;Moreno, B. M. Espinosa&#45;Garc&iacute;a, y C. S&aacute;nchez&#45;Feria. 2008. Caracterizaci&oacute;n fisicoqu&iacute;mica y actividad antioxidante de extractos de jamaica (<i>Hibiscus</i> <i>sabdariffa</i> L.) nacional e importada. Rev. Chapingo Serie Hortic. 14: 121&#45;129.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597717&pid=S1405-3195201500030000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Glowniak, K., G. Zg&oacute;rka, and M. Kozyra. 1996. Solid phase extraction and reversed&#45;phase high&#45;performance liquid chromatography of free phenolic acids in some Echinacea species. J. Chromatogr. A 730: 25&#45;29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597719&pid=S1405-3195201500030000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hopkins, A. L., M. G. Lamm, J. L. Funk, and C. Ritenbaugh. 2013. <i>Hibiscus sabdariffa</i> L. in the treatment of hypertension and hyperlipidemia: A comprehensive review of animal and human studies. Fitoterapia 85: 84&#45;94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597721&pid=S1405-3195201500030000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Huang, C. N., K. C. Chan, W. T. Lin, S. L. Su, C. J. Wang, and C. H. Peng. 2009. <i>Hibiscus sabdariffa</i> inhibits vascular smooth muscle cell proliferation and migration induced by high glucose &#45; A mechanism involves connective tissue growth factor signals. J. Agric. Food Chem. 57: 3073&#45;3079.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597723&pid=S1405-3195201500030000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hummer, W., and P. Schreier. 2008. Analysis of proanthocyanidins. Mol. Nutr. Food Res. 52: 1381&#45;1398.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597725&pid=S1405-3195201500030000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Juliani, H. R., C. R. Welch, Q. Wu, B. Diouf, D. Malainy, and J. E. Simon. 2009. Chemistry and quality of Hibiscus (<i>Hibiscus sabdariffa</i> L.) for developing the natural product industry in Senegal. J. Food Sci. 74: S113&#45;S121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597727&pid=S1405-3195201500030000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Liu, H. R. 2007. Whole grain phytochemicals and health. J. Cereal Sci. 46: 207&#45;219.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597729&pid=S1405-3195201500030000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Natella, F., F. Belelli, V. Gentili, F. Ursini, and C. Scaccini, C. 2002. Grape seed proanthocyanidins prevent plasma postprandial oxidative stress in humans. J. Agric. Food Chem. 50: 7720&#150;7725.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597731&pid=S1405-3195201500030000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">OBouayeba, A. P., N. B. Djyh, S. Diabate, A. J. Djaman, J. D. N'guessan, M. Kone, and T. H. Kouakou. 2014. Phytochemical and antioxidant activity of Roselle (Hibiscus sabdariffa L.) petal extracts. Res. J. Pharm. Biol. Chem. Sci. 5: 1453&#45;1465.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597733&pid=S1405-3195201500030000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez&#45;Ram&iacute;rez, I. F., E. Casta&ntilde;o&#45;Tostado, J. A. Ram&iacute;rez&#45;De Le&oacute;n, N. E. Rocha&#45;Guzm&aacute;n, and R. Reynoso&#45;Camacho. 2015. Effect of stevia and citric acid on the stability of phenolic compounds and <i>in vitro</i> antioxidant and antidiabetic capacity of a roselle (<i>Hibiscus sabdariffa</i> L.) beverage. Food Chem. 172: 885&#45;892.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597735&pid=S1405-3195201500030000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Prenesti, E., S. Berto, P.G. Daniele, and S. Toso. 2007. Antioxidant power quantification of decoction and cold infusions of <i>Hibiscus sabdariffa</i> flowers. Food Chem. 100: 433&#45;438.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597737&pid=S1405-3195201500030000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ram&iacute;rez&#45;Rodr&iacute;guez, M. M., M. L. Plaza, A. Azeredo, M. O. Balaban, and M. R. Marshall. 2011. Physicochemical and phytochemical properties of cold and hot water extraction from <i>Hibiscus sabdariffa</i>. J. Food Sci. 76, Nr. 3: 428&#45;435.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597739&pid=S1405-3195201500030000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez&#45;Medina, I. C., R. Beltr&aacute;n&#45;Deb&oacute;n, V. Micol Molina, V., C. Alonso&#45;Villaverde, J. Joven, J. A. Men&eacute;ndez, A. Segura&#45;Carretero, A., and A. Fern&aacute;ndez&#45;Guti&eacute;rrez. 2009. Direct characterization of aqueous extract of <i>Hibiscus</i> <i>sabdariffa</i> using HPLC with diode array detection coupled to ESI and ion trap MS. J. Separ. Sci. 32: 3441&#45;3448.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597741&pid=S1405-3195201500030000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Salinas&#45;Moreno Y., G. Salas&#45;S&aacute;nchez, D. Rubio&#45;Hern&aacute;ndez, and N. Ramos&#45; Lobato. 2005. Characterization of anthocyanin extracts from maize kernels. J. Chromatogr. Sci. 43: 483&#45;487.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597743&pid=S1405-3195201500030000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Salinas&#45;Moreno, Y., A. R. E. Z&uacute;&ntilde;iga&#45;Hern&aacute;ndez, L. B. Jim&eacute;nez&#45;De la Torre, V. Serrano&#45;Altamirano, y C. S&aacute;nchez&#45;Feria. 2012. Color en c&aacute;lices de jamaica (<i>Hibiscus</i> <i>sabdariffa</i> L.) y su relaci&oacute;n con caracter&iacute;sticas f&iacute;sico&#45;qu&iacute;micas de sus extractos acuosos. Rev. Chapingo Serie Hortic. 18: 395&#45;407.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597745&pid=S1405-3195201500030000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Saura&#45;Calixto, F., J. Serrano, and I. Go&ntilde;i. 2007. Intake and bioaccessibility of total polyphenols in a whole diet. Food Chem. 101: 492&#45;501.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597747&pid=S1405-3195201500030000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">S&aacute;yago&#45;Ayerdi S. G., S. Arranz, J. Serrano, and I. Go&ntilde;i. 2007. Dietary fiber content and associated antioxidant compounds in roselle flower (<i>H. sabdariffa</i> L.) beverage. J. Agric. Food Chem. 55: 7786&#45;7890.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597749&pid=S1405-3195201500030000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shahidi, F., and M. Naczk. 2004. Phenolic compounds in fruits and vegetables. <i>In</i>: Shahidi, F., and M. Naczk (eds). Phenolics in Foods and Nutraceuticals. CRC Press. pp: 131&#45;239.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597751&pid=S1405-3195201500030000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Singleton, V. L. and J. J. A. Rossi. 1965. Colorimetric of total phenolics with phosphomolybdic&#45;phosphotungstic acid reagents. Am. J. Enol.Viticul. 16: 144&#45;158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597753&pid=S1405-3195201500030000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Soler&#45;Rivas, C., J. C. Esp&iacute;n, and H. J. Wichers. 2000. An easy and fast test to compare total free radical scavenger capacity of foodstuffs. Phytochem. Anal. 11: 330&#45;338</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597755&pid=S1405-3195201500030000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tsai, Pi&#45;Jen, J. Macintosh, P. Pearce, B. Camden, and B. R. Jordan. 2002. Anthocyanin and antioxidant capacity in Roselle (<i>Hibiscus sabdariffa</i> L.) extract. Food Res. Inter. 35: 351&#45;356.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597756&pid=S1405-3195201500030000400028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tseng, T&#45;H., C&#45;J. Wang, E&#45;S. Kao, and H&#45;Y. Chu. 1996. <i>Hibiscus</i> protocatechuic acid protects against oxidative damage induced by tert&#45;butylhydroperoxide in rat primary hepatocytes. Chem&#45;Biol. Interac. 101: 137&#45;148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597758&pid=S1405-3195201500030000400029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tseng, T&#45;H., E&#45;S. Kao, H&#45;Y. Chu, F&#45;P. Chow, W&#45;L. Lin, and C&#45;J. Wang. 2000. Induction of apoptosis by <i>Hibiscus</i> protocatechuic acid in human leukemia cells via reduction of retinoblastoma (RB) phosphorylation and Bcl&#45;2 expression. Biochem. Pharmacol. 60: 307&#45;315.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597760&pid=S1405-3195201500030000400030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Wallace, T. C., and M. M. Giusti. 2010. Evaluation of parameters that affect the 4&#45;Dimethylaminocinnamaldehyde assay for flavonols and proanthocyanidins. J. Food Sci. 75: 619&#45;625.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597762&pid=S1405-3195201500030000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Watanabe, T. Y. Arai, Y. Mitsui, T. Yusara, W. Okawa, and Y. Kajihara. 2006. The blood pressure&#150;lowering effect and safety of chlorogenic acid from green coffee bean extract in essential hypertension. Clin.Exp. Hypertens. 28: 439&#45;49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=597764&pid=S1405-3195201500030000400032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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