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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The biodiesel production from photosynthetic microorganisms, is a topic of increasing research. However, the implications of nutrient removal and lipid accumulation capacity are unknown, when microorganisms are grown in municipal wastewater with respect to be grown in a rich medium. In the present study the potential of two species of microalgae Chlorella vulgaris and Scenedesmus acutus and a cyanobacterium, Arthrospira maxima, were evaluated to remove nutrients and accumulate lipids, useful for producing biodiesel, when growing into two wastewater qualities, raw (RWW) and treated (TWW), compared with an enriched medium (EM) with commercial fertilizer. The cultures were performed in volumes of 1 L, with photoperiods of light:dark of 12 h:12 h. With the results an ANOVA was carried out and treatment means were compared with Tukey's test (p&#8804;0.05). The cultures in RWW showed: 1) the higher biomass productivity (0.93 g L ¹) and EM (0.96 g L ¹) (p>0.05), the highest rate of biomass increase corresponded to C. vulgaris (0.20 to 0.27 d" X) for the three culture media (p&#8804;0.001), and for S. acutus and A. maxima was between 0.06 and 0.14 d ¹; 2) the higher efficiency of nutrient removal, over 60 % of phosphorus and 90 % of organic nitrogen (p&#8804;0.05) for all microorganisms; 3) higher lipid accumulation (p&#8804;0.05) for S. acutus, 28.3 %, C. vulgaris 22.4 % and A. maximum 13.8 %; 4) the higher production of biodiesel (between 109.4 and 244.6 mg L ¹) for the three microorganisms.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Biotecnolog&iacute;a     </font></p> 	    <p align="center">&nbsp;</p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Producci&oacute;n de biodi&eacute;sel a partir de microalgas y una cianobacteria cultivadas en diferentes calidades de agua</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Biodiesel production from microalgae and a cyanobacteria grown in different qualities of water</b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Manuel Sacristan&#45;de Alva<sup>1</sup>, V&iacute;ctor M. Luna&#45;Pabello<sup>1</sup></b><sup><b>*</b></sup> <b>, Erasmo Cadena&#45;Mart&iacute;nez<sup>1</sup>, Alejandro F. Alva&#45;Mart&iacute;nez<sup>2</sup></b></font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Laboratorio de Microbiolog&iacute;a Experimental, Departamento de Biolog&iacute;a, Facultad de Qu&iacute;mica, Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico. 04510. Coyoac&aacute;n, Ciudad de M&eacute;xico, M&eacute;xico. * Autor responsable.</i></font>	<font face="verdana" size="2">(<a href="mailto:lpvictor@unam.mx">lpvictor@unam.mx</a>)</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup> <i>Departamento el Hombre y su Ambiente, Universidad Aut&oacute;noma Metropolitana. Unidad Xochimilco. 04960. Calzada del Hueso 1100, Colonia Villa Quietud, Delegaci&oacute;n Coyoac&aacute;n, D. F., M&eacute;xico.</i>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: octubre, 2013.    <br> 	Aprobado: marzo, 2014.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La producci&oacute;n de biodi&eacute;sel, a partir de microorganismos fotosint&eacute;ticos, es un tema de creciente investigaci&oacute;n. No obstante, las implicaciones de la remoci&oacute;n de nutrientes y capacidad de acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos se desconocen cuando los microorganismos se cultivan en aguas residuales municipales respecto de su cultivo en un medio enriquecido. En el presente estudio se evalu&oacute; el potencial de dos especies de microalgas, <i>Chlorella vulgaris</i> y <i>Scenedesmus acutus,</i> y de una cianobacteria, <i>Arthrospira maxima,</i> para remover nutrientes y acumular l&iacute;pidos, &uacute;tiles para producir biodi&eacute;sel, al cultivarse en dos calidades de agua residual, cruda (ARC) y tratada (ART), comparadas con un medio enriquecido (AE) con fertilizante comercial. Los cultivos se realizaron en vol&uacute;menes de 1 L, con fotoperiodos de luz:oscuridad de 12 h:12 h. Con los resultados se realiz&oacute; un ANDEVA y las medias de los tratamientos se compararon con la prueba de Tukey (p&le;0.05). Los cultivos en ARC mostraron: 1) la productividad mayor de biomasa (p&le;0.05) con 5. <i>acutus</i> (1.28 g L ) y <i>C. vulgaris</i> (p&lt;0.05) with 5. <i>acutus</i> (1.28 g L ) and C. <i>vulgaris</i> (1.15 g L <sup>1</sup>), para <i>A. maxima</i> los valores fueron similares en&nbsp;(1.15 g L <sup>1</sup>), for <i>A. maxima</i> values were similar to RWW ARC (0.93 g L <sup>1</sup>) y AE (0.96 g L <sup>1</sup>) (p&gt;0.05), la mayor tasa de incremento de biomasa correspondi&oacute; a <i>C. vulgaris</i> (0.200.27 d <sup>1</sup>) para los tres medios de cultivo (p&lt;0.001), y para <i>S. acutus</i> y <i>A. m&aacute;xima</i> fue entre 0.06 y 0.14 d <sup>1</sup>; 2) la eficiencia mayor de remoci&oacute;n de nutrientes, superior a 60 % de f&oacute;sforo y 90 % de nitr&oacute;geno org&aacute;nico (p &le; 0.05) para todos los microorganismos; 3) la acumulaci&oacute;n mayor de l&iacute;pidos (p &le; 0.05) en <i>S. acutus</i> 28.3 %, <i>C. vulagris</i> 22.4 % y <i>A. m&aacute;xima</i> 13.8 %; 4) la m&aacute;s alta producci&oacute;n de biodi&eacute;sel (entre 109.4 y 244.6 mg L <sup>1</sup>) para los tres microorganismos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> aguas residuales, <i>Arthrospira maxima,</i> biodi&eacute;&#45;sel, <i>Chlorella vulgaris,</i> remoci&oacute;n de nutrientes, <i>Scenedesmus acutus.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The biodiesel production from photosynthetic microorganisms, is a topic of increasing research. However, the implications of nutrient removal and lipid accumulation capacity are unknown, when microorganisms are grown in municipal wastewater with respect to be grown in a rich medium. In the present study the potential of two species of microalgae <i>Chlorella vulgaris</i> and <i>Scenedesmus acutus</i> and a cyanobacterium, <i>Arthrospira maxima,</i> were evaluated to remove nutrients and accumulate lipids, useful for producing biodiesel, when growing into two wastewater qualities, raw (RWW) and treated (TWW), compared with an enriched medium (EM) with commercial fertilizer. The cultures were performed in volumes of 1 L, with photoperiods of light:dark of 12 h:12 h. With the results an ANOVA was carried out and treatment means were compared with Tukey's test (p&le;0.05). The cultures in RWW showed: 1) the higher biomass productivity (0.93 g L <sup>1</sup>) and EM (0.96 g L <sup>1</sup>) (p&gt;0.05), the highest rate of biomass increase corresponded to <i>C. vulgaris</i> (0.20 to 0.27 d" <sup>X</sup>) for the three culture media (p&le;0.001), and for <i>S. acutus</i> and <i>A. maxima</i> was between 0.06 and 0.14 d <sup>1</sup>; 2) the higher efficiency of nutrient removal, over 60 % of phosphorus and 90 % of organic nitrogen (p&le;0.05) for all microorganisms; 3) higher lipid accumulation (p&le;0.05) for <i>S. acutus,</i> 28.3 %, <i>C. vulgaris</i> 22.4 % and <i>A. maximum</i> 13.8 %; 4) the higher production of biodiesel (between 109.4 and 244.6 mg L <sup>1</sup>) for the three microorganisms.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> wastewater, <i>Arthrospira maxima,</i> biodiesel, <i>Chlorella vulgaris,</i> nutrient removal, <i>Scenedesmus acutus.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El agotamiento de los combustible f&oacute;siles lleva a las industrias y los cient&iacute;ficos a investigar el desarrollo de tecnolog&iacute;as para obtener fuentes energ&eacute;ticas renovables (Zah <i>et al.,</i> 2007). En M&eacute;xico, el objetivo del Programa Especial para el Aprovechamiento de Energ&iacute;as Renovables es fomentar dichas fuentes energ&eacute;ticas y la producci&oacute;n de biocombustibles con un enfoque t&eacute;cnico, econ&oacute;mico, ambiental y socialmente viable. El programa plantea aumentar el porcentaje de la capacidad instalada en el pa&iacute;s de estas alternativas de energ&iacute;a limpia en 29 % de la capacidad de generaci&oacute;n prevista para el 2018 (SENER, 2013). Un ejemplo de estas tecnolog&iacute;as es la utilizaci&oacute;n de biomasa procedente de cultivos agr&iacute;colas para la producci&oacute;n de bioetanol o biodi&eacute;sel (Antoni <i>et al.,</i> 2007). Este sistema presenta un impacto significativo en el potencial del cambio clim&aacute;tico, adem&aacute;s interviene en otras problem&aacute;ticas ambientales, como la eutrofizaci&oacute;n, el agotamiento de recursos naturales y la ecotoxicidad. Pero compite con otros cultivos alimenticios por el uso de la tierra cultivable, aspecto que disminuye su potencial como tecnolog&iacute;a (Crutzen <i>et al.,</i> 2008).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una alternativa es usar microalgas como materia prima, ya que pueden aplicarse en zonas no aptas para los cultivos tradicionales y alcanzan tasas de crecimiento altas (0.5 a 1.2 d ~ <sup>1</sup>) (Chisti, 2007; Flynn <i>et al.,</i> 2010). Sin embargo, muchas tecnolog&iacute;as de cultivo de microalgas involucran el uso de agua no contaminada, fertilizantes e inyecci&oacute;n de CO2 para su crecimiento, lo cual eleva el costo de la producci&oacute;n de biomasa algal y reduce su atractivo como tecnolog&iacute;a (Chen <i>et al.,</i> 2011). Para minimizar estos inconvenientes, una alternativa de cultivo es usar aguas residuales municipales, de la agricultura y la ganader&iacute;a, donde las microalgas pueden desarrollarse aprovechando los nutrientes en este tipo de descargas. Esta integraci&oacute;n permite: 1) tratar las aguas residuales; 2) obtener un efluente de alta calidad; 3) generar biomasa algal &uacute;til para producir biodi&eacute;sel o biog&aacute;s (Sydney <i>et</i> <i>al.,</i> 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hay estudios relacionados con sistemas basados en an&aacute;lisis desarrollados sobre el cultivo de microal&#45;gas de una sola especie y usando un medio enriquecido, a escala de laboratorio y piloto (Rawat <i>et al.,</i> 2011). Pero la evaluaci&oacute;n comparativa del cultivo de microalgas en aguas residuales con cultivos en un medio enriquecido desde una perspectiva de la productividad de biomasa, la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos para producir biodi&eacute;sel, as&iacute; como la mejora de la calidad del agua (mediante la remoci&oacute;n de nutrientes), no se ha analizado simult&aacute;neamente. Para cianobacterias hay investigaciones sobre cultivos enriquecidos y resulta t&eacute;cnicamente viable para la obtenci&oacute;n de biocombustible (Al&#45;Thani y Potts, 2012). La hip&oacute;tesis para este estudio fue que no hay diferencias significativas en la remoci&oacute;n de nutrientes ni en la capacidad de acumular l&iacute;pidos entre microalgas y cianobacterias. Por tanto, el objetivo del estudio fue evaluar comparativamente el potencial de dos especies de microalgas, <i>Chlorella vulgaris</i> y <i>Scenedesmus acutus,</i> y de una cianobacteria, <i>Arthrospira maxima,</i> as&iacute; como determinar su eficiencia de remoci&oacute;n de nutrientes y su capacidad para acumular l&iacute;pidos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Medios de cultivo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el crecimiento por separado de los tres microorganismos se emplearon tres medios de cultivo: 1) una descarga de agua residual cruda despu&eacute;s de un tratamiento de cribado y sedimentaci&oacute;n (ARC), 2) agua residual tratada en un sistema de lodos activados convencional (ART), y 3) agua enriquecida (AE) con nutrientes (fertilizante, NPK 20&#45;20&#45;20). ARC y ART fueron recolectadas de una planta de tratamiento de aguas residuales municipales convencional del tipo lodos activados, ubicada en la Ciudad Universitaria, UNAM (Ciudad de M&eacute;xico). El AE fue preparada usando agua destilada a la cual se le agreg&oacute; el fertilizante comercial hidrosoluble marca Peters&reg; NPK 20&#45;20&#45;20 (Scotts&#45;Sierra) en una concentraci&oacute;n de 1.5 g L<sup>&#45;1</sup>, equivalente a 300 mg L <sup>&#45;1</sup> de nitr&oacute;geno (4 % de nitr&oacute;geno amoniacal, 6 % de nitratos y 10 % de urea), 131 mg L<sup>&#45;1</sup> de fosfatos (P<sub>2</sub>O<sub>5</sub>), 250 mg L<sup>&#45;1</sup> de potasio (K2O) y trazas de magnesio, boro, cobre, hierro, manganeso, molibdeno y zinc (Trainor y Wilmes, 1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Microorganismos de prueba</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio se cultivaron dos especies de microalgas <i>(Chlorella vulgaris</i> y <i>Scenedesmus acutus)</i> y una cianobacteria <i>(Arthrospira m&aacute;xima).</i> La cepa de <i>C. vulgaris</i> usada se aisl&oacute; del Lago de Cuitzeo, estado de Michoac&aacute;n, <i>S. acutus</i> fue obtenida de los canales de Xochimilco, Ciudad de M&eacute;xico, y <i>A. m&aacute;xima</i> fue aislada del Lago Nabor Carrillo, Estado de M&eacute;xico.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cultivo de los microorganismos y dise&ntilde;o experimental</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los cultivos se llevaron a cabo en matraces Erlenmeyer de 2 L, en los cuales se adicion&oacute; 1 L de ARC, o ART o AE y se inocul&oacute; con 100 mL (700 mg L<sup>&#45;1</sup>, correspondiente a 3.5 x 10<sup>6</sup> c&eacute;lulas mL <sup>1</sup>) de cada una de las tres cepas por separado, generando nueve tratamientos (cada uno por triplicado). Los cultivos se mantuvieron con aireaci&oacute;n constante a una temperatura de 25 &plusmn; 5 &deg;C y bajo fotoperiodos de luz:oscuridad de 12 h:12 h. Para la iluminaci&oacute;n se usaron l&aacute;mparas fluorescentes T8 marca Phillips de 32 W, con una iluminancia de 37 klx.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento se realiz&oacute; hasta que los cultivos alcanzaron la fase estacionaria en ARC y ART (a los 16 d), debido a que en esta fase los microorganismos realizan la mayor acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos (Mansour <i>et al.,</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">of each of the three strains separately, generating nine treatments (each in triplicate). Cultures were maintained with constant aeration at a temperature of 25 &plusmn; 5 &deg;C and under photoperiods of light: dark 12 h:12 h. For lighting, Philips T8 32W fluorescent lamps were used, with an illuminance of 37 klx.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The growth was performed until the cultures reached stationary phase in RWW and TWW (at 16 d), because in this phase the microorganisms do most of the lipid accumulation (Mansour <i>et al,</i> 2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Eficiencia de remoci&oacute;n de nutrientes</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la calidad del agua y evaluar la remoci&oacute;n de nutrientes antes y despu&eacute;s del periodo de cultivo, se analiz&oacute; el contenido de f&oacute;sforo total y de nitr&oacute;geno en forma de nitratos, org&aacute;nico y amoniacal, as&iacute; como la demanda qu&iacute;mica de ox&iacute;geno (DQO). Todos los an&aacute;lisis fueron realizados siguiendo los protocolos descritos en APHA (2005).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n del crecimiento de los microorganismos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El crecimiento de la biomasa se determin&oacute; cada dos d&iacute;as por gravimetr&iacute;a. Las muestras fueron homogeneizadas por medio de un agitador magn&eacute;tico (Thermolyne, modelo Cimarec&reg; 2). Despu&eacute;s se tom&oacute; una muestra de 10 mL, se filtr&oacute; (filtro Millipore, de 0.045 <i>&micro;</i>m) para separar la biomasa del medio de cultivo y fueron secadas (en una estufa a 60 &deg;C) para determinar el peso seco.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tasa de aumento de biomasa por d&iacute;a <i>(r),</i> basada en la biomasa en peso seco (en todos los experimentos), fue calculada con la ecuaci&oacute;n exponencial de Krebs (1985):</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><i><img src="/img/revistas/agro/v48n3/a3for1.jpg"></i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde, ln es el logaritmo natural, <i>N<sub>0</sub></i> corresponde a la densidad de la poblaci&oacute;n inicial y <i>N<sub>t</sub></i> equivale a la densidad despu&eacute;s del tiempo <i>t</i> (d&iacute;as). Para cada r&eacute;plica se consideraron los primeros sietes d&iacute;as de cultivo, correspondientes a la fase exponencial de crecimiento (Dumont <i>et al.,</i> 1995).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Separaci&oacute;n de la biomasa del medio de cultivo</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La separaci&oacute;n de la biomasa se realiz&oacute; mediante un m&eacute;todo de coagulaci&oacute;n&#151;floculaci&oacute;n usando quitosano (Sigma&#45;Aldrich&reg;) en una concentraci&oacute;n de 20 mg L<sup>&#45;1</sup> (Divakaran y Pillai, 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de los l&iacute;pidos de la biomasa</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los l&iacute;pidos fueron extra&iacute;dos de la biomasa seca usando una mezcla de cloroformo:metanol (2:1) (J.T. Baker) y un sonicador Fisher Scientific 60 Sonic Dismembrator a 25 W (Pittsburgh, Pensilvania, USA) durante 1 min. Despu&eacute;s se filtr&oacute; la muestra con un filtro GF/F Whatman de 0.7 <i>&micro;</i>m y en el filtrado se agreg&oacute; una disoluci&oacute;n de NaCl (J.T. Baker) al 0.9 % y se recolect&oacute; la fase org&aacute;nica. Esta fase org&aacute;nica se evapor&oacute; usando un rotavapor marca B&uuml;chi R&#45;124 (Flawil, Suiza) con un ba&ntilde;o de agua caliente B&uuml;chi waterbath B&#45;480 (Flawil, Suiza) (Moazami <i>et al,</i> 2011; Zhou <i>et al.,</i> 2012). Los remanentes luego de la evaporaci&oacute;n del disolvente fueron nuevamente extra&iacute;dos con hexano (J.T. Baker) y filtrados usando un filtro GF/F Whatman de 0.7 <i>&micro;</i>m. El contenido de l&iacute;pidos se determin&oacute; por gravimetr&iacute;a.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>C&aacute;lculo te&oacute;rico de la producci&oacute;n de biodi&eacute;sel</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La producci&oacute;n del biodi&eacute;sel fue calculada te&oacute;ricamente con base en la eficiencia de la reacci&oacute;n de transesterificaci&oacute;n (transformaci&oacute;n de los l&iacute;pidos en biodi&eacute;sel) equivalente a 87.7 %, multiplicada por la concentraci&oacute;n de l&iacute;pidos extraida de la biomasa de cada microorganismo (Sacrist&aacute;n <i>et al.,</i> 2013).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con los resultados obtenidos se realiz&oacute; un ANDEVA y las medias de los tratamientos se compararon con la prueba de Tukey (p&lt;0.05), usando el programa JMP v.10 (SAS Institute, Inc.). Todas las determinaciones se realizaron por triplicado y los resultados se presentan como valores medios con su desviaci&oacute;n est&aacute;ndar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Crecimiento y productividad de la biomasa</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el cultivo de <i>C. vulgaris</i> (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3f1.jpg" target="_blank">Figura 1A</a>) con ARC se obtuvo una productividad de biomasa seca (69.8 mg L<sup>&#45;1</sup> d<sup>&#45;1</sup>) mayor que en el medio enriquecido (AE) (53.8 mg L<sup>&#45;1</sup> d <sup>&#45;1</sup>) <i>y</i> en ART (50.5 mg L<sup>&#45;1</sup> d <sup>&#45;1</sup>) y en esta &uacute;ltima se produjo la cantidad menor de biomasa. En estudios realizados en laboratorio en condiciones controladas, la productividad de biomasa de <i>C. vulgaris</i> vari&oacute; de 170 a 200 mg L<sup>&#45;1</sup> d <sup>&#45;1</sup> en cultivos usando un medio enriquecido (Rodolfi <i>et al.,</i> 2009). Dicha productividad es 2.7 veces mayor que la encontrada en los cultivos en ARC.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La productividad mayor de biomasa de <i>S. acutus</i> (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3f1.jpg" target="_blank">Figura 1B</a>) se obtuvo en ARC (61.5 mg L<sup>&#45;1</sup> d <sup>&#45;1</sup>), superior a las otras dos calidades de agua. Esto puede deberse a que en el agua residual la microalga crece de forma heter&oacute;trofa y mix&oacute;trofa (Park <i>et al.,</i> 2011), pero en AE creci&oacute; s&oacute;lo de manera aut&oacute;trofa (debido a que la &uacute;nica fuente de carbono fue CO2). La productividad m&aacute;xima de <i>S. acutus</i> en el presente estudio fue 74 % menor que la reportada por Rodolfi <i>et al.</i> (2009), de 210 a 260 mg L<sup>&#45;1</sup> d <sup>&#45;1</sup>, y <i>Scenedesmus</i> sp. fue cultivada en un medio enriquecido. Sin embargo, Kim <i>et al.</i> (2007) reportan una productividad de 6 mg L <sup>1</sup> d <sup>1</sup> para la misma especie cultivada en orina fermentada de cerdos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La productividad de biomasa en los cultivos con <i>A. maxima</i> en ARC y AE (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3f1.jpg" target="_blank">Figura 1C</a>) fueron muy similares, 64.6 y 62.6 mg L<sup>&#45;1</sup> d <sup>&#45;1</sup>, respectivamente, mientras que, como en los casos anteriores, el cultivo en ART present&oacute; el crecimiento menor. Dichos valores fueron inferiores comparados con productividades de biomasa de 210 mg L<sup>&#45;1</sup> d <sup>&#45;1</sup> (Gouveia y Oli&#45;veira, 2009) y 250 mg L<sup>&#45;1</sup> d <sup>&#45;1</sup> (Griffiths y Harrison, 2009), ambas con cultivos en laboratorio y usando un medio enriquecido.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tasa de incremento de biomasa por d&iacute;a fue diferente en los tres microorganismos y esta variaci&oacute;n dependi&oacute; del tipo de medio de cultivo (<a href="#a3f2">Figura 2</a>). La especie con los valores m&aacute;s altos (de 0.20 a 0.27) fue <i>C. vulgaris,</i> mientras que las tasas para <i>S. acutus</i> y <i>A. maxima</i> fueron similares (entre 0.06 y 0.14). Este comportamiento es habitual en las clorofitas como <i>C. vulgaris,</i> las cuales presentan un r&aacute;pido crecimiento (estrategia r) en comparaci&oacute;n con las cianobacterias <i>(A. maxima)</i> cuyo crecimiento es relativamente lento (estrategia K) (Reynolds 1988; Jensen <i>et al.,</i> 1994). De acuerdo con Ogawa y Aiba (1981), en mixotrofia la tasa de crecimiento para <i>C. vulgaris</i> siempre es mayor que para <i>S. acutus,</i> y esta &uacute;ltima es muy similar a la de <i>A. maxima</i> (Bai <i>et al.,</i> 2014). Adem&aacute;s, el tama&ntilde;o de <i>S. acutus</i> (10&plusmn;0.5 <i>&micro;</i>m) es dos veces mayor que el de <i>C. vulgaris</i> (5.5&plusmn;0.5 <i>&micro;</i>m), lo cual repercute en la tasa de crecimiento (Ogawa y Aiba, 1981). Estad&iacute;sticamente, la tasa de incremento de la poblaci&oacute;n (r) de las tres especies separadas, en grupos y en conjuntos, es significaticamente diferente por los diferentes medios de cultivo (p&le; 0.001, ANOVA de una v&iacute;a, <a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). Pero la prueba de Tukey mostr&oacute; que la tasa de crecimiento poblacional los separa en s&oacute;lo dos grupos (<a href="#a3f2">Figura 2</a>). Adem&aacute;s, en el medio de cultivo con AE se obtuvieron las tasas promedio m&aacute;s altas de incremento de biomasa para los tres microorganismos analizados (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a> y <a href="#a3f2">Figura 2</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a3f2"></a>    <br> 	<img src="/img/revistas/agro/v48n3/a3f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las tasas de incremento de biomasa para <i>C. vulgaris</i> en ARC y ART coinciden con los intervalos (0.25&#45;0.3 d<sup>&#45;1</sup>) encontrados por Lau <i>et al.</i> (1995) y He <i>et al.</i> (2013). En cambio, para <i>S. acutus</i> la diferencia entre este estudio y el de Shama&#45;la <i>et al.</i> (1982) (0.74 d<sup>&#45;1</sup> en agua tratada) y Doria <i>et al.</i> (2012) (0.31 d<sup>&#45;1</sup> en agua enriquecida y 0.21 d<sup>&#45;1</sup> en agua residual) fue 60 % mayor. La cia&#45;nobacteria <i>A. maxima</i> present&oacute; una diferencia 50 % mayor respecto del estudio realizado por Vonshak (2003) (0.4 d<sup>&#45;1</sup> en agua residual). Pero las tasas de incremento de biomasa son aparentemente simples de medir, tienen la desventaja de que pueden generar incertidumbre respecto a la diferencias de bio&#45;masa inicial, el n&uacute;mero de c&eacute;lulas o el peso total. De acuerdo con Flynn (2006) y Flynn <i>et al.</i> (2010), las tasas de incremento representan la din&aacute;mica de los cultivos de las microalgas, siempre que sean estables.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Eficiencia de remoci&oacute;n de nutrientes</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En todos los casos los cultivos en AE presentaron porcentajes de remoci&oacute;n inferiores al 50 % para fosfato, nitratos y nitr&oacute;geno org&aacute;nico y amoniacal (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Esto se debi&oacute; principalmente a que los cultivos se interrumpieron cuando los microorganismos llegaron a su fase estacionaria en el agua residual (ARC y ART) pero AE segu&iacute;a en fase logar&iacute;tmica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La remoci&oacute;n mayor del f&oacute;sforo se alcanz&oacute; en ARC (m&aacute;s del 60 % en todos los casos). Lo mismo ocurri&oacute; con la degradaci&oacute;n de los nitratos y el nitr&oacute;geno org&aacute;nico y amoniacal, aunque la reducci&oacute;n en ARC fue muy similar a la alcanzada en ART (m&aacute;s de 90 % en <i>C. vulgaris</i> y cercano a 70 % en <i>A. maxima)</i> (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los cultivos con ARC hubo una alta remoci&oacute;n de compuestos qu&iacute;micamente oxidables medidos como DQO (77 %), lo que indica un crecimiento bajo condiciones heter&oacute;trofas (Park <i>et al.,</i> 2011). El medio enriquecido no conten&iacute;a carbono org&aacute;nico, por lo cual el valor de DQO obtenido para este cultivo se debi&oacute; a otros tipo de compuestos oxidables, como los nitrogenados. La disminuci&oacute;n del valor de DQO en AE fue ligeramente superior al alcanzado en ART para <i>C. vulgaris</i> y <i>A. maxima</i> (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos sigui&oacute; el mismo patr&oacute;n en todos los casos y los cultivos en ARC mostraron los porcentajes mayores de acumulaci&oacute;n y los de ART tuvieron los resultados m&aacute;s desfavorables (<a href="#a3c3">Cuadro 3</a>). De acuerdo con esos resultados, la prueba con <i>S. acutus</i> y ARC alcanz&oacute; el mayor porcentaje de acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos y fue significativamente diferente (p&le;0.05).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="a3c3"></a>    <br> 	<img src="/img/revistas/agro/v48n3/a3c3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En experimentos con <i>C. vulgaris</i> el contenido de l&iacute;pidos var&iacute;a de 18.4 a 19.2 % con una productividad de biomasa de 0.17 a 0.20 g L<sup>&#45;1</sup> d<sup>&#45;1</sup> (Rodolfi <i>et al.,</i> 2009) o un contenido de l&iacute;pidos de 42 % con 0.69 g L<sup>&#45;1</sup> de biomasa (Feng <i>et al.,</i> 2011). En ambos casos el cultivo se realiz&oacute; en reactores de laboratorio bajo condiciones controladas (en el primero usando un medio de cultivo enriquecido y en el segundo agua residual artificial). En el primer experimento, el contenido de l&iacute;pidos fue menor al obtenido en el presente estudio usando ARC (22.4 %), pero la productividad de biomasa fue mayor a la alcanzada en esta prueba (0.09 g L<sup>&#45;1</sup> d<sup>&#45;1</sup>). En el segundo experimento, el contenido de l&iacute;pidos fue m&aacute;s alto que en el presente estudio, pero el contenido de biomasa fue menor (1.15 g L<sup>&#45;1</sup>), con lo cual la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos muy similar en ambos casos (0.27 g L<sup>&#45;1</sup>) (<a href="#a3c3">Cuadro 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de l&iacute;pidos en <i>Scenedesmus</i> sp. var&iacute;a de 20 a 21 % (Gong y Jiang, 2011) y de 19.6 a 21.1 % (Rodolfi <i>et al.,</i> 2009), en cultivos en laboratorio y condiciones controladas. Estos resultados fueron similares a los de cultivos de <i>S. acutus</i> utilizando AE, pero menores a los obtenidos en ARC. Rawat <i>et</i> <i>al.</i> (2011) usaron microalgas cultivadas en agua residual artificial y el contenido de l&iacute;pidos fue 12.8 %, similar al del presente estudio para ART, pero bastante menor que lo encontrado para ARC (<a href="#a3c3">Cuadro 3</a>). Para los cultivos de <i>C. vulgaris</i> en ARC y de <i>S. acutus</i> en AE, los porcentajes de l&iacute;pidos fueron similares entre si (p&le;0.05).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los contenidos de l&iacute;pidos de <i>A. maxima</i> empleando AE y ARC fueron superiores a los reportados por Gouveia y Oliveira (2009) y Verma <i>et al.</i> (2010) donde los valores fluctuaron entre 4 a 9 % y 6 a 7 %, respectivamente, para cultivos desarrollados en laboratorio y bajo condiciones controladas. Sin embargo, en los cultivos de <i>A. maxima</i> en ART se obtuvo el menor porcentaje de l&iacute;pidos (7.5 %), y fue estad&iacute;sticamente diferente a los dem&aacute;s (<a href="#a3c3">Cuadro 3</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>C&aacute;lculo te&oacute;rico de la producci&oacute;n de biodi&eacute;sel</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con la cantidad de biomasa y el contenido de l&iacute;pidos obtenidos, con cada microalga y la ciano&#45;bacteria en los diferentes medios de cultivo (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>), se puede calcular la concentraci&oacute;n de biodi&eacute;sel te&oacute;rica. Bajo este supuesto, se observa que para los tres microorganismos se obtendr&iacute;a una mayor cantidad de biodi&eacute;sel al realizar los cultivos en ARC, donde existe un crecimiento hete&#45;r&oacute;trofo que conlleva a la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>). Para AE, la cantidad de biodi&eacute;sel ser&iacute;a 34 % menor que en ARC, debido a que el crecimiento de los microorganismos es aut&oacute;trofo (sin estr&eacute;s), por lo que la acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos es menor (Zhou <i>et al.,</i> 2012). La cantidad m&aacute;s baja de biodi&eacute;sel se obtendr&iacute;a con los cultivos en ART (bajo contenido de carbono), siendo este el medio con la menor concentraci&oacute;n de nutrientes (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Con los cultivos de <i>S. acutus</i> en ARC se alcanzar&iacute;a la mejor producci&oacute;n de biodi&eacute;sel (244.57 mg L <sup>1</sup>), mostrando ser una materia prima adecuada para este fin (<a href="/img/revistas/agro/v48n3/a3c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tasa de crecimiento, la remoci&oacute;n de nutrientes y la capacidad de acumular l&iacute;pidos entre las microalgas y la cianobacteria estudiadas fueron diferentes. En un mismo lapso de tiempo, los cultivos de <i>C. vulgaris, S. acutus</i> y <i>A. maxima</i> en agua residual cruda (ARC) mostraron mejores resultados en el incremento de biomasa y remoci&oacute;n de nutrientes que en el agua enriquecida, por lo cual el uso de ARC como medio para cultivar estas especies es m&aacute;s viable econ&oacute;micamente. Asimismo, la microalga <i>S. acutus</i> present&oacute; una mayor acumulaci&oacute;n de l&iacute;pidos al ser cultivada en ARC, lo cual fue superior al de las especies <i>C. vulgaris</i> y <i>A. maxima.</i> El incremento de biomasa est&aacute; directamente relacionado con la concentraci&oacute;n de nutrimentos, pero no con la concentraci&oacute;n de los l&iacute;pidos en los microorganismos analizados.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los c&aacute;lculos te&oacute;ricos indican que la mayor producci&oacute;n de biodi&eacute;sel se puede alcanzar en los cultivos con ARC (para los tres microorganismos) y <i>S. acutus</i> tiene el valor m&aacute;s elevado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen el apoyo recibido a trav&eacute;s de los proyectos: PAPIIT IT103312, PAIP 4194&#45;14 y FQ&#45;10&#45;008, para la realizaci&oacute;n de este trabajo, as&iacute; como por la beca recibida por uno de ellos (MSA) para realizar sus estudios de Maestr&iacute;a en Ingenier&iacute;a Ambiental en el Posgrado de Ingenier&iacute;a de la UNAM. Asimismo, se hace patente el apoyo proporcionado por el Dr. Eberto Novelo del Laboratorio de Algas Continentales, Ecolog&iacute;a y Taxonom&iacute;a de la Facultad de Ciencias de la UNAM, por la donaci&oacute;n de la cepa de la cianobacteria utilizada en este trabajo. Finalmente, se agradece al Dr. Javier Cruz y al M.C. Luciano Hern&aacute;ndez de la Facultad de Qu&iacute;mica de la UNAM, por su valiosa asistencia t&eacute;cnica.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al&#45;Thani, R. F., and M. Potts. 2012. Cyanobacteria, oil&#45;and cyanofuel. <i>In:</i> Whitton, B. A. (ed). Ecology of Cyanobacteria II: Their Diversity in Space and Time, Springer. pp: 427&#45;440.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586062&pid=S1405-3195201400030000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Antoni, D., V. V. Zverlov, and W. H. Schwarz. 2007. Biofuels from microbes. Appl. Microbiol. Biotechnol. 77: 23&#45;35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586064&pid=S1405-3195201400030000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">APHA, American Public Health Association. 2005. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. USA, 21 edici&oacute;n. 1368 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586066&pid=S1405-3195201400030000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bai, R., M. T. Gutierrez&#45;Wing, I. I. Negulescu, and K. A. Rusch. 2014. Effect of organic carbon, C: N ratio and light on the growth and lipid productivity of microalgae/cyanobacteria coculture. Eng. Life Sci. 14: 47&#45;56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586068&pid=S1405-3195201400030000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen, C. Y., K. L. Yeh, R. Aisyah, D. J. Lee, and J. S. Chang. 2011. Cultivation, photobioreactor design and harvesting of microalgae for biodiesel production: A critical review. Bioresource Technol. 102: 71&#45;81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586070&pid=S1405-3195201400030000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chisti, Y. 2007. Biodiesel from microalgae. Biotechnol. Advan. 25: 294&#45;306.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586072&pid=S1405-3195201400030000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Crutzen, P. J., A. R. Mosier, K. A. Smith, and W. Winiwarter. 2008. N2O release from agrobiofuel production negates global warming reduction by replacing fossil fuels. Atmospheric Chem. Physics Discuss. 8: 389&#45;395.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586074&pid=S1405-3195201400030000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --> Divakaran, R., and V. N. Pillai. 2002. Flocculation of algae using chitosan. J. Appl. Phycol. 14: 419&#45;422.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586075&pid=S1405-3195201400030000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Doria, E., P. Longoni, L. Scibilia, N. Iazzi, R. Cella, and E. Nielsen. 2012. Isolation and characterization of a <i>Scenedesmus acutus</i> strain to be used for bioremediation of urban wastewater. J. Appl. Phycol. 24: 375&#45;383.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586077&pid=S1405-3195201400030000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dumont, H. J., S. S. Sarma, and A. J. Ali. 1995. Laboratory studies on the population dynamics of <i>Anuraeopsis fissa</i> (Rotifera) in relation to food density. Freshwater Biol. 33: 39&#45;46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586079&pid=S1405-3195201400030000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Feng, Y., C. Li, and D. Zhang. 2011. Lipid production of <i>Chlorella vulgaris</i> cultured in artificial wastewater medium. Bioresource Technol. 102: 101&#45;105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586081&pid=S1405-3195201400030000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Flynn, K. J., J. A. Raven, T. Alwyn, V. Rees, Z. Finkel, A. Quigg, and J. Beardall. 2010. Is the growth rate hypothesis applicable to microalgae? J. Phycol. 46: 1&#45;12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586083&pid=S1405-3195201400030000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gong, Y., and M. Jiang. 2011. Biodiesel production with microalgae as feedstock: from strains to biodiesel. Biotechnol. Lett. 33: 1269&#45;1284.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586085&pid=S1405-3195201400030000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gouveia, L., and A. C. Oliveira. 2009. Microalgae as a raw material for biofuels production. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 36: 269&#45;274.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586087&pid=S1405-3195201400030000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Griffiths, M. J., and S. T Harrison. 2009. Lipid productivity as a key characteristic for choosing algal species for biodiesel production. J. Appl. Phycol. 21: 493&#45;507.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586089&pid=S1405-3195201400030000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">He, P. J., B. Mao, C. M. Shen, L. M. Shao, D. J. Lee, and J. S. Chang. 2013. Cultivation of <i>Chlorella vulgaris</i> on wastewater containing high levels of ammonia for biodiesel production. Biores. Technol. 129: 177&#45;181.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586091&pid=S1405-3195201400030000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jensen, J. P., E. Jeppesen, K. Olrik, and P. Kristensen. 1994. Impact of nutrients and physical factors on the shift from cyanobacterial to chlorophyte dominance in shallow Danish lakes. Can. J. Fish. Aquatic Sci. 51: 1692&#45;1699.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586093&pid=S1405-3195201400030000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kim, M. K., J. W. Park, C. S. Park, S. J. Kim, K. H. Jeune, M. U. Chang, and J. Acreman. 2007. Enhanced production of <i>Scenedesmus</i> spp. (green microalgae) using a new medium containing fermented swine wastewater. Biores. Technol. 98: 2220&#45;2228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586095&pid=S1405-3195201400030000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Krebs, C. J. 1985. Ecology: The Experimental Analysis of Distribution and Abundance. 3rd edition, Harper and Row, New Cork.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586097&pid=S1405-3195201400030000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lau, P. S., N. F. Tam, and Y. S. Wong. 1995. Effect of algal density on nutrient removal from primary settled wastewater. Environ. Poll. 89: 59&#45;66.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586099&pid=S1405-3195201400030000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mansour, M. P., D. M. Frampton, P. D. Nichols, J. K. Volkman, and S. I. Blackburn. 2005. Lipid and fatty acid yield of nine stationary&#45;phase microalgae: applications and unusual C24&#45;C28 polyunsaturated fatty acids. J. Appl. Phycol. 17: 287&#45;300.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586101&pid=S1405-3195201400030000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Moazami, N., R. Ranjbar, A. Ashori, M. Tangestani, and A. S. Nejad. 2011. Biomass and lipid productivities of marine microalgae isolated from the Persian Gulf and the Qeshm Island. Biomass Bioener. 35: 1935&#45;1939.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586103&pid=S1405-3195201400030000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ogawa, T., and S. Aiba. 1981. Bioenergetic analysis of mixotrophic growth in <i>Chlorella vulgaris</i> and <i>Scenedesmus</i> <i>acutus.</i> Biotechnol. Bioeng. 23: 1121&#45;1132.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586105&pid=S1405-3195201400030000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Park, J. B. K., R. J. Craggs, and A. N. Shilton. 2011. Wastewater treatment high rate algal ponds fro biofuel production. Bioresource Technol. 102: 35&#45;42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586107&pid=S1405-3195201400030000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rawat, I., R. Ranjith K., T. Mutanda, and F. Bux. 2011. Dual role of microalgae: Phycoremediation of domestic wastewater and biomass production for sustainable biofuels production. Appl. Energy 88: 3411&#45;3424.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586109&pid=S1405-3195201400030000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Reynolds, C. S. 1988. Functional morphology and adaptive strategies of freshwater phytoplankton. <i>In:</i> Sandgren, C. D. (ed). Growth and Reproductive Strategies of Freshwater Phytoplankton. Cambridge University Press, Cambridge. pp: 388&#45;433.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586111&pid=S1405-3195201400030000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodolfi, L., G. Chini Z., N. Bassi, G. Padovani, N. Biondi, G. Bonini, and M. R. Tredici. 2009. Microalgae for oil: strain selection, induction of lipid synthesis and outdoor mass cultivation in a low&#45;cost photobioreactor. Biotechnol. Bioeng. 102: 100&#45;112.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586113&pid=S1405-3195201400030000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sacrist&aacute;n, M., V. M. Luna&#45;Pabello, E. Cadena, and E. Ortiz. 2013. Green microalga <i>Scenedesmus acutus</i> grown on municipal wastewater to couple nutrient removal with lipid accumulation for biodiesel production. Bioresource Technol. 146: 744&#45;748.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586115&pid=S1405-3195201400030000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shamala, T. R., F. Drawert, and G. Leupold. 1982. Studies on Scenedesmus acutus growth. I effect of autotrophic and mixotrophic conditions on the growth of <i>Scenedesmus acutus.</i> Biotechnol. Bioeng. 24: 1287&#45;1299.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586117&pid=S1405-3195201400030000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SENER, Secretar&iacute;a de Energ&iacute;a. 2013. Estrategia nacional de energ&iacute;a 2013&#45;2027. M&eacute;xico, D.F.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586119&pid=S1405-3195201400030000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sydney, E. B., T. E. da Silva, A. Tokarski, A. C. Novak, J. C. de Carvalho, A. L. Woiciecohwski, C. Larroche, and C. R. Soccol. 2011. Screening of microalgae with potential for biodiesel production and nutrient removal from treated domestic sewage. Appl. Energy 88: 3291&#45;3294.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586121&pid=S1405-3195201400030000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Trainor, F. R., and G. M. Wilmes. 1994. Using commercial fertilizers as algal media. The Am. Biol. Teacher 56: 361&#45;363.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=586123&pid=S1405-3195201400030000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Verma, N. M., S. Mehrotra, A. Shukla, and B. N. Mishra. 2010. Prospective of biodiesel production utilizing microalgae as the cell factories: A comprehensive discussion. Afr. J. 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