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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Contenido de fenoles solubles e insolubles en las estructuras del grano de maíz y su relación con propiedades físicas]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Content of soluble and insoluble phenols in the structures of corn grain and their relationship with physical properties]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Instituto Nacional de Investigaciones forestales, Agrícolas y Pecuarias (INIFAP) Programa de Maíz ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The study of phenolic compounds is important for the functions of some of them in plant defense mechanisms plant against pathogen attack and by its antioxidant, antimutagenic and anticarcinogenic properties. The objectives of this study were to determine soluble phenol content (FS) and insoluble (FI) in the pericarp, endosperm and germ of the corn grain (Zea mays) and its correlation with the physical properties of the grain. This work was done with two experimental genotypes (H and H-161) grown in different locations and three commercial maizes (Oso, Sable and Leopardo). The FS were analyzed (free, glycosylated and esterified) as well as FI using the method of Folin-Ciocalteu. The physical variables of the grain were: hectolitric weight (PH), flotation index (FI), grain color (CG) and weight of 100 grains (PCG). The content of FS was higher in the germ, followed by the pericarp and endosperm. Within this type of phenols, free phenols prevailed in the three structures. The highest content of FI was found in the pericarp, followed by the germ and endosperm. There was statistical difference (p<0.01) for the content of FS and FI among the maize types studied. The free and esterified phenol content of the endosperm showed a significant correlation (p<0.01) with the variables related to the grain hardness (PH and IF), while the pericarp FL showed a positive correlation with the degree of creaminess of the grain. The PCG was positively correlated (p<0.05) with the pericarp FI and negatively with the endosperm glycosylated phenols. There is a differential concentration of phenols among the grain structures, and some of them, like the esterified phenols are associated with their hardness.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Fitociencia</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="4">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Contenido de fenoles solubles e insolubles en las estructuras del grano de ma&iacute;z y su relaci&oacute;n con propiedades f&iacute;sicas</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b><font size="3">Content of soluble and insoluble phenols in the structures of corn grain and their relationship with physical properties</font></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>M. Luisa Cabrera&#150;Soto<sup>1</sup>, Yolanda Salinas&#150;Moreno<sup>2*</sup>, Gustavo A. Vel&aacute;zquez&#150;Cardelas<sup>2</sup>, Edgar Espinosa Trujillo<sup>2</sup></b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>1</sup> Ingenier&iacute;a Agroindustrial. Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. 56230. Chapingo, Estado de M&eacute;xico. </i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>2</sup> Programa de Ma&iacute;z. Instituto Nacional de Investigaciones forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP). 56230. Chapingo, Estado de M&eacute;xico. *Autor responsable:</i> (<a href="mailto:yolysamx@yahoo.com">yolysamx@yahoo.com</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Julio, 2008.    <br> Aprobado: Mayo, 2009.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estudio de los compuestos fen&oacute;licos es importante por las funciones de algunos de ellos en los mecanismos de defensa de la planta contra el ataque de pat&oacute;genos, as&iacute; como por sus propiedades antioxidantes, antimutag&eacute;nicas y anticancer&iacute;genas. Los objetivos de este trabajo fueron determinar el contenido de fenoles solubles (FS) e insolubles (FI) en el pericarpio, endospermo y germen del grano de ma&iacute;z (<i>Zea mays</i>) y su correlaci&oacute;n con las propiedades f&iacute;sicas del grano. Se trabaj&oacute; con dos genotipos experimentales (HE y H&#150;161) cultivados en diferentes localidades y tres ma&iacute;ces comerciales (Oso, Sable y Leopardo). Se analizaron los FS (libres, glucosilados y esterificados) y FI mediante el m&eacute;todo de Folin&#150;Ciocalteu. Las variables f&iacute;sicas del grano fueron: peso hectol&iacute;trico (PH), &iacute;ndice de flotaci&oacute;n (IF), color de grano (CG) y peso de 100 granos (PCG). El contenido de FS fue m&aacute;s elevado en el germen, seguido del pericarpio <i>y </i>endospermo. Dentro de este tipo de fenoles, en las tres estructuras dominaron los fenoles libres. El mayor contenido de FI se present&oacute; en el pericarpio, seguido del germen <i>y </i>endospermo. Existi&oacute; diferencia estad&iacute;stica (p<u>&lt;</u>0.01) para el contenido de FS y FI, entre los ma&iacute;ces estudiados. El contenido de fenoles libres <i>y </i>esterificados del endospermo present&oacute; correlaci&oacute;n significativa (p<u>&lt;</u>0.01) con las variables relacionadas con la dureza del grano (PH e IF), en tanto que los FL del pericarpio mostraron una correlaci&oacute;n positiva con el grado de cremosidad del grano. El PCG estuvo correlacionado positivamente (p<u>&lt;</u>0.05) con los FI del pericarpio <i>y </i>de manera negativa con los fenoles glucosilados del endospermo. Existe una concentraci&oacute;n diferencial de fenoles entre las estructuras del grano <i>y </i>algunos de ellos como los fenoles esterificados est&aacute;n asociados con su dureza.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><i>Zea mays, </i>color, compuestos fen&oacute;licos, dureza, grano.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The study of phenolic compounds is important for the functions of some of them in plant defense mechanisms plant against pathogen attack and by its antioxidant, antimutagenic and anticarcinogenic properties. The objectives of this study were to determine soluble phenol content (FS) and insoluble (FI) in the pericarp, endosperm and germ of the corn grain (<i>Zea mays</i>) and its correlation with the physical properties of the grain. This work was done with two experimental genotypes (H and H&#150;161) grown in different locations and three commercial maizes (Oso, Sable and Leopardo). The FS were analyzed (free, glycosylated and esterified) as well as FI using the method of Folin&#150;Ciocalteu. The physical variables of the grain were: hectolitric weight (PH), flotation index (FI), grain color (CG) and weight of 100 grains (PCG). The content of FS was higher in the germ, followed by the pericarp and endosperm. Within this type of phenols, free phenols prevailed in the three structures. The highest content of FI was found in the pericarp, followed by the germ and endosperm. There was statistical difference (p<u>&lt;</u>0.01) for the content of FS and FI among the maize types studied. The free and esterified phenol content of the endosperm showed a significant correlation (p<u>&lt;</u>0.01) with the variables related to the grain hardness (PH and IF), while the pericarp FL showed a positive correlation with the degree of creaminess of the grain. The PCG was positively correlated (p<u>&lt;</u>0.05) with the pericarp FI and negatively with the endosperm glycosylated phenols. There is a differential concentration of phenols among the grain structures, and some of them, like the esterified phenols are associated with their hardness.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Zea mays, </i>color, phenolic compounds, hardness, grain.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los fenoles son compuestos qu&iacute;micos ampliamente distribuidos en las plantas como producto de su metabolismo secundario, algunos de los cuales son indispensables para su funcionamiento y otros son &uacute;tiles en los mecanismos de defensa bajo situaciones de tensi&oacute;n (Kim <i>et al, </i>2003) y contra el ataque de organismos pat&oacute;genos (Bakan <i>et al., </i>2003). Tambi&eacute;n se vincula el consumo de estos fitoqu&iacute;micos con beneficios a la salud, debido a sus propiedades antioxidantes (Gallardo <i>et al., </i>2006) y anticancer&iacute;genas (Zhaohui y Moghadasian, 2008).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cereales los fenoles se agrupan en solubles e insolubles o ligados. En el primer grupo est&aacute;n los fenoles libres, glucosilados y esterificados que se ubican en mayor cantidad en las capas perif&eacute;ricas de los granos (pericarpio, testa y c&eacute;lulas de aleurona), mientras que su concentraci&oacute;n es menor en el endospermo (Yu <i>et al., </i>2001). El ma&iacute;z (<i>Zea mays</i>) contiene m&aacute;s fenoles totales y mayor poder antioxidante que cereales como trigo, arroz y avena (Adorn y Liu, 2002). El principal fenol es el &aacute;cido fer&uacute;lico, que representa alrededor de 85 % de los fenoles totales y se concentra en el pericarpio del grano en forma libre o esterificado a las heteroxilanas que constituyen la hemicelulosa de la pared celular (De la Parra <i>et al, </i>2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aunque hay trabajos sobre el contenido de fenoles en el grano entero de ma&iacute;z (Sosulski <i>et al., </i>1982; Del Pozo&#150;Insfran <i>et al, </i>2006; De la Parra <i>et al, </i>2007), pocos cuantifican estos compuestos en las estructuras del grano, a pesar de que su presencia tiene relevancia con propiedades particulares: el contenido de fenoles en el germen del grano de ma&iacute;z est&aacute; asociado con la tolerancia a <i>Fusarium </i>spp (Bakan <i>et al, </i>2003); los fenoles del endospermo participan en el desarrollo del color gris&aacute;ceo en masa y tortilla (Salinas <i>et al, </i>2007) y los del pericarpio se relacionan con la tolerancia a plagas de almac&eacute;n (Arnason <i>et al, </i>1992; Sen <i>et al, </i>1994). Trabajos recientes relacionan la dureza del grano de ma&iacute;z con el contenido de fenoles (Bily <i>et al, </i>2004; Del Pozo&#150;Insfran <i>et al, </i>2006), pero se desconoce si otras propiedades f&iacute;sicas del grano est&aacute;n asociadas con el contenido de estos compuestos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por tanto, el prop&oacute;sito de la presente investigaci&oacute;n fue determinar el contenido de fenoles solubles e insolubles en el pericarpio, endospermo y germen, y su correlaci&oacute;n con las propiedades f&iacute;sicas del grano de ma&iacute;z.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS </b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material gen&eacute;tico</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El estudio de los compuestos fen&oacute;licos en las estructuras del grano se efectu&oacute; con dos h&iacute;bridos de ma&iacute;z de grano blanco de cruza tri&#150;lineal (HE y H&#150;161) proporcionados por el Programa de Mejoramiento Gen&eacute;tico de este cereal en el Campo Experimental del Valle de M&eacute;xico del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (CEVAMEX&#150;INIFAP), cultivados durante el ciclo P&#150;V 2006 en tres localidades y los h&iacute;bridos Oso, Sable y Leopardo de la empresa Monsanto, cultivados a nivel comercialmente en los Valles Altos del estado de Zacatecas durante el ciclo P&#150;V 2006.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas del grano se realiz&oacute; cuando las muestras ten&iacute;an un 11 a 12 % de humedad: 1) peso hectol&iacute;trico (kg hL<sup>&#150;1</sup>) usando una balanza espec&iacute;fica (Ohaus); 2) peso de 100 granos (g): se contaron manualmente cien semillas y se determin&oacute; su peso en un balanza semianalitica; 3) &iacute;ndice de flotaci&oacute;n (%): se colocaron 100 granos sanos en una soluci&oacute;n de nitrato de sodio ajustada a una densidad de 1.2500 luego los granos se agitaron ligeramente y se cont&oacute; el n&uacute;mero que ascendi&oacute; a la superficie, el cual se consider&oacute; como el &iacute;ndice de flotaci&oacute;n o porcentaje de granos flotantes (Salinas <i>et al, </i>1992); 4) color de grano (% R) a 546 nm: se us&oacute; el color&iacute;metro Agtron y un tama&ntilde;o de muestra de 30 g. Adem&aacute;s se determinaron los porcentajes de pedicelo, pericarpio, germen y endospermo. Los m&eacute;todos usados fueron los descritos por Salinas y V&aacute;zquez (2006). Cada an&aacute;lisis se hizo por duplicado o triplicado.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Cuantificaci&oacute;n de los compuestos fen&oacute;licos del grano</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s se pesaron 150 g de grano crudo de ma&iacute;z en una balanza semianal&iacute;tica (Sartorius, modelo BL610); se colocaron en un vaso de precipitados de 500 mL que conten&iacute;a agua caliente (85 &deg;C) y se dejaron reposar 15 min para facilitar la separaci&oacute;n de las estructuras del grano. Con un bistur&iacute; se separaron el pericarpio, endospermo y germen; el pedicelo del grano se descart&oacute;. Las fracciones se molieron en un molino (IKA WERKE, Modelo MF 10 Basic) con una malla de 0.5 mm. El germen se desengras&oacute; antes de su molienda usando un equipo Soxhlet y &eacute;ter de petr&oacute;leo como disolvente (12 h de extracci&oacute;n a 67 &deg;C) para evitar la posible interferencia de la Vitamina E del germen en la cuantificaci&oacute;n de fenoles por el m&eacute;todo de Folin&#150;Ciocalteu (F&#150;C) (Makkar, 2002). Las harinas se deshidrataron 12 h a 50 &deg;C en una estufa (Blue M) y se almacenaron en un desecador hasta su an&aacute;lisis.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La extracci&oacute;n de fenoles solubles (glucosilados, esterificados y libres) se realiz&oacute; seg&uacute;n lo descrito por Bakan <i>et al. </i>(2003) y para los fenoles insolubles se us&oacute; la metodolog&iacute;a de Assabgui <i>et al. </i>(1993); la cuantificaci&oacute;n en todos los casos se hizo mediante el m&eacute;todo de F&#150;C. Para los fenoles solubles la extracci&oacute;n se hizo con 1.5 g de harina y 30 mL de metanol al 80 % por 60 min de agitaci&oacute;n a temperatura ambiente. La mezcla se centrifug&oacute; a 1345 g por 10 min en una centr&iacute;fuga (Hettich, modelo Universal 32). El sobrenadante se separ&oacute; del sedimento y a este &uacute;ltimo se agreg&oacute; metanol al 80 % para una segunda extracci&oacute;n. El sedimento de esta segunda extracci&oacute;n se guard&oacute; para analizar fenoles insolubles.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los sobrenadantes se mezclaron y filtraron con papel Whatman No. 4. El filtrado se concentr&oacute; en un rotavapor (Heidolph modelo Laborata 4010) a 40 &deg;C, hasta un volumen de 15 mL, para despu&eacute;s aforar con agua destilada a un volumen final de 20 mL. La soluci&oacute;n se ajust&oacute; a pH 2 con HC1 2N y un potenci&oacute;metro (Beckman   <i> <img src="/img/revistas/agro/v43n8/a6s1.jpg"></i> 45 pH meter). Se realiz&oacute; una extracci&oacute;n l&iacute;quido&#150;l&iacute;quido con acetato de etilo dos veces, juntando las fases org&aacute;nicas de cada caso, donde se encontraban los fenoles libres.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fase acuosa se ajust&oacute; a un volumen de 20 mL con agua destilada y se dividi&oacute; en dos vol&uacute;menes iguales. A uno de ellos se agregaron 10 mL de HC1 2N para extraer los fenoles glucosilados y al otro 10 mL de NaOH 2N para obtener los esterificados. La soluci&oacute;n con HC1 se conserv&oacute; lh a 4 &deg;C, mientras que la de NaOH se mantuvo 3 h en oscuridad a temperatura ambiente. Luego ambos extractos se ajustaron a pH 2 y se hicieron dos extracciones l&iacute;quido&#150;l&iacute;quido con acetato de etilo para separar los fenoles en la fase org&aacute;nica, la cual se concentr&oacute; a sequedad y el residuo se resuspendi&oacute; en agua destilada aforando a 10 mL en un matraz volum&eacute;trico para su cuantificaci&oacute;n mediante el m&eacute;todo de F&#150;C. El contenido de fenoles se expres&oacute; en funci&oacute;n del &aacute;cido g&aacute;lico (Sigma, MN, USA), con el cual se prepar&oacute; una curva patr&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El sedimento sin los fenoles solubles se hidroliz&oacute; con 30 mL de NaOH 2N por 3 h a 60 &deg;C. Se ajust&oacute; el volumen a 100 mL con agua destilada y se dej&oacute; reposar 12 h a temperatura ambiente y en oscuridad. Se ajust&oacute; el pH a 2, seguido de extracciones l&iacute;quido&#150;l&iacute;quido con acetato de etilo, juntando los extractos que se concentraron a sequedad en un rotavapor. El residuo se resuspendi&oacute; en 10 mL de agua destilada para su cuantificaci&oacute;n por F&#150;C. Todos los an&aacute;lisis se realizaron por duplicado o triplicado.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico de los datos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza con los datos del contenido de las cuatro clases de fenoles en pericarpio, germen y endospermo y de las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas del grano en los dos genotipos; el dise&ntilde;o experimental fue completamente al azar (Steel y Torrie, 1989). La comparaci&oacute;n de medias se hizo mediante Tukey (p<u>&lt;</u>0.05). Tambi&eacute;n se hizo un an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n lineal simple entre las variables. Los an&aacute;lisis se realizaron usando SAS versi&oacute;n 8 (SAS, 1998).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Contenido de fenoles en las estructuras del grano Fenoles solubles</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los fenoles solubles del grano de ma&iacute;z est&aacute;n conformados por los fenoles libres (FL), los fenoles glucosilados (FG) y los fenoles esterificados (FE) dentro de este grupo est&aacute;n a los &aacute;cidos fen&oacute;licos, flavonoides y amidas fen&oacute;licas (Sen <i>et al, </i>1994). En el pericarpio los FL variaron entre 107&#150;3 y 181.7 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS, los FG de 14.9 a 28.7 <i><i>&#956;</i></i>g g<sup>&#150;1</sup> de MS, y los FE de 86.6 a 137&#150;1 <i><i>&#956;</i></i>g g<sup>&#150;1</sup> MS. Se observ&oacute; diferencia estad&iacute;stica en el contenido de los fenoles solubles del pericarpio entre los ma&iacute;ces analizados. En los ma&iacute;ces experimentales se observ&oacute; una tendencia hacia un mayor contenido de FL que en los comerciales (<a href="/img/revistas/agro/v43n8/a6c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La importancia de los fenoles del pericarpio en la tolerancia a plagas de almac&eacute;n ha sido se&ntilde;alada por Sen <i>et al. </i>(1994), Bily <i>et al. </i>(2003) y Garc&iacute;a&#150;Lara <i>et al. </i>(2004). La concentraci&oacute;n de &aacute;cidos fen&oacute;licos libres (<i>trans</i>&#150;fer&uacute;lico y <i>p</i>&#150;cum&aacute;rico) y diferulatos en esta estructura se ha relacionado con la tolerancia al ataque de <i>Sitophilus zeamais </i>(Motsch.) (Garc&iacute;a&#150;Lara <i>et al., </i>2004), lo mismo que las amidas fen&oacute;licas que se encuentran predominantemente en el pericarpio y de las cuales se han identificado: feruloilputrescina, <i> p</i>&#150;cumaroilputrescina, diferuloilputrescina y di <i>p</i>&#150;cumaroilputrescina (Sen <i>et al., </i>1994).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fracci&oacute;n de fenoles esterificados (FE) del grano de ma&iacute;z est&aacute; conformada principalmente por &aacute;cidos fen&oacute;licos que se encuentran unidos a mol&eacute;culas de carbohidratos o amidas mediante enlaces &eacute;ster (Arnason <i>et al., </i> 1992).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El endospermo del grano de las muestras analizadas tuvo un menor contenido de los tres tipos de fenoles solubles, con relaci&oacute;n a lo observado para el pericarpio. La variaci&oacute;n de estos compuestos fue: para FL, de 45&#150;3 a 94.2 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS; FG, de 12.0 a 20.7 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS; FE, de 49.0 a 80.6 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS. En el endospermo los fenoles se concentran en la capa de aleurona, con una menor presencia hacia el centro de esta estructura (Sen <i>et al, </i>1994; Yu <i>et al., </i>2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De las estructuras del grano, el germen present&oacute; el mayor contenido de fenoles solubles: los FL fueron los m&aacute;s elevados, de 375.0 a 480.7 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS; luego los FE, de 105.1 a 202.2 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS; y los FG, de 17.9 a 45.0 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS. Los valores de FL en el germen de las muestras estudiadas fueron mayores a lo informado por Bakan <i>et al. </i>(2003), quienes indican un contenido de 13.49 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> de MS. Estas diferencias se deben al m&eacute;todo de cuantificaci&oacute;n usado en cada caso y a su especificidad, ya que los autores mencionados utilizaron HPLC para cuantificar s&oacute;lo una fracci&oacute;n de los FL, que fueron los &aacute;cidos fen&oacute;licos. En cambio en el presente trabajo se cuantificaron todos los fenoles del extracto por el m&eacute;todo de F&#150;C, lo que lleva a valores elevados, como lo muestran De la Parra <i>et al. </i>(2007) quienes encontraron un intervalo de 347 a 500 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup><i> </i>MS en grano entero de cinco genotipos, usando F&#150;C. Los ma&iacute;ces con pigmentos tipo antociano (grano azul o negro) presentan valores a&uacute;n m&aacute;s elevados, por la presencia de las antocianinas (Lopez&#150;Martinez <i>et al, </i>2009).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El m&eacute;todo de F&#150;C se usa ampliamente para medir fenoles en tejidos de plantas, sin embargo, puede haber reacciones con sustancias reductoras diferentes a los compuestos fen&oacute;licos, como az&uacute;cares o acido asc&oacute;rbico (Robbins, 2003; Ainsworth y Gillespie, 2007). En las muestras analizadas en el presente trabajo, por la polaridad del disolvente usado para extraer los FL (acetato de etilo), es dif&iacute;cil que algunos az&uacute;cares, muy polares estuviesen en el extracto, pero s&iacute; otros fenoles diferentes a &aacute;cidos fen&oacute;licos y que redujeron el reactivo de F&#150;C. Asi, ser&aacute; necesario determinar los compuestos fen&oacute;licos presentes en el extracto de FL de las estructuras del grano de ma&iacute;z, adem&aacute;s de las amidas fen&oacute;licas determinadas por Sen <i>et al. </i>(1994) y los &aacute;cidos fen&oacute;licos cuantificados por Bakan <i>et al. </i>(2003). El desengrasado realizado en el germen de las muestras previo a su an&aacute;lisis, favoreci&oacute; la concentraci&oacute;n de los dem&aacute;s constituyentes, entre ellos los fenoles, debido a que esta estructura contiene aproximadamente 35 % de aceite (Watson, 2003).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las estructuras del grano los fenoles solubles m&aacute;s abundantes fueron los FL: el germen tuvo 3.1 veces m&aacute;s que el pericarpio y 5.9 veces m&aacute;s que el endospermo. Los FG se encontraron en menor cantidad. Una baja presencia de FG en el endospermo ha sido informada por Sen <i>et al. </i>(1994).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La variabilidad entre genotipos del contenido de los diferentes tipos de fenoles solubles en las estructuras del grano fue baja, no obstante que se observaron diferencias significativas. Los ma&iacute;ces usados en el estudio provienen del Instituto P&uacute;blico de Investigaci&oacute;n (INIFAP) y privada (Monsanto) que produce semillas en M&eacute;xico. Los ma&iacute;ces de INIFAP son genotipos desarrollados para las zonas de los Valles Altos del centro del pa&iacute;s y que comparten germoplasma com&uacute;n, lo que podr&iacute;a explicar la poca variabilidad del contenido de fenoles en cada estructura del grano. Los ma&iacute;ces de Monsanto podr&iacute;an estar en la misma situaci&oacute;n, ya que son materiales desarrollados para condiciones de altura.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cuando se analizan muestras contrastantes en color de grano y zonas de producci&oacute;n la variabilidad es mucho m&aacute;s elevada. As&iacute;, Lopez&#150;Martinez <i>et al. </i>(2009) indican un intervalo de 330 a 6800 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> de MS para FL en muestras de grano blanco, amarillo, rojo, morado y negro. Sin embargo, esta variabilidad se redujo entre muestras de un mismo color de grano, ya que para las rojas (n=6) el intervalo fue de 500 a 1230 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1 </sup>de MS.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sumando los FL, FG y FE para cada estructura del grano se obtuvieron los valores de fenoles solubles que se muestran en el <a href="#c2">Cuadro 2</a>. El mayor contenido se present&oacute; en el germen, seguido del pericarpio y endospermo. Resultados similares fueron informados por Bakan <i>et al. </i>(2003), quienes atribuyeron a la elevada concentraci&oacute;n de FS del germen la nula producci&oacute;n de tricotecenos (micotoxinas) por razas de <i>F. graminearum </i>inoculadas en muestras esterilizadas y molidas de esta estructura del grano.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v43n8/a6c2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fenoles insolubles</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de fenoles insolubles (FI) en las tres estructuras del grano fue mayor que cualquiera de los fenoles solubles, o bien la suma de ellos. Lo anterior coincide con lo observado por Adom y Liu (2002) y De la Parra <i>et al, </i>2007, quienes se&ntilde;alaron que este tipo de fenoles domina en los cereales (Adom y Liu, 2002;).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los FI en el pericarpio tuvieron un intervalo de 872.2 a 1037.8 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS en el endospermo fue 445.0 a 662.2 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS, y en el germen fue de 766.4 a 1092.7 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS (<a href="#f1">Figura 1</a>). En promedio, el mayor contenido de FI se present&oacute; en el pericarpio y el menor en el endospermo, resultado que coincide con el reportado por Arnason <i>et al. </i>(1992), Sen <i>et al. </i>(<i>1994</i>) y Bily<i> et al. </i>(2003).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v43n8/a6f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los FI de las estructuras del grano de ma&iacute;z se encuentran ligados a los componentes de la pared celular. El &aacute;cido fer&uacute;lico, que es el fenol m&aacute;s abundante en esta fracci&oacute;n, forma conexiones entre los fragmentos de lignina a trav&eacute;s de enlaces &eacute;ter, y con las arabinoxilanas por medio de enlaces &eacute;ster. Este &aacute;cido tambi&eacute;n forma puentes difer&uacute;lico entre las heteroxilanas que constituyen la hemicelulosa de la pared celular, lo cual contribuir&iacute;a a dar mayor resistencia a las paredes celulares del pericarpio y favorec&iacute;a la tolerancia del grano a plagas de almac&eacute;n (Bily <i>et al, </i>2003) y a algunos hongos como <i>Fusarium spp.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con la hidr&oacute;lisis alcalina aplicada al residuo, los &aacute;cidos fen&oacute;licos esterificados a los polisac&aacute;ridos de la pared celular del tejido y los diferulatos unidos a las heteroxilanas son liberados, y pueden por tanto reducir el reactivo de F&#150;C. Del total de FI del germen y la fracci&oacute;n desgerminada del grano de ma&iacute;z, un 74.5 % son &aacute;cidos fen&oacute;licos, principalmente fer&uacute;lico; el resto son diferulatos (Bakan <i>et al. </i>2003). Para el germen, los valores obtenidos en las muestras por F&#150;C son similares al valor informado por (Bakan <i>etal., </i>2003) para una muestra de ma&iacute;z amarillo (941.2 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos del contenido de los diferentes tipos de fenoles en las estructuras del grano de los ma&iacute;ces analizados y los del porcentaje relativo de cada estructura en el grano, se usaron para calcular el contenido de los fenoles en el grano, pero sin considerar la aportaci&oacute;n del pedicelo, ya que esta estructura no se analiz&oacute;. Por motivos de espacio, s&oacute;lo se muestran los valores para una muestra de cada grupo de ma&iacute;ces (INIFAP y Monsanto). Expresados de esta manera, el contenido de FT para el ma&iacute;z HE&#150;TCM fue 905.24<i> <i>&#956;</i></i>g g<sup>&#150;1</sup> MS, en tanto que en el hibrido Leopardo fue 922.5 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> MS (<a href="#f2">Figura 2</a>). El valor informado por Bakan <i>et al </i>(2003) es de 1088 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> de MS , en tanto que De la Parra <i>et al. </i>(2007) se&ntilde;alan un valor de 2858 <i>&#956;</i>g g<sup>&#150;1</sup> de MS.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v43n8/a6f2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor proporci&oacute;n de los fenoles del grano de ma&iacute;z se encuentra en forma insoluble o ligada (m&aacute;s del 70 %). Dentro de los fenoles solubles, los FG representan una fracci&oacute;n muy peque&ntilde;a (&lt; 3 %) por lo que en algunos trabajos (Adorn y Liu, 2002; De la Parra <i>et al. </i>2007) s&oacute;lo se cuantifican los FL y los FE o conjugados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correlaci&oacute;n entre contenido de fenoles y propiedades f&iacute;sicas del grano</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de las caracter&iacute;sticas f&iacute;sicas del grano en las muestras analizadas se muestran en el <a href="#c3">Cuadro 3</a>: peso hectol&iacute;trico, 72.8 a 82.8 kg hL<sup>&#150;1</sup>; el &iacute;ndice de flotaci&oacute;n, 7 a 59 %; peso de cien semillas, 31.8 a 36.8 g; reflectancia para el color del grano, 54.5 a 65.5 %. El peso hectol&iacute;trico present&oacute; el mayor n&uacute;mero de correlaciones con los diferentes tipos de fenoles: una correlaci&oacute;n positiva y altamente significativa (p<u>&lt;</u>0.01) entre esta variable y los FE del pericarpio; significativa (p<u>&lt;</u>0.05) con los FL; altamente significativa con los FE del endospermo; significativa con los FE del germen; la &uacute;nica correlaci&oacute;n negativa fue con los FI del germen (<a href="/img/revistas/agro/v43n8/a6c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>). El peso hectol&iacute;trico representa la densidad aparente del grano de ma&iacute;z y est&aacute; directamente relacionado con su dureza (Salinas <i>et al., </i>1992). La correlaci&oacute;n positiva observada entre los FE de las tres estructuras del grano y el peso hectol&iacute;trico sugiere que este tipo de compuestos afecta la dureza del grano, es decir a mayor dureza hay mayor contenido.   En la <a href="/img/revistas/agro/v43n8/a6f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a> se presenta la regresi&oacute;n entre los FE del pericarpio (FEP) y endospermo (FEE) con el peso hectol&iacute;trico del grano.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c3"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agro/v43n8/a6c3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El IF es una medida indirecta de la dureza del grano y a mayor valor hay menor dureza (Salinas <i>et al., </i>1992). Esta variable mostr&oacute; una correlaci&oacute;n negativa y significativa con los FE y FL del pericarpio y con los FE del endospermo y germen. De acuerdo con estos resultados, los FE y FL de las estructuras del grano est&aacute;n relacionados con su dureza y son consistentes con lo reportado previamente por Bily <i>et al. </i>(2003) y Garc&iacute;a&#150;Lara <i>et al. </i>(2004). As&iacute; mismo, Del Pozo&#150;Insfran <i>et al. </i>(2006) reportan un mayor contenido de FL y FE en el grano de ma&iacute;z blanco de textura dura, en relaci&oacute;n con ma&iacute;ces de grano azul de textura harinosa.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La correlaci&oacute;n entre los FL del pericarpio y el color del grano indica que mientras m&aacute;s cremoso sea &eacute;ste, tendr&aacute; un mayor contenido de FL. El color del grano de ma&iacute;z est&aacute; dado por los pigmentos del pericarpio y de la capa de aleurona (Watson, 2003).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los ma&iacute;ces blancos o cremosos son b&aacute;sicamente &aacute;cidos fen&oacute;licos y una fracci&oacute;n peque&ntilde;a de flavonoides del tipo flavonoles, particularmente derivados de quercetina, que son incoloros o presentan tonalidades amarillo p&aacute;lido (Adom y Liu, 2002; Pedreschi y Cisneros&#150;Zevallos, 2007). Como no se encontr&oacute; correlaci&oacute;n con los fenoles del endospermo (la aleurona forma parte de esta estructura) en los ma&iacute;ces analizados, el color cremoso se puede atribuir a los fenoles del pericarpio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los ma&iacute;ces de grano cremoso no necesariamente producir&aacute;n tortillas menos blancas que los de grano blanco, pues el color de la tortilla est&aacute; relacionado m&aacute;s bien con los fenoles del endospermo (capa de aleurona) y su oxidaci&oacute;n favorecida por el &aacute;lcali de la nixtamalizaci&oacute;n (Salinas <i>et al., </i>2007). Adem&aacute;s, la correlaci&oacute;n positiva del color del grano entre los FE y los FI del germen indica que los ma&iacute;ces m&aacute;s blancos (mayores valores de reflectancia) tendr&aacute;n en su germen un mayor contenido de este tipo de fenoles. El tama&ntilde;o del grano, expresado como peso de 100 granos (PCG), present&oacute; correlaci&oacute;n positiva con los FI del pericarpio, y una correlaci&oacute;n negativa significativa con los FG del endospermo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El contenido de fenoles solubles e insolubles fue estad&iacute;sticamente diferente entre las estructuras del grano; los FL, fueron los fenoles solubles en mayor cantidad y el germen fue la estructura con el mayor contenido. El pericarpio tuvo el mayor valor de fenoles insolubles, seguido del germen y del endospermo. Se present&oacute; diferencia estad&iacute;stica en el contenido de fenoles entre los ma&iacute;ces analizados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los fenoles esterificados del pericarpio y endospermo presentaron correlaci&oacute;n positiva y altamente significativa con el peso hectol&iacute;trico, en tanto que fue negativa y significativa con el &iacute;ndice de flotaci&oacute;n; ambas variables est&aacute;n relacionadas con la dureza del grano. El grado de cremosidad del grano estuvo correlacionado negativamente con los fenoles libres del pericarpio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA </b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adom, K. K., and R. H. Liu. 2002. Antioxidant activity of grains. J. Agrie. Food Chem. 50: 6182&#150;6187.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538226&pid=S1405-3195200900080000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ainsworth, A. E., and K. M. Gillespie. 2007. Estimation of total phenolic content and other oxidation substrates in plant tissues using Folin&#150;Ciocalteu reagent. Nature Protocols 2(4):875&#150;877.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538227&pid=S1405-3195200900080000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Arnason, J. T., J. Gale, J. B. Conilh De Beyssac, S. S. Sen, A., B. J. R. Philogene, J. D. H. Lambert, R. G. Fulcher, A. Serratos, and J. Mihn. 1992. Role of phenolics in resistance of maize grain to the stored grain insects <i>Prostephanus truncatus </i>(Horn) and <i>Sitophilus zeamais </i>(Motshc). J. Stored Products Resour. 28 (2): 119&#150;126.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538228&pid=S1405-3195200900080000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Assabgui, R. A., L. M. Reid, R. I. Hamilton, and T. Arnason. 1993. Correlation of kernel (E) ferulic acid content of maize with resistance to <i>Fusarium graminearum. </i>Phytopathology 83: 949&#150;953.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538229&pid=S1405-3195200900080000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bakan, B., A. C. Bily, D. Melcion, B. Cahagnier, C. Regnault&#150;Roger, B. J. R. Philogene, and D. Richard&#150;Molard. 2003. Possible role of plant phenolics in the production of tricho&#150;thecenes by <i>Fusarium graminearum </i>strains on different fractions of maize kernels. J. Agrie. Food Chem. 51: 2826&#150;2831.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538230&pid=S1405-3195200900080000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bily, A. C, L. M. Reid, H. H. Taylor, D. Johnston, C. Malouin, A. J. Burt, B. Bakan, C. Regnault&#150;Roger, K. P. Pauls, J. T. Arnason, and B. J. R. Philogene. 2003. Dehydrodimers of ferulic acid in maize grain pericarp and aleurone: resistance factors to <i>Fusarium graminearum. </i>Phytopathology 93 (6): 712&#150;719.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538231&pid=S1405-3195200900080000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bily, A. C, A. J. Burt, A. Ramputh, J. Livesey, C. Regnault&#150;Roger, B. R. Philogene, and J. T. Arnason. 2004. HPLC&#150;PAD&#150;APCI/MS assay of phenylpropanoids in cereals. Phytochem. Analysis 15: 9&#150;15.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538232&pid=S1405-3195200900080000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">De la Parra, C, S. O. Serna Sald&iacute;var, and L. R. Hai. 2007. Effect of processing on the phytochemical profiles and antioxidant activity of corn for production of masa, tortillas, and tortilla chips. J. Agrie. Food Chem. 55: 4177&#150;4183.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538233&pid=S1405-3195200900080000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Del Pozo Insfran, D., C. H. Brenes, S. O. Serna Sald&iacute;var, and T. S. Talcott. 2006. Polyphenolic and antioxidant content of white and blue corn (<i>Zea mays </i>L.) products. Food Res. Int. 39: 696&#150;703.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538234&pid=S1405-3195200900080000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gallardo, C, L. Jim&eacute;nez, and M&#150;T. Garcia&#150;Conesa. 2006. Hi&#150;droxycinnamic acid composition and in vitro antioxidant activity of selected grain fractions. Food Chem. 99: 455&#150;463.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538235&pid=S1405-3195200900080000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garcia&#150;Lara, S., D. J. Bergvinson, A. J. Burt, A. I. Ramputh, D.M. D&iacute;az&#150;Pontones, and J. T. Arnason. 2004. The role of pericarp cell wall components in maize weevil resistance. Crop Sci. 44:1546&#150;1552.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538236&pid=S1405-3195200900080000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kim, D. O., O. K. Chun, Y. J. Kim, H. Y. Moon, and C. Y. Lee. 2003. Quantification of polyphenolics and their antioxidant capacity in fresh plums. J. Agrie. Food Chem. 51 (22): 6509&#150;6515.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538237&pid=S1405-3195200900080000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lopez&#150;Martinez, L. X., R. M. Oliat&#150;Ros, G. Valerio&#150;Alfaro, C&#150;H. Lee, K. L. Parkin, and H. S. Garcia. 2009. Antioxidant activity, phenolic compounds and anthocyanins content of eighteen strains of Mexican maize. LWT&#150;Food Sci. Technol. 42:1187&#150;1192.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538238&pid=S1405-3195200900080000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Makkar, H. P. S. 2002. Quantification of Tannins in Tree and Shrub Foliage. Kluwer Academic publishers. Viena, Austria, pp: 49&#150;99.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538239&pid=S1405-3195200900080000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pedreschi, R., and L. Cisneros&#150;Zevallos. 2007. Phenolic profiles of Andean purple corn (<i>Zea mays </i>L). Food Chem. 100: 956&#150;963.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538240&pid=S1405-3195200900080000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Robbins, J. R. 2003. Phenolic acids in food: An overview of analytical methodology. J. Agrie. Food Chem. 51: 2866&#150;2887.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538241&pid=S1405-3195200900080000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Salinas, M. Y, J. J. L&oacute;pez R., B. G. Gonz&aacute;lez F., y G. V&aacute;zquez C. 2007. Compuestos fen&oacute;licos del grano de ma&iacute;z y su relaci&oacute;n con el oscurecimiento de masa y tortilla. Agrociencia 41: 295&#150;305.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538242&pid=S1405-3195200900080000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Salinas, M. Y, y G. V&aacute;zquez C. 2006. Metodolog&iacute;as de an&aacute;lisis de la calidad nixtamalera&#150;tortillera en ma&iacute;z. INIFAP. Folleto T&eacute;cnico No. 24. 98 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538243&pid=S1405-3195200900080000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Salinas, M. Y, F. Mart&iacute;nez B., y J. G&oacute;mez H. 1992. Comparaci&oacute;n de m&eacute;todos para medir la dureza del ma&iacute;z (<i>Zea mays </i>L.). Arch. Lat&iacute;n. Nutr. 42: 59&#150;63.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538244&pid=S1405-3195200900080000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">SAS Institute Inc. 1998. SAS/STAT Guide for Personal Computers. Version 8.0. Cary, N.C. USA. 595 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538245&pid=S1405-3195200900080000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sen, A., D. Bergvinson, S. S. Miller, J. Atkinson, R. G. Fulcher, and J. T Arnason. 1994. Distribution and microchemical detection of phenolic acids, flavonoids and phenolic acid amides in maize kernels. J. Agrie. Food Chem. 42: 1879&#150;1883.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538246&pid=S1405-3195200900080000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sosulski, F, K. Krygier, and L. Hogge. 1982. Free, sterified, and insoluble&#150;bound phenolic acids. 3. Composition of phenolic acids in cereal and potato flours. J. Agrie. Food Chem. 30: 337&#150;340.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538247&pid=S1405-3195200900080000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Steel, R. G. and J. Torrie, J. 1989. Bioestad&iacute;stica: Principios y Procedimientos. Segunda edici&oacute;n. McGraw&#150;Hill. M&eacute;xico. 622 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538248&pid=S1405-3195200900080000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Watson, S. A. 2003. Description, development, structure and composition of the corn kernel, <i>in: </i>Corn: White, P. J., and L. A. Johnson (eds). Chemistry and Technology Second edition. Am. Assoc. Cereal Chemists, St. Paul, MN. pp. 69&#150;106.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538249&pid=S1405-3195200900080000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yu, J., T. Vasanthan, and F. Temelli. 2001. Analysis of phenolic acids in barley by high&#150;performance&#150;liquid&#150;chromatography. J. Agrie. Food Chem. 49: 4352&#150;4358.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538250&pid=S1405-3195200900080000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhaohui, Z., and M. H. Moghadasian. 2008. Chemistry, natural sources, dietary intake and pharmacokinetic properties of ferulic acid: a review. Food Chem. 109 (4): 691&#150;702.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=538251&pid=S1405-3195200900080000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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