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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Agente causal del tizón foliar en Ungnadia speciosa Endl. (Sapindales: Sapindaceae) y la evaluación in vitro e in situ de un biocida]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Causal agent of leaf blight in Ungnadia speciosa Endl. (Sapindales: Sapindaceae) and the in vitro and in situ biocide evaluation]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The Mexican buckeye Ungnadia speciosa, is one of the plants used in forestation programs in Mexico due its adaptive features and its shrub or small tree form; however production in the greenhouse is affected by pathogens that cause leaf blight, dwarf and fork stalks, making it impossible to use in plantations. The objective of this work was to determine the causal agent and evaluation of in vitro and in situ of benzalkonium chloride to control it. Plant tissue was collected in field and greenhouse and put in nutrient agar and potato dextrose agar. LOPAT and relevant biochemical test were conducted for identification. For the incidence and severity, the model proposed by French (1982), was used. The poisoned plate flock was used for the in vitro evaluation with 13 treatments and five repetitions, assessing the colony forming units (CFU); seven in situ treatments with three replications were used evaluating damaged leaf area. It was found that for Pseudomonas syringae, according to the Koch's postulates involved in the symptoms of blight and deformities in the Mexican buckeye, field incidence was 12,9% and 36% in greenhouse; severity was 6,5% and 32%, respectively. Benzalkonium chloride satisfactorily controlled in vitro in dosages, and the best treatment in situ was 3 000 ppm (7 g/L), which showed a leaf damaged area of 17,33% and target treatment 73,09%.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos de investigaci&oacute;n</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Agente causal del tiz&oacute;n foliar en <i>Ungnadia speciosa </i>Endl. (Sapindales: Sapindaceae) y la evaluaci&oacute;n <i>in vitro </i>e <i>in situ </i>de un biocida</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Causal agent of leaf blight in <i>Ungnadia speciosa </i>Endl. (Sapindales: Sapindaceae) and the <i>in vitro </i>and <i>in situ </i>biocide evaluation</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Mar&iacute;a Elizabeth Galindo&#150;Cepeda<sup>1</sup>, Marco Antonio Granillo&#150;Chapa<sup>2</sup>, Melchor Cepeda&#150;Siller<sup>1</sup>, Luis Alberto Aguirre&#150;Uribe<sup>1</sup>, Francisco D. Hern&aacute;ndez&#150;Castillo<sup>1</sup> y Alberto Flores&#150;Olivas<sup>1</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Departamento    de     Parasitolog&iacute;a    Agr&iacute;cola.     Universidad    Aut&oacute;noma    Agraria    Antonio     Narro.</i> <a href="mailto:megalcep@uaaan.mx">megalcep@uaaan.mx</a>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup> <i>Departamento  Forestal.  Universidad Aut&oacute;noma Agraria Antonio  Narro.   Buenavista,  Saltillo,  Coahuila.</i> <a href="mailto:aflooli@uaaan.mx">aflooli@uaaan.mx</a>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Manuscrito recibido el 29 de noviembre de 2007    <br> Aceptado el 6 de marzo de 2009</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La planta llamada regionalmente ojo de venado, tambi&eacute;n conocida como casta&ntilde;o de M&eacute;xico <i>Ungnadia speciosa </i>Endl., es utilizada en programas de forestaci&oacute;n en M&eacute;xico dadas sus caracter&iacute;sticas adaptativas y su forma de vida arbustiva. Sin embargo, su producci&oacute;n en invernadero se ve afectada por pat&oacute;genos que causan tizones en hojas, achaparramiento y bifurcaci&oacute;n de tallos, lo que imposibilita su uso en plantaciones. De ah&iacute; que el objetivo del presente trabajo haya sido determinar el agente causal y la evaluaci&oacute;n <i>in vitro </i>e <i>in situ </i>del cloruro de benzalconio para su control. Se colect&oacute; tejido vegetal en campo e invernadero, se sembr&oacute; en agar nutritivo y papa dextrosa agar; se realizaron las pruebas preliminares LOPAT y bioqu&iacute;micas, pertinentes para la identificaci&oacute;n. Para la incidencia y severidad, se uso el modelo propuesto por French (1982), la evaluaci&oacute;n <i>in vitro </i>fue mediante el m&eacute;todo de placa envenenado; usando 13 tratamientos con cinco repeticiones, evaluando las unidades formadoras de colonias (UFC). <i>In situ </i>se usaron siete tratamientos con tres repeticiones, evaluando el &aacute;rea foliar da&ntilde;ada. De acuerdo a los postulados de Koch, se encontr&oacute; a <i>Pseudomonas syringae, </i>involucrada en el s&iacute;ntoma de tiz&oacute;n y malformaciones del ojo de venado. El cloruro de benzalconio, en todas las dosis control&oacute; satisfactoriamente <i>in vitro </i>en todas las dosis; y el mejor tratamiento <i>in situ </i>fue el de 3 000 ppm (7 g/L) que present&oacute; un &aacute;rea foliar da&ntilde;ada de 17,33% y el testigo de 73,09%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>Cloruro de benzalconio, desierto chihuahuense, ojo de venado o casta&ntilde;o de M&eacute;xico, <i>Pseudomonas syringae.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The Mexican buckeye <i>Ungnadia speciosa, </i>is one of the plants used in forestation programs in Mexico due its adaptive features and its shrub or small tree form; however production in the greenhouse is affected by pathogens that cause leaf blight, dwarf and fork stalks, making it impossible to use in plantations. The objective of this work was to determine the causal agent and evaluation of <i>in vitro </i>and <i>in situ </i>of benzalkonium chloride to control it. Plant tissue was collected in field and greenhouse and put in nutrient agar and potato dextrose agar. LOPAT and relevant biochemical test were conducted for identification. For the incidence and severity, the model proposed by French (1982), was used. The poisoned plate flock was used for the <i>in vitro </i>evaluation with 13 treatments and five repetitions, assessing the colony forming units (CFU); seven <i>in situ </i>treatments with three replications were used evaluating damaged leaf area. It was found that for <i>Pseudomonas syringae, </i>according to the Koch's postulates involved in the symptoms of blight and deformities in the Mexican buckeye, field incidence was 12,9% and 36% in greenhouse; severity was 6,5% and 32%, respectively. Benzalkonium chloride satisfactorily controlled <i>in vitro </i>in dosages, and the best treatment <i>in situ </i>was 3 000 ppm (7 g/L), which showed a leaf damaged area of 17,33% and target treatment 73,09%.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Keywords: </b>Benzalkonium chloride, Chihuahuan desert, Mexican buckeye, <i>Pseudomonas syringae.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ojo de venado <i>Ungnadia speciosa </i>Endl., es una planta nativa del desierto chihuahuense que se utiliza como planta de ornato, como fuente de n&eacute;ctar para diversas especies de insectos y como planta de cobertura. Esto debido a que requiere de poca cantidad de agua para su establecimiento y supervivencia, as&iacute; como su r&aacute;pido desarrollo al ser plantada en suelos poco profundos y/o f&eacute;rtiles. Presenta una floraci&oacute;n al inicio de la primavera, por lo que es una fuente de alimento temprana para insectos polinizadores (Burke <i>et al., </i>1994). Se usa adem&aacute;s para disminuir los procesos erosivos, ya que es poco atractiva para los herb&iacute;voros (Lipe, 1999).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En M&eacute;xico se pierden alrededor de 340 000 ha de los recursos naturales en las zonas &aacute;ridas y los bosques templados (Semarnap, 2005), con sus consecuentes da&ntilde;os al ecosistema. En Coahuila se est&aacute; trabajando con especies del semidesierto de inter&eacute;s ambiental.  Dentro de estas especies se encuentra <i>U. speciosa </i>con el fin de mantener la riqueza forestal del pa&iacute;s (Banco de semillas forestales de Coahuila, s/f). Sin embargo, uno de los problemas graves para utilizar esta especie, es la falta de plantas de calidad y sanidad adecuadas para su establecimiento en plantaciones.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dentro de los eventos m&aacute;s comunes en la producci&oacute;n de plantas en viveros y/o invernaderos, destacan las enfermedades, que llegan a ocasionar la p&eacute;rdida total de lotes o afectar la sobrevivencia de las plantas, las cuales, al ser colocadas en su sitio definitivo tienen menor posibilidad de adaptarse y por lo tanto de prosperar. La producci&oacute;n de plantas sanas es el punto medular para lograr el &eacute;xito de las plantaciones. En &aacute;reas de distribuci&oacute;n natural <i>U. speciosa </i>presenta malformaciones, achaparramiento y el tiz&oacute;n en una incidencia baja. En cambio, al producir plantas en invernaderos, donde los factores ambientales se modifican dichas plantas presentan incidencia del tiz&oacute;n de 32% (Cerezo, 1998). Aunado a esto, la bifurcaci&oacute;n del tallo las hace inadecuadas para forestaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El uso de productos qu&iacute;micos de amplio espectro, es una alternativa para abatir los costos de producci&oacute;n al disminuir la cantidad de agroqu&iacute;micos usada en la producci&oacute;n de plantas. Uno de estos es el N&#150;alquil dimetil bencil cloruro de amonio, que presenta un amplio espectro de acci&oacute;n sobre diversas especies de microorganismos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>OBJETIVOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los objetivos de este trabajo son: Determinar el pat&oacute;geno involucrado en el s&iacute;ntoma de tiz&oacute;n del ojo de venado en <i>Ungnadia speciosa, </i>y comprobar el efecto <i>in vitro </i>e <i>in situ </i>de un producto qu&iacute;mico de amplio espectro, sobre los pat&oacute;genos aislados de <i>U. speciosa.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>METODOLOG&Iacute;A</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El presente trabajo se realiz&oacute; en la Universidad Aut&oacute;noma Agraria Antonio Narro (UAAAN) ubicada en Buenavista, Saltillo, Coahuila, M&eacute;xico y se efectu&oacute; en dos etapas durante los meses de noviembre 2005 a junio 2006. En la primera, se determin&oacute; el agente causal, as&iacute; como la incidencia y severidad del tiz&oacute;n en campo e invernadero. En la segunda se evalu&oacute; un producto biocida <i>in vitro </i>e <i>in situ.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n del agente causal</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la regi&oacute;n noroeste de Coahuila se realiz&oacute; un recorrido en el &aacute;rea de protecci&oacute;n de flora y fauna de Maderas del Carmen, en el municipio de Ocampo, en el ca&ntilde;&oacute;n denominado El Jard&iacute;n (INE&#150;Semarnap, 1997). Ah&iacute; se colect&oacute; material vegetal con la sintomatolog&iacute;a t&iacute;pica del tiz&oacute;n, as&iacute; como en el invernadero del departamento forestal de la UAAAN. Dicho material se coloc&oacute; en bolsas de polietileno en una hielera para su traslado al laboratorio de fitopatolog&iacute;a del departamento de parasitolog&iacute;a, donde fueron procesadas siguiendo la t&eacute;cnica propuesta por Noval (1998). El tejido se sembr&oacute; en agar nutritivo (AN) y papa dextrosa agar (PDA) ambos marca (Difco). Se incubaron a 25 &deg;C por 24 horas. De los microorganismos que se desarrollaron se realiz&oacute; una purificaci&oacute;n por explante y estr&iacute;a m&uacute;ltiple en agar nutritivo y se incubaron en las condiciones antes mencionadas. Las cepas bacterianas se sometieron a la tinci&oacute;n de Gram y la prueba de RYO, como primera t&eacute;cnica para separar las  bacterias fitopat&oacute;genas.   Posteriormente se sembraron en los medios semiselectivos extracto de levadura dextrosa carbonato de calcio (YDC), Perry y Kado 1 (D<sub>1</sub> M), medio B de King (KB) (King et <i>al., </i>1954), medio Kado y Heskett (D<sub>3</sub>K) y medio pectato cristal violeta (CVP), sugeridos por Schaad et <i>al. </i>(2001). A continuaci&oacute;n se realizaron las pruebas r&aacute;pidas de patogenicidad de acuerdo con la t&eacute;cnica mencionada por Rodr&iacute;guez (2001), usando una concentraci&oacute;n bacteriana de 1x10<sup>&#150;8</sup> unidades formadoras de colonias (UFC), de la escala de McFarland. Las pruebas bioqu&iacute;micas levana, oxidaci&oacute;n, pect&oacute;lisis en papa, arginina (Thornely, 1960) e hipersensibilidad del tabaco (LOPAT), se realizaron de acuerdo al protocolo de cada una de ellas, adem&aacute;s de realizar la siembra en el medio semiselectivo agar B de King con antibi&oacute;ticos KBBC, de acuerdo a Ovad et <i>al. </i>(1997).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Incidencia y severidad</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se trabaj&oacute; con el modelo de French (1982), en el cual la intensidad es el grado de da&ntilde;o ocasionado en el cultivo, que incluye dos componentes: la incidencia que es el n&uacute;mero de plantas afectadas expresado como porcentaje del total, y la severidad que es la porci&oacute;n de tejido afectado, expresado como porcentaje del &aacute;rea total, se propuso la escala siguiente (<a href="#t1">Tabla 1</a>) para el tiz&oacute;n del ojo de venado <i>U. speciosa.</i></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><i><a name="t1"></a></i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><i><img src="/img/revistas/mb/v16n1/a1t1.jpg"></i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el invernadero se evaluaron dos lotes de pl&aacute;ntulas, cada uno de los cuales conten&iacute;a mil plantas, en el &aacute;rea de Maderas del Carmen, se recorri&oacute; durante cinco d&iacute;as el ca&ntilde;&oacute;n, encontrando 32 plantas de <i>Ungnadia, </i>a las que se evalu&oacute; la incidencia y severidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n <i>in vitro</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente al azar (DCA), para la variable unidades formadoras de colonias bacterianas (UFC); por unidad experimental que representa una caja Petri, se evaluaron 13 tratamientos con cinco repeticiones (<a href="#t2">Tabla 2</a>) del producto comercial Timsen (Okehi group, presentaci&oacute;n sales). El m&eacute;todo de la evaluaci&oacute;n fue el plato envenenado, al que se adicion&oacute; el producto al medio de cultivo. El in&oacute;culo usado fue 0,1 mL de soluci&oacute;n bacteriana, a una concentraci&oacute;n de 1x10<sup>&#150;4</sup> UFC/mL de la escala de McFarland, que se dispers&oacute; en la caja Petri con la ayuda de una varilla acodada y se incub&oacute; a temperatura de 25 &deg;C durante 24 h, en donde se llev&oacute; a cabo el conteo de UFC.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/mb/v16n1/a1t2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n <i>in situ</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; un dise&ntilde;o completamente aleatorio con siete tratamientos y tres repeticiones (<a href="#t3">Tabla 3</a>). La unidad experimental (UE) fue de nueve plantas de <i>U. speciosa. </i>Las plantas utilizadas presentaban cinco hojas y cinco foliolos, as&iacute; como homogeneidad en el tama&ntilde;o (0,90 m) y forma. Las variables consideradas en el experimento fueron: n&uacute;mero de lesiones foliares considerando &uacute;nicamente aquellas que mostraron   el   tiz&oacute;n   caracter&iacute;stico.   La dimensi&oacute;n de la lesi&oacute;n se expres&oacute; en porcentaje de &aacute;rea foliar da&ntilde;ada considerando a la UE como el 100% del &aacute;rea foliar. Para esto se uso un medidor electr&oacute;nico de &aacute;reas y altura de la planta. Se llevaron a cabo seis aplicaciones cada veinte d&iacute;as del producto comercial Timsen, entre el 18 de diciembre de 2005 y 28 de marzo de 2006. La toma de datos se inici&oacute; un d&iacute;a antes de la primera aplicaci&oacute;n y termin&oacute; 20 d&iacute;as posteriores a la &uacute;ltima aplicaci&oacute;n.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="verdana"><a name="t3"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="verdana"><img src="/img/revistas/mb/v16n1/a1t3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis estad&iacute;stico de los resultados, se realiz&oacute; con el promedio general del n&uacute;mero de lesiones de tiz&oacute;n foliar, as&iacute; como del &aacute;rea foliar da&ntilde;ada (%), en cada uno de los tratamientos y repeticiones, usando un dise&ntilde;o completamente al azar. Los datos se ingresaron al programa estad&iacute;stico de la Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n, para correr el an&aacute;lisis de varianza (ANVA) y la prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias por el m&eacute;todo de Tukey, a 95% y 99% de confiabilidad.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se aislaron de hojas, ramas y tallos los hongos <i>Rhizopus stolonifer </i>(Ehrenb.) Lind. y <i>Penicillium expansum </i>Link, los que se identificaron con las claves morfol&oacute;gicas de Barnett y Hunter (1998), as&iacute; como la bacteria <i>Pseudomonas syringae </i>van Hall la que fue identificada de acuerdo con las pruebas mencionadas por Schaad et <i>al. </i>(2001); los resultados se muestran en la <a href="#t4">tabla 4</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/mb/v16n1/a1t4.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta bacteria &uacute;nicamente se desarroll&oacute; en el medio B&#150;King y al observar sus colonias con luz ultravioleta con filtro de 420 nm se present&oacute; una fluorescencia verde&#150;amarillenta, indicando la presencia del g&eacute;nero <i>Pseudomonas. </i>En las pruebas r&aacute;pidas de patogenicidad, en las rodajas de papa no se present&oacute; pudrici&oacute;n y en las hojas de tabaco se observ&oacute; un tiz&oacute;n con un halo amarillento. Para la diferenciaci&oacute;n de las especies se realizaron las pruebas bioqu&iacute;micas que se citan en la <a href="#t5">tabla 5</a>. Estos aislados se desarrollaron en el medio KBBC.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/mb/v16n1/a1t5.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados de estas pruebas corresponden a la especie <i>syringae </i>de acuerdo con lo que mencionan Schaad et <i>al. </i>(2001).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Incidencia</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En condiciones de campo, de las 32 plantas que se encontraron en el Jard&iacute;n de Maderas del Carmen, cuatro presentaron los s&iacute;ntomas de tiz&oacute;n foliar, achaparramiento y malformaci&oacute;n, es decir 12,9%. En el caso del invernadero se analizaron 2 000 plantas de las que 720 presentaron estos s&iacute;ntomas, es decir 36% se encontraron da&ntilde;adas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Severidad</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;rea foliar da&ntilde;ada en campo fue de 6,5% es decir, en la categor&iacute;a uno de la escala de evaluaci&oacute;n. En el invernadero la media aritm&eacute;tica obtenida fue de 32%, ubic&aacute;ndose en la categor&iacute;a tres de la escala de evaluaci&oacute;n utilizada, como se observa en la <a href="#f1">figura 1</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/mb/v16n1/a1f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas <i>in vitro</i></b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fueron 11 las dosis de cloruro de benzalconio usadas contra <i>P. syringae, </i>desde 70 ppm hasta 4 000 ppm (0,005&#150;1,3 g/L producto comercial), en las cuales no existi&oacute; la formaci&oacute;n de unidades formadoras de colonias bacterianas a las 24 h; as&iacute; como  tampoco  en  el  tratamiento comercial usado como testigo que fue el sulfato de estreptomicina y clorhidrato de oxitetraciclina que conten&iacute;a 120 ppm (1 g/L producto comercial). En el tratamiento testigo absoluto se report&oacute; un promedio de 1 720 UFC/mL.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pruebas <i>in situ</i></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El comportamiento de los tratamientos del cloruro de benzalconio en el n&uacute;mero de las lesiones foliares de la bacteria <i>P. syringae, </i>se muestra en la <a href="/img/revistas/mb/v16n1/a1t6.jpg" target="_blank">tabla 6</a>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El an&aacute;lisis de varianza, indica que existe una diferencia altamente significativa entre los tratamientos, como se observa en el promedio general del n&uacute;mero de lesiones del &aacute;rea foliar, el tratamiento siete (T<sub>7</sub> testigo), present&oacute; un promedio de lesiones de 73,09; mientras el que fue el mejor, tratamiento seis (T<sub>6</sub>, 3 000 ppm, 7 g/L de producto comercial) presenta 18,85 lesiones (<a href="/img/revistas/mb/v16n1/a1f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>); seguido del tratamiento tres (T<sub>3</sub>,1 500 ppm) con 22,76 lesiones por &aacute;rea foliar. La prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias por el m&eacute;todo de Tukey arroj&oacute; tres categor&iacute;as en los dos niveles de confiabilidad, pero en donde se us&oacute; el cloruro de benzalconio todos son iguales estad&iacute;sticamente, el &uacute;nico diferente fue el testigo ya que es el que presenta el n&uacute;mero m&aacute;s grande de lesiones.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Dimensi&oacute;n de las lesiones</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El &aacute;rea foliar total da&ntilde;ada, muestra que hay diferencia entre los tratamientos. Sin embargo en la prueba de Tukey a 95% (DHS), se observan dos niveles de significancia, lo que estad&iacute;sticamente nos dice  que  todos  los  tratamientos  son iguales. El mejor tratamiento fue el seis (3 000 ppm, 7 g/L de producto comercial) con 7,89% de &aacute;rea foliar da&ntilde;ada por <i>P. syringae, </i>mientras que el testigo (T<sub>7</sub> ) 13,14% de da&ntilde;o; sin embargo los tratamientos uno y dos (T<sub>1</sub>, 500 ppm y T<sub>2</sub>, 1 000 ppm), presentaron mayor &aacute;rea foliar da&ntilde;ada por el tiz&oacute;n que ocasiona esta bacteria (<a href="/img/revistas/mb/v16n1/a1t7.jpg" target="_blank">Tabla 7</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La variable altura de la planta no present&oacute; diferencia significativa en los tratamientos usados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N Y CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Rhizopus stolonifer </i>y <i>Penicillium expansum </i>son hongos que causan pudriciones en tejidos suculentos de frutas y hortalizas durante el almacenamiento y transporte, adem&aacute;s de considerarse hongos contaminantes en los laboratorios de acuerdo con Smith et <i>al. </i>(2001), por lo que no presentaron una relaci&oacute;n con los s&iacute;ntomas causados por el tiz&oacute;n foliar en <i>U. speciosa. Pseudomonas syringae </i>es una bacteria que causa disminuci&oacute;n en el crecimiento, marchitamiento y defoliaci&oacute;n del follaje as&iacute; como la aparici&oacute;n de grietas y necrosis en el floema en plantas de olivo (Scortichini, 1997). En el ojo de venado <i>U. speciosa, </i>los s&iacute;ntomas del tiz&oacute;n foliar inician en el &aacute;pice de las hojas hacia la base, seguido de una defoliaci&oacute;n, donde el tallo de las plantas se torna quebradizo con grietas y disminuye su crecimiento (<a href="/img/revistas/mb/v16n1/a1f3.jpg" target="_blank">Figura 3</a>). Las pruebas bioqu&iacute;micas y de patogenicidad que se realizaron a las cepas, nos indican que el   g&eacute;nero   <i>Pseudomonas   </i>&uacute;nicamente fermenta la glucosa y en condiciones aer&oacute;bicas forma un &aacute;cido que cambia el pH del medio, que se manifiesta como un cambio de color, esto de acuerdo con Hugh y Leifson (1953). Este g&eacute;nero presenta una respuesta positiva a la presencia de la enzima citocromo&#150;oxidasa por lo que permite separarlo de otros g&eacute;neros (Lelliot et <i>al., </i>1966). Las colonias que crecieron en la levana fueron pulvinadas, por lo que el grupo <i>syringae </i>de <i>Pseudomonas </i>es el &uacute;nico que aprovecha este polisac&aacute;rido y el grupo fluorescente no lo aprovecha (Schaad et <i>al., </i>2001). La cepa bacteriana se desarroll&oacute; en el medio semiselectivo KBBC en el cual pueden desarrollarse los patovares <i>syringae, pisi </i>y <i>tomato </i>de acuerdo con Ovad et <i>al. </i>(1997). Para confirmar el patovar, la capacidad para formar n&uacute;cleos de hielo servir&iacute;a para separar <i>syringae </i>y <i>pisi </i>de <i>tomato </i>ya que &eacute;ste no los forma; y el patovar <i>syringae </i>de la <i>pisi </i>con la prueba DL homoserina, debido a que la respuesta del primero es negativa y la del segundo positiva.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las plantas de <i>U. speciosa </i>en el invernadero presentaron 36% de incidencia de tiz&oacute;n y malformaciones por lo que no pueden ser usadas en reforestaci&oacute;n, ya que los t&eacute;cnicos de Comisi&oacute;n Nacional Forestal (INE&#150;Conafor) al evaluar la calidad fitosanitaria de las plantas &uacute;nicamente aceptan lotes con 20% de da&ntilde;o (Gonz&aacute;lez, 2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las diferentes dosis <i>in vitro </i>de cloruro de benzalconio no permitieron el crecimiento bacteriano. Esto coincide con lo que reportan investigaciones de Ohio State University (1997), en donde usaron 620 ppm de cloruro de benzalconio en placas de papa dextrosa agar, y no existi&oacute; la formaci&oacute;n de UFC de las bacterias <i>Erwinia carotovora, Agrobacterium tumefaciens </i>y <i>Xanthomonas campestris. </i>Esta misma dosis se uso <i>in vitro </i>y campo para controlar al hongo <i>Alternaria </i>spp., que afecta a la planta <i>Tagetes erecta </i>L., en donde se logr&oacute; 85% de inhibici&oacute;n del crecimiento del hongo <i>in vitro </i>y de 73% en campo (Robert, 2000). Este producto no muestra una buena acci&oacute;n para eliminar bacterias espor&oacute;genas como <i>Bacillus subtilis </i>cuando se usa una concentraci&oacute;n de 0,5 mg/mL (Acosta <i>et al., </i>2001), la bacteria <i>Pseudomonas syringae </i>no forma este tipo de estructura de resistencia sino que sobrevive a condiciones adversas en restos de tejido vegetal y c&aacute;nceres de la planta, por lo que debe destruirse y aplicarse el producto de manera preventiva. El cloruro de benzalconio al usarse <i>in situ </i>a dosis de 3 000 ppm (7 g/L) en plantas de <i>U. speciosa, </i>&eacute;stas presentaron 7,89% del &aacute;rea foliar da&ntilde;ada por la bacteria, el testigo 13,14%. Esto coincide con lo que mencionan Rodr&iacute;guez y Jim&eacute;nez (1999), al evaluar el Timsen contra <i>Colletotrichum gloeosporioides </i>en mango encontraron que el &aacute;rea del fruto fue de 6,98% al usar una dosis de 400 ppm una sola vez, contra el testigo que present&oacute; 14% de &aacute;rea da&ntilde;ada; lo mismo encontraron P&aacute;ez y Pe&ntilde;a (2000) en mango contra este mismo hongo, a dosis de 620 ppm el &aacute;rea que present&oacute; da&ntilde;o fue de 7,0% y en el testigo de 21%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La bacteria <i>P. syringae </i>es la causante del s&iacute;ntoma tiz&oacute;n foliar que presenta el hu&eacute;sped com&uacute;nmente llamado ojo de venado <i>U. speciosa, </i>en campo presenta un 12,9% de incidencia y en invernadero de 36%; la bacteria es controlada por las 11 dosis de cloruro de benzalconio (0,005&#150;1,3 g/L) <i>in vitro </i>ya que no present&oacute; la formaci&oacute;n de UFC. El mejor tratamiento <i>in situ </i>para controlar el tiz&oacute;n en el ojo de venado en invernadero fue de 3 000 ppm (7 g/L), en donde present&oacute; un da&ntilde;o foliar de 17,33%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Acosta, E., A. Herrera y V.H. Mata. 2001. El cloruro de benzalconio. Salud P&uacute;blica de M&eacute;xico 43(6):499&#150;573.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160689&pid=S1405-0471201000010000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Barnett, H.L. y B.B. Hunter. 1998. Illustrated genera of imperfect fungi. 4a. ed. APS Press. 218 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160691&pid=S1405-0471201000010000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Burke, H.R., J.A. Jackman y M. Ose. 1994. Insects associated with woody ornamental plant in Texas. Texas A &amp; M University. Department of Entomology. <a href="http://entowww.tamu.edu/extension/publications/woody.html" target="_blank">http://entowww.tamu.edu/extension/publications/woody.html</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160693&pid=S1405-0471201000010000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cerezo, H.V. 1998. Identificaci&oacute;n de microorganismos presentes en <i>Azalea </i>spp., <i>Gardenia jasminoides, Ungnadia speciosa </i>as&iacute; como el control qu&iacute;mico de bacterias <i>in vitro. </i>Tesis de licenciatura, UAAAN, Saltillo, Coahuila, M&eacute;xico. 53 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160694&pid=S1405-0471201000010000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Coahuila, Banco de Semillas Forestales (s/f). <a href="http://www.coahuilatransparente.gob.mx/boletines/documentos-boletines/publicaciones%25" target="_blank">http://www.coahuilatransparente.gob.mx/boletines/documentos&#150;boletines/publicaciones%</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160696&pid=S1405-0471201000010000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">French, R.E. 1982. M&eacute;todos de investigaci&oacute;n fitopatol&oacute;gica. Instituto Interamericano de Cooperaci&oacute;n para la Agricultura. Costa Rica. 132 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160698&pid=S1405-0471201000010000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Gonz&aacute;lez, C.A. 2004. Comunicaci&oacute;n personal. T&eacute;cnico Conafor Regi&oacute;n VI R&iacute;o Bravo. Saltillo, Coahuila, M&eacute;xico.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160700&pid=S1405-0471201000010000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hugh, R. y E. Leifson. 1953. The taxonomic significance of fermentative <i>versus </i>oxidative metabolits of carbohydrates by various Gram&#150;negative bacteria. L. Bacterial 66:24&#150;26.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160702&pid=S1405-0471201000010000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Instituto Nacional de Ecolog&iacute;a&#150;Secretar&iacute;a del Medio Ambiente Recursos Naturales y Pesca (INE&#150;Semarnap). 1997. Programa de manejo del &aacute;rea de protecci&oacute;n de flora y fauna Maderas del Carmen. 1a. ed. M&eacute;xico. 512 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160704&pid=S1405-0471201000010000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">King, E.O., M.K. Ward y D.E. Raney. 1954. Two simple media for the demonstration of pyocyanin and fluorescein. J. Lab. Clin. Med. 44:301&#150;307.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160706&pid=S1405-0471201000010000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lelliot, R.A, E. Billing y A.C. Hayward. 1966. A determinative scheme for fluorescence plant pathogenic bacteria. J. Appl. Bact. 29:470&#150;478.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160708&pid=S1405-0471201000010000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lelliot, R.A. y D.E. Stead. 1987. Methods for diagnosis of bacterial disease of plants. Methods in plant pathology. Ed. T. F. U., Preece Vol. 2, Blackwell Scientific Publications Oxford, pp. 100&#150;200.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160710&pid=S1405-0471201000010000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lipe, J.A. 1999. Deer resistent landscape plants. The Texas A &amp; M University System. <a href="http://www.tpoint.net/neighbor/Deer.html" target="_blank">http://www.tpoint.net/neighbor/Deer.html</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160712&pid=S1405-0471201000010000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Noval, A.C. 1998. Bacterias. Direcci&oacute;n General de la Sanidad de la Producci&oacute;n Agr&iacute;cola. Manual de laboratorio. Diagn&oacute;stico de hongos, bacterias y nem&aacute;todos fitopat&oacute;genos. Madrid, Espa&ntilde;a, pp. 118&#150;148.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160714&pid=S1405-0471201000010000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ohio State University. 1997. Timsen research summary report. 5 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160716&pid=S1405-0471201000010000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ovad, V., K. Rudolph y K. Krohn. 1997. Serological classification of <i>Pseudomonas syringae </i>pathovares based on monoclonal antibodies towers the lipopolisaccaride O&#150;chains, pp. 526&#150;531. <i>In, </i>Rudolph, K., T. J. Burr, J. W. Mansfield, D. Stead, A. Vivian y J. von Kiestzell, eds. Developments in plant pathology, vol. 9: <i>Pseudomonas Syringae </i>pathovares and related pathogens. Kluwer Academia Publishers. Boston. 546 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160718&pid=S1405-0471201000010000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&aacute;ez, R.A. y R. Pe&ntilde;a. 2000. Manejo de antracnosis <i>Colletotrichum gloeosporioides </i>(Penz) en la fase de poscosecha en mango c.v Vallenato. Patolog&iacute;a de Frutas Tropicales y Poscosecha, Abstracts of the 46th annual meeting of the Interamerican Society for Tropical Horticulture, Miami Fl. EUA, pp. 112&#150;115.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160720&pid=S1405-0471201000010000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez M., M.L. 2001. Manual para la identificaci&oacute;n de bacterias fitopat&oacute;genas. UACh. Chapingo, Edo. de M&eacute;xico. 119 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160722&pid=S1405-0471201000010000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;guez, N.S. y C. Jim&eacute;nez. 1999. Efecto de benzoato de sodio y timsen en el control de <i>Colletotrichum gloeosporioides </i>en frutos de mango. Res&uacute;menes de los trabajos presentados en XVI Congreso Venezolano de Fitopatolog&iacute;a. Barquisimeto,Venezuela. 72 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160724&pid=S1405-0471201000010000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Robert, R. 2000. Identification and control of foliar spot pathogen in <i>Tagetes erecta </i>L. National Agricultural University, La Molina Phytopatolgy Speciality. Lima, Per&uacute;. 36 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160726&pid=S1405-0471201000010000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schaad, N.W., J.B. Jonas y W. Chun. 2001. Laboratory guide for identification of plant pathogenic bacteria. 5a. ed. APS Press. Minnesota, EUA, 373 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160728&pid=S1405-0471201000010000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Scortichini, M. 1997. <i>Pseudomonas syringae </i>pv <i>syringae </i>associated with decline in olive due to excess of magnesium. Informatore Fitopatologico 47(12):47&#150;50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160730&pid=S1405-0471201000010000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Semarnap. 2005. Programa forestal y de suelo 1995&#150;2000. Comisi&oacute;n Nacional Forestal. Gerencia de Geom&aacute;tica. M&eacute;xico, D.F.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160732&pid=S1405-0471201000010000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Smith, I.M., J. Dunez, D.H. Phillips, R.A. Lelliot y S.A. Arched. 2001. Manual de enfermedades de plantas. Ed. Mundi Prensa. 671 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160734&pid=S1405-0471201000010000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Thornley, M.J. 1960. The differentiation of <i>pseudomonas </i>from other Gram&#150;negative bacteria on the basis of arginine metabolism. J. Appl. Bacteriol. 23:27&#150;52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=5160736&pid=S1405-0471201000010000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Nota</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este documento se debe citar como: Galindo&#150;Cepeda, M.E., M.A. Granillo&#150;Chapa, M. Cepeda&#150;Siller, L.A. Aquirre&#150;Uribe, F.D. Hern&aacute;ndez&#150;Castillo y A. Flores&#150;Olivas. 2010. Agente Causal del tiz&oacute;n foliar en <i>Ungnadia speciosa </i>Endl. (Sapindales: Sapindaceae) y la evaluaci&oacute;n <i>in vitro </i>e <i>in situ </i>de un biocida. <i>Madera y Bosques </i>16(1):5&#150;15.</font></p>      ]]></body><back>
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