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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estudio de la consolidación ósea en rata por microscopía electrónica de barrido ambiental]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La aplicación del microscopio electrónico de barrido ambiental (ESEM) en ortopedia no se había desarrollado hasta ahora, por lo que se realizó un estudio sobre los modos de operación del microscopio electrónico; así se determinaron las condiciones óptimas de obtención de la mejor imagen topográfica y del análisis químico por dispersión de rayos X durante el proceso de la consolidación ósea. Para ello se utilizaron 15 ratas macho de la cepa Wistar, que se agruparon en tres por cada día experimental, se les produjo una fractura en la tibia y se les colocó un alambre Kirschner; se efectuó eutanasia a los 0 (testigo), 7, 14, 21 y 28 días después de la cirugía. De acuerdo con los resultados, la mejor imagen del hueso se observó con electrones retrodispersados en alto vacío. En la determinación de elementos químicos se obtuvieron los menores coeficientes de variación en bajo vacío para carbono y calcio; en alto vacío, para fósforo, y en modo ambiental, para magnesio, sodio, potasio y fierro. En el proceso de la consolidación ósea los niveles de calcio en hueso cortical disminuyeron en comparación con el testigo, mientras que el callo óseo calcificado se observó hasta el día 14. La concentración de fósforo incrementó con el tiempo, tanto en hueso cortical como en callo óseo. El magnesio presentó un pico el día 14 y bajó drásticamente hasta el día 28; por último, el sodio subió de manera sostenida hasta el día 28. El mejor modo de estudiar la composición química del hueso en el ESEM es el modo ambiental, pues los valores de los elementos que están en menor concentración (1%) presentaron coeficiente de variación más bajo. En el proceso de consolidación ósea, los niveles de calcio y fósforo se encontraron en relación 2:1.]]></p></abstract>
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<kwd lng="en"><![CDATA[Bone Cosolidation]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[Bone Enviromental Scannig Electron Microscopy]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Análisis Químico en Hueso]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Estudio de la consolidaci&oacute;n &oacute;sea en rata por microscop&iacute;a electr&oacute;nica de barrido ambiental</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Study on the osseous consolidation in rat by environmental scanning electron microscopy</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Rosario Neri Basurto*     Lilia Sol&iacute;s Arrieta*     Hilda Villegas Castrej&oacute;n*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>* Servicio de Morfolog&iacute;a Celular y Molecular, Instituto Nacional de Rehabilitaci&oacute;n, Calzada M&eacute;xico&#150;Xochimilco 289, Col. Arenal de Guadalupe, Tlalpan, 14389, M&eacute;xico, D. F., Tel. 5999&#150;1000, ext. 19107, Fax: 5603&#150;9197, correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:mneri@inr.gob.mx">mneri@inr.gob.mx</a></i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Correspondencia:</b>     <br>     <i>Rosario Neri Basurto,     <br> Servicio de Morfolog&iacute;a Celular y Molecular,     <br> Instituto Nacional de Rehabilitaci&oacute;n,     <br> Calzada M&eacute;xico&#150;Xochimilco 289,     <br> Col. Arenal de Guadalupe, Tlalpan,     <br> 14389, M&eacute;xico, D. F.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido el 6 de diciembre de 2006     <br> Aceptado el 29 de febrero de 2008.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The environmental scanning electron microscope (ESEM) has been recently applied to orthopedics, for which a study was performed on the modes of operation of this electron microscope. Optimal conditions were determined to obtain the best topographic image and to perform chemical analysis by X&#150;ray dispersion during the process of bone consolidation. Fifteen male Wistar rats were used, grouped in three per each experimental day. Tibia l fracture was provoked and a Kirschner wire was positioned. Rats were euthanized 0 (control), 7, 14, 21 and 28 days after surgery. According to the results, the best bone image was observed with retrodispersed electrons under high vacuum. In the chemical element determination lower variation coefficients were obtained under low vacuum for carbon and calcium; for phosphorus, under high vacuum, and in environmental mode, for magnesium, sodium, potassium and iron. In the process of bone consolidation, calcium levels in cortical bone diminished compared to controls, while the calcified bone callus was observed until day 14. Phosphorus concentration increased with time, in both cortical bone and bone callus. Magnesium presented a peak on day 14, and decreased drastically until day 28. Sodium rose continuously until day 28. The study of the chemical composition of bone by the ESEM is optimal in the environmental mode, since values of the elements present in lesser concentrations (1%) showed a lower variation coefficient. In bone consolidation process, calcium and phosphorus levels were found at a ratio of 2:1.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: Bone Cosolidation, Bone Enviromental Scannig Electron Microscopy, Bone Chemical Analysis.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n del microscopio electr&oacute;nico de barrido ambiental (ESEM) en ortopedia no se hab&iacute;a desarrollado hasta ahora, por lo que se realiz&oacute; un estudio sobre los modos de operaci&oacute;n del microscopio electr&oacute;nico; as&iacute; se determinaron las condiciones &oacute;ptimas de obtenci&oacute;n de la mejor imagen topogr&aacute;fica y del an&aacute;lisis qu&iacute;mico por dispersi&oacute;n de rayos X durante el proceso de la consolidaci&oacute;n &oacute;sea. Para ello se utilizaron 15 ratas macho de la cepa Wistar, que se agruparon en tres por cada d&iacute;a experimental, se les produjo una fractura en la tibia y se les coloc&oacute; un alambre Kirschner; se efectu&oacute; eutanasia a los 0 (testigo), 7, 14, 21 y 28 d&iacute;as despu&eacute;s de la cirug&iacute;a. De acuerdo con los resultados, la mejor imagen del hueso se observ&oacute; con electrones retrodispersados en alto vac&iacute;o. En la determinaci&oacute;n de elementos qu&iacute;micos se obtuvieron los menores coeficientes de variaci&oacute;n en bajo vac&iacute;o para carbono y calcio; en alto vac&iacute;o, para f&oacute;sforo, y en modo ambiental, para magnesio, sodio, potasio y fierro. En el proceso de la consolidaci&oacute;n &oacute;sea los niveles de calcio en hueso cortical disminuyeron en comparaci&oacute;n con el testigo, mientras que el callo &oacute;seo calcificado se observ&oacute; hasta el d&iacute;a 14. La concentraci&oacute;n de f&oacute;sforo increment&oacute; con el tiempo, tanto en hueso cortical como en callo &oacute;seo. El magnesio present&oacute; un pico el d&iacute;a 14 y baj&oacute; dr&aacute;sticamente hasta el d&iacute;a 28; por &uacute;ltimo, el sodio subi&oacute; de manera sostenida hasta el d&iacute;a 28. El mejor modo de estudiar la composici&oacute;n qu&iacute;mica del hueso en el ESEM es el modo ambiental, pues los valores de los elementos que est&aacute;n en menor concentraci&oacute;n (1%) presentaron coeficiente de variaci&oacute;n m&aacute;s bajo. En el proceso de consolidaci&oacute;n &oacute;sea, los niveles de calcio y f&oacute;sforo se encontraron en relaci&oacute;n 2:1.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:Consolidaci&oacute;n &Oacute;sea, Microscop&iacute;a Electr&oacute;nica de Barrido Ambiental de Hueso, An&aacute;lisis Qu&iacute;mico en  Hueso.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los materiales biol&oacute;gicos contienen cantidades significativas de agua y tienen baja o nula conductividad el&eacute;ctrica, por ello no pueden ser observados en su estado natural en los microscopios electr&oacute;nicos de barrido convencionales. El agua de la superficie se evapora, lo que provoca que la muestra se colapse y se distorsione. Adem&aacute;s, el vapor del agua de la c&aacute;mara disminuye el vac&iacute;o y contamina al detector y a la columna. La baja conductividad puede dar como resultado que la muestra se cargue el&eacute;ctricamente, lo cual interfiere con el haz de electrones y la emisi&oacute;n de los electrones secundarios de la muestra.<sup>1,2</sup> Por tanto, las muestras biol&oacute;gicas deben ser fijadas, deshidratadas y cubiertas con un material conductor, para ser observadas en este tipo de microscopios.<sup>3&#150;5</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para observar las muestras biol&oacute;gicas en estado natural y sin una cubierta conductora, el ESEM presenta dos Modificaciones.<sup>6,7</sup> La primera es una apertura que limita la presi&oacute;n que se encuentra bajo la lente objetiva y separa la muestra de la columna de vac&iacute;o; esto permite que la columna est&eacute; en alto vac&iacute;o, mientras la c&aacute;mara tenga presi&oacute;n de hasta 50 Torr. La temperatura y humedad de la muestra pueden ser manualmente reguladas para proporcionar un ambiente adecuado y mantener la muestra en su estado natural, sin que altere su morfolog&iacute;a aun en periodos largos de observaci&oacute;n. La segunda caracter&iacute;stica es la presencia de un detector de electrones secundarios gaseosos (GSE), que evita el efecto de carga.<sup>1,2,8</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los materiales biol&oacute;gicos peque&ntilde;os semejantes a protozoarios, microorganismos, algas y hongos, presentan alto porcentaje de agua y son dif&iacute;ciles de procesar de manera convencional, por lo que el ESEM permite observarlas sin previo tratamiento. Hasta ahora la aplicaci&oacute;n de este microscopio ha sido limitada en biolog&iacute;a, debido a que es una tecnolog&iacute;a reciente y se ha aplicado al estudio del cultivo de tejidos, en el que se ha manipulado la presi&oacute;n y temperatura y se han observado sin dificultad.<sup>7</sup> En medicina tambi&eacute;n se ha utilizado para detectar metales pesados en los tejidos mediante dispersi&oacute;n de rayos X (EDX), por ejemplo: cobre en tejido hep&aacute;tico de pacientes con enfermedad de Wilson, plomo en eritrocitos de pacientes con saturnismo, mercurio en piel, ars&eacute;nico en intoxicaciones y carcinomas de piel, tetra&oacute;xido de osmio en traumatismos de piel, etc.<sup>9,</sup><sup>10</sup> Tambi&eacute;n es posible analizar la composici&oacute;n de cristales urinarios, litiasis renal y vesicular.<sup>11</sup> Adem&aacute;s se ha realizado inmunomarcaje para diferenciar entre c&eacute;lulas dendr&iacute;ticas y microglia en el ojo de la rata.<sup>12</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sin embargo, en ortopedia no hay informes de su aplicaci&oacute;n, por lo que se realiz&oacute; un estudio para determinar las condiciones &oacute;ptimas en el microscopio electr&oacute;nico de barrido ambiental, para evaluar la morfolog&iacute;a y para la cuantificaci&oacute;n de elementos qu&iacute;micos por dispersi&oacute;n de rayos X (EDX), durante el proceso de consolidaci&oacute;n &oacute;sea en rata. Actualmente hay diferentes metodolog&iacute;as para abordar la evoluci&oacute;n de este fen&oacute;meno, como: radiograf&iacute;as, densitometr&iacute;as y, de manera indirecta, la determinaci&oacute;n de iones en sangre, pero no informan sobre el porcentaje de cada uno de los componentes minerales y c&oacute;mo van cambiando a trav&eacute;s del tiempo. Adem&aacute;s, el microan&aacute;lisis con EDX del ESEM presenta varias ventajas: <i>a) </i>se realiza <i>in situ, b) </i>es cuantitativo (a diferencia de otras t&eacute;cnicas que son cualitativas) y <i>c) </i>es espec&iacute;fico para cada zona del hueso (cortical y callo &oacute;seo).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material y m&eacute;todos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utilizaron 15 ratas macho de la cepa Wistar, adultas, con peso en el rango de 300 a 400 g. Las ratas fueron alojadas en cajas de acr&iacute;lico (tres en cada caja) a 22 &plusmn; 2&deg;C, humedad y luz controladas (12 x 12 h). Se utilizaron sujetos con dicho peso porque se consideran animales adultos j&oacute;venes que ya hab&iacute;an alcanzado su desarrollo &oacute;seo m&aacute;ximo, y s&oacute;lo machos, para evitar alg&uacute;n efecto del ciclo estral. Los animales fueron tratados de acuerdo con la Norma Oficial Mexicana NOM 062&#150;ZOO&#150;98, para la producci&oacute;n, cuidado y uso de animales de laboratorio.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><a name="r1"></a>Se aplic&oacute; una dosis de pentobarbital s&oacute;dico (50 mg/kg) intraperitonealmente. Se rasur&oacute; la pata derecha desde la articulaci&oacute;n tibio&#150;tarsal hasta la cadera, y se hizo incisi&oacute;n longitudinal de piel y m&uacute;sculos. Se colocaron separadores hasta exponer el hueso para realizar la fractura. El trazo de la fractura se realiz&oacute; en la parte central de la di&aacute;fisis tibial con segueta de joyero, procurando no lesionar los tejidos blandos. Luego se introdujo alambre Kirschner (0.35 mm de di&aacute;metro), se unieron los fragmentos de la tibia (proximal y distal) para que coincidieran los trazos de corte. Los animales se distribuyeron en grupos de tres; de acuerdo con el d&iacute;a de evoluci&oacute;n de la consolidaci&oacute;n &oacute;sea, se efectu&oacute; la eutanasia con bi&oacute;xido de carbono (CO2) a los d&iacute;as 0 (testigo), 7, 14, 21 y 28 d&iacute;as. Se obtuvieron las tibias y se fijaron en glutaraldeh&iacute;do al 2.5% en amortiguador de fosfatos (0.1 M, pH 7.4) durante tres horas, y se lavaron cuatro veces con el mismo amortiguador, durante cinco minutos cada uno. Se cort&oacute; un fragmento de 1 cm de longitud, de manera que abarcara la zona de fractura, y despu&eacute;s se realiz&oacute; un corte longitudinal para exponer el hueso cortical y callo &oacute;seo. Algunos de los fragmentos se lijaron para obtener una superficie lisa y otros no se lijaron dejando una superficie rugosa, despu&eacute;s se secaron a 37&deg;C por 72 horas. Para obtener mejor imagen, las muestras se observaron en el microscopio electr&oacute;nico de barrido ambiental<sup><a href="#1">*</a></sup> en modo alto vac&iacute;o (con electrones secundarios y electrones retrodispersados), en modo bajo vac&iacute;o y en modo ambiental (con electrones secundarios gaseosos).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><a name="r2"></a>El ESEM est&aacute; equipado con un dispersor de rayos X<sup><a href="#2">**</a></sup> para la cuantificaci&oacute;n de elementos qu&iacute;micos. Se realizaron cinco an&aacute;lisis en un patr&oacute;n cruzado en el hueso cortical y callo &oacute;seo. La determinaci&oacute;n se realiz&oacute; de manera semicuantitativa en modo alto vac&iacute;o (en hueso cargado y no cargado) en modos bajo vac&iacute;o y ambiental. Los elementos qu&iacute;micos analizados fueron: carbono (C), calcio (Ca<sup>++</sup>), f&oacute;sforo (P), sodio (Na<sup>+</sup>) y magnesio (Mg<sup>++</sup>), de los cuales el C es considerado componente mayoritario de las muestras biol&oacute;gicas. Tambi&eacute;n se realiz&oacute; la distribuci&oacute;n de los elementos qu&iacute;micos en el hueso, con un software de mapeo integrado al EDX en modo bajo vac&iacute;o.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los datos obtenidos de los diferentes modos de operaci&oacute;n fueron analizados con estad&iacute;stica descriptiva y se aplicaron coeficientes de variaci&oacute;n. Tambi&eacute;n se aplic&oacute; ANDEVA para comparar los porcentajes de elementos qu&iacute;micos durante el proceso de la consolidaci&oacute;n &oacute;sea, utilizando el paquete estad&iacute;stico SPSS para Windows versi&oacute;n 10.0.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La topograf&iacute;a del hueso se observ&oacute; mejor en alto vac&iacute;o con electrones retrodispersados que en bajo vac&iacute;o; se distingui&oacute; claramente el hueso cortical y el callo &oacute;seo, en el cual a&uacute;n hay zonas sin osificar (&aacute;reas m&aacute;s oscuras) el d&iacute;a 21 del proceso de consolidaci&oacute;n &oacute;sea (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a8f1.jpg" target="_blank">Figura 1A</a>). En el caso de la imagen de bajo vac&iacute;o no se distingue entre zonas calcificadas y no calcificadas en el callo &oacute;seo (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a8f1.jpg" target="_blank">Figura 1B</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Considerando que el hueso contiene baja cantidad de agua (5%), a diferencia de otros tejidos, se observ&oacute; en bajo vac&iacute;o a presi&oacute;n m&aacute;xima de 0.5 Torr y en modo ambiental se utiliz&oacute; una presi&oacute;n de aproximadamente 2.3 Torr; a diferencia de las muestras con alto contenido de humedad, que requieren una presi&oacute;n de 5.5 Torr.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las condiciones de trabajo en los an&aacute;lisis qu&iacute;micos realizados con el EDX fueron: 30 Kv, 5 de spot, 10% de tiempo muerto, 200 segundos vivos, 10 mm de distancia de trabajo y 2 200 cuentas por minuto (CPM). Sin embargo, al realizar las determinaciones en la zona rugosa, las cuentas bajaron alrededor de 350 CPM, por lo que se increment&oacute; el spot a 5.3. La presi&oacute;n fue la misma para todos los an&aacute;lisis qu&iacute;micos en bajo vac&iacute;o (0.5 Torr) y modo ambiental (2.3 Torr).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el hueso analizado con el EDX en alto vac&iacute;o en las zonas lisas y rugosas, se encontr&oacute; que en las zonas rugosas el porcentaje de Ca<sup>++</sup> (20.7%) y P (10.9%) bajaron y fueron estad&iacute;sticamente significativas (P <u>&lt;</u> 0.05), mientras que los porcentaje de Na<sup>+</sup> y Mg<sup>++</sup> permanecieron constantes (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a8f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al observar la muestra en alto vac&iacute;o por tiempo prolongado, el hueso se cargaba; durante el an&aacute;lisis qu&iacute;mico y el porcentaje de Ca<sup>++</sup> y P, se observ&oacute; disminuci&oacute;n de 41% y 22.9%, respectivamente, en cambio los elementos de menor concentraci&oacute;n incrementaron 31% el Mg<sup>++</sup> y 135% el Na<sup>+</sup>, en el hueso cargado, en comparaci&oacute;n con el hueso no cargado; todas las medias fueron estad&iacute;sticamente significativas (P <u>&lt;</u> 0.05) (<a href="#f3">Figura 3</a>).</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/vetmex/v39n2/a8f3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el modo de bajo vac&iacute;o, a diferencia del de alto vac&iacute;o, en la zona lisa se observ&oacute; que el Ca<sup>++</sup>, P y C incrementaron (P <u>&lt;</u> 0.05), lo que no ocurre con los elementos minoritarios. Al comparar las medias de los porcentajes de estos iones en bajo vac&iacute;o y modo ambiental, se encontraron cambios significativos en los porcentajes de C, Ca<sup>++</sup>, P y Fe<sup>+</sup>; al comparar los promedios de los grupos de alto vac&iacute;o con modo ambiental se encontr&oacute; que s&oacute;lo hubo diferencias con el P, siempre y cuando la muestra no presentara carga (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a8f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). Sin embargo, con los coeficientes de variaci&oacute;n los porcentajes de elementos qu&iacute;micos m&aacute;s confiables se obtuvieron en bajo vac&iacute;o para C y Ca<sup>++</sup>, en alto vac&iacute;o para P y en modo ambiental para Mg<sup>++</sup>, Na<sup>+</sup>, K<sup>+</sup> y Fe<sup>+</sup> (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a8f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Seg&uacute;n los resultados, se decidi&oacute; que durante el proceso de consolidaci&oacute;n &oacute;sea, los an&aacute;lisis de elementos se realizaran en modo ambiental, pues el Mg++, Na+, K+ y Fe+ presentaron menor variabilidad y son dif&iacute;ciles de cuantificar por sus concentraciones menores a 1%.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para demostrar la distribuci&oacute;n de los elementos qu&iacute;micos se realiz&oacute; el mapeo en modo ambiental. El calcio y el f&oacute;sforo presentaron distribuci&oacute;n densa y homog&eacute;nea en la regi&oacute;n cortical, mientras que el magnesio, el sodio y el zinc presentaron distribuci&oacute;n escasa y heterog&eacute;nea, lo cual concuerda con las concentraciones encontradas con el EDX. En el callo &oacute;seo todos presentaron distribuci&oacute;n similar a los anteriores; sin embargo, se observaron zonas no calcificadas debido a que el hueso utilizado para el mapeo fue de una rata de 28 d&iacute;as de consolidaci&oacute;n &oacute;sea (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a8f4.jpg" target="_blank">Figura 4</a>). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el proceso de consolidaci&oacute;n &oacute;sea los porcentajes de calcio cortical del d&iacute;a 0 al 14 de evoluci&oacute;n, presentaron baja significativa de 6.3% (P <u>&lt;</u> 0.05), y del d&iacute;a 21 al 28 vuelve a bajar la concentraci&oacute;n a 3.9% y 11.15%, respectivamente, en relaci&oacute;n con el grupo testigo. En tanto que el callo &oacute;seo calcificado aparece hacia el d&iacute;a 14, cuando los niveles de calcio fueron elevados, comparativamente con los d&iacute;as 21 y 28, pero nunca fueron mayores al del d&iacute;a 0. El f&oacute;sforo de 0 a 7 d&iacute;as baja significativamente 11.5% (P <u>&lt;</u> 0.05) en el hueso cortical. En tanto que en los d&iacute;as posteriores (14&#150;28) hay ligero aumento en hueso cortical y callo &oacute;seo. En el nivel basal (d&iacute;a 0), los porcentajes de calcio y f&oacute;sforo corticales correlacionaron significativamente (r = 0.493, P <u>&lt;</u> 0.05), pero la correlaci&oacute;n se pierde del d&iacute;a 7 al 14, y se recupera hacia los d&iacute;as 21 y 28 (r = 0.725, P <u>&lt;</u> 0.05). De acuerdo con los porcentajes determinados de calcio y f&oacute;sforo, se encontr&oacute; una relaci&oacute;n 2:1, tanto en hueso cortical como en callo &oacute;seo, durante todo el proceso de la consolidaci&oacute;n &oacute;sea. En cuanto al magnesio, en la regi&oacute;n cortical sufri&oacute; incremento muy importante del d&iacute;a 0 al 14 (P <u>&lt;</u> 0.05) y baj&oacute; dr&aacute;sticamente desde el d&iacute;a 21 al 28 (P <u>&lt;</u> 0.05) a niveles basales, lo mismo ocurri&oacute; en callo &oacute;seo. El sodio cortical subi&oacute; de manera sostenida desde el nivel basal hasta el d&iacute;a 28 (P <u>&lt;</u> 0.05). En el callo &oacute;seo el porcentaje increment&oacute; entre los d&iacute;as 14 y 21, para el d&iacute;a 28 disminuy&oacute; su porcentaje con respecto a su mismo grupo (P <u>&lt;</u> 0.05), pero fue mayor que el grupo testigo (<a href="/img/revistas/vetmex/v39n2/a8f5.jpg" target="_blank">Figura 5</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los electrones secundarios de baja energ&iacute;a (<u>&lt;</u> 50 eV), emitidos por la muestra, son los que se utilizan m&aacute;s com&uacute;nmente para los estudios morfol&oacute;gicos de los espec&iacute;menes biol&oacute;gicos, pero pr&aacute;cticamente no proporcionan informaci&oacute;n de su composici&oacute;n, y la cantidad de electrones que llegan al detector depende de la morfolog&iacute;a de la superficie del objeto y del &aacute;ngulo entre esa superficie y el haz.<sup>5</sup> Sin embargo, la mejor imagen de hueso la obtuvimos con electrones retrodispersados (de alta energ&iacute;a <u>&gt;</u> 50 eV) en alto vac&iacute;o, siempre y cuando la muestra no se cargue durante la obtenci&oacute;n de la imagen. Una de las ventajas de las im&aacute;genes con electrones retrodispersados en alto vac&iacute;o es que pueden dar informaci&oacute;n sobre la composici&oacute;n at&oacute;mica de la regi&oacute;n en estudio,<sup>13</sup> lo cual es importante para diferenciar la evoluci&oacute;n del callo &oacute;seo y hueso cortical durante el proceso de la consolidaci&oacute;n &oacute;sea. Adem&aacute;s, el detector de electrones secundarios gaseosos en modo ambiental no permite tener un campo de observaci&oacute;n amplio como sucede en alto y bajo vac&iacute;o. La imagen que se observ&oacute; en bajo vac&iacute;o present&oacute; un poco de carga, debido a que es una presi&oacute;n baja (m&aacute;ximo 1.0 Torr) para eliminar tal efecto. Lo anterior no sucede en la imagen que se obtuvo en modo ambiental, a pesar de que la muestra se mantuvo en la c&aacute;mara por tiempo prolongado.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cuantificaci&oacute;n de elementos qu&iacute;micos en el hueso se realiz&oacute; en los tres modos de operaci&oacute;n: alto vac&iacute;o, bajo vac&iacute;o y ambiental, para determinar el m&aacute;s adecuado. El an&aacute;lisis qu&iacute;mico con el EDX var&iacute;a seg&uacute;n el modo de observaci&oacute;n por varias razones: <i>a) </i>Porque depende de la conductividad de la muestra, en alto vac&iacute;o se pueden estudiar muestras conductoras, en bajo vac&iacute;o muestras poco conductoras y en modo ambiental muestras no conductoras, como las biol&oacute;gicas, debido a la utilizaci&oacute;n de un detector de electrones secundarios gaseosos que evita el artefacto de carga, lo cual tiene efectos ben&eacute;ficos sobre el an&aacute;lisis con rayos X, ya que la cubierta conductora aplicada a la muestra afecta el espectro caracter&iacute;stico de los elementos qu&iacute;micos;<sup>14,</sup><sup>15</sup> <i>b) </i>las superficies lisas se requieren para mantener el &aacute;ngulo constante de los rayos X producido por el haz de electrones, puesto que las superficies rugosas afectan la reproducibilidad de los resultados;<sup>16</sup> <i>c) </i>cuando se realiz&oacute; el an&aacute;lisis qu&iacute;mico en la muestra cargada y no cargada, la cuantificaci&oacute;n en la muestra cargada disminuy&oacute; el porcentaje de Ca<sup>++</sup> en 41% y de P en 20%. En cambio el Mg<sup>++</sup> y el Na<sup>+</sup> llegaron a 133% y 230%, respectivamente. Esto &uacute;ltimo se debe a que la carga induce variaciones locales en la emisi&oacute;n de los electrones secundarios y en la deflexi&oacute;n del haz primario, ambos interfieren con la obtenci&oacute;n del espectro y de la imagen.<sup>14,17</sup> Despu&eacute;s de haber realizado el an&aacute;lisis qu&iacute;mico en los tres modos de operaci&oacute;n, se determin&oacute; que la mejor manera para realizarlos en hueso es en modo ambiental. Al considerar que los coeficientes de variaci&oacute;n fueron menores para los elementos traza (Na<sup>+</sup>, Mg<sup>++</sup>, K y Fe<sup>+</sup>) y su concentraci&oacute;n es menor a 1 %, la reproducibilidad no es tan precisa en los otros modos, a pesar de que los elementos mayoritarios presentaron coeficientes de variaci&oacute;n menores en bajo vac&iacute;o: Ca<sup>++</sup> (r = 1.7), P (r = 0.9) y alto vac&iacute;o: Ca<sup>++</sup> (r = 2.0), P (r = 0.8).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La aplicaci&oacute;n del mapeo de elementos qu&iacute;micos es &uacute;til para demostrar c&oacute;mo se efect&uacute;a la distribuci&oacute;n del calcio y f&oacute;sforo en el callo &oacute;seo, en comparaci&oacute;n con el hueso cortical en el que hay una distribuci&oacute;n densa y homog&eacute;nea, mientras que en el callo hay zonas a&uacute;n sin osificar, debido a que no ha terminado el proceso de la consolidaci&oacute;n &oacute;sea.<sup>18</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El modelo de la consolidaci&oacute;n &oacute;sea en rata se ha estudiado por densitometr&iacute;a &oacute;sea y determinaci&oacute;n de elementos qu&iacute;micos en sangre.<sup>19,20</sup> Sin embargo, no hay estudios <i>in situ </i>que indiquen el comportamiento de los iones &oacute;seos (calcio, f&oacute;sforo, magnesio y sodio) durante el proceso de la consolidaci&oacute;n &oacute;sea en la regi&oacute;n cortical y callo &oacute;seo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La informaci&oacute;n documentada en la bibliograf&iacute;a para este modelo indica que la concentraci&oacute;n de calcio s&eacute;rico incrementa de manera significativa con respecto al grupo testigo (22%&#150;38%) durante los d&iacute;as 7, 12, 21 y 30, despu&eacute;s de una fractura en la tibia de rata.<sup>20</sup> En este estudio se encontr&oacute; disminuci&oacute;n de Ca<sup>++</sup> durante el proceso de consolidaci&oacute;n en el hueso cortical y callo &oacute;seo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha demostrado que la concentraci&oacute;n de f&oacute;sforo en sangre aumenta s&oacute;lo a los 7 y 12 d&iacute;as (24% y 34%, respectivamente) despu&eacute;s de una fractura.<sup>20</sup> En este trabajo se encontr&oacute; que el porcentaje de P disminuy&oacute; en los primeros siete d&iacute;as de la fractura en el hueso cortical. En los d&iacute;as subsiguientes hubo ligero incremento en hueso cortical y callo &oacute;seo, pero nunca fueron mayores que el testigo. La disminuci&oacute;n del porcentaje de Ca<sup>++</sup> y P que se encontr&oacute; se debi&oacute; al proceso de la reparaci&oacute;n &oacute;sea, lo cual provoca que la concentraci&oacute;n de ambos iones incremente en sangre, y correlaciona con lo antes mencionado.<sup>20</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tambi&eacute;n hay correlaci&oacute;n significativa de calcio y f&oacute;sforo el d&iacute;a 0, que se restablece cuando la consolidaci&oacute;n &oacute;sea est&aacute; en fase avanzada (d&iacute;as 21 y 28), en proporci&oacute;n 2:1; la relaci&oacute;n Ca<sup>++</sup>/P para di&aacute;fisis de rata adulta, var&iacute;a de 1.86 a 1.88 en hueso totalmente consolidado; por tanto, los datos obtenidos con el EDX del microscopio electr&oacute;nico de barrido ambiental son confiables para realizar experimentalmente estudios de consolidaci&oacute;n &oacute;sea y osteoporosis.<sup>21</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s de los elementos mayoritarios, se informa presencia de otros elementos en el metabolismo &oacute;seo y no son parte de la estructura cristalina de la hidroxiapatita, como el magnesio y el sodio. De &eacute;stos, el primero increment&oacute; en los primeros 14 d&iacute;as y baj&oacute; dr&aacute;sticamente hasta el d&iacute;a 28, a niveles basales en ambas zonas. En cambio, el sodio en el hueso cortical subi&oacute; de manera sostenida desde el nivel basal hasta el d&iacute;a 28, y en el callo &oacute;seo el porcentaje tambi&eacute;n aument&oacute; en los primeros d&iacute;as (14 y 21) y baj&oacute; el d&iacute;a 28. Sin embargo, la proporci&oacute;n y participaci&oacute;n de estos elementos en el metabolismo y consolidaci&oacute;n &oacute;sea no est&aacute;n bien definidos en la literatura. Se sabe que el magnesio es el cuarto cati&oacute;n m&aacute;s abundante del organismo y una vez absorbido, es transportado a diferentes tejidos: el &oacute;seo es donde se encuentra en mayor proporci&oacute;n, y se ubica en los cristales de hidroxiapatita.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con estudios experimentales se  ha sugerido que la disminuci&oacute;n de magnesio produce aumento de la resorci&oacute;n &oacute;sea, o bien inadecuada remodelaci&oacute;n &oacute;sea, y su deficiencia est&aacute; asociada con osteoporosis.<sup>22&#150;24</sup> El sodio es el cati&oacute;n que m&aacute;s abunda en el l&iacute;quido extracelular, act&uacute;a con otros electr&oacute;litos, para regular la presi&oacute;n osm&oacute;tica y mantener el equilibrio h&iacute;drico. En humanos se ha hallado que la p&eacute;rdida de calcio &oacute;seo es proporcional al consumo de sal, adem&aacute;s hay correlaci&oacute;n negativa entre el consumo de sodio y la densidad mineral &oacute;sea. Sin embargo, el mecanismo que incrementa la resorci&oacute;n &oacute;sea inducida por la sal no se conoce.<sup>25,26</sup> La informaci&oacute;n documentada en la literatura coincide con los resultados del presente trabajo, ya que los niveles de sodio incrementaron con la consolidaci&oacute;n &oacute;sea y el Ca<sup>++</sup> disminuy&oacute; durante todo el proceso, funcionando como antagonistas.<sup>25,27,28</sup></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con la evoluci&oacute;n de la fractura en la tibia, el callo &oacute;seo calcificado apareci&oacute; hasta el d&iacute;a 14, antes era &uacute;nicamente material fibrilar,<sup>29</sup> en el cual no se observaron dep&oacute;sitos de minerales. A los 30 d&iacute;as hay consolidaci&oacute;n total;<sup>20,30</sup> por tanto, los niveles de calcio y f&oacute;sforo, a los 28 d&iacute;as en este caso, se acercaron a los valores basales.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, el uso del ESEM en este modelo result&oacute; adecuado, pues permite ver la evoluci&oacute;n del callo &oacute;seo y la reparaci&oacute;n de la fractura. Sin embargo, su aplicaci&oacute;n en ortopedia es limitada, por necesitarse una biopsia para determinar patolog&iacute;as &oacute;seas. El diagn&oacute;stico de algunas de estas enfermedades se puede hacer mediante m&eacute;todos no invasivos (densitometr&iacute;a &oacute;sea y tomograf&iacute;a axial computada).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se agradece al Dr. Sa&uacute;l Ren&aacute;n Le&oacute;n Hern&aacute;ndez su apoyo en el an&aacute;lisis estad&iacute;stico de los datos; y al Lic. D. G. Miguel &Aacute;ngel Gonz&aacute;lez Ocampo su apoyo en el trabajo fotogr&aacute;fico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">1. Danilatos GD. Foundation of environmental scanning electron microscopy. Adv Electron Phys 1988; 71:109&#150;250.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142395&pid=S0301-5092200800020000800001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">2. Goldstein JI, Newbury DE, Echlin P, Joy DC, Roming AD, Lyman CE <i>et al. </i>Scanning electron microscopy and X&#150;ray microanalysis. 2<sup>nd</sup> ed. New York: Plenum Press, 1992.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142396&pid=S0301-5092200800020000800002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">3. Hayat MA. Principles and techniques of scanning electron microscopy. Biological aplications. New York: Van Nostrand Reinhold Co, 1978.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142397&pid=S0301-5092200800020000800003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">4. Yamada N, Nagato M, Murakami S, Ikeuchi M, Oho E, Baba N <i>et al. </i>Preparation for observation on the fine structure of biological specimens by high resolution SEM. J Electron Micros 1983; 32:321&#150;330.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142398&pid=S0301-5092200800020000800004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">5. V&aacute;zquez Nin G, Echeverr&iacute;a O. Introducci&oacute;n a la microscop&iacute;a electr&oacute;nica aplicada a las ciencias biol&oacute;gicas. M&eacute;xico DF: Fondo de Cultura Econ&oacute;mica, 2000.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142399&pid=S0301-5092200800020000800005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">6. Danilatos GD. Enviromental scanning electron microscopy   and   microanalysis.    Mikrochim   Acta    1994; 114/115:143&#150;155.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142400&pid=S0301-5092200800020000800006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">7. Tai SS, Tang XM. Manipulating biological samples for enviromental scanning electron microscopy observation. Scanning 2001; 23:267&#150;272.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142401&pid=S0301-5092200800020000800007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">8. Danilatos GD. Introduction to the ESEM instrument. Microsc Res Tech 1993; 25:354&#150;361.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142402&pid=S0301-5092200800020000800008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">9. Boyd AS, Seger O, Vannucci S, Langley M, Abraham JL. Exposici&oacute;n al mercurio y enfermedades cut&aacute;neas. J Am Acad Dermatol 2000; 43: 81&#150;90.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142403&pid=S0301-5092200800020000800009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">10. Ligon JJ, Abraham JL, Boyd AS. Traumatic osmium tetroxide   inoculation. J  Am  Acad   Dermatol   2001; 45:949&#150;952.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142404&pid=S0301-5092200800020000800010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">11. Schwille PO, Schmiedl A, Hermann U, Fan J, Gottieb D, Manoharam M <i>et al. </i>Magnesium, citrate magnesium and magnesium&#150;alkali citrate as modulators of calcium oxalate crystallization in urine: Observation in patients with recurrent idiopathic calcium urolithiasis. Urol Res 1999; 27:117&#150;126.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142405&pid=S0301-5092200800020000800011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">12.&nbsp;McMenanin PG, Djano J, Welthall R. Griffin BJ. Characterization of the macrophages associated with the tunica vasculosa lentis of the rat eye. Invest Ophthalmol Vis Sci 2002; 43:2076&#150;2082.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142406&pid=S0301-5092200800020000800012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">13. Donald AM. The use of enviromental scanning electron microscopy for imaging wet and insulating materials. Nature Mater 2003; 2:511&#150;516.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142407&pid=S0301-5092200800020000800013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">14. Griffin BJ, Suvorova AA. Charge&#150;related problems associated with X&#150;ray microanalysis in the variable pressure scanning electron microscope at low pressures. Microsc Microanal 2003; 9:155&#150;165.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142408&pid=S0301-5092200800020000800014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">15. Tang X, Joy DC. Quantitative measurements of charging in a gaseous environment. Scanning 2003; 25:194&#150;200.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142409&pid=S0301-5092200800020000800015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">16. Timofeeff NM, Lowenstein KT, Blackburn HW. ESEM&#150;EDS: an improved technique for major element chemical  analysis   of fluid  inclusions.   Chem   Geol  2000; 164:171&#150;182.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142410&pid=S0301-5092200800020000800016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">17. Reid AP, Oates K, Potes WTW. The effects of aluminum coating on elemental signals in X&#150;ray microanalysis. Micros Res Tech 1993; 24:168&#150;172.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142411&pid=S0301-5092200800020000800017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">18. Villegas CH, Mayon GJ, Gonz&aacute;lez MG, Gonz&aacute;lez JM, Ibarra MG, Murillo UA. Estudio de la osteoporosis y osteopenia por medio  de radiolog&iacute;a, densitometr&iacute;a, morfometr&iacute;a, microscop&iacute;a de barrido en la tercera v&eacute;rtebra lumbar en una muestra de hombres y mujeres en la Ciudad de M&eacute;xico. 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Acta Ortop Mex 2003; 17:168&#150;172.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142413&pid=S0301-5092200800020000800019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">20. Diez GM, Ch&aacute;vez AD, Mercado CR, Dom&iacute;nguez HV, Torres MA, Lomel&iacute; MP <i>et al. </i>Modelo experimental de fracturas y consolidaci&oacute;n &oacute;sea en ratas. Rev Mex Ortop Traum 2002; 16:113&#150;117.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142414&pid=S0301-5092200800020000800020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">21. Mendoza&#150;Barrera C, Mel&eacute;ndez LM, Garc&iacute;a LE, Hern&aacute;ndez FC. Caracterizaci&oacute;n estructural y biointegraci&oacute;n del sustituto &oacute;seo BioOsteo. Rev Mex F&iacute;s 2004; 50:19&#150;23.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142415&pid=S0301-5092200800020000800021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">22. Rude  RK.  Magnesium  deficiency:  a  heterogeneous cause of disease in humans. J Bone Miner Res 1998; 13: 749&#150;758.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142416&pid=S0301-5092200800020000800022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">23. Rude RK, Gruber EH, Wei YL, Frausto A, Mills GB. Magnesium deficiency: Effect on bone and mineral metabolism  in  the  mouse.   Calcif Tissue  Int 2003; 72:32&#150;41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142417&pid=S0301-5092200800020000800023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">24. Rude  RK,  Gruber  EH.   Magnesium  deficiency  and osteoporosis: animal and human observations. J Nutr Biochem 2004; 15:710&#150;716.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142418&pid=S0301-5092200800020000800024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">25. Lietz G, Avenell A, Robins SP. Short&#150;term effects of dietary sodium intake on bone metabolism in post&#150;menopausal women measured using urinary deoxypyridinoline excretion. Br J Nutr 1997; 78:73&#150;82.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142419&pid=S0301-5092200800020000800025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">26. Lai&#150;Ping E, Swaminathan R. Calcium metabolism and bone calcium content in normal and oophorectomized rats consuming various levels of saline for 12 months. 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Dietary salt, urinary calcium and bone loss. J Bone Miner Res 1996; 11:731&#150;736.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142422&pid=S0301-5092200800020000800028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">29. Hiltunen A, Vuorio E, Aro HT. A standardized experimental fracture in the mouse tibia. J Orthop Res 1993; 11:305&#150;312.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142423&pid=S0301-5092200800020000800029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">30. Landry SP, Marino AA, Sadasivan KK, Albright AJ. Bone injury response. Clin Orthop 1996; 332:260&#150;273.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=10142424&pid=S0301-5092200800020000800030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>NOTAS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><a name="1"></a>*</sup> XL&#150;30, Philips Electronics, Holanda. <a href="#r1">regresar</a> </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><a name="2"></a>**</sup> EDAX&#150;New XL&#150;30, Estados Unidos de Am&eacute;rica. <a href="#r2">regresar</a> </font></p>      ]]></body><back>
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