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<journal-title><![CDATA[Revista internacional de contaminación ambiental]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Daphnia exilis Herrick, 1895 (Crustacea: Cladocera): Una especie zooplanctónica potencialmente utilizable como organismo de prueba en bioensayos de toxicidad aguda en ambientes tropicales y subtropicales]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Daphnia exilis Herrick, 1895 (Crustacea: Cladocera): A zooplankter potentially usable as test organism for acute toxicity tests in tropical and subtropical environments]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The assessment of the toxic effects of chemical pollutants on the aquatic biota is fundamental for the accomplishment of control measures aimed to prevent and limit the pollution of aquatic ecosystems. Zooplankters are frequently used as test organism in the aquatic toxicity evaluation, and the cladoceran Daphnia magna is the main species globally used for this purpose, yet the convenience of use D. magna in tropical and subtropical regions has being discussed. Nevertheless, the proposal of other surrogate species is restricted due to the lack of biological and toxicological information which justify and give support to these alternatives. Daphnia exilis is a big cladoceran widely distributed in North America; in this study, a method for the controlled production of D. exilis neonates was tested. The sensitivity of this cladoceran was assessed with the reference toxicant hexavalent chromium (Cr(VI)), at 20 and 25 °C. The 48-h median lethal concentration (LC50) was 0.1170 ± 0.0068 and 0.0802 ± 0.0057mg L-1, respectively at 20 y 25 °C; these values were lower than those reported for D. magna (0.2076 ± 0.0164 and 0.1544 ± 0.0175 mg L-1, at 20 y 25 °C respectively), thus indicating a higher sensitivity of D. exilis. Considering its large size (both for adults and neonates), the easy culture and management, and its high sensitivity, we suggest D. exilis as a test organism adequate for toxicological studies in tropical and subtropical regions.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b><i>Daphnia exilis </i>Herrick, 1895 (Crustacea: Cladocera). Una especie zooplanct&oacute;nica potencialmente utilizable como organismo de prueba en bioensayos de toxicidad aguda en ambientes tropicales y subtropicales</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b><i>Daphnia exilis </i>Herrick, 1895 (Crustacea: Cladocera). A zooplankter potentially usable as test organism for acute toxicity tests in tropical and subtropical environments</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Fernando MART&Iacute;NEZ&#150;JER&Oacute;NIMO, Jes&uacute;s RODR&Iacute;GUEZ&#150;ESTRADA y Laura MART&Iacute;NEZ&#150;JER&Oacute;NIMO</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Laboratorio de Hidrobiolog&iacute;a Experimental. Escuela Nacional de Ciencias Biol&oacute;gicas, I.P.N. Prol. Carpio Esq. Plan de Ayala s/n, Col. Sto. Tom&aacute;s, M&eacute;xico, D. F. 11340, M&eacute;xico. Tel: +52 (55) 5729&#150;6000 ext. 62424. Fax: +52 (55) 5729&#150;6000 ext. 46211.</i> Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:fjeroni@ipn.mx">fjeroni@ipn.mx</a> , <a href="mailto:ferjeronimo@hotmail.com">ferjeronimo@hotmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido febrero 2008    <br> Aceptado junio 2008</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n biol&oacute;gica de los efectos t&oacute;xicos que producen los contaminantes qu&iacute;micos sobre los organismos acu&aacute;ticos es fundamental para establecer medidas de control que restrinjan o limiten la contaminaci&oacute;n en los ecosistemas acu&aacute;ticos receptores de descargas. Para realizar esta valoraci&oacute;n con frecuencia se emplean como organismos de prueba a diferentes especies planct&oacute;nicas, siendo <i>Daphnia magna </i>el clad&oacute;cero m&aacute;s utilizado en todo el mundo en pruebas de toxicidad, pese a que su utilidad en ambientes tropicales y subtropicales es cuestionada. La propuesta de especies alternativas se dificulta por la falta de informaci&oacute;n biol&oacute;gica y toxicol&oacute;gica que sustenten la conveniencia de su uso. En este estudio se desarroll&oacute; un m&eacute;todo para la producci&oacute;n controlada de neonatos de <i>Daphnia exilis, </i>un clad&oacute;cero de gran talla que est&aacute; ampliamente distribuido en Am&eacute;rica del Norte, y se evalu&oacute; su sensibilidad mediante bioensayos de toxicidad aguda a 20 y 25 &deg;C, con el t&oacute;xico de referencia cromo hexavalente (Cr(VI)). La concentraci&oacute;n letal media (CL<sub>50</sub>) determinada a 48 h fue de 0.1170 &plusmn; 0.0068 y 0.0802 &plusmn; 0.0057mg L<sup>-1</sup>, respectivamente a 20 y 25 &deg;C, que son valores menores a los reportados para D. <i>magna </i>(0.2076 &plusmn; 0.0164 y 0.1544 &plusmn; 0.0175 4 mg L<sup>-1</sup>, a 20 y 25 &deg;C respectivamente), lo que indica una mayor sensibilidad. Debido a su talla, facilidad de manejo y cultivo, as&iacute; como por su sensibilidad, se sugiere <i>a D. exilis </i>como un organismo de prueba adecuado para la realizaci&oacute;n de estudios toxicol&oacute;gicos en latitudes tropicales y subtropicales.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> cromo hexavalente, zooplancton, toxicolog&iacute;a acu&aacute;tica, <i>Daphnia magna</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The assessment of the toxic effects of chemical pollutants on the aquatic biota is fundamental for the accomplishment of control measures aimed to prevent and limit the pollution of aquatic ecosystems. Zooplankters are frequently used as test organism in the aquatic toxicity evaluation, and the cladoceran <i>Daphnia magna </i>is the main species globally used for this purpose, yet the convenience of use <i>D. magna </i>in tropical and subtropical regions has being discussed. Nevertheless, the proposal of other surrogate species is restricted due to the lack of biological and toxicological information which justify and give support to these alternatives. <i>Daphnia exilis </i>is a big cladoceran widely distributed in North America; in this study, a method for the controlled production of <i>D. exilis </i>neonates was tested. The sensitivity of this cladoceran was assessed with the reference toxicant hexavalent chromium (Cr(VI)), at 20 and 25 &deg;C. The 48&#150;h median lethal concentration (LC<sub>50</sub>) was 0.1170 &plusmn; 0.0068 and 0.0802 &plusmn; 0.0057mg L<sup>-1</sup>, respectively at 20 y 25 &deg;C; these values were lower than those reported for <i>D. magna </i>(0.2076 &plusmn; 0.0164 and 0.1544 &plusmn; 0.0175 mg L<sup>-1</sup>, at 20 y 25 &deg;C respectively), thus indicating a higher sensitivity of <i>D. exilis. </i>Considering its large size (both for adults and neonates), the easy culture and management, and its high sensitivity, we suggest <i>D. exilis </i>as a test organism adequate for toxicological studies in tropical and subtropical regions.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> chromium, Cr(VI), zooplankton, aquatic toxicology, <i>Daphnia magn</i><i>a</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de los efectos t&oacute;xicos de los compuestos qu&iacute;micos que ingresan como contaminantes a trav&eacute;s de efluentes descargados en los sistemas acu&aacute;ticos, constituye una de las principales tareas de los investigadores dedicados al an&aacute;lisis de la calidad del agua y actualmente a los que realizan estudios de evaluaci&oacute;n de riesgo ambiental.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En pa&iacute;ses desarrollados, esta problem&aacute;tica se ha canalizado efectivamente a trav&eacute;s de esquemas normativos que incluyen de manera importante la determinaci&oacute;n de los efectos sobre los sistemas biol&oacute;gicos, tanto en exposiciones de corto como de largo plazo (Hobbs <i>et al. </i>2005), y se ha llegado incluso hasta el nivel de no s&oacute;lo determinar lo que ocurre con las especies aisladas, representativas de estos ambientes, sino que se han impulsado de manera importante los estudios sobre las rutas y mecanismos de transporte de los contaminantes en los ecosistemas y la determinaci&oacute;n de la acumulaci&oacute;n, transformaci&oacute;n y efectos diferenciales que ocurren en las comunidades que habitan ah&iacute;, lo que ha dado lugar al desarrollo de una nueva disciplina cient&iacute;fica conocida como ecotoxicolog&iacute;a (Maki 1983).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En nuestro pa&iacute;s todav&iacute;a es incipiente la inclusi&oacute;n de criterios biol&oacute;gicos en la normatividad ambiental, pues se sustenta en est&aacute;ndares de calidad ambiental que se basan en niveles m&aacute;ximos permisibles para algunos contaminantes considerados como importantes por sus efectos biol&oacute;gicos, pero sin que exista una evaluaci&oacute;n biol&oacute;gica que permita determinar si tales est&aacute;ndares son en realidad efectivos para lograr la protecci&oacute;n de la vida acu&aacute;tica, y al igual que en otras partes del mundo, se aplican t&eacute;cnicas y procedimientos desarrollados para ambientes templados, pese a que las condiciones f&iacute;sicas, qu&iacute;micas y biol&oacute;gicas en los tr&oacute;picos y subtr&oacute;picos suelen ser muy diferentes (Lacher y Goldstein 1997, Kwok <i>et al. </i>2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La evaluaci&oacute;n de los efectos t&oacute;xicos de los contaminantes se realiza a trav&eacute;s de la exposici&oacute;n controlada de organismos de prueba seleccionados (que deseablemente son representativos de las comunidades en los ambientes acu&aacute;ticos), a concentraciones establecidas de compuestos qu&iacute;micos (puros o en mezclas), o bien directamente a diluciones de muestras de efluentes contaminantes, muestras de agua de sistemas receptores de descargas, o muestras de formulaciones qu&iacute;micas comerciales, de composici&oacute;n conocida o desconocida, cuya toxicidad desea determinarse, normalmente en exposiciones cortas, lo que permite expresar el resultado como una concentraci&oacute;n letal media (CL<sub>50</sub>), para un tiempo de exposici&oacute;n determinado.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la evaluaci&oacute;n de los efectos t&oacute;xicos de los contaminantes qu&iacute;micos es importante la adecuada elecci&oacute;n del organismo de prueba que se emplear&aacute;, pues no s&oacute;lo es necesario contar con un valor de CL<sub>50</sub>, sino que es tambi&eacute;n indispensable el poder inferir posibles da&ntilde;os sobre las comunidades acu&aacute;ticas en los sistemas receptores, a partir de este resultado (Dorn <i>et al. </i>1987, Chapman 2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por cuestiones pr&aacute;cticas, relacionadas principalmente con la facilidad de cultivo, de manejo y sobre todo por su importancia ecol&oacute;gica, con frecuencia se recurre a especies planct&oacute;nicas como organismos de prueba, y de manera particular a los clad&oacute;ceros, pues son estos un componente fundamental en la comunidad zooplanct&oacute;nica, siendo un grupo dominante que funciona como el enlace principal entre los productores primarios y los consumidores de niveles tr&oacute;ficos superiores (Mount y Norberg 1984). Entre los clad&oacute;ceros, <i>Daphnia magna </i>es la especie m&aacute;s utilizada y ha sido propuesta como especie de referencia en m&uacute;ltiples protocolos estandarizados de entidades reguladoras y organismos internacionales involucrados en la normalizaci&oacute;n de procedimientos de prueba (Mart&iacute;nez&#150;Jer&oacute;nimo <i>et al. </i>2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la evaluaci&oacute;n de riesgos ecol&oacute;gicos, la informaci&oacute;n toxicol&oacute;gica para especies tropicales y subtropicales es pr&aacute;cticamente nula, por lo que los pa&iacute;ses de estas regiones emplean criterios de calidad del agua que han sido desarrollados para especies de ambientes templados, lo que conlleva un fuerte grado de incertidumbre sobre su alcance real (Kwok <i>et al. </i>2007). Ejemplo de esto se presenta en la normatividad ambiental de M&eacute;xico, en la que se incluyen tres pruebas biol&oacute;gicas aceptadas para la evaluaci&oacute;n de la toxicidad, y una de ella se refiere a <i>Daphnia magna </i>como organismo de prueba, pese que este clad&oacute;cero se distribuye naturalmente en lagos templados de la regi&oacute;n Hol&aacute;rtica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El n&uacute;mero de especies estandarizadas para realizar la evaluaci&oacute;n de efectos t&oacute;xicos en el agua es bastante limitado, si se considera la riqueza espec&iacute;fica que es com&uacute;n encontrar en muchos de los ecosistemas naturales, y principalmente en los tropicales, que en su conjunto representan alrededor del 75% de la biodiversidad mundial (Lacher y Goldstein 1997). Sin embargo, la propuesta de otras opciones como organismos de prueba, normalmente se enfrenta a obst&aacute;culos como la falta de informaci&oacute;n biol&oacute;gica para entender los mecanismos de reacci&oacute;n e interpretar adecuadamente las respuestas de intoxicaci&oacute;n observadas, dificultades para obtener lotes confiables de organismos de ensayo (Arenzon <i>et al. </i>2003), falta de consistencia en los resultados, y desconocimiento de los intervalos "normales" de respuesta a fin de determinar cuando un resultado denota realmente un efecto significativo. No obstante, es necesario buscar y proponer especies alternativas debidamente sustentadas, que proporcionen informaci&oacute;n m&aacute;s adecuada y f&aacute;cil de entender y extrapolar, de acuerdo a las condiciones ambientales de la biota acu&aacute;tica que prevalece en &aacute;reas geogr&aacute;ficas que no est&aacute;n incluidas en las zonas templadas del mundo (Kwok <i>et al. </i>2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente estudio se establecieron las condiciones de propagaci&oacute;n m&aacute;s adecuada para la obtenci&oacute;n confiable de organismos de prueba de un clad&oacute;cero de talla comparativamente grande (semejante a <i>D. magna), </i>que se distribuye desde el Norte de los Estados Unidos de Norteam&eacute;rica hasta M&eacute;xico (incluyendo la regi&oacute;n Ne&aacute;rtica y parte de la Neotropical) (Hairston <i>et al. </i>1999, Benzie 2005), que presenta muchas semejanzas morfol&oacute;gicas, reproductivas y de ciclo de vida con <i>Daphnia magna, </i>y que potencialmente podr&iacute;a ser considerado como especie de referencia para la evaluaci&oacute;n de los efectos t&oacute;xicos de contaminantes acu&aacute;ticos en M&eacute;xico.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cepa de <i>Daphnia exilis </i>Herrick, 1895 que se emple&oacute; en este estudio fue obtenida del Cepario de Clad&oacute;ceros del Laboratorio de Hidrobiolog&iacute;a Experimental de la Escuela Nacional de Ciencias Biol&oacute;gicas (Instituto Polit&eacute;cnico Nacional). Esta cepa fue aislada de charcas temporales ubicadas en el vaso del ex&#150;lago de Texcoco (19&deg; 27' 08.49" N, 98&deg; 59' 41.54" W), y ha sido mantenida exitosamente en cultivo controlado por m&aacute;s de 10 a&ntilde;os.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el sistema de producci&oacute;n de neonatos (juveniles con edad menor a 24 h despu&eacute;s de ser liberados de la c&aacute;mara incubatriz de las progenitoras, que es la fase de desarrollo que se emplea como organismo de prueba para los ensayos de toxicidad por ser la m&aacute;s sensible), se utilizaron recipientes de 500 ml que conten&iacute;an 400 ml de agua dura reconstituida (US EPA 2002) y en los que se colocaron 10 neonatos hembras obtenidos de un lote de reproductores de edad conocida. Para prop&oacute;sitos de este estudio se implementaron un total de 10 de estas unidades de producci&oacute;n asexual de cr&iacute;as (por partenog&eacute;nesis), que ser&iacute;an empleadas en las pruebas de toxicidad que se detallan m&aacute;s adelante, y que fueron mantenidos a 22&plusmn;2 &deg;C, con fotoperiodo de 16:8 (luz: obscuridad).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como alimento para <i>D. exilis </i>se suministr&oacute; la microalga <i>clorof&iacute;cea Pseudokirchneriella subcapitata </i>(cultivada as&eacute;pticamente en medio basal de Bold esterilizado en autoclave), en una concentraci&oacute;n inicial de 1,000,000 c&eacute;ls. mL<sup>-1</sup>. El medio de cultivo y el alimento fueron renovados en su totalidad cada dos d&iacute;as, por lo que la cantidad de microalgas se mantuvo aproximadamente constante durante todo el tiempo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Una vez que se inici&oacute; la reproducci&oacute;n, las hembras partenogen&eacute;ticas adultas eran separadas y todos los neonatos producidos eran colectados cuidadosamente mediante filtraci&oacute;n del medio en un tamiz de 125 &micro;xm<i>. </i>Las cr&iacute;as producidas a partir de la tercera reproducci&oacute;n fueron utilizadas para los ensayos de toxicidad. La vida m&aacute;xima del lote de reproductores en cada unidad de cultivo fue de 28 d&iacute;as, al t&eacute;rmino de los cuales se desecharon y fueron sustituidos por un lote nuevo. Esto se hizo con el prop&oacute;sito de evitar variabilidad en la sensibilidad de los neonatos, pues las primeras y &uacute;ltimas reproducciones en el ciclo vital de las hembras partenogen&eacute;ticas est&aacute;n constituidas por cr&iacute;as de relativamente menor tama&ntilde;o, que se supone son tambi&eacute;n de mayor sensibilidad en su respuesta t&oacute;xica (Mart&iacute;nez&#150;Jer&oacute;nimo <i>et al. </i>2006).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para las pruebas de toxicidad aguda, que tuvieron una duraci&oacute;n de 48 h, se evalu&oacute; la respuesta de los neonatos al cromo hexavalente (Cr(VI)), metal considerado como t&oacute;xico de referencia (Dorn <i>et al. </i>1987). Las concentraciones de prueba fueron obtenidas a partir de soluciones concentradas de dicromato de potasio de alta pureza (J. T. Baker&reg;, 99.98 %).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La toxicidad aguda fue determinada a 20 y 25 &deg;C, temperaturas que corresponden a las consideradas como &oacute;ptimas para ensayos de toxicidad con especies tropicales (Kwok <i>et al. </i>2007). Se realizaron m&aacute;s de 60 bioensayos (3 6 pruebas a 20&deg; y 30 ensayos a 25 &deg;), siguiendo el protocolo sugerido por la OECD (2004). La concentraci&oacute;n letal media (CL<sub>50</sub>) fue determinada mediante la aplicaci&oacute;n de un programa de c&oacute;mputo (Stephan 1977) que permiti&oacute; establecer el valor estimado y el correspondiente intervalo de confianza (95 %) con al menos cuatro m&eacute;todos distintos (Probit, Logit, &Aacute;ngulos M&oacute;viles Promedio y Binomial).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con los resultados de todos los bioensayos se calcul&oacute; tambi&eacute;n el coeficiente de variaci&oacute;n con la f&oacute;rmula: <i>CV </i>% = <img src="/img/revistas/rica/v24n4/a1s2.jpg">100 (Zar 1999).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con los valores de CL<sub>50</sub> a cada temperatura se construyeron las cartas control, que con posterioridad pudieran ser de utilidad en la determinaci&oacute;n de la variabilidad en la sensibilidad de esta especie en aquellos laboratorios en los que se utilizara como organismo de prueba.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como otra caracter&iacute;stica a tomar en cuenta para respaldar el empleo de <i>D. exilis </i>en ensayos de toxicidad, se encuentra su talla, que es grande comparativamente con otras especies de clad&oacute;ceros distribuidos naturalmente en latitudes subtropicales y tropicales. Para documentar esto se determin&oacute; la talla (en mm) de organismos adultos a los 28 d&iacute;as (la m&aacute;xima vigencia del lote), midiendo la longitud corporal (Lc, desde el extremo de la porci&oacute;n cef&aacute;lica hasta la inserci&oacute;n de la espina caudal), la longitud de la espina caudal (E), y la anchura m&aacute;xima (A, la m&aacute;xima longitud entre la parte dorsal y ventral del organismo). Tambi&eacute;n se registr&oacute; la talla de los neonatos (longitudes total, corporal y de la espina caudal) en camadas consecutivas de hembras reproductoras mantenidas a 20 &deg;C. Esta evaluaci&oacute;n fue realizada s&oacute;lo a esta temperatura a fin de reducir la posibilidad de que se pudieran tener estadios juveniles mezclados en la progenie y que esto aumentara la variabilidad en la medidas.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El m&eacute;todo de producci&oacute;n de cr&iacute;as result&oacute; ser muy eficiente para abastecer de organismos de prueba adecuados para realizar un n&uacute;mero suficiente de ensayos de toxicidad a ambas temperaturas. De acuerdo a cuantificaciones realizadas de manera paralela, en las que se contaba diariamente toda la progenie producida en cada uno de los recipientes de cultivo, se pudo establecer una producci&oacute;n promedio de 85 &plusmn; 4.5 neonatos por d&iacute;a (P = 95 %), por lo que las cr&iacute;as producidas en s&oacute;lo dos unidades de cultivo eran suficientes para preparar un bioensayo completo diariamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realizaron un total de 36 y 30 bioensayos a 20 y 25 &deg;C, respectivamente. A&uacute;n cuando la CL<sub>50 </sub>fue determinada por cuatro m&eacute;todos distintos, se opt&oacute; por presentar en este estudio exclusivamente los resultados obtenidos mediante el ajuste Probit, por ser el que result&oacute; mas consistente para todos los datos analizados, adem&aacute;s de que es un m&eacute;todo adecuado para el tipo de ensayos de toxicidad realizados (Finney, 1971).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f1">figura 1</a> se muestran todos los valores de CL<sub>50</sub> determinados a 20 &deg;C. Como se puede observar, la variabilidad registrada es relativamente baja, lo que se confirma por el valor del coeficiente de variaci&oacute;n (CV), que fue de 16.54 %. El valor promedio de CL<sub>50 </sub>fue de 0.1182 mg L<sup>&#150;1</sup>, con un intervalo de confianza (P = 0.95) de &plusmn; 0.0064 mg L<sup>&#150;1</sup>. En esta misma <a href="#f1">figura</a> se muestran la l&iacute;nea de valor promedio y los l&iacute;mites <img src="/img/revistas/rica/v24n4/a1s1.jpg"> &plusmn; 2&sigma; (media &plusmn; 2 desviaciones est&aacute;ndar), que forman parte de lo que se denomina como Carta Control para este t&oacute;xico de referencia, y que es de utilidad al momento de realizar un an&aacute;lisis de toxicidad aguda, para determinar si la respuesta en los controles positivos cae dentro de los l&iacute;mites de variabilidad aceptables para esta especie, lo que permitir&iacute;a confirmar la validez de las respuestas observadas en ensayos toxicol&oacute;gicos.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n4/a1f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de CL<sub>50</sub> determinados a 25 &deg;C se muestran en la <a href="#f2">figura 2</a>. El valor de CL<sub>50</sub> promedio fue de 0.0802 mg L<sup>&#150;1</sup>, con intervalo de confianza (P = 0.95) de &plusmn; 0.0057 mg L<sup>&#150;1</sup>. El coeficiente de variaci&oacute;n en este caso fue de 19.72 %, un valor que aunque es ligeramente superior al determinado a 20 &deg;C, sigue siendo comparativamente bajo, pues la US EPA (2002) reporta para <i>D. magna </i>un intervalo de CV intra&#150;laboratorio entre 21 y 58 %, con diferentes t&oacute;xicos de referencia. La l&iacute;nea de valor promedio para la CL<sub>50</sub> y los l&iacute;mites <img src="/img/revistas/rica/v24n4/a1s1.jpg"> &plusmn; 2&sigma;, que definen la Carta Control para <i>D. exilis </i>a 25 &deg;C, tambi&eacute;n se muestran en la <a href="#f2">Fig. 2</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n4/a1f2.jpg"></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las medidas promedio y el intervalo de confianza (95 %) de las hembras partenogen&eacute;ticas en los lotes de reproductores al t&eacute;rmino de su periodo &uacute;til (28 d&iacute;as) fueron: Lc=3.59 &plusmn; 0.04 mm (3.1&#150;3.8 mm, m&iacute;nimo&#150;m&aacute;ximo), E=1.43&plusmn;0.07 mm (0.8&#150;1.8 mm, m&iacute;nimo&#150;m&aacute;ximo), y A = 2.27 &plusmn; 0.05 mm (2.0&#150;2.6 mm, m&iacute;nimo&#150;m&aacute;ximo).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La talla de los neonatos vari&oacute; dependiendo de la camada, como se muestra en la <a href="#f3">Fig. 3</a>, y aunque en todos los casos correspondieron a neonatos (en el sentido en el que fueron definidos previamente), es posible que la variaci&oacute;n observada en camadas consecutivas se pueda deber a diferencias ligeras (de unas cuantas horas) en el tiempo posterior a su liberaci&oacute;n de la c&aacute;mara incubatriz, aunque claramente la talla de los pertenecientes a la primer camada fue m&aacute;s peque&ntilde;a. El valor promedio para la longitud total fue de 1.64 &plusmn; 0.09 mm (P = 0.95), que corresponde a una talla razonablemente adecuada para poder ser manipulada sin necesidad de emplear alg&uacute;n equipo &oacute;ptico.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n4/a1f3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Del an&aacute;lisis de las <a href="#f1">figuras 1</a> y <a href="#f2">2</a> resalta notablemente que los neonatos de <i>D. exilis </i>fueron m&aacute;s sensibles al cromo hexavalente a 25 que a 20 &deg;C, lo cual muestra que una mayor temperatura de exposici&oacute;n hace que la CL<sub>50</sub> sea menor. Esta diferencia en sensibilidad coincide con lo determinado para <i>D. magna </i>con este mismo t&oacute;xico de referencia (Mart&iacute;nez&#150;Jer&oacute;nimo <i>et al. </i>2006), aunque esos autores determinan a las mismas temperaturas valores mayores de CL<sub>50</sub> (0.2076 &plusmn; 0.0164 mg L<sup>&#150;1</sup> y 0.1544 &plusmn; 0.0175 mg L<sup>&#150;1</sup>, a 20 y 25 &deg;C, respectivamente), pese a que las temperaturas consideradas como &oacute;ptimas para ensayos de toxicidad con especies templadas se ubican entre 12 y 18 &deg;C (Kwok <i>et al. </i>2007). De esta manera se demuestra que <i>D. exilis </i>es un clad&oacute;cero m&aacute;s sensible que <i>D. magna </i>al cromo hexavalente. Este resultado difiere de lo reportado por Kwok <i>et al. </i>(2007) quienes se&ntilde;alan que, en general, las especies de aguas templadas son m&aacute;s sensibles que las tropicales al efecto t&oacute;xico de los metales.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos en el presente estudio tambi&eacute;n demuestran la consistencia de las respuestas de <i>D. exilis </i>al Cr(VI), lo que se aprecia por los valores bajos del coeficiente de variaci&oacute;n y por el mayor n&uacute;mero de ensayos realizados para contar con informaci&oacute;n m&aacute;s confiable; &eacute;ste &uacute;ltimo supera con mucho al reportado en otros estudios para un solo laboratorio (Dorn <i>et al. </i>1987). Debe resaltarse que tanto la facilidad de cultivo como la sensibilidad y la repetitividad de los resultados son caracter&iacute;sticas deseables en la propuesta de organismos de prueba alternativos (Arenzon <i>et al. </i>2003).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La controversia por el uso de <i>D. magna </i>como organismo de prueba no es reciente, pues no obstante las enormes ventajas que se le reconocen, tambi&eacute;n se cuestiona su distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica y las condiciones de propagaci&oacute;n y de exposici&oacute;n durante las pruebas, as&iacute; como lo prolongado de su ciclo de vida (Mount y Norberg 1984). Sin embargo, a nuestro juicio la principal objeci&oacute;n es la imposibilidad de poder obtener organismos de campo en ambientes tropicales y subtropicales, y las dificultades para poder entender y expresar los resultados obtenidos en un marco ambiental que es significativamente distinto al que corresponde al &aacute;mbito de distribuci&oacute;n natural de este clad&oacute;cero. No obstante es preciso reconocer la enorme cantidad de informaci&oacute;n biol&oacute;gica y toxicol&oacute;gica de la que se dispone, lo que lo convierte indiscutiblemente en el organismo zooplanct&oacute;nico mejor conocido y m&aacute;s empleado como organismo de prueba en toxicolog&iacute;a acu&aacute;tica (Mart&iacute;nez&#150;Jer&oacute;nimo <i>et al. </i>2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La b&uacute;squeda de clad&oacute;ceros alternativos, con ventajas semejantes a las de <i>D. magna </i>pero con mayor presencia en ambientes tropicales y subtropicales, ha sido una constante en varios pa&iacute;ses de Am&eacute;rica Latina y el caso m&aacute;s relevante es el de <i>D. similis, </i>una especie que desde 1993 forma parte de la normatividad ambiental en Brasil (Buratini <i>et al. </i>2004). <i>D. similis </i>al igual que <i>D. exilis </i>pertenecen al g&eacute;nero <i>Ctenodaphnia, </i>en el cual tambi&eacute;n se ubica a <i>D. magna </i>(Hairston <i>et al. </i>1999, Benzie 2005), y que incluye a los d&aacute;fnidos de mayor talla. En el aspecto taxon&oacute;mico, tambi&eacute;n se se&ntilde;ala que <i>D. exilis, </i>se ubica dentro del complejo de especies agrupado en <i>D. similis </i>(Hairston <i>et al. </i>1999), lo cual establece semejanzas importantes en su potencialidad, no obstante que paraD. <i>similis </i>s&iacute; se cuenta con informaci&oacute;n experimental y toxicol&oacute;gica publicada. Hairston <i>et al. </i>(1999) indican que <i>D. exilis, </i>que se reconoce claramente como un taxa distinto dentro del grupo <i>similis, </i>se distribuye principalmente en M&eacute;xico y en la parte sur de los Estados Unidos de Norteam&eacute;rica, y aunque ha invadido latitudes m&aacute;s norte&ntilde;as, no ha tenido &eacute;xito en su colonizaci&oacute;n.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La talla de los organismos es importante en la selecci&oacute;n de un organismo de prueba, pues influye en el manejo de los reproductores y de los neonatos, que son la fase de desarrollo normalmente empleada en ensayos de toxicidad. Hairston <i>et al. </i>(1999) reportan que la longitud corporal de hembras adultas de <i>D. exilis </i>en muestras de campo fluct&uacute;a de 1.8 a 4.5 mm. La talla m&aacute;xima determinada en este estudio fue de 3.8 mm, pero debe tomarse en cuenta que &eacute;sta corresponde a una edad de 28 d&iacute;as, por lo que es posible alcanzar tallas mayores pues el ciclo vital se puede prolongar hasta 60 d&iacute;as (Mart&iacute;nez&#150;Jer&oacute;nimo, datos no publicados). De cualquier forma, la talla determinada tanto en adultos como en cr&iacute;as permitesu manejo sin necesidad del empleo de equipo &oacute;ptico, pues en particular las cr&iacute;as pueden ser f&aacute;cilmente visualizadas antes, durante y al t&eacute;rmino de las pruebas de toxicidad, como aqu&iacute; se pudo comprobar.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con respecto a <i>D. similis, </i>Buratini <i>et al. </i>(2004) determinaron que no fue m&aacute;s sensible que <i>D. magna </i>al dicromato de potasio, pero sus resultados no pueden ser comparados con los nuestros, pues su tiempo de exposici&oacute;n fue menor (24 h). Ellos tambi&eacute;n reportan que para varios otros t&oacute;xicos ensayados <i>D. similis </i>tuvo una sensibilidad semejante y en algunos casos mayor a la de <i>D. magna. </i>Por su parte Utz y Boher (2001) evaluaron el efecto de dos sales (KCl y KC<sub>2</sub>H<sub>3</sub>O<sub>2</sub>) con <i>D. similis </i>y <i>Ceriodaphnia dubia, </i>y aunque no es posible determinar su sensibilidad comparativa, <i>D. similis </i>fue muy sensible a ambos compuestos, confirmando su utilidad como organismo de prueba.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A diferencia de <i>D. similis, </i>especie para la cual se considera que existe un c&uacute;mulo importante de informaci&oacute;n y se cuenta con una metodolog&iacute;a de producci&oacute;n y ensayo bien definidas (de Medeiros <i>et al. </i>2001), en el caso de <i>D. exilis </i>no se dispone de informaci&oacute;n publicada sobre su biolog&iacute;a experimental ni sobre antecedentes de su uso como organismo de prueba en toxicolog&iacute;a. Por lo anterior este estudio puede considerarse in&eacute;dito, m&aacute;xime que en este momento se realizan esfuerzos institucionales importantes para poder determinar m&eacute;todos de prueba adecuados para ser integrados en la normatividad ambiental nacional. Como resultado de estos trabajos hemos propuesto la inclusi&oacute;n de <i>D. exilis </i>y el presente ser&iacute;a el primer documento que aporta elementos biol&oacute;gicos y de sensibilidad importantes para sustentar esta propuesta. Sin embargo, como complemento al presente estudio, ser&iacute;a necesario repetir este ejercicio con otros compuestos t&oacute;xicos a fin de poder refrendar la conveniencia de emplear en latitudes como la de M&eacute;xico no s&oacute;lo especies con mayores intervalos de distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica, sino tambi&eacute;n aquellas que demostraran una mayor sensibilidad a un amplio espectro de t&oacute;xicos.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen a la COFAA del IPN y al sistema EDI del IPN por los apoyos recibidos. Tambi&eacute;n a la M. en C. Sandra Luz Guerra Mart&iacute;nez, responsable del Cepario de microalgas y cianobacterias del Laboratorio de Hidrobiolog&iacute;a Experimental, ENCB&#150;IPN, quien proporcion&oacute; los cultivos de microalgas que se utilizaron durante todo el estudio. Por &uacute;ltimo expresamos nuestro agradecimiento a dos revisores an&oacute;nimos, por sus acertadas sugerencias y correcciones.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Arenzon A., Fontana Pinto R., Colombo P. y Raya&#150;Rodr&iacute;guez M. T. (2003). Assessment of the freshwater annual fish <i>Cynopoecilus melanotaenia </i>as a toxicity test organism using three reference substances. Environ. Toxicol. Chem. 22, 2188&#150;2190.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192531&pid=S0188-4999200800040000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Benzie J.A.H. (2005). Cladocera: The genus <i>Daphnia </i>(including <i>Daphniosis). </i>Guides to the identification of the microinvertebrates of the continental waters of the world. No. 21. Kenobi Productions, Ghent, 376 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192532&pid=S0188-4999200800040000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Buratini S.V., Bertoletti E. y Zagatto P.A. (2004). Evaluation of <i>Daphnia similis </i>as a test species in ecotoxicological assays. Bull. Environ. Contam. Toxicol., 73, 878&#150;882.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192533&pid=S0188-4999200800040000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chapman P.M. (2000). Whole effluent toxicity testing&#150;usefulness, level of prediction, and risk assessment. Environ. Toxicol. Chem. 19, 3&#150;13.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192534&pid=S0188-4999200800040000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">De Medeiros V.M., Watanabe T., Coler R.R. y Coler R.A. (2001). Development of methods to assess the impact of herbicide use on the benthos of littoral impoundments in northeast Brazil. J. Aquat. Ecosyst. Stress Recov. 9, 67&#150;71.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192535&pid=S0188-4999200800040000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dorn P.B., Rodgers Jr. J.H., Kop K.M., Raia J.C. y Dickson K.L. (1987). Hexavalent chromium as a reference toxicant in effluent toxicity tests. Environ. Toxicol. Chem. 6, 435&#150;444.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192536&pid=S0188-4999200800040000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finney D.J. (1971). <i>Probit analysis. </i>Cambridge University Press. Cambridge, 333 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192537&pid=S0188-4999200800040000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hairston N.G. Jr., Perry L.J., Bohonak A.J., Fellows M. Q., Kearns C. M. y Engstrom D.R. (1999). Population biology of a failed invasion: Paleolimnology of <i>Daphnia exilis </i>in upstate New York. Limnol. Oceanogr. 44, 477&#150;486.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192538&pid=S0188-4999200800040000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hobbs D.A., Warne M. St. J. y Markich S.J. (2005). Evaluation of criteria used to assess the quality of aquatic toxicity data. Environ. Toxicol. Chem. 1, 174&#150;180.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192539&pid=S0188-4999200800040000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kwok K.W.H., Leung K.M.Y., Lui G.S.G., Chu V.K.H., Lam P.K.S., Morrit D., Maltby L., Brock T.C.M., Van den Brink P.J., Warne M. St. J. y Crane M. (2007). Comparison of tropical and temperate freshwater animal species' acute sensitivities to chemicals: Implications for deriving safe extrapolation factors. Environ. Toxicol. Chem. 3, 49&#150;67.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192540&pid=S0188-4999200800040000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lacher T.E. y Goldstein M.I. (1997). Tropical ecotoxicology: Status and needs. Environ. Toxicol. Chem. 16, 100&#150;111.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192541&pid=S0188-4999200800040000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Maki A.W. (1983). Ecotoxicology&#150; Critical needs and credibility. Environ. Toxicol. Chem. 2, 259&#150;260.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192542&pid=S0188-4999200800040000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez&#150;Jer&oacute;nimo F., Espinosa&#150;Ch&aacute;vez F. y Villase&ntilde;or&#150;C&oacute;rdova R. (2000). Effect of culture volume and adult density on the neonate production <i>of Daphnia magna, </i>as test organisms for aquatic toxicity tests. Environ. Toxicol. 15, 155&#150;159.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192543&pid=S0188-4999200800040000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez&#150;Jer&oacute;nimo, F., Mart&iacute;nez&#150;Jer&oacute;nimo L. y Espinosa&#150;Ch&aacute;vez F. (2006). Effect of culture conditions and mother's age on the sensitivity of <i>Daphnia magna </i>Straus 1820 (Cladocera) neonates to hexavalent chromium. 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American Society for Testing and Materials (ASTM) pp. 65&#150;84, 534, Philadelphia, Pennsylvania.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7192547&pid=S0188-4999200800040000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">USEPA (2002). Methods for measuring the acute toxicity of effluents and receiving waters to freshwater and marine organisms, 5a ed. US Environmental Protection Agency, Office of Water (4303T). NW. Washington, DC 20460. 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