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<journal-title><![CDATA[Revista internacional de contaminación ambiental]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Uso del ácido sulfúrico en las determinaciones de plaguicidas organoclorados: I. Calidad químico-analítica de la precipitación de grasa por el ácido sulfúrico concentrado en muestras con alto contenido de lípidos]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Use of sulfuric acid for organochlorine pesticides determination: I. Analytical quality of fat precipitated by concentrated sulfuric acid in samples with high lipid content]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Many papers describe analytical methods for organochlorine pesticide residue determinations in environmental samples. Gas chromatography with electron capture detection requires highly purified extracts, ie. with an efficient clean-up step. To achieve this purpose, different clean-up methods are employed. Most organochlorine pesticides are resistant to sulfuric acid, a property used for the destruction of endogenous compounds and fat precipitation. Both fat extract treatments that use sulfuric acid as a clean-up medium, and quantities of nonvolatile residues determined after the clean-up step, are described. Samples of adipose tissues (human, bovine, pig and chicken), butter and margarine were studied. The analytical method allows good (higher than 90 %) organo-chlorine pesticide recovery and an extract ready for gas chromatography with a minimal amount of nonvolatile compounds (0.8 to 2.2 mg that constitutes 0.22 to 1.87 % of the analyzed sample) determined gravimetrically. The low quantity of nonvolatile residues present in cleaned-up extracts allows multiple sample gas chromatographies without diminishing column resolution and electron capture detector response. The analytical quality study (10 repetitions for each fat sample) shows a 4.8 to 12.5 % coefficient of variation, indicating an appropriate method for fat sample monitoring studies.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[plaguicidas organoclorados]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>USO DEL &Aacute;CIDO SULF&Uacute;RICO EN LAS DETERMINACIONES DE </b><b>PLAGUICIDAS ORGANOCLORADOS.    <br> </b><b>I. CALIDAD QU&Iacute;MICO&#150;ANAL&Iacute;TICA DE LA PRECIPITACI&Oacute;N DE GRASAS POR EL &Aacute;CIDO SULF&Uacute;RICO    <br> </b><b>CONCENTRADO EN MUESTRAS CON ALTO CONTENIDO DE L&Iacute;PIDOS</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3" face="verdana">Use of sulfuric acid for organochlorine pesticides determination.    <br> </font></b><b><font size="3" face="verdana">I. Analytical quality of fat precipitated by concentrated sulfuric acid in samples with high lipid content</font></b></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Stefan M. WALISZEWSKI<sup>1</sup>, X&oacute;chitl M&Oacute;JICA GARC&Iacute;A<sup>1</sup>, Rosa M. INFANZ&Oacute;N<sup>1</sup>, Dulce Mar&iacute;a BARRADAS DERMITZ<sup>2</sup> y Octavio CARVAJAL ZARRABAL<sup>1</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup>&nbsp;Instituto de Medicina Forense, Universidad Veracruzana,   SS Juan Pablo II s/n, 94290 Boca del R&iacute;o, Ver. M&eacute;xico,    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:swal@uv.mx">swal@uv.mx</a>    <br> <sup>2</sup>&nbsp;&Aacute;rea Qu&iacute;mico&#150;Biol&oacute;gica, Instituto Tecnol&oacute;gico de Veracruz, Av. Miguel &Aacute;ngel de Quevedo No. 2779, 91860 Veracruz, Ver.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>(Recibido mayo 2007, aceptado diciembre 2007)</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Varios trabajos describen m&eacute;todos anal&iacute;ticos para determinar residuos de plaguicidas organoclorados en muestras ambientales. La detecci&oacute;n por cromatograf&iacute;a de gases con captura de electrones exige un extracto con alto grado de pureza. Para este fin, se emplean diferentes procedimientos de purificaci&oacute;n. La mayor&iacute;a de los plaguicidas organoclorados resisten la actividad del &aacute;cido sulf&uacute;rico, propiedad que se aprovecha para destruir los compuestos end&oacute;genos y precipitar las grasas. En este trabajo se describe el tratamiento de extractos de grasas con el &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado y la determinaci&oacute;n de residuos no vol&aacute;tiles despu&eacute;s de su tratamiento. Se estudiaron las muestras de tejidos adiposos: (humano, bovino, cerdo y pollo), mantequilla y margarina. La t&eacute;cnica anal&iacute;tica permite muy buena recuperaci&oacute;n de plaguicidas (mayor de 90 %) y el extracto listo para la corrida cromatogr&aacute;fica con una m&iacute;nima cantidad (0.8 a 2.2 mg que constituye 0.22 a 1.87 % de la muestra procesada) de sustancias no vol&aacute;tiles determinadas gravim&eacute;tricamente. La baja cantidad de residuos no vol&aacute;tiles presentes en el extracto purificado, permite realizar m&uacute;ltiples corridas cromatogr&aacute;ficas de muestras sin disminuir la capacidad de resoluci&oacute;n de la columna cromatogr&aacute;fica y la respuesta del detector de captura de electrones. Los estudios de calidad anal&iacute;tica de muestras grasas realizadas en 10 repeticiones, mostraron el coeficiente de varianza entre 4.8 a 12.5 % indicando un m&eacute;todo id&oacute;neo para la monitorizaci&oacute;n de productos grasos contaminados con plaguicidas organoclorados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> plaguicidas organoclorados, grasas, &aacute;cido sulf&uacute;rico</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Many papers describe analytical methods for organochlorine pesticide residue determinations in environmental samples. Gas chromatography with electron capture detection requires highly purified extracts, <i>ie. </i>with an efficient clean&#150;up step. To achieve this purpose, different clean&#150;up methods are employed. Most organochlorine pesticides are resistant to sulfuric acid, a property used for the destruction of endogenous compounds and fat precipitation. Both fat extract treatments that use sulfuric acid as a clean&#150;up medium, and quantities of nonvolatile residues determined after the clean&#150;up step, are described. Samples of adipose tissues (human, bovine, pig and chicken), butter and margarine were studied. The analytical method allows good (higher than 90 %) organo&#150;chlorine pesticide recovery and an extract ready for gas chromatography with a minimal amount of nonvolatile compounds (0.8 to 2.2 mg that constitutes 0.22 to 1.87 % of the analyzed sample) determined gravimetrically. The low quantity of nonvolatile residues present in cleaned&#150;up extracts allows multiple sample gas chromatographies without diminishing column resolution and electron capture detector response. The analytical quality study (10 repetitions for each fat sample) shows a 4.8 to 12.5 % coefficient of variation, indicating an appropriate method for fat sample monitoring studies.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> organochlorine pesticides, fats, sulfuric acid</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Es reconocido el doble papel, ben&eacute;fico y de riesgo, de los plaguicidas organoclorados, representados por DDT (dicloro&#150;difenil&#150;tricloroetano), HCH (hexaclorociclohexano), hexaclorobenceno (HCB), aldrin, dieldrin, endrin, heptacloro, endosulfan y metoxicloro. En el primer caso, su introducci&oacute;n en la agricultura proporcion&oacute; protecci&oacute;n a cultivos agr&iacute;colas, por ejemplo el DDT en la Europa de la posguerra permiti&oacute; proteger el cultivo de papa y el empleo del HCH en los cultivos de arroz en Jap&oacute;n, elev&oacute; significativamente la producci&oacute;n agr&iacute;cola resolviendo el d&eacute;ficit de alimentos. En el aspecto sanitario, a la fecha, el DDT es el plaguicida que ha mostrado mayor eficiencia en el combate del vector del paludismo (Horton 2007), enfermedad que provoca anualmente miles de muertes en las zonas tropicales del mundo (WHO 2007). El resurgimiento del paludismo en estas zonas y el hecho de que se estima disponer de una vacuna contra esta enfermedad hasta el a&ntilde;o 2010, ha propiciado que en los a&ntilde;os 1984 y 2006 la Organizaci&oacute;n Mundial de la Salud (An&oacute;nimo 2007) recomendara su uso como insecticida de selecci&oacute;n en la lucha contra vectores transmisores de enfermedades (Schapira 2006, Mandavilli 2006, Kochi 2006, Horton 2007). Esta recomendaci&oacute;n se da bajo un programa espec&iacute;fico, que implica su aspersi&oacute;n controlada &uacute;nicamente dentro de las casas, por personal entrenado y 2 veces al a&ntilde;o (m&aacute;x. 2 g/m<sup>2</sup>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El descubrimiento de la presencia y la acumulaci&oacute;n de los plaguicidas organoclorados en el tejido adiposo de animales y humanos y su biomagnificaci&oacute;n en la cadena alimenticia, origin&oacute; que se les agrupara bajo el nombre de contaminantes org&aacute;nicos (o qu&iacute;micos) persistentes y que en la d&eacute;cada de los setenta se estableciera su restricci&oacute;n y prohibici&oacute;n (Carson 1962, Rogan y Chen 2005). Esta prohibici&oacute;n se ha aplicado fundamentalmente en los usos agr&iacute;colas y sanitarios de pa&iacute;ses del primer mundo y de manera paulatina en pa&iacute;ses en desarrollo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las muestras de matrices lip&iacute;dicas, como el tejido adiposo, leche y sus derivados as&iacute; como los aceites vegetales, almacenan sustancias lipof&iacute;licas, entre otras los plaguicidas organoclorados. Este tipo de muestras es el medio m&aacute;s adecuado para la realizaci&oacute;n de estudios que eval&uacute;an el grado de exposici&oacute;n ambiental y especialmente humana a los contaminantes qu&iacute;micos persistentes. El tejido adiposo es un excelente biomarcador para los estudios epidemiol&oacute;gicos de la contaminaci&oacute;n alimenticia y ambiental. La evaluaci&oacute;n de la exposici&oacute;n prolongada (Cameron y Van Staveren 1988, Barrett&#150;Connor 1991) permite determinar la exposici&oacute;n precedente de los individuos sin conocer sus h&aacute;bitos alimenticios y su modo de vida. El an&aacute;lisis del tejido adiposo refleja tambi&eacute;n la reducci&oacute;n del error causal inherente a la evaluaci&oacute;n diet&eacute;tica basada sobre los c&aacute;lculos de consumo de los alimentos por persona y la variedad de los alimentos en la dieta (Nelson <i>1991, Sempos et al. </i>1992).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar el da&ntilde;o a la salud originado por la exposici&oacute;n ambiental y alimenticia a plaguicidas organoclorados, acumulados en productos con alto contenido de grasa, es de suma importancia disponer de t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas que permitan determinar los niveles verdaderos de los residuos. La t&eacute;cnica anal&iacute;tica a utilizar debe poseer la cualidad de ser simple, r&aacute;pida, de bajo costo, exacta y reproducible. Algunos plaguicidas organoclorados son resistentes a la oxidaci&oacute;n del &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado, propiedad que se aprovecha en el proceso de purificaci&oacute;n de los extractos. &Eacute;ste degrada los compuestos end&oacute;genos l&aacute;biles sin afectar a los plaguicidas y precipita cuantitativamente las grasas. Los plaguicidas organoclorados, que se degradan bajo la acci&oacute;n del &aacute;cido sulf&uacute;rico son: dieldrin, endrin, clordano y metoxicloro. Los beneficios del uso de esta t&eacute;cnica consisten en la sustituci&oacute;n de adsorbentes caros y disminuci&oacute;n significativa del volumen de disolventes org&aacute;nicos utilizados, determinaci&oacute;n de los plaguicidas libres y conjugados, degradaci&oacute;n de ftalatos que durante la cromatograf&iacute;a de gases se sobreponen a los de plaguicidas conduciendo a interpretaciones err&oacute;neas (Waliszewski y Szymczynski 1990).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los beneficios mencionados motivaron la evaluaci&oacute;n del m&eacute;todo anal&iacute;tico que utiliza el &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado en la purificaci&oacute;n de extractos de muestras lip&iacute;dicas as&iacute; como la determinaci&oacute;n de la cantidad de s&oacute;lidos residuales despu&eacute;s del proceso de purificaci&oacute;n, los cuales pueden interferir en el proceso cromatogr&aacute;fico, contaminando la columna cromatogr&aacute;fica y la fuente radioactiva (Ni<sup>63</sup>) del detector de captura de electrones en el cromat&oacute;grafo de gases.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los reactivos empleados fueron hexano, &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado, todos con grado de pureza para an&aacute;lisis, sulfato de sodio anhidro en polvo activado durante 16 horas a 650 &deg;C.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La muestra de aproximadamente 2 g de grasa, se coloc&oacute; en un mortero y se tritur&oacute; con suficiente cantidad de sulfato de sodio hasta obtener un polvo seco y homog&eacute;neo (Waliszewski <i>et al. </i>2004). Este procedimiento se realiz&oacute; para absorber los restos de agua y aumentar la superficie de contacto con el disolvente. La muestra se pas&oacute; a una columna cromatogr&aacute;fica de 1 cm di y 50 cm de longitud, con un disco poroso de cristal o un tap&oacute;n de fibra de vidrio y un recept&aacute;culo para su retenci&oacute;n. La muestra en la columna se compact&oacute;, eliminando las burbujas de aire. Las grasas de la muestra se extrajeron con 100 mL de hexano a un flujo de 3 mL/min. El extracto se dej&oacute; reposar media hora a temperatura ambiente. Se tomaron 10 mL del extracto y se transfirieron a un matraz de 50 mL, previamente pesado. El contenido del matraz se evapor&oacute; en un rotavapor a sequedad para eliminar el disolvente y se determin&oacute; por diferencia de peso la cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles consideradas como grasa. Se tomaron otros 10 mL del extracto original y se transfirieron cuantitativamente a un tubo de ensayo con tap&oacute;n de tefl&oacute;n, se agreg&oacute; 1 mL de &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado para precipitar las grasas. El contenido se agit&oacute; vigorosamente durante un minuto y se dej&oacute; reposar 3 minutos para obtener una buena separaci&oacute;n de las fases. El extracto purificado se sec&oacute;, pas&aacute;ndolo por una capa de sulfato de sodio y se concentr&oacute; en el rotavapor hasta la sequedad. El contenido del matraz se peso para determinar por diferencia de peso la cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles restantes en el extracto purificado.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles consideradas como grasa presente en el extracto antes y despu&eacute;s de la purificaci&oacute;n, se realiz&oacute; por el m&eacute;todo gravim&eacute;trico, pesando la cantidad de residuos secos en balaza anal&iacute;tica. Cada muestra fue analizada con tres niveles de grasas y en 10 repeticiones.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las muestras analizadas fueron tejidos adiposos de humano, bovino, cerdo y pollo; mantequilla y margarina</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Estudio de calidad anal&iacute;tica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para valorar la cantidad de residuos no vol&aacute;tiles se realiz&oacute; el an&aacute;lisis de cada muestra con 10 repeticiones y tres niveles de cantidad de grasa. Los valores promedio de lecturas gravim&eacute;tricas, su desviaci&oacute;n est&aacute;ndar (DE), rangos y coeficiente de varianza (CV), se calcularon por medio del software estad&iacute;stico Minitab versi&oacute;n 12.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se realiz&oacute; un estudio anal&iacute;tico para determinar la capacidad purificadora (de precipitar cuantitativamente las sustancias consideradas como grasas) del &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado aplicado para el an&aacute;lisis de residuos de plaguicidas en muestras ricas en grasas. La grasa presente en los extractos inyectados al cromat&oacute;grafo de gases durante el an&aacute;lisis de plaguicidas, interfiere en el proceso cromatogr&aacute;fico y en la respuesta del detector de captura de electrones. Por esta raz&oacute;n, es una prioridad la eliminaci&oacute;n cuantitativa de las grasas en los extractos para la determinaci&oacute;n cromatogr&aacute;fica de plaguicidas organoclorados. Una de las t&eacute;cnicas anal&iacute;ticas que se utiliza para determinar residuos de plaguicidas organoclorados en muestras con alto contenido de grasa los precipita con el &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado (Waliszewski <i>et al. </i>2004). En el presente trabajo, la cantidad de grasas restantes, no precipitadas presentes en el extracto, se midi&oacute; gravim&eacute;tricamente en diferentes tipos de muestras grasas sometidas al mismo procedimiento anal&iacute;tico. Para determinar la cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles, consideradas como grasas, presentes en el extracto hex&aacute;nico, se prepararon tres extractos de cada tipo de muestra con tres niveles de grasa determinada gravim&eacute;tricamente en 10.0 mL del extracto, tomado para su an&aacute;lisis aproximadamente 100, 300 y 500 mg. Cada muestra analizada la constituyeron los 10.0 mL del extracto tomado con pipeta, al que se le a&ntilde;adi&oacute; 1 mL de &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado. El extracto se agit&oacute; vigorosamente durante un minuto, se decant&oacute; el sobrenadante, se evapor&oacute; el extracto purificado a la sequedad y se determin&oacute; gravim&eacute;tricamente la cantidad de residuos no vol&aacute;tiles. Este procedimiento se repiti&oacute; 10 veces.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Tejido adiposo humano</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles presentes en el extracto hex&aacute;nico de tejido adiposo humano se extrajeron tres muestras, las cuales en cada 10.0 mL conten&iacute;an 121.3, 332.1 y 525.3 mg de grasa respectivamente. Cada muestra se proces&oacute; trat&aacute;ndola con el &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado. Los residuos de sustancias no vol&aacute;tiles se determinaron gravim&eacute;tricamente y los resultados obtenidos de 10 repeticiones se presentan en el <a href="#c1">cuadro I</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n1/a4c1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles presentes en el extracto de tejido adiposo humano vari&oacute; desde 1.2 mg en la muestra de 121.3 mg que constituye 0.99 % de la cantidad total de muestra hasta 2.1 mg en la muestra de 525.3 mg (0.40 % de la muestra tratada). El coeficiente de variaci&oacute;n fue bajo, de 4.8 a 8.3 %, siendo &eacute;ste menor que 10 %, considerado como excelente en el an&aacute;lisis de residuos de plaguicidas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Grasa de bovino</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles contenidas en el extracto hex&aacute;nico de grasa de bovino se procedi&oacute; a la extracci&oacute;n de tres muestras, obteni&eacute;ndose los siguientes niveles de grasa por cada 10.0 mL de extracto: 118.6, 306.5 y 489.7 mg. Cada muestra se proces&oacute; trat&aacute;ndola con el &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado determin&aacute;ndose gravim&eacute;tricamente los residuos de sustancias no vol&aacute;tiles. Los resultados obtenidos de 10 repeticiones se presentan en el <a href="#c2">cuadro II</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n1/a4c2.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La grasa de bovino vari&oacute; desde 1.1 mg en la muestra de 118.6 mg (0.93 % de la cantidad inicial) hasta 1.2 mg en el extracto de 306.5 mg, que representa 0.39 % de la muestra tratada. La cantidad menor de (0.22 %) de residuos no vol&aacute;tiles, se determin&oacute; en la muestra de mayor peso de 489.7 mg. El coeficiente de variaci&oacute;n calculado para las muestras estuvo entre 6.8 y 9.6 %, siendo &eacute;ste menor que 10 %, considerado como excelente en el an&aacute;lisis de residuos de plaguicidas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Grasa de cerdo</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles consideradas como grasa, presentes en el extracto hex&aacute;nico de tejido adiposo de cerdo, determinada en 10.0 mL del extracto fue: 128.8, 294.3 y 524.4 mg. Cada muestra de 10.0 mL se proces&oacute; trat&aacute;ndola con un mililitro de &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado. Los residuos de sustancias no vol&aacute;tiles se determinaron gravim&eacute;tricamente y los resultados obtenidos de 10 repeticiones se presentan en el <a href="#c3">cuadro III</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n1/a4c3.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La cantidad de residuos de sustancias no vol&aacute;tiles vari&oacute; desde 1.4 mg en la muestra de 128.8 mg que constituye 1.08 % de la cantidad total hasta 2.0 mg en el extracto de 524.4 mg, siendo este 0.39 % de la muestra tratada. El coeficiente de variaci&oacute;n, calculado para las muestras estuvo entre 5.0 y 6.7 %. Este valor fue menor que 10 %, excelente para el an&aacute;lisis de residuos de plaguicidas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Grasa de pollo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles presentes en el extracto hex&aacute;nico de grasa de pollo se extrajo tres muestras obteni&eacute;ndose los siguientes niveles de grasa contenida en 10.0 mL del extracto: 101.7, 311.3 y 513.6 mg. Cada muestra se trat&oacute; con un mililitro de &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado. Los residuos de sustancias no vol&aacute;tiles, determinadas gravim&eacute;tricamente en 10 repeticiones, se presentan en el <a href="#c4">cuadro IV</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n1/a4c4.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los residuos de sustancias no vol&aacute;tiles variaron desde 1.3 mg en la muestra de 311.3 mg que constituye 0.42 % de la cantidad total hasta 1.9 mg en el extracto de 101.7 mg, correspondiente a 1.87 % de la muestra tratada. El coeficiente de variaci&oacute;n calculado para las muestras estuvo entre 6.7 y 10.5 %. La variaci&oacute;n de 10.5 % fue para las muestras peque&ntilde;as de 101.7 mg de grasa. Este indicador se&ntilde;ala todav&iacute;a buena precisi&oacute;n en la determinaci&oacute;n realizada. Para las muestras con mayor cantidad de grasa, el coeficiente de variaci&oacute;n baj&oacute; a 7.7 % para la muestra de 311.3 mg y 6.7 % para la muestra grande de 513.6 mg.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Grasa de mantequilla</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles contenidas en el extracto hex&aacute;nico de la grasa de mantequilla, se procedi&oacute; la extracci&oacute;n de tres muestras de mantequilla obteni&eacute;ndose los siguientes niveles de grasa determinada gravim&eacute;tricamente en 10.0 ml del extracto: 124.1, 217.7 y 315.8 mg. Cada muestra, se proces&oacute; trat&aacute;ndola con el &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado. Los residuos de sustancias no vol&aacute;tiles determinados gravim&eacute;tricamente en 10 repeticiones, se presentan en el <a href="#c5">cuadro V</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n1/a4c5.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los residuos oscilaron desde 1.2 mg en la muestra de 124.1 mg que integra 0.97% de la cantidad total hasta 2.2 mg en el extracto de 315.8 mg, que es 0.70 % de la muestra tratada. El coeficiente de variaci&oacute;n calculado para las muestras se encuentra entre 7.7 y 9.1 %. Los an&aacute;lisis realizados en diez repeticiones indican una variaci&oacute;n menor de 10% para las muestras de grasa de mantequilla, indicando muy buena calidad anal&iacute;tica.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Grasa de margarina</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la cantidad de sustancias no vol&aacute;tiles presentes en el extracto hex&aacute;nico de la muestra de margarina, se procedi&oacute; a realizar tres extractos con los siguientes niveles de grasa determinada gravim&eacute;tricamente en 10.0 mL del extracto: 122.8, 201.1 y 310.4 mg. Se procesa cada muestra, trat&aacute;ndola con el &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado. Los residuos de sustancias no vol&aacute;tiles, se determinaron gravim&eacute;tricamente y los resultados obtenidos de 10 repeticiones, se presentan en el <a href="#c6">cuadro VI</a>.</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c6"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rica/v24n1/a4c6.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El <a href="#c6">cuadro VI</a> revela que los residuos de sustancias no vol&aacute;tiles, se encuentran entre 0.8 mg (0.65 %) para las muestras de 122.8 mg, 1.2 mg (0.60 %) para las muestras de 201.1 mg y 2.0 mg (0.64 %) para las muestras grandes de 310.4 mg. El coeficiente de variaci&oacute;n calculado para los residuos restantes ocurri&oacute; entre 5.0 a 12.5 %. Los resultados realizados en diez repeticiones mostraron una variaci&oacute;n mayor de 12.5 % para las muestras de 122.8 mg de grasa, mientras que para las muestras de 201.1 mg de grasa, el coeficiente de variaci&oacute;n disminuy&oacute; a 8.3 % y para la muestra mayor de 310.4 mg disminuy&oacute; hasta 5.0 %.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La t&eacute;cnica anal&iacute;tica que utiliza el &aacute;cido sulf&uacute;rico para precipitar las grasas durante el an&aacute;lisis de plaguicidas organoclorados permite obtener muy buena recuperaci&oacute;n de plaguicidas (mayor de 90 %) y un extracto listo para la corrida cromatogr&aacute;fica con una m&iacute;nima cantidad (0.8 a 2.2 mg que constituye 0.22 a 1.87 % de la muestra procesada) de grasas determinadas gravim&eacute;tricamente como sustancias no vol&aacute;tiles. Al comparar el costo de un mililitro de &aacute;cido sulf&uacute;rico concentrado con el costo de los adsorbentes habitualmente utilizados para separar las grasas en el extracto hex&aacute;nico, resulta muy evidente que el uso del &aacute;cido sulf&uacute;rico es mucho m&aacute;s efectivo. La baja cantidad de residuos no vol&aacute;tiles presentes en el extracto tratado permite realizar m&uacute;ltiples corridas cromatogr&aacute;ficas de muestras sin disminuir la capacidad de resoluci&oacute;n de la columna cromatogr&aacute;fica. Al mismo tiempo se observa que el extracto analizado no contamina la fuente radiactiva (Ni<sup>63</sup>) del detector de captura de electrones y no disminuye su respuesta. Los estudios de calidad anal&iacute;tica realizados para 6 tipos de muestras grasas con tres niveles de contenido de grasa en 10 repeticiones, mostraron un coeficiente de variaci&oacute;n que oscila entre 4.8 y 12.5 %, indicando que es un m&eacute;todo recomendable para la determinaci&oacute;n de productos grasos contaminados con plaguicidas organoclorados.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Batten P.L. y Hutson D.H. (1995). The mammalian metabolism of agrochemicals. John Whiley &amp; Sons. New York., 268&#150;302.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7190993&pid=S0188-4999200800010000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cameron M.E. y van Staveren W.A. (1988). Manual on methodology for food consumption studies. Oxford University Press, New York, 1&#150;206.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7190994&pid=S0188-4999200800010000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Carson R.L. (1962). Silent spring. Greenwich, Conn. Fawcett Crest, EUA.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7190995&pid=S0188-4999200800010000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Horton R. (2007). DDT for malaria control: the issue of trade. Lancet, 369, 248.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7190996&pid=S0188-4999200800010000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kochi A. (2006). DDT is back: let us spray! The FASEB Journal, 20, 2427&#150;2429.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7190997&pid=S0188-4999200800010000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mandavilli A. (2006). Health agency backs use of DDT against malaria. Nature, 443, 250&#150;251.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7190998&pid=S0188-4999200800010000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nelson M. (1991). Past intake in design concepts in nutritional epidemiology. En: <i>Nutritional epidemiology. </i>(Margetts B.M., Nelson M. eds.) Oxford University Press, Oxford, 175&#150;180.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7190999&pid=S0188-4999200800010000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rogan W. J. y Chen A. (2005). Health risks and benefits of bis(4&#150;chlorophenyl)&#150;1,1,1&#150;trichloroethane (DDT). Lancet, 366, 763&#150;773.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7191000&pid=S0188-4999200800010000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schapira A. (2006). DDT: a polluted debate in malaria control. Lancet, 368, 2111&#150;2113.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7191001&pid=S0188-4999200800010000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sempos C.T., Biefel R.R., Flegal K.M., Jhonson C. L., Murphy R. S. (1992). Factors involved in selecting a dietary survey methodology for national surveys. Aust. J. Nutr. Dis. 49, 96&#150;105.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7191002&pid=S0188-4999200800010000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Waliszewski S.M., G&oacute;mez&#150;Arroyo S., Carvajal O., Villalobos&#150;Pietrini R. e Infanz&oacute;n R.M. (2004). Uso del &aacute;cido sulf&uacute;rico en las determinaciones de plaguicidas organoclorados. Revista Internacional de Contaminaci&oacute;n Ambiental, 20, 185&#150;192.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7191003&pid=S0188-4999200800010000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Waliszewski S.M., Szymczynski G.A. (1990). Determination of phthalate esters in human semen. Androlog&iacute;a, 22, 69&#150;73.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7191004&pid=S0188-4999200800010000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">WHO (2007). Malaria. World Health Organization. Fact Sheet No. 94, consultada en: <a href="http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs094/en/" target="_blank">http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs094/en/</a>.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7191005&pid=S0188-4999200800010000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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