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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización de rizobacterias aisladas de tomate y su efecto en el crecimiento de tomate y pimiento]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The use of microbial biofertilizers based on plant-growth-promoting rhizobacteria is a biotechnological alternative to improve production of horticultural crops seedlings. In this study, four bacterial strains previously isolated from tomato (Lycopersicum esculentum Mill.) rhizosphere were identified by using 16S rRNA gene sequence analysis and characterized according to their biochemical properties as plant growth promoters, and their effect on seed germination and seedling growth of tomato and bell pepper (Capsicum annuum L.) was also evaluated. The four strains isolated, named MA04, MA06, MA12 and MA17 and belonging to genus Bacillus, were able to produce indole acetic acid (0.9 to 2.3 mg L-1), to solubilize tricalcium phosphate (18.5 to 34.7 mg L-1), and posess ACC deaminase activity. Furthermore, MA04, MA06 and MA12 can grow in nitrogen free culture medium (with potential atmospheric nitrogen fixing ability). As far as their effect on tomato seeds, MA04 and MA17 improved germination by 5 and 6 % respectively, while MA06 and MA12 strains increased seedling weight by 17 and 20 %, respectively. On pepper seeds, only MA06 increased germination by 7 %, whereas MA12 and MA17 strains increased biomass by 37 and 16 % respectively. The MA12 strain proved to be the most efficient for improving seedling growth of tomato and bell pepper and could be proposed to produce biofertilizers for both plant species.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos Cient&iacute;ficos</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Caracterizaci&oacute;n de rizobacterias aisladas de tomate y su efecto en el crecimiento de tomate y pimiento</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Characterization of rhizobacteria isolated from tomato and their effect on tomato and bell pepper growth</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Laura Luna Mart&iacute;nez, Ram&oacute;n A. Mart&iacute;nez Peniche, Montserrat Hern&aacute;ndez Iturriaga, Sof&iacute;a M. Arvizu Medrano y Juan R. Pacheco Aguilar*</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Facultad de Qu&iacute;mica, Universidad Aut&oacute;noma de Quer&eacute;taro. Centro Universitario s/n, Colonia las Campanas, 76010. Quer&eacute;taro, Qro. Tel. 01 (442) 192&#45;1200 Ext. 5531; Fax 01 (442) 192&#45;1304. *Autor para correspondencia</i> (<a href="mailto:ramiro.pacheco@uaq.mx">ramiro.pacheco@uaq.mx</a>)</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 24 de Noviembre del 2011    <br> 	Aceptado: 20 de Diciembre del 2012</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El empleo de biofertilizantes con base en rizobacterias promotoras del crecimiento, constituye una alternativa biotecnol&oacute;gica para mejorar la producci&oacute;n de especies de inter&eacute;s hort&iacute;cola. En el presente trabajo se identificaron mediante an&aacute;lisis del gen <i>16S</i> rRNA, cuatro rizobacterias previamente aisladas de plantas de tomate <i>(Lycopersicum esculentum</i> Mill.), las que fueron caracterizadas por sus propiedades bioqu&iacute;micas relacionadas con la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal y evaluadas por su efecto en la germinaci&oacute;n y crecimiento de pl&aacute;ntulas de tomate y pimiento <i>(Capsicum annuum</i> L.). Las cuatro cepas, denominadas MA04, MA06, MA12 y MA17, pertenecen al g&eacute;nero <i>Bacillus,</i> producen &aacute;cido indolac&eacute;tico (0.9 a 2.3 mg L<sup>&#45;1</sup>), solubilizan f&oacute;sfato tric&aacute;lcico (18.5 a 34.7 mg&#45;L<sup>&#45;1</sup>) y poseen actividad ACC deaminasa. Adem&aacute;s, MA04, MA06 y MA12 fueron capaces de crecer en ausencia de nitr&oacute;geno (potenciales fijadoras de nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico). Al evaluar el efecto de la inoculaci&oacute;n de estas rizobacterias en semillas de tomate se encontr&oacute; que MA04 y MA17 aumentaron el porcentaje de germinaci&oacute;n en 5 y 6 % respectivamente, mientras que las cepas MA06 y MA12 incrementaron el peso de las pl&aacute;ntulas en 17 y 20 % respectivamente. En semillas de pimiento, la cepa MA06 increment&oacute; el porcentaje de germinaci&oacute;n en 7 %, y MA12 y MA17 incrementaron la biomasa en 37 y 16 %, respectivamente. La cepa MA12 fue m&aacute;s vers&aacute;til para promover el crecimiento de pl&aacute;ntulas de tomate y pimiento, y podr&iacute;a recomendarse para la formulaci&oacute;n de biofertilizantes destinados al tratamiento de tales cultivos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Capsicum annuum, Lycopersicum esculentum,</i> actividad ACC deaminasa, &aacute;cido indolac&eacute;tico, fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno, sider&oacute;foros, solubilizaci&oacute;n de fosfatos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><b><font size="2" face="verdana">Abstract</font></b></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The use of microbial biofertilizers based on plant&#45;growth&#45;promoting rhizobacteria is a biotechnological alternative to improve production of horticultural crops seedlings. In this study, four bacterial strains previously isolated from tomato <i>(Lycopersicum esculentum</i> Mill.) rhizosphere were identified by using 16S rRNA gene sequence analysis and characterized according to their biochemical properties as plant growth promoters, and their effect on seed germination and seedling growth of tomato and bell pepper <i>(Capsicum annuum</i> L.) was also evaluated. The four strains isolated, named MA04, MA06, MA12 and MA17 and belonging to genus Bacillus, were able to produce indole acetic acid (0.9 to 2.3 mg L<sup>&#45;1</sup>), to solubilize tricalcium phosphate (18.5 to 34.7 mg L<sup>&#45;1</sup>), and posess ACC deaminase activity. Furthermore, MA04, MA06 and MA12 can grow in nitrogen free culture medium (with potential atmospheric nitrogen fixing ability). As far as their effect on tomato seeds, MA04 and MA17 improved germination by 5 and 6 % respectively, while MA06 and MA12 strains increased seedling weight by 17 and 20 %, respectively. On pepper seeds, only MA06 increased germination by 7 %, whereas MA12 and MA17 strains increased biomass by 37 and 16 % respectively. The MA12 strain proved to be the most efficient for improving seedling growth of tomato and bell pepper and could be proposed to produce biofertilizers for both plant species.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Capsicum annuum, Lycopersicum esculentum,</i> ACC deaminase activity, indole acetic acid, biological nitrogen fixation, siderophores, phosphate solubilization.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fertilidad de un suelo est&aacute; basada en su capacidad para suministrar los nutrientes necesarios para el desarrollo de las plantas; en ello juega un papel importante la comunidad microbiana que participa activamente en la captaci&oacute;n de nutrientes y en la mineralizaci&oacute;n de la materia org&aacute;nica. Numerosos reportes han descrito la asociaci&oacute;n ben&eacute;fica entre plantas y microorganismos en la que bacterias y hongos aplicados a la semilla, al suelo o a la planta, colonizan la ra&iacute;z, la rizosfera o ambos, y promueven el crecimiento de las plantas e incrementan la absorci&oacute;n y disponibilidad de nutrientes del suelo. Estos microorganismos son conocidos como promotores del crecimiento vegetal (Kloepper y Schroth, 1978) y pueden ser empleados como biofertilizantes en cultivos (Vessey, 2003).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entre los mecanismos bioqu&iacute;micos descritos en los microorganismos promotores del crecimiento de plantas se encuentra la fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno atmosf&eacute;rico (FBN), que es llevada a cabo por rizobacterias simbi&oacute;ticas como <i>Rhizobium</i> sp. u otras de vida libre como <i>Azotobacter</i> sp. y <i>Azospirillum</i> sp. que han sido empleadas extensivamente como biofertilizantes para mejorar la disponibilidad de nitr&oacute;geno en hortalizas como tomate <i>(Lycopersicum esculentum</i> ) (Santillana <i>et al.,</i> 2005), cebolla <i>(Allium cepa</i> L.) (Balemi <i>et al.,</i> 2007) y ma&iacute;z (Zea <i>mays</i> L.) (Biari <i>et al.,</i> 2008). Pe&ntilde;a y Reyes (2007) reportaron que ciertas cepas de <i>Rhizobium</i> inoculadas en pl&aacute;ntulas de lechuga <i>(Lactuca sativa</i> L.) aumentaron su crecimiento debido a la producci&oacute;n de &aacute;cido indolac&eacute;tico (AIA), hormona vegetal que promueve el desarrollo radical o vegetativo (Garc&iacute;a <i>et al.,</i> 2010 ) y la producci&oacute;n de frutos (Gravel <i>et al.,</i> 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Otra de las propiedades de tales microorganismos se relaciona con la capacidad de aumentar la disponibilidad de nutrientes en el suelo, como el f&oacute;sforo, mediante la producci&oacute;n de &aacute;cidos org&aacute;nicos capaces de solubilizar los fosfatos que forman complejos insolubles con las bases del suelo (Goldstein, 2007). Seg&uacute;n Datta <i>et al.</i> (2011), la inoculaci&oacute;n de plantas de chile <i>(Capsicum annum</i> L.) con cepas de <i>Bacillus</i> sp. productoras de AIA y solubilizadoras de fosfatos, aument&oacute; el peso y el n&uacute;mero de frutos. Los &aacute;cidos org&aacute;nicos producidos por las bacterias promotoras del crecimiento incrementan tambi&eacute;n la disponibilidad de micronutrientes como el hierro (Fe) en la zona de la rizosfera. El hierro a su vez puede ser captado por sider&oacute;foros, mol&eacute;culas org&aacute;nicas secretadas por estas bacterias, con las que forman quelatos que pueden ser asimilados por las plantas (Crowley, 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las bacterias productoras de sider&oacute;foros y AIA frecuentemente poseen la enzima aminociclopropano carboxilato (ACC) deaminasa (E.C.4.1.99.4), la cual degrada al ACC, precursor del etileno (Glick <i>et al.,</i> 2007). Etileno es una hormona vegetal producida bajo estr&eacute;s, que en altas concentraciones inhibe el crecimiento vegetal. Se ha reportado que la reducci&oacute;n en los niveles de etileno por acci&oacute;n de las rizobacterias promotoras del crecimiento, podr&iacute;a resultar en un mayor desarrollo de las plantas inoculadas (Husen <i>et al.,</i> 2011).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las bacterias promotoras del crecimiento vegetal tienen un gran potencial en la agricultura moderna, porque en la actualidad el cultivo de la mayor&iacute;a de las hortalizas como tomate y pimiento requiere de la producci&oacute;n de pl&aacute;ntulas vigorosas, factor importante para la producci&oacute;n del fruto. El presente trabajo tuvo por objetivo identificar bacterias aisladas de la rizosfera del tomate, caracterizarlas en funci&oacute;n de sus propiedades promotoras del crecimiento vegetal, y evaluar su efecto por inoculaci&oacute;n en el desarrollo de pl&aacute;ntulas de tomate y pimiento crecidas en condiciones de cultivo controladas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamientos bacterianos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas empleadas en el presente trabajo, designadas como MA04, MA06, MA12 y MA17, pertenecen a una colecci&oacute;n de rizobacterias aisladas de plantas de tomate cultivado en el Rancho "Sta Mar&iacute;a de Guadalupe" en Tequisquiapan, Quer&eacute;taro, M&eacute;xico. Fueron aisladas mediante el m&eacute;todo de diluci&oacute;n y siembra en placas con agar nutritivo. Tales cepas fueron seleccionadas por encontrarse dentro de las poblaciones bacterianas cultivables m&aacute;s abundantes (9.8 X 10<sup>4</sup> ufc g<sup>&#45;1</sup>), y por tener la capacidad para solubilizar fosfatos seg&uacute;n evaluaciones hechas mediante el ensayo propuesto por Ramachandran <i>et al.</i> (2007). Tales aislados bacterianos fueron sembrados en placas que conten&iacute;an fosfato tric&aacute;lcico insoluble como &uacute;nica fuente de f&oacute;sforo, y en tales condiciones se encontr&oacute; crecimiento de la cepa y formaci&oacute;n de un halo. El m&eacute;todo de coloraci&oacute;n de Gram positivo y la formaci&oacute;n de esporas fue otra caracter&iacute;stica considerada para su selecci&oacute;n, en el que la tinci&oacute;n de endosporas se hizo con la t&eacute;cnica modificada de Schaeffer&#45;Fulton (Mormak y Casida, 1985). Estas &uacute;ltimas caracter&iacute;sticas podr&iacute;an asegurar su supervivencia en el suelo despu&eacute;s de ser inoculadas. Las cepas fueron cultivadas en caldo nutritivo y conservadas en glicerol al 20 %, a &#45;20 &deg;C.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Identificaci&oacute;n molecular</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR) para amplificar el gen que codifica para la subunidad <i>16S</i> del ARNr, en las condiciones y con los oligonucle&oacute;tidos universales para bacterias fD1 y rD1 propuestos por Weisburg <i>et al.</i> (1991). El producto de amplificaci&oacute;n (1600 pb) fue secuenciado completamente y comparado con el banco de datos del NCBI (National Center for Biotechnology Information) mediante el programa Blast (<a href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/" target="_blank">http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/</a>), para buscar homolog&iacute;a con secuencias de bacterias antes reportadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Actividad de ACC deaminasa</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas se sembraron por estr&iacute;a en placas con medio m&iacute;nimo Dworkin y Foster (DF) (Penrose y Glick, 2003), el cual conten&iacute;a 0.3 g L<sup>&#45;1</sup> de 1&#45;aminociclopropano 1&#45;carboxilato (ACC) como &uacute;nica fuente de nitr&oacute;geno. Las placas se incubaron por 3 d a 30 &deg;C, despu&eacute;s de lo cual se registr&oacute; como positivo para la actividad ACC deaminasa, aquellas placas en las cuales se observ&oacute; crecimiento bacteriano (Sgroy <i>et al.,</i> 2009).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar la probable fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno (FBN), las cepas fueron sembradas por punci&oacute;n y por triplicado en medio semis&oacute;lido FBN (Naher <i>et al.,</i> 2009) libre de nitr&oacute;geno. Este medio indica la capacidad de los microorganismos inoculados para crecer en ausencia de nitr&oacute;geno mineral y en presencia de &aacute;cido m&aacute;lico como &uacute;nica fuente de carbono. En el caso de bacterias microaerof&iacute;licas como <i>Azospirillum</i> sp., la fijaci&oacute;n de nitr&oacute;geno ocurre mediante la formaci&oacute;n de una pel&iacute;cula sub&#45;superficial despu&eacute;s de dos semanas de incubaci&oacute;n a 30 &deg;C (D&ouml;bereiner, 1995).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Producci&oacute;n de sider&oacute;foros</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas se inocularon por triplicado en tubos que conten&iacute;an medio l&iacute;quido con &aacute;cido succ&iacute;nico, fructosa y tript&oacute;fano (SFS) (composici&oacute;n en g L<sup>&#45;1</sup>: 6.0 NaH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>&#45;7H<sub>2</sub>O, 3.0 K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>, 1.0 NH<sub>4</sub>Cl, 0.5 NaCl, 2.0 glucosa, 1.0 &aacute;cido succ&iacute;nico, 5.0 fructosa, y 1.0 tript&oacute;fano); al final el pH se ajust&oacute; a 7.2. Las cepas as&iacute; sembradas se incubaron a 30 &deg;C por 120 h en agitaci&oacute;n constante a 180 rpm. Posteriormente, los cultivos fueron centrifugados a 8000 <i>Xg</i> durante 10 min; el sobrenadante fue filtrado a trav&eacute;s de una membrana de 0.22 &#956;m de di&aacute;metro de poro (Millipore), y luego 1 mL del filtrado se mezcl&oacute; con 1 mL del reactivo cromo azurol&#45;S (CAS) modificado (Alexander y Zuberer, 1991), y la mezcla se dej&oacute; reaccionar durante 30 min. El cambio en el color del reactivo CAS, de azul a naranja, fue registrado como positivo para la producci&oacute;n de sider&oacute;foros.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Producci&oacute;n de &aacute;cido indol&#45;3&#45;ac&eacute;tico (AIA) e indoles</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas se inocularon por triplicado en 25 mL de caldo nutritivo suplementado con tript&oacute;fano (1 g L<sup>&#45;1</sup>), y los cultivos se incubaron a 30 &deg;C por 72 h en agitaci&oacute;n constante a 180 rpm. Despu&eacute;s se obtuvo el sobrenadante por centrifugaci&oacute;n a 8000 <i>Xg</i> por 10 min. El AIA contenido en esta fracci&oacute;n fue extra&iacute;do tres veces con 9 mL de acetato de etilo, el cual fue evaporado y el AIA fue resuspendido en 4 mL de metanol. Para la determinaci&oacute;n de AIA se mezcl&oacute; 1 mL de la soluci&oacute;n metan&oacute;lica&#45;AIA con 2 mL del reactivo de Salkowski, y la mezcla se dej&oacute; reaccionar durante 30 min a temperatura ambiente; despu&eacute;s se cuantific&oacute; el complejo colorido a 530 nm en un espectrofot&oacute;metro (Spectronic unicam<sup>&#174;</sup>, Helios). Para determinar la concentraci&oacute;n se elabor&oacute; una curva est&aacute;ndar de 3.6 a 25.2 mg L<sup>&#45;1</sup> de AIA, cuyo control negativo fue el mismo medio de cultivo sin inocular (Thakuria <i>et al.,</i> 2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Solubilizaci&oacute;n de fosfatos de calcio</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas se cultivaron por triplicado en 25 mL de medio Pikovskaya (Nautiyal, 1999), el cual contiene fosfato tric&aacute;lcico Ca<sub>3</sub>(PO<sub>4</sub>)<sub>2</sub> insoluble como &uacute;nica fuente de f&oacute;sforo, y se incubaron a 30 &deg;C por 120 h en agitaci&oacute;n constante a 180 rpm. Al t&eacute;rmino, los cultivos fueron centrifugados a 8000 <i>Xg</i> por 10 min. Para cuantificar el f&oacute;sforo soluble (P&#45;PO<sub>4</sub>) en el sobrenadante, se emple&oacute; el m&eacute;todo de azul de molibdeno (Ben <i>et al.,</i> 2009), y la lectura del complejo formado se hizo en el espectrofot&oacute;metro a 882 nm. Para la cuantificaci&oacute;n se elabor&oacute; una curva est&aacute;ndar de 0.13 a 0.67 mg L<sup>&#45;1</sup> de P&#45;PO<sub>4</sub>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ensayo de inoculaci&oacute;n en pl&aacute;ntulas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para evaluar el efecto de la inoculaci&oacute;n sobre la germinaci&oacute;n y desarrollo de pl&aacute;ntulas, las cepas fueron cultivadas en 500 mL de caldo nutritivo en agitaci&oacute;n constante a 180 rpm por 16 h a 30 &deg;C. Posteriormente, los cultivos se centrifugaron a 8000 <i>Xg</i> por 10 min para obtener las c&eacute;lulas, que fueron lavadas dos veces con soluci&oacute;n salina est&eacute;ril a 0.8 % y disueltas en 2 mL de soluci&oacute;n salina para su recuento en c&aacute;mara de Neubauer (M&aacute;rquez <i>et al.,</i> 2003). La concentraci&oacute;n celular se ajust&oacute; a 10<sup>7</sup> c&eacute;lulas mL<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para cada cepa, 150 semillas del tomate cv. 'R&iacute;o Grande' y 150 semillas del pimiento morr&oacute;n cv. 'California Wonder' fueron inoculadas por inmersi&oacute;n en 10 mL de la suspensi&oacute;n bacteriana, y puestas en agitaci&oacute;n a 140 rpm por 1 h. Como testigo se emplearon semillas sin inocular inmersas en soluci&oacute;n salina. Despu&eacute;s, las semillas fueron sembradas en bandejas de germinaci&oacute;n de 200 cavidades llenadas con turba humedecida a capacidad de campo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Diez d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra (dds) se registr&oacute; el porcentaje de germinaci&oacute;n para las semillas de tomate, mientras que para el pimiento &eacute;ste se registr&oacute; 15 dds. Despu&eacute;s, las pl&aacute;ntulas fueron llevadas a condiciones de invern&aacute;culo (Abril de 2011 con 12 h de luz diurna y una temperatura promedio de 28 &deg;C) donde fueron fertilizadas diariamente con una soluci&oacute;n nutritiva con la siguiente composici&oacute;n (g L<sup>&#45;1</sup>): 0.75 KNO<sub>3</sub>, 0.175 NH<sub>4</sub>H<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>, 0.675 Ca(NO<sub>3</sub>)<sub>2</sub>&#8901;4H<sub>2</sub>O, 0.&nbsp;3 MgSO<sub>4</sub>&#8901;7H<sub>2</sub>O y 0.05 FeSO<sub>4</sub>&#8901;7H<sub>2</sub>O. Las pl&aacute;ntulas de tomate se cultivaron por 30 d y las de pimiento por 60 d; al t&eacute;rmino de cada periodo, en cada pl&aacute;ntula se midi&oacute; altura, di&aacute;metro, peso fresco y seco del v&aacute;stago y ra&iacute;z, como variables de crecimiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de datos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dise&ntilde;o experimental fue completamente aleatorio y consisti&oacute; de cinco tratamientos y seis repeticiones. Los tratamientos correspondieron a la inoculaci&oacute;n de cada una de las cuatro cepas, m&aacute;s un testigo sin inocular. La unidad experimental estuvo constituida por 25 plantas, de las cuales diez constituyeron la parcela &uacute;til. Los datos obtenidos fueron sujetos a an&aacute;lisis de varianza y prueba de medias de Tukey (P &#8804; 0.05) (Casta&ntilde;o y Dom&iacute;nguez, 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Identificaci&oacute;n del g&eacute;nero bacteriano</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La comparaci&oacute;n de las secuencias obtenidas del gen <i>16S</i> ARNr de las cuatro cepas aisladas contra la base de datos del NCBI, indic&oacute; que todas ellas pertenecen al g&eacute;nero <i>Bacillus;</i> una cepa present&oacute; un alto porcentaje de similitud con especies de <i>B. subtilis</i> y dos cepas con <i>B. megaterium.</i> La afiliaci&oacute;n gen&eacute;tica de las cepas se muestra en el <a href="#c1">Cuadro</a> <a href="#c1">1</a>.&nbsp;Diversas cepas de <i>Bacillus</i> han sido reconocidas por su capacidad para mejorar la disponibilidad de nutrientes en diferentes cultivos agr&iacute;colas y forestales (G&uuml;l <i>et al.,</i> 2008; Mart&iacute;nez <i>et al.,</i> 2010; Umashankar <i>et al.,</i> 2012). Adem&aacute;s, su habilidad para colonizar la rizosfera y tolerar condiciones ambientales extremas son caracter&iacute;sticas consideradas para la producci&oacute;n comercial de biofertilizantes (Saharan y Nehra, 2011). Estudios de diversidad microbiana identifican a <i>B. subtilis</i> y <i>B. megaterium</i> dentro de las poblaciones cultivables de suelos agr&iacute;colas, cuya abundancia oscila entre 10<sup>3</sup> a 10<sup>6</sup> ufc g<sup>&#45;1</sup> de suelo (Kumar <i>et al.,</i> 2011).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rfm/v36n1/a7c1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Caracter&iacute;sticas bioqu&iacute;micas en la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Diversas propiedades bioqu&iacute;micas t&iacute;picas de las bacterias promotoras del crecimiento vegetal se identificaron en las cepas aqu&iacute; estudiadas. Se detect&oacute; la presencia de la actividad ACC deaminasa en todas las cepas evaluadas (<a href="/img/revistas/rfm/v36n1/a7c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Seg&uacute;n Saleem <i>et al.</i> (2007), las plantas inoculadas con bacterias que presentan esta actividad toleran ciertos niveles de estr&eacute;s provocados por sequ&iacute;a, anegaci&oacute;n, salinidad y presencia de metales pesados, debido a que la enzima ACC deaminasa disminuye la s&iacute;ntesis de altas concentraciones de etileno, y as&iacute; reduce el estr&eacute;s de manera transitoria.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La capacidad de las bacterias para crecer en medio carente de nitr&oacute;geno (presumiblemente por fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno) fue registrada en tres de las cuatro cepas estudiadas. Esta actividad se ha estudiado ampliamente en el g&eacute;nero <i>Bacillus.</i> En tal sentido, Kifle y Laing (2011) reportaron que la inoculaci&oacute;n de cepas de <i>Bacillus</i> en lechuga increment&oacute; el contenido de nitr&oacute;geno en las plantas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La producci&oacute;n de sider&oacute;foros s&oacute;lo fue comprobada en las cepas MA06 y MA17. La secreci&oacute;n de estas mol&eacute;culas por bacterias promotoras del crecimiento vegetal ejercer&iacute;a un efecto de biocontrol, al disminuir la biodisponibilidad de Fe para los microorganismos pat&oacute;genos de la rizosfera y reducir su colonizaci&oacute;n (Crowley, 2006), y adem&aacute;s modificar el estado nutricional en este elemento en las plantas colonizadas (Loper y Buyer, 1991; Bar <i>et. al.,</i> 1992; Zhang <i>et al.,</i> 2009).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La producci&oacute;n de AIA e &iacute;ndoles por la cepas aisladas fue del orden de 2.3 a 6.8 mg L<sup>&#45;1</sup>. Valores similares fueron previamente reportados por Wahyudi <i>et al.</i> (2011), quienes caracterizaron seis aislados rizosf&eacute;ricos del g&eacute;nero <i>Bacillus,</i> por su capacidad para promover el crecimiento de pl&aacute;ntulas de soya <i>(Glycine max</i> Merr.); tales microorganismos produc&iacute;an AIA en concentraciones desde 3.02 hasta 5.45 mg L<sup>&#45;1</sup>.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el ensayo de solubilizaci&oacute;n de fosfatos las cepas con mayor capacidad fueron MA06 y MA17, en cuyos medios de cultivo se detect&oacute; 56.0 y 34.8 mg L<sup>&#45;1</sup> de f&oacute;sforo soluble (P&#45;PO<sub>4</sub>)<sub>,</sub> respectivamente. Dicha capacidad es comparable a la obtenida por otras bacterias rizosf&eacute;ricas aisladas de ma&iacute;z por Alam <i>et al.</i> (2002) y de arroz <i>(Oryza sativa</i> L.) por Thakuria <i>et al.</i> (2004).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Efecto de los inoculantes sobre la germinaci&oacute;n y crecimiento de pl&aacute;ntulas</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados obtenidos por la inoculaci&oacute;n de semillas de tomate mostraron que las cepas MA04 y MA17 aumentaron la germinaci&oacute;n en 5.0 y 6.0 %, respectivamente (<a href="/img/revistas/rfm/v36n1/a7c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). La germinaci&oacute;n depende de la viabilidad del embri&oacute;n y de la ruptura del letargo generado por las condiciones ambientales, en el caso del tipo de semillas con tales caracter&iacute;sticas. En este &uacute;ltimo caso es en el que pueden incidir las bacterias promotoras del crecimiento vegetal, pues se ha reportado que la reducci&oacute;n en los niveles de etileno por efecto de la actividad ACC deaminasa en la semilla, aumentar&iacute;a su germinaci&oacute;n, junto con la producci&oacute;n de AIA que estimular&iacute;a la divisi&oacute;n celular, para as&iacute; favorecer el inicio del crecimiento del embri&oacute;n (Jalili <i>et al.,</i> 2009). En semillas de tomate, Lagunas <i>et al.</i> (2001) reportaron que la inoculaci&oacute;n con <i>Bacillus firmus</i> aument&oacute; su germinaci&oacute;n en 6.0 %, efecto de magnitud similar al encontrado en este ensayo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En cuanto al crecimiento de las pl&aacute;ntulas, se encontr&oacute; que a los 30 d de haberse iniciado el ensayo, cada una de las cepas hab&iacute;a tenido un efecto positivo en al menos una de las variables evaluadas. Las cepas MA06 y MA12 aumentaron de manera significativa (P &#8804;0.05) el di&aacute;metro del tallo y el peso fresco y seco del v&aacute;stago, lo que se reflej&oacute; en aumentos de biomasa de 17.0 y 20.0 % en tallo y v&aacute;stago, respectivamente. La cepa MA17 solo mejor&oacute; (P &#8804; 0.05) el peso seco del v&aacute;stago y la biomasa en 12.0 %. Pero ninguna cepa tuvo efecto significativo en el peso de la ra&iacute;z (<a href="/img/revistas/rfm/v36n1/a7c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estos resultados coinciden con los reportados por otros autores que inocularon pl&aacute;ntulas de tomate con diferentes cepas de <i>Bacillus</i> (Lagunas <i>et al.,</i> 2001), <i>Rhizobium</i> (Santillana <i>et al.,</i> 2005) y <i>Ralstonia</i> (Baston <i>et al.,</i> 2008). En tales experimentos se mejor&oacute; de manera significativa el peso seco del v&aacute;stago, pero tambi&eacute;n en el peso seco de la ra&iacute;z. En nuestro estudio, la altura de las pl&aacute;ntulas se increment&oacute; en 14.0 % s&oacute;lo con la inoculaci&oacute;n de la cepa MA06. Para esta misma variable, Ribaudo <i>et al.</i> (2006) encontraron efectos similares en pl&aacute;ntulas de tomate inoculadas con una cepa de <i>Azospirillum brasilense,</i> al registrar un incremento de 20 %.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En las semillas de pimiento se encontr&oacute; que la inoculaci&oacute;n con la cepa MA06 mejor&oacute; su germinaci&oacute;n en 7.0 % (<a href="/img/revistas/rfm/v36n1/a7c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>), porcentaje similar al obtenido por Reyes <i>et al.</i> (2008) quienes mediante inoculaci&oacute;n con cepas de los g&eacute;neros <i>Azospirillum</i> y <i>Rhizobium,</i> mejoraron la germinaci&oacute;n de la especie en 5.0 y 11.0 %, respectivamente.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el crecimiento de las pl&aacute;ntulas de pimiento, la cepa MA12 indujo incrementos en todas las variables consideradas, que se reflejaron en un aumento de 37.0 % en la biomasa de la planta. En cambio, la cepa MA17 mejor&oacute; solamente el peso fresco del v&aacute;stago de modo que la biomasa aument&oacute; en 16.0 %. Existen pocos trabajos sobre la aplicaci&oacute;n de bacterias promotoras del crecimiento en pimiento. Reyes <i>et al.</i> (2008) inocularon pimiento con cepas de <i>Azotobacter, Azospirillum</i> y <i>Rhizobium</i> y en tres meses lograron un aumento de 100 % en el peso seco del v&aacute;stago, lo cual no es comparable con el ensayo aqu&iacute; reportado que dur&oacute; solo dos meses.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Varios autores coinciden que el AIA producido por las cepas inoculadas es el principal metabolito que induce el crecimiento de las plantas, al aumentar la divisi&oacute;n celular y la diferenciaci&oacute;n de los tejidos, efectos que se ven reflejados en un mayor contenido de biomasa (Lagunas <i>et al.,</i> 2001; Santillana <i>et al.,</i> 2005). Esto fue corroborado por Ribaudo <i>et al.</i> (2006), quienes encontraron un mayor contenido de AIA en los tejidos de plantas inoculadas con <i>Azospirillum</i> sp. con respecto a las plantas no inoculadas.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">El AIA absorbido por las semillas y las ra&iacute;ces de las plantas tambi&eacute;n podr&iacute;a estimular la actividad de la enzima ACC sintetasa, la cual est&aacute; involucrada en la s&iacute;ntesis del etileno. Se ha encontrado que bajas concentraciones de etileno promueven el crecimiento de los pelos radicales de las plantas inoculadas, y as&iacute; aumentan el &aacute;rea superficial de la ra&iacute;z para una mayor absorci&oacute;n de nutrientes. Las bacterias promotoras del crecimiento evitan las altas concentraciones de etileno, las cuales tienen efectos inhibitorios en el desarrollo de las plantas. La concentraci&oacute;n de etileno en plantas inoculadas puede ser el resultado del balance entre la s&iacute;ntesis estimulada por los altos niveles de AIA y la actividad ACC deaminasa (Ribaudo <i>et al.,</i> 2006; Saleem <i>et al.,</i> 2007).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados aqu&iacute; obtenidos demuestran tambi&eacute;n que el efecto promotor del crecimiento de algunas cepas var&iacute;a con el tipo de hospedante, debido probablemente a la competencia por la colonizaci&oacute;n de la rizosfera y a la quimioatracci&oacute;n que ejercen los distintos exudados radicales producidos por las plantas que adem&aacute;s promover&iacute;an la interacci&oacute;n planta&#45;microorganismo (Kumar <i>et al.,</i> 2011). La magnitud del efecto positivo de la cepa MA04 sobre la germinaci&oacute;n de semillas, fue diferente en el tomate que en el pimiento. Lo mismo ocurri&oacute; con MA06 que produjo plantas m&aacute;s vigorosas de tomate, pero no promovi&oacute; de igual manera en pimiento. Caso contrario sucedi&oacute; con las cepas MA12 y MA17, las que fueron m&aacute;s vers&aacute;tiles para promover el crecimiento de pl&aacute;ntulas tanto de tomate como de pimiento, al incidir de manera similar en sus variables de crecimiento, lo cual pudiera estar asociado con una mayor actividad ACC deaminasa (Saleem <i>et al.,</i> 2007). Adem&aacute;s, cabe destacar que solamente la cepa MA12 tuvo un efecto positivo en el desarrollo de la ra&iacute;z de las pl&aacute;ntulas de pimiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La obtenci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n de nuevas cepas bacterianas promotoras del crecimiento vegetal adaptadas a las condiciones ambientales de la regi&oacute;n en estudio representa una alternativa tecnol&oacute;gica para su uso como biofertilizantes en la producci&oacute;n de cultivos de inter&eacute;s hort&iacute;cola, como tomate y pimiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cepas estudiadas pertenecen al g&eacute;nero <i>Bacillus</i> y presentan propiedades bioqu&iacute;micas y fisiol&oacute;gicas relacionadas con la promoci&oacute;n del crecimiento vegetal. Las cepas MA04 y MA17 mejoraron la germinaci&oacute;n de semillas de tomate, mientras que en las pl&aacute;ntulas de esta especie las cepas MA06 y MA12 incrementaron la biomasa. En las semillas de pimiento MA06 aument&oacute; la germinaci&oacute;n, y en las pl&aacute;ntulas las cepas MA12 y MA17 mejoraron la biomasa. La inoculaci&oacute;n de la cepa MA12 fue la que present&oacute; el mejor efecto sobre el vigor de las pl&aacute;ntulas tanto de tomate como de pimiento. Es necesario hacer estudios posteriores de campo para determinar el efecto de estas cepas sobre la producci&oacute;n y calidad de frutos de tomate y pimiento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Alexander D B, D A Zuberer (1991)</b> Use of chrome azurol S reagents to evaluate siderophore production by rhizosphere bacteria. Biol. Fertil. Soils 12:39&#45;45.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7088990&pid=S0187-7380201300010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Alam S, S Khalil, N Ayub, M Rashid (2002)</b> <i>In vitro</i> solubilization of inorganic phosphate by phosphate solubilizing microorganisms (PSM) from maize rhizosphere. Int. J. Agric. Biol. 4:454&#45;458.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7088992&pid=S0187-7380201300010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Balemi T, N Pal, A K Saxena (2007)</b> Response of onion <i>(Allium cepa</i> L.) to combined application of biological and chemical nitrogenous fertilizers. Acta Agric. Slovenica 89:107&#45;114.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7088994&pid=S0187-7380201300010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Bar N E, Y Hadar, Y Chen, A Shanzer, J Libman (1992)</b> Iron uptake by plants from microbial siderophores. Plant Physiol. 99:1329&#45;1335.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7088996&pid=S0187-7380201300010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Baston B P, S R Magela, P E Amp&eacute;lio (2008)</b> Bact&eacute;rias endof&iacute;ticas como agentes promotores do crescimento de plantas de tomateiro e de inibicao <i>in vitro</i> de <i>Ralstonia solanacearum.</i> Cien. Agrotecnol. 32:731&#45;739.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7088998&pid=S0187-7380201300010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ben M A S, H S Elferjani, F A Haroun, F F Abdelnabi (2009)</b> Determination of available nitrate, phosphate and sulfate in soil samples. Int. J. PharmTech Res. 1:598&#45;604.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089000&pid=S0187-7380201300010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Biari A, A Gholami, H A Rahmani (2008)</b> Growth promotion and enhanced nutrient uptake of maize <i>(Zea mays</i> L.) by application of plant growth promoting rhizobacteria in arid region of Iran. J. Biol. Sci. 8:1015&#45;1020.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089002&pid=S0187-7380201300010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Casta&ntilde;o T E, D J Dom&iacute;nguez (2010)</b> Dise&ntilde;o de Experimentos: Estrategias y An&aacute;lisis en Ciencia y Tecnolog&iacute;a. Ed. Universidad Aut&oacute;noma de Quer&eacute;taro. Quer&eacute;taro, M&eacute;xico. 418 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089004&pid=S0187-7380201300010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Crowley D E (2006)</b> Microbial siderophores in the plant rhizosphere. <i>In:</i> Iron, Nutrition in Plants and Rhizosphere Microorganisms. L L Barton, J Abadia (eds). Springer. Riverside, USA. pp:169&#45;198.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089006&pid=S0187-7380201300010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Datta M, R Palit, C Sengupta, P M Kumar, S Banerjee (2011)</b> Plant growth promoting rhizobacteria enhance growth and yield of chilli <i>(Capsicum annuum</i> L.) under field conditions. Aust. J. Crop Sci. 5:531&#45;536.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089008&pid=S0187-7380201300010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>D&ouml;bereiner J (1995)</b> Isolation and identification of aerobic nitrogenfixing bacteria from soil and plants. In: Methods in Applied Soil Microbiology and Biochemistry. K Alef, P Nannipieri (eds). Academic Press. London, UK. pp:134&#45;141.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089010&pid=S0187-7380201300010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Garc&iacute;a F, H Mu&ntilde;oz, C Carre&ntilde;o, G Mendoza (2010)</b> Caracterizaci&oacute;n de cepas nativas de <i>Azospirillum</i> spp. y su efecto en el desarrollo de <i>Oryza sativa</i> L. "arroz" en Lambayeque. Sci. Agropec. 1:107116.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089012&pid=S0187-7380201300010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Glick B R, Z Cheng, J Czarny, J Duan (2007)</b> Promotion of plant growth by ACC deaminase&#45;producing soil bacteria. Eur. J. Plant Pathol. 119:329&#45;339.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089014&pid=S0187-7380201300010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Goldstein A H (2007)</b> Future trends in research on microbial phosphate solubilization: one hundred years of insolubility. <i>In:</i> First International Meeting on Microbial Phosphate Solubilization. E Vel&aacute;zquez, B C Rodr&iacute;guez (eds). Springer. New York, USA. pp:91&#45;96.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089016&pid=S0187-7380201300010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gravel V, H Antoun, R J Tweddell (2007)</b> Growth stimulation and fruit yield improvement of greenhouse tomato plants by inoculation with <i>Pseudomonas putida</i> or <i>Trichoderma atroviride:</i> possible role of indole acetic acid (IAA). Soil Biol. Biochem. 39:19681977.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089018&pid=S0187-7380201300010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>G&uuml;l A, F Kidoglu, Y T&uuml;zel, H T&uuml;zel (2008)</b> Effects of nutrition and <i>Bacillus amyloliquefaciens</i> on tomato <i>(Solanum lycopersicum</i> L.) growing in perlite. Spanish J. Agric. Res. 6:422&#45;429.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089020&pid=S0187-7380201300010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Husen E, A T Wahyudi, A S Gianto (2011)</b> Soybean response to 1&#45;aminociclopropano&#45;1&#45;carboxylate deaminase&#45;producing <i>Pseudomonas</i> under field soil conditions. Amer. J. Agric. Biol. Sci. 6:273&#45;278.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089022&pid=S0187-7380201300010000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Jalili F, K Khavazi, E Pazira, A Nejati, H A Rahmani, H R Sadaghiani, M Miransari (2009)</b> Isolation and characterization of ACC deaminase&#45;producing fluorescent pseudomonads, to alleviate salinity stress on canola <i>(Brassica napus</i> L.) growth. J. Plant Physiol. 166:667&#45;674.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089024&pid=S0187-7380201300010000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Kifle M H, M D Laing (2011)</b> Determination of optimum dose and frequency of application of free&#45;living diazotrophs (FLD) on lettuce. African J. Agric. Res. 6:671&#45;675.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089026&pid=S0187-7380201300010000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Kloepper J W, M N Schroth (1978)</b> Plant growth&#45;promoting rhizobacteria on radishes. <i>In</i> Proc. of the 4th International Conference on Plant Pathogenic Bacteria. G Clarey (ed). Station de pathologie vegetale et phyto&#45;bacteriologie. Angers, France. pp:879&#45;882.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089028&pid=S0187-7380201300010000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Kumar A, A Prakash, B N Johri (2011)</b> <i>Bacillus</i> as PGPR in crop ecosystem. <i>In:</i> Bacteria in Agrobiology: Crop Ecosystems. D K Maheshwari (ed). Springer. Heidelberg, Germany. pp:37&#45;59.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089030&pid=S0187-7380201300010000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Lagunas L J, M E Zavaleta, K S Osada, O S Aranda, R I Luna, H H Vaquera (2001)</b> <i>Bacillus irmus</i> como agente de control biol&oacute;gico de <i>Phytophthora capsici</i> Leo. en jitomate <i>(Lycopersicon esculentum</i> Mill.). Rev. Mex. Fitopat. 19:57&#45;65.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089032&pid=S0187-7380201300010000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Loper J E, J S Buyer (1991)</b> Siderophores in microbial interactions on plant surfaces. Mol. Plant&#45;Microbe Interact. 4:5&#45;13.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089034&pid=S0187-7380201300010000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mart&iacute;nez V O, M A Jorquera, D E Crowley, G Gajardo, M L Mora (2010)</b> Mechanisms and practical considerations involved in plant growth promotion by rhizobacteria. J. Soil Sci. Plant Nutr. 10:293&#45;319.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089036&pid=S0187-7380201300010000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>M&aacute;rquez G M E, S L A Torres, H M Escobar (2003)</b> Evaluaci&oacute;n del efecto nematicida de cepas de <i>Bacillus</i> spp. Fitosanidad 7:55&#45;58.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089038&pid=S0187-7380201300010000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mormak D A, J L E Casida (1985)</b> Study of <i>Bacillus subtilis</i> endospores in soil by use of a modified endospore stain. Appl. Environ. Microbiol. 49:1356&#45;1360.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089040&pid=S0187-7380201300010000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Naher U A, O Radziah, Z H Shamsuddin, M S Halimi, M Razi (2009)</b> Isolation of diazotrophs from different soils of Tanjong Karang rice growing area in Malasya. Int. J. Agric. Biol. 11:547&#45;552.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089042&pid=S0187-7380201300010000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Nautiyal C S (1999)</b> An efficient microbiological growth medium for screening phosphate solubilizing microorganisms. FEMS Microbiol. Lett. 170:265&#45;270.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089044&pid=S0187-7380201300010000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Penrose D M, B R Glick (2003)</b> Methods for isolating and characterizing ACC deaminase&#45;containing plant growth&#45;promoting rhizobacteria. Physiol. Plant. 118:10&#45;15.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089046&pid=S0187-7380201300010000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Pe&ntilde;a H B, I Reyes (2007)</b> Aislamiento y evaluaci&oacute;n de bacterias fijadoras de nitr&oacute;geno y disolventes de fosfatos en la promoci&oacute;n del crecimiento de la lechuga <i>(Lactuca sativa</i> L.). Interciencia 32:560&#45;565.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089048&pid=S0187-7380201300010000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ramachandran K, V Srinivasan, S Hamza, M Anandaraj (2007)</b> Phosphate solubilizing bacteria isolated from rhizosphere soil and its growth promotion on black pepper <i>(Piper nigrum</i> L.) cuttings. <i>In:</i> First International Meeting on Microbial Phosphate Solubilization E. Velazquez, C. Rodr&iacute;guez&#45;Barrueco (eds). Springer. Dordrecht, The Netherlands. pp:325&#45;331.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089050&pid=S0187-7380201300010000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Reyes I, L Alvarez, H E Ayoubi, A Valery (2008)</b> Selecci&oacute;n y evaluaci&oacute;n de rizobacterias promotoras del crecimiento en piment&oacute;n y ma&iacute;z. Bioagro 20:37&#45;48.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089052&pid=S0187-7380201300010000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Ribaudo C M, E M Krumpholz, F D Cass&aacute;n, R Bottini, M L Cantore, J A Cur&aacute; (2006)</b> <i>Azospirillum</i> sp. promotes root hair development in tomato plants through a mechanism that involves ethylene. J. Plant Growth Reg. 24:175&#45;185.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089054&pid=S0187-7380201300010000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Saleem M, M Arshad, S Hussain, A S Bhatti (2007)</b> Perspective of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) containing ACC deaminase in stress agriculture. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 34:635&#45;648.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089056&pid=S0187-7380201300010000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Saharan B S, V Nehra (2011)</b> Plant growth promoting rhizobacteria: a critical review. Life Sci. Med. Res. 21:1&#45;30.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089058&pid=S0187-7380201300010000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Santillana N, C Arellano, D Z&uacute;&ntilde;iga (2005)</b> Capacidad del <i>Rhizobium</i> de promover el crecimiento en plantas de tomate <i>(Lycopersicum esculentum</i> Miller). Ecol. Aplic. 4:47&#45;51.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089060&pid=S0187-7380201300010000700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Sgroy V, F Cass&aacute;n, O Masciarelli, M F Del Papa, A Lagares, V Luna (2009)</b> Isolation and characterization of endophytic plant growth&#45;promoting (PGPB) or stress homoestasis&#45;regulating (PSHB) bacteria associated to the halophyte <i>Prosopis strombulifera.</i> Appl. Microbiol. Biotechnol. 85:371&#45;381.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089062&pid=S0187-7380201300010000700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Thakuria D, N C Talukdar, C Goswani, S Hazarika, R C Boro, M R Khan (2004)</b> Characterization and screening of bacteria from rhizosphere of rice grown in acidic soils of Assam. Curr. Sci. 86:978&#45;985.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089064&pid=S0187-7380201300010000700038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Umashankar N, M P Venkatesha, R Krishnamurthy, H R Raveendra, K M Satish (2012)</b> Effect of microbial inoculants on the growth of silver Oak <i>(Grevellea robusta)</i> in nursery condition. Int. J. Environ. Sci. Develop. 3:72&#45;76.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089066&pid=S0187-7380201300010000700039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Vessey J K (2003)</b> Plant growth promoting rhizobacteria as biofertilizers. Plant Soil 255:571&#45;586.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089068&pid=S0187-7380201300010000700040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Wahyudi A T, R P Astuti, A Widyawati, A Meryandini, A A Nawangsih (2011)</b> Characterization of <i>Bacillus</i> sp. strains isolated from rhizosphere of soybean plants for their use as potential plant growth for promoting rhizobacteria. J. Microbiol. Antimicrobials 3:34&#45;40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089070&pid=S0187-7380201300010000700041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Weisburg W G, S M Barns, D A Pelletier, D J Lane (1991)</b> <i>16S</i> ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. J. Bacteriol. 173:697&#45;703.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089072&pid=S0187-7380201300010000700042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Zhang H, Y Sun, X Xie, M S Kim, S E Dowd, P W Par&eacute; (2009)</b> A soil bacterium regulates plant acquisition of iron via deficiency&#45;inducible mechanisms. Plant J. 58:568&#45;577.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7089074&pid=S0187-7380201300010000700043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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