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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diversidad genética en algunas especies de amaranto (Amaranthus spp.)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In this research, 103 accesions classified within races of three cultivated species of Amaranthus: A. hypochondriacus represented by races 'Mercado' (7), 'Azteca' (38), 'Nepal' (30) and 'Mixteco' (1); A. caudatus, 'Sudamericana' race (12); and A. cruentus, 'Mexicana' race (15); were analyzed to determine genetic diversity among and within them, to obtain the corresponding genetic fingerprints, and to carry out comparisons for differentiating and distinguishing between the genetic variants. Analysis of 141 RAPD fragments generated from 16 primers revealed that A. hypochondriacus and A. caudatus are genetically most similar to each other compared to A. cruentus. In A. hypochondriacus, races 'Mercado' and 'Azteca' are genetically more related between them than with 'Nepal'. In Amaranthus there is a higher genetic diversity within species and races than among species and races. The percentage of polymorphic loci between populations was 73.05 % and within populations the genetic variability was low, with polymorphism levels of 27.66 % for A. caudatus race 'Sudamericana' and 65.96 % in A. hypochondriacus race 'Azteca'. Nei's coefficient of diversity (N) of all loci studied in the amaranth populations was 0.15, confirming a low diversity within populations. The level of genetic flow (Nm) was 1.43, indicating that less than two migrants per generation are exchanged between the populations.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Nota Cient&iacute;fica</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Diversidad gen&eacute;tica en algunas especies de amaranto (<i>Amaranthus</i> spp.)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Genetic diversity in some species of amaranth (<i>Amaranthus</i> spp.)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>J. Porfirio Legaria Solano</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Departamento de Fitotecnia, Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Km. 38.5. * Autor para correspondencia</i> (<a href="mailto:legarias.juan@yahoo.com.mx">legarias.juan@yahoo.com.mx</a>)</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: 06 de Abril del 2009.    <br>   Aceptado: 05 de Marzo del 2010.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evaluaron 103 colectas de plantas del g&eacute;nero <i>Amaranthus</i> previamente clasificadas mediante datos morfol&oacute;gicos como pertenecientes a razas de alguna de las tres especies cultivadas: <i>A. hypochondriacus,</i> razas 'Mercado' (7), 'Azteca' (38), 'Nepal' (30) o 'Mixteco' (1); <i>A. caudatus,</i> raza 'Sudamericana' (12); y <i>A. cruentus,</i> raza 'Mexicana' (15); para determinar la diversidad gen&eacute;tica entre y dentro de razas y especies, obtener las huellas gen&eacute;ticas correspondientes, y hacer comparaciones para diferenciar sus variantes gen&eacute;ticas. El an&aacute;lisis de 141 fragmentos RAPD generados de 16 iniciadores revel&oacute; que <i>A. hypochondriacus</i> y <i>A. caudatus</i> est&aacute;n gen&eacute;ticamente m&aacute;s relacionadas, y que la especie m&aacute;s alejada fue <i>A. cruentus.</i> Entre razas de <i>A. hypochondriacus,</i> 'Mercado' y 'Azteca' mostraron estar gen&eacute;ticamente m&aacute;s cercanas entre s&iacute; y alejadas de 'Nepal' que agrup&oacute; a mayor distancia. La diversidad gen&eacute;tica detectable en <i>Amaranthus</i> se encuentra dentro de especies y razas, m&aacute;s que entre especies y razas. El porcentaje de loci polim&oacute;rficos entre poblaciones fue de 73.05 %, y dentro de poblaciones hubo baja variabilidad gen&eacute;tica para la mayor&iacute;a de ellas, con porcentajes de loci polim&oacute;rficos que variaron de 27.66 % para <i>A. caudatus</i> raza 'Sudamericana' hasta 65.96 % en <i>A. hypochondriacus</i> raza 'Azteca'. El &iacute;ndice de diversidad gen&eacute;tica de Nei (N) promedio fue de 0.15, que indica baja diversidad en las poblaciones. El grado de flujo gen&eacute;tico (Nm) fue de 1.43, que indica que hay menos de dos individuos migrantes por generaci&oacute;n entre las poblaciones evaluadas.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> <i>Amaranthus</i> spp., diversidad gen&eacute;tica, RAPD.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">In this research, 103 accesions classified within races of three cultivated species of <i>Amaranthus: A. hypochondriacus</i> represented by races 'Mercado' (7), 'Azteca' (38), 'Nepal' (30) and 'Mixteco' (1); <i>A. caudatus,</i> 'Sudamericana' race (12); and <i>A. cruentus,</i> 'Mexicana' race (15); were analyzed to determine genetic diversity among and within them, to obtain the corresponding genetic fingerprints, and to carry out comparisons for differentiating and distinguishing between the genetic variants. Analysis of 141 RAPD fragments generated from 16 primers revealed that <i>A. hypochondriacus</i> and <i>A. caudatus</i> are genetically most similar to each other compared to <i>A. cruentus.</i> In <i>A. hypochondriacus,</i> races 'Mercado' and 'Azteca' are genetically more related between them than with 'Nepal'. In <i>Amaranthus</i> there is a higher genetic diversity within species and races than among species and races. The percentage of polymorphic loci between populations was 73.05 % and within populations the genetic variability was low, with polymorphism levels of 27.66 % for <i>A. caudatus</i> race 'Sudamericana' and 65.96 % in <i>A. hypochondriacus</i> race 'Azteca'. Nei's coefficient of diversity (N) of all loci studied in the amaranth populations was 0.15, confirming a low diversity within populations. The level of genetic flow (Nm) was 1.43, indicating that less than two migrants per generation are exchanged between the populations.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> <i>Amaranthus</i> spp., genetic diversity, RAPD.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Existen cerca de 20 especies del g&eacute;nero <i>Amaranthus</i> en M&eacute;xico que crecen en forma silvestre (Mapes, 1986). Dos de ellas <i>A. hypochondriacus</i> L. y <i>A. cruentus</i> L. fueron domesticadas por algunos grupos &eacute;tnicos prehisp&aacute;nicos de M&eacute;xico, quienes las utilizaban como parte de su dieta alimenticia y de sus rituales religiosos (Alejandre y G&oacute;mez, 1986, 1999; Granados y L&oacute;pez, 1986).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entre las aproximadamente 60 especies descritas del g&eacute;nero <i>Amaranthus,</i> tres de ellas predominan en los amarantos cultivados: <i>A. hypochondriacus, A. cruentus</i> y <i>A. caudatus</i> (Kauffman, 1986). Se considera que las tres especies son autopolinizables, con polinizaci&oacute;n cruzada de 3 a 25 % seg&uacute;n la variedad y el ambiente (Jain <i>et al.,</i> 1982). Las tres especies son diploides con 2n = 2x = 32 cromosomas, aunque hay reportes de 2n = 34 en <i>A. cruentus</i> (Sauer, 1976).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>A. hypochondriacus</i> se puede localizar desde el suroeste de los Estados Unidos hasta el centro de M&eacute;xico, y se traslapa con la localizaci&oacute;n de <i>A. cruentus</i> que se extiende del Norte de M&eacute;xico hasta Centroam&eacute;rica. <i>A. caudatus</i> se encuentra principalmente en la regi&oacute;n de los Andes en Sudam&eacute;rica (Sauer, 1976).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Algunas colectas de amaranto pueden clasificarse r&aacute;pidamente dentro de una especie particular con base en caracteres morfol&oacute;gicos. Sin embargo, la variaci&oacute;n morfol&oacute;gica puede ser afectada por la interacci&oacute;n genotipo&#150;ambiente, lo que frecuentemente conduce a una clasificaci&oacute;n err&oacute;nea de especies en algunas colectas. Para evitar dichos errores de clasificaci&oacute;n, Feine (1986) desarroll&oacute; una clave provisional que requiere la evaluaci&oacute;n de diferencias en tama&ntilde;o y forma de estructuras florales. No obstante, la variabilidad de las estructuras florales a trav&eacute;s del tiempo, entre plantas y dentro de una planta individual, impide una identificaci&oacute;n inconfundible de las especies al usar solamente las estructuras florales.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Adem&aacute;s, tambi&eacute;n hay claras incompatibilidades gen&eacute;ticas entre las tres especies. Gupta y Gudu (1991) analizaron la viabilidad y fertilidad de todos los h&iacute;bridos F1 posibles entre las tres principales especies cultivadas. Las cruzas entre <i>A. caudatus</i> y <i>A. cruentus</i> rindieron un n&uacute;mero peque&ntilde;o de semillas F1 las cuales murieron a las cuatro semanas despu&eacute;s de la germinaci&oacute;n. Las cruzas entre <i>A. hypochondriacus</i> y <i>A. cruentus</i> tambi&eacute;n rindieron muy pocas semillas F1, la mayor&iacute;a murieron como pl&aacute;ntulas y las que sobrevivieron hasta la madurez (cuatro plantas) fueron est&eacute;riles. Los h&iacute;bridos F1 entre <i>A. hypochondriacus</i> y <i>A. caudatus</i> resultaron m&aacute;s exitosos porque pudieron madurar y ser autopolinizados para producir generaciones F2 y F3, aunque presentaron polen con baja fertilidad (10.3 a 15.1 %). Tales s&iacute;ntomas de incompatibilidad subrayan la necesidad de realizar una identificaci&oacute;n fiel al nivel de especies para poder realizar mejoramiento gen&eacute;tico y conservar los recursos gen&eacute;ticos de amaranto.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La t&eacute;cnica RAPD (polimorfismos en el ADN amplificados al azar) ha probado ser un m&eacute;todo efectivo y de bajo costo para el mapeo de genomas (Reiter <i>et al.,</i> 1992; Williams <i>et al.,</i> 1990), para realizar selecci&oacute;n asistida por marcadores (Michelmore <i>et al.,</i> 1991; Mart&iacute;n <i>et al.,</i> 1991) y para caracterizar recursos gen&eacute;ticos (Joshi y Nguyen, 1993). Esta t&eacute;cnica se basa en el an&aacute;lisis de marcadores de ADN heredables que son amplificados mediante iniciadores con secuencias arbitrarias de nucle&oacute;tidos (Williams <i>et al.,</i> 1990). El objetivo del presente trabajo fue estimar la diversidad gen&eacute;tica presente entre y dentro de especies y razas cultivadas de <i>Amaranthus,</i> as&iacute; como determinar si el an&aacute;lisis de los patrones RAPD puede ser &uacute;til para identificar individuos y especies de <i>Amaranthus.</i></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evaluaron 103 colectas de <i>Amaranthus</i> previamente clasificadas en el Valle de M&eacute;xico mediante datos morfol&oacute;gicos, como pertenecientes a razas a alguna de las tres especies cultivadas: <i>A. hypochondriacus, A. caudatus</i> y <i>A. cruentus,</i> y que fueron proporcionadas por el Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias para realizar la presente investigaci&oacute;n. En el <a href="/img/revistas/rfm/v33n2/a1c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a> se indica la especie, la raza y el color de grano de cada una de las colecciones aqu&iacute; estudiadas. En total se estudiaron 76 colectas de <i>A. hypochondriacus</i> clasificadas seg&uacute;n datos morfol&oacute;gicos como pertenecientes a las razas 'Mercado' (7), 'Azteca' (38), 'Nepal' (30) o 'Mixteco' (1); 15 colectas de <i>A. cruentus</i> raza 'Mexicana'; y 12 colecciones de <i>A. caudatus</i> raza 'Sudamericana'.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para la obtenci&oacute;n de los marcadores RAPD se usaron plantas de un mes de edad crecidas en condiciones de invernadero r&uacute;stico, sin calefacci&oacute;n y con cubierta de cristal, ubicado en Chapingo, Edo de M&eacute;xico 19&deg; 29' LN, 98&deg; 53' LO, y 2250 m de altitud. La temperatura media en el invernadero oscil&oacute; entre 22 y 28 &deg;C.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ADN gen&oacute;mico se extrajo con el m&eacute;todo propuesto por De la Cruz <i>et al.</i> (1997). La concentraci&oacute;n del ADN extra&iacute;do se cuantific&oacute; en un espectrofot&oacute;metro Jenway 6305&reg; UV/vis a 260 nm de absorbancia, y se verific&oacute; la integridad del mismo despu&eacute;s de realizar la electroforesis de 5 &micro;g de ADN en un gel de agarosa a 0.8 % (p/v) con amortiguador TAE (40 mM Tris&#150;acetato, pH 7.6; 1 mM Na<sub>2</sub>&#150;EDTA), durante 2 h a 80 V y te&ntilde;ido con bromuro de etidio (0.5 mg mL<sup>&#150;1</sup>), para luego efectuar las reacciones en cadena de la Taq ADN polimerasa (PCR, por sus siglas en ingl&eacute;s). Se probaron 20 iniciadores de la serie A de Operon&reg; (OPA01&#150;OPA20) y 20 de la serie B (OPB01&#150;OPB20) (Operon Technologies Inc, Alameda, CA, USA). Se seleccionaron 16 iniciadores que mostraron polimorfismo, y por la complejidad del patr&oacute;n de bandeo para obtener los RAPD (<a href="/img/revistas/rfm/v33n2/a1c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La PCR se hizo en un termociclador Perkin Elmer Modelo 480&reg;. La mezcla de reacci&oacute;n se hizo con un volumen total de 25 &micro;L, que incluy&oacute;: 4.2 &micro;L de agua bidestilada esterilizadal, 10 &micro;L de dNTPs 500 &micro;M, 2.5 &micro;L de amortiguador 10X, 1.0 &micro;L de M<sub>g</sub>Cl<sub>2</sub> 50 mM, 3.0 &micro;L del iniciador a una concentraci&oacute;n de 10 pmol, 0.3 &micro;L de enzima Taq ADN polimerasa a una concentraci&oacute;n de 5U HL<sup>&#150;1</sup>, y 4.0 &micro;L de ADN gen&oacute;mico a una concentraci&oacute;n de 10 &micro;g &micro;L<sup>&#150;1</sup>. Las condiciones de reacci&oacute;n fueron: un ciclo a 94 &deg;C, 2 min; 38 ciclos a 94 &deg;C, 30 s, 40 &deg;C por 30 s, 72 &deg;C por 90 s; y al final 72 &deg;C por 2 min. Los productos se separaron en geles de agarosa a 1.2 % (p/v) con amortiguador TAE (40 mM Tris&#150;acetato, pH 7.6; 1 mM Na<sub>2</sub>&#150;EDTA), durante 3 h, a 85 V. Finalmente, los geles se ti&ntilde;eron con bromuro de etidio (0.5 mg mL<sup>&#150;1</sup>) y se fotografiaron bajo luz UV. Las reacciones de amplificaci&oacute;n se repitieron al menos dos veces, sin que hubiera discrepancias entre los patrones RAPD obtenidos.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los materiales se compararon con base en similitudes y diferencias en los patrones de bandeo, y se asign&oacute; un valor de 1 a la presencia de una banda y de 0 a la ausencia de la misma, bajo el supuesto de que bandas de igual peso molecular son id&eacute;nticas en colectas diferentes.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de loci polim&oacute;rficos se calcul&oacute; mediante la f&oacute;rmula: Porcentaje de loci polim&oacute;rficos = (N&uacute;mero de loci polim&oacute;rficos/n&uacute;mero total de loci) &times; 100 (Nei, 1973).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se consider&oacute; a las colecciones de cada raza dentro de especies como poblaciones, y para estimar par&aacute;metros de polimorfismo al nivel de poblaciones, la matriz de datos presencia/ausencia de RAPD se analiz&oacute; con el programa POPGENE32 (Yeh <i>et al.,</i> 1999). Los par&aacute;metros de polimorfismo estimados dentro y entre poblaciones fueron: porcentaje de loci polim&oacute;rficos (P), n&uacute;mero de alelos por locus (A), n&uacute;mero efectivo de alelos por locus (Ae), &iacute;ndice de Shannon (S), &iacute;ndice de diversidad gen&eacute;tica de Nei (N), coeficiente de diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica (GST) y n&uacute;mero de individuos migrantes (Nm).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El listado de iniciadores y sus secuencias, el n&uacute;mero de productos amplificados, y el polimorfismo detectado por cada par de iniciador, se muestran en el <a href="/img/revistas/rfm/v33n2/a1c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>. De 40 iniciadores probados de las series A y B de Operon&reg;, s&oacute;lo 16 presentaron productos de amplificaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/rfm/v33n2/a1c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>) y 14 mostraron polimorfismo. La media de polimorfismo detectada por los iniciadores fue de 66.42 %. Los iniciadores OPA10, OPB04, OPB10 y OPB15 revelaron 100 % de polimorfismo, mientras que OPA09 y OPA11 detectaron 0 %. El n&uacute;mero promedio de bandas reveladas por iniciador fue de 8.8, con un rango de 2 a 14. El tama&ntilde;o de los fragmentos amplificados vari&oacute; de 500 a 5000 pb.</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los patrones RAPD obtenidos mediante el iniciador OPA13 (<a href="#f1">Figura 1</a>), muestran la existencia de variabilidad gen&eacute;tica entre los individuos evaluados, tanto dentro del g&eacute;nero como entre especies o poblaciones.</font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p> 	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/rfm/v33n2/a1f1.jpg"></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El dendrograma de relaciones gen&eacute;ticas entre individuos pertenecientes a especies o poblaciones de <i>Amaranthus</i> obtenido mediante el an&aacute;lisis de 141 bandas (<a href="/img/revistas/rfm/v33n2/a1f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>), muestra la formaci&oacute;n de tres grandes grupos, que corresponden con las tres especies aqu&iacute; incluidas. Estos resultados muestran que <i>A. hypochondriacus</i> estuvo gen&eacute;ticamente m&aacute;s relacionado con <i>A. caudatus,</i> y la especie mas alejada fue <i>A. cruentus.</i> Las razas 'Azteca', 'Nepal' y 'Mercado' de <i>A. hypochondriacus</i> formaron un solo grupo; de &eacute;stas, 'Mercado' y 'Azteca' mostraron estar gen&eacute;ticamente m&aacute;s cercanas, en relaci&oacute;n con la raza 'Nepal' que se ubic&oacute; a mayor distancia. La raza 'Mixteco' estuvo m&aacute;s cercana a 'Azteca' y 'Mercado' que a 'Nepal' (datos no mostrados). Lo anterior concuerda con la clasificaci&oacute;n morfol&oacute;gica y molecular establecida por otros autores (Gupta y Gudu, 1991; Transue <i>et al.,</i> 1994; Wassom y Travel, 2005; Drzewiecki, 2001). Estos resultados sugieren que los marcadores RAPD's son eficientes para discriminar especies y razas de <i>Amaranthus.</i></font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El porcentaje de loci polim&oacute;rficos (P) entre poblaciones fue de 73.05 % (<a href="/img/revistas/rfm/v33n2/a1c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). Dentro de la poblaci&oacute;n de <i>A. hypochondriacus</i> raza 'Mercado' (AhyM), los individuos mostraron un polimorfismo de 53.19 %, los de <i>A. hypochondriacus</i> raza 'Nepal' (AhyN) 43.97 %, <i>A. hypochondriacus</i> raza 'Azteca' (AhyA) 65.96 %, <i>A. caudatus</i> raza 'Sudamericana' (AcaSD) 27.66 % y <i>A. cruentus</i> raza 'Mexicana' (AcrMx) 39.01 %. La poblaci&oacute;n con mayor polimorfismo gen&eacute;tico fue <i>A. hypochondriacus</i> raza 'Azteca' y la menos polim&oacute;rfica fue <i>A. caudatus</i> raza 'Sudamericana'. Estos valores indican que las poblaciones presentan baja variabilidad gen&eacute;tica, y difieren de los reportados por Mandal y Das (2002) quienes encontraron polimorfismos de 69.2 % en <i>A. cruentus,</i> 38.5 % en <i>A. caudatus</i> y 15.4 % en <i>A. hypochondriacus;</i> estas diferencias pueden deberse a que son genotipos diferentes, con or&iacute;genes diferentes.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El coeficiente de diversidad (N) de Nei (1973) para todos los loci estudiados en las cinco poblaciones de <i>Amaranthus</i> fue de 0.20 (<a href="/img/revistas/rfm/v33n2/a1c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>); para cada especie y raza los coeficientes fueron: 0.17 para la raza 'Mercado' (AhyM), 0.14 para la raza 'Nepal' (AhyN), 0.21 para la raza 'Azteca' (AhyA), 0.09 para la raza 'Sudamericana' (AcaSD), y 0.13 para la raza 'Mexicana' (AcrMx). Estos valores otra vez muestran una reducida diversidad gen&eacute;tica en las poblaciones. En lo referente al n&uacute;mero de alelos por locus (A) y el n&uacute;mero efectivo de alelos (Ae), <i>A. hypochondriacus</i> raza 'Azteca' (AhyA) super&oacute; a las poblaciones restantes con valores de 1.66 y 1.35, respectivamente.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El coeficiente de diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica entre las poblaciones (<a href="/img/revistas/rfm/v33n2/a1c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>) fue relativamente bajo (GST = 0.26; 26 %), lo que indica que las poblaciones est&aacute;n poco diferenciadas, y que aproximadamente 26 % de la variaci&oacute;n detectada se debe a diferencias entre especies y razas; el resto (74 %) representa diversidad gen&eacute;tica dentro de las especies y razas. El valor de GST entre especies es semejante a la media de GST (0.23) detectada por Nybom y Barthish (2000) mediante marcadores RAPD.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En funci&oacute;n de G<sub>ST</sub> se estim&oacute; el grado de flujo g&eacute;nico (Nm), con un valor de 1.43 (<a href="/img/revistas/rfm/v33n2/a1c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>), lo que significa que en promedio hay un individuo migrante por generaci&oacute;n entre las poblaciones, lo que podr&iacute;a explicar su bajo grado de diferenciaci&oacute;n.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Varios de los iniciadores probados, como OPA09 y OPA11, no detectaron polimorfismo, ya sea entre individuos pertenecientes a la especie o entre las especies y razas (<a href="/img/revistas/rfm/v33n2/a1c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>), lo que indica que las especies pudieran estar compartiendo grandes porciones de su genoma (Brown, 2002), y que las especies se derivan de un ancestro com&uacute;n (Whitkus <i>et al.,</i> 1994).</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>CONCLUSIONES</b></font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><i>Amaranthus hypochondriacus</i> se relacion&oacute; m&aacute;s con <i>A. caudatus</i> y la especie m&aacute;s alejada fue <i>A. cruentus.</i> Al nivel de razas de <i>A. hypochondriacus,</i> 'Mercado' y 'Azteca' mostraron estar gen&eacute;ticamente m&aacute;s cercanas entre s&iacute;, y ambas alejadas de 'Nepal' que se agrup&oacute; a mayor distancia. En <i>Amaranthus</i> la mayor parte de la diversidad gen&eacute;tica detectable se encuentra dentro de las especies y razas, con una menor proporci&oacute;n de variaci&oacute;n entre especies y razas.</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>BIBLIOGRAF&Iacute;A</b></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Alejandre I G, L F G&oacute;mez (1999)</b> Cultivo del amaranto en M&eacute;xico. Universidad Aut&oacute;noma Chapingo. Chapingo, M&eacute;xico. 245 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066254&pid=S0187-7380201000020000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Alejandre I G, L F G&oacute;mez (1986)</b> Variabilidad en tipos criollos de amaranto <i>(Amaranthus spp)</i> en la regi&oacute;n central de M&eacute;xico. <i>In:</i> Primer Seminario Nacional del Amaranto. El Amaranto <i>Amaranthus spp.</i> (Alegr&iacute;a), su Cultivo y Aprovechamiento. A Trinidad S, F G&oacute;mez L, G Su&aacute;rez R (comps). M&eacute;xico. 577 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066256&pid=S0187-7380201000020000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Brown T A (2002)</b> Genomes. 2nd ed. Bios Scientific Publisher. New York, USA. pp:483&#150;505.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066258&pid=S0187-7380201000020000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>De la Cruz M, F Ramirez, H Hern&aacute;ndez (1997)</b> DNA isolation and amplification from cacti. Plant Mol. Biol. Rep. 15:319&#150;325.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066260&pid=S0187-7380201000020000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Drzewiecki J (2001)</b> Similarities and differences between <i>Amaranthus</i> species and cultivars and estimation of outcrossing rate on the basis of electrophoretic separations of urea&#150;soluble seed proteins. Euphytica 119:279&#150;287.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066262&pid=S0187-7380201000020000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Feine L B (1986)</b> A provisional key to some edible species of the family Amaranthaceae. <i>In:</i> Rodale Amaranth Germplasm Collection. C S Kauffman, C Reider (eds). Rodale Press, Emmanus, PA. pp:68&#150;90.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066264&pid=S0187-7380201000020000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Granados S D, R G L&oacute;pez (1986)</b> Chinampas: Historia y etnobot&agrave;nica de la alegria <i>(Amaranthus hypochondriacus</i> L.). Domesticaci&oacute;n de la verdolaga <i>(Portulaca oleraceae</i> L.) y romerillo <i>(Suaeda difusa</i> Wats.). In: Primer Seminario Nacional del Amaranto. El Amaranto <i>Amaranthus spp.</i> (Alegr&iacute;a), su Cultivo y Aprovechamiento. A Trinidad S, F G&oacute;mez L, G Su&aacute;rez R (comps). M&eacute;xico. 577 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066266&pid=S0187-7380201000020000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Gupta V K, S Gudu (1991)</b> Interespecific hybrids and possible phylogenetic relations in grain amaranths. Euphytica 52:33&#150;38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066268&pid=S0187-7380201000020000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Jain S K, H Hauptli, K R Vaidya (1982)</b> Outcrossing rate in grain amaranths. J. Hered. 73:71&#150;72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066270&pid=S0187-7380201000020000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Joshi C P, H T Nguyen (1993)</b> Application of the random amplified polymorphic DNA technique for the detection of polymorphism among wild and cultivated tetraploid wheats. Genome 36:602&#150;609.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066272&pid=S0187-7380201000020000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Kauffman Ch S (1986)</b> Observaciones sobre las investigaciones preliminares para el desarrollo de variedades mejoradas de amaranto de grano en cinco pa&iacute;ses. <i>In:</i> Primer Seminario Nacional del Amaranto. El Amaranto <i>Amaranthus spp.</i> (Alegr&iacute;a), su Cultivo y Aprovechamiento. A Trinidad S, F G&oacute;mez L, G Su&aacute;rez R (comps). M&eacute;xico. 577 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066274&pid=S0187-7380201000020000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mandal N, P K Das (2002)</b> Intra&#150; and interespecific genetic diversity in grain <i>Amaranthus</i> using random amplified polymorphic DNA markers. Plant Tissue Cult. 12:49&#150;56.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066276&pid=S0187-7380201000020000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Mapes C (1986)</b> Una revisi&oacute;n sobre la utilizaci&oacute;n del g&eacute;nero <i>Amaranthus</i> en M&eacute;xico. <i>In:</i> Primer Seminario Nacional del Amaranto. El Amaranto <i>Amaranthus spp.</i> (Alegr&iacute;a), su Cultivo y Aprovechamiento. A Trinidad S, F G&oacute;mez L, G Su&aacute;rez R (comps). M&eacute;xico. 577 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066278&pid=S0187-7380201000020000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Martin G B, J G K Williams, S D Tanksley (1991)</b> Rapid identification of markers linked to a <i>Pseudomonas</i> resistance gene in tomato by using random primers and near&#150;isogenic lines. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:2336&#150;2340.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066280&pid=S0187-7380201000020000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Michelmore R W, I Paran, R V Kesseli (1991)</b> Identification of markers linked to disease resistance genes by bulked segregant analysis: A rapid method to detect markers in specific genomic regions by using segregating populations. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:9828&#150;9832.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066282&pid=S0187-7380201000020000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Nei M (1973)</b> Analysis of gene diversity in subdivided populations. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 70:3321&#150;3323.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066284&pid=S0187-7380201000020000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Nybom H, I V Bartish (2000)</b> Effects of life history traits and sampling strategies on diversity estimates obtained with RAPD markers in plants. Persp. Plant Ecol. Evol. Syst. 3:93&#150;114.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066286&pid=S0187-7380201000020000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Reiter R S, J K G Williams, K A Feldman, J A Rafalski, S V Tingey, P A Skolnik (1992)</b> Global and local genome mapping in <i>Arabidopsis thaliana</i> by using recombinant inbred lines and random amplified polymorphic DNAs. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:1477&#150;1481.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066288&pid=S0187-7380201000020000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Sauer J D (1976)</b> Grain amaranths. <i>In:</i> Evolution of Crop plants. N W Simmonds (ed). Longman Group Limited, London. pp:4&#150;7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066290&pid=S0187-7380201000020000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Transue D K, D J Fairbanks, L R Robison, W R Anderson (1994) </b>Species identification by RAPD analysis of grain amaranth genetic resources. Crop Sci. 34:1385&#150;1389.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066292&pid=S0187-7380201000020000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Wassom J J, P J Travel (2005)</b> Amplified fragment length polymorphism&#150;based genetic relationships among weedy <i>Amaranthus</i> species. J. Hered. 96:410&#150;416.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066294&pid=S0187-7380201000020000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Whitkus R, J Doebley, J F Wende</b>l <b>(1994)</b> Nuclear DNA markers in systematics and evolution. <i>In:</i> DNA&#150;based Markers in Plants. L Phillips, I K Vasil (eds). Kluwer. Amsterdam, The Netherlands. pp:116&#150;141.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066296&pid=S0187-7380201000020000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Williams J K G, A R Kubelic, K J Livak, J A Rafalski, S V Tingey (1990)</b> DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 18:6531&#150;6535.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066298&pid=S0187-7380201000020000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Yeh F C, R&#150;C Yai, T Boyle (1999)</b> Popgene Version 1.31. Microsoft Window&#150;based Freeware for Population Genetic Analysis. Quick User Guide. Alberta, Canada. 28 p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=7066300&pid=S0187-7380201000020000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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<surname><![CDATA[Alejandre]]></surname>
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