Efecto del 1-metilciclopropeno (1-MCP) y de una película comestible sobre la actividad enzimática y calidad poscosecha del mango 'ataulfo'

Effect of 1-methylcyclopropene (1-MCP) and an edible coating on enzyme activity and postharvest quality of mango 'ataulfo'

Dolores Muy Rangel¹*, Blanca Espinoza Valenzuela¹, Jorge Siller Cepeda¹, J. Adriana Sañudo Barajas¹, Benigno Valdez Torres² y Tomás Osuna Enciso¹

¹ Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, A. C. Unidad Culiacán. Carr. a El Dorado Km. 5.5. Campo en Diez. Apdo. postal 32-A. 80129, Culiacán, Sinaloa, México. Tel. y Fax 01 (667) 760-5536 Ext 221. *Autor para correspondencia (mdmuy@ciad.edu.mx)

Recibido: 25 de Mayo del 2007.
Aceptado: 18 de Julio del 2008.

RESUMEN

Por la importancia económica del mango (Mangifera indica L.) cv. 'Ataulfo' en México, en este trabajo se estudió el efecto de 1-MCP (1-metilciclopropeno) y de una película comestible (PC) a base de quitosano, sobre variables de calidad y de vida de anaquel del mango 'Ataulfo', así como el efecto del 1-MCP sobre la actividad de enzimas hidrolíticas de la pared celular. Los frutos en madurez fisiológica se dividieron en seis tratamientos: 1) Testigo; 2) PC; 3) 1-MCP, 400 nL L^-1; 4) 1-MCP, 800 nL L^-1; 5) PC + 1-MCP, 400 nL L^-1; y 6) PC + 1-MCP, 800 nL L^-1. Los frutos se almacenaron 7 d a 12 °C y se transfirieron a 20 °C por 15 d. Se evaluó pérdida de peso, firmeza, pH, acidez titulable y sólidos solubles totales (SST), respiración y actividad enzimática de poligalacturonasa (PG), celulasa (Cx), α- y β-galactosidasa y β-glucosidasa. Los tratamientos con 1-MCP y PC no redujeron la pérdida de peso de los frutos, pero los tratados con 400 nL L^-1 de 1-MCP mantuvieron mayor firmeza. Luego de 3 d de almacenamiento los frutos testigo y PC perdieron más de 50 % de la firmeza, y a los 9 d perdieron su calidad comercial. No se observaron cambios en pH y SST por efecto de los tratamientos en los frutos almacenados por 12 d. La respiración disminuyó en todos los frutos tratados con relación al testigo; los frutos con 1-MCP+PC retrasaron en 3 d el máximo climatérico. La actividad de PG y Cx se incrementó durante la maduración y la primera fue mayor en frutos testigo que en los tratados, mientras que la máxima actividad de glicosidasas se observó en el día 6. En los frutos tratados con 1-MCP se notó una reducción en las actividades de PG y Cx.

Palabras clave: Mangifera indica, ablandamiento, maduración, 1-metilciclopropeno.

ABSTRACT

Key words: Mangifera indica, softening, maturity, 1-methylcyclopropene.

INTRODUCCIÓN

El mango (Mangifera indica L.) es uno de los frutos tropicales más apreciados en el mundo y de alta importancia económica. Los principales países productores son India, China, Tailandia y México (FAO, 2007). En 2006 la producción de mango en México fue de 1.7 millones de toneladas aproximadamente (SAGARPA, 2007), distribuidas principalmente en los cultivares 'Manila' (431 405 t), 'Ataulfo' (308 544 t), 'Haden' (232 451 t), 'Tommy Atkins' (220 243 t), criollos (166 448 t), 'Kent' (164 827 t) y 'Keitt' (81 147 t) (SIAP, 2008). La calidad del mango mexicano ubica al país como el principal exportador a nivel mundial con 21% y a Estados Unidos como su principal comprador. El mango 'Ataulfo' con denominación de origen "Mango Ataulfo del Soconusco Chiapas" (IMPI, 2003), ha aumentado su importancia económica (Luna et al., 2006), pero su comercialización se ha restringido por la rápida pérdida de calidad de sus frutos debido a la maduración acelerada, pérdida de firmeza y desarrollo de enfermedades. Aunque el mango no produce cantidades considerables de etileno (hormona de la maduración), es altamente sensible a su acción (Kader, 2002); al ser expuesto a trazas de etileno acelera la disminución de la firmeza, la cual se atribuye principalmente a cambios en la pared celular por acción de enzimas hidrolíticas (Seymour y Gross, 1996).

En mango la reducción de la firmeza se asocia con la actividad de las enzimas poligalacturonasa (PG: E.C.3.2.1.15) y celulasa (Cx: E.C.3.2.1.4), donde la despolimerización de las pectinas ha sido ampliamente relacionada con la actividad de la PG (Roe y Bruemmer, 1981; El-Zoghbi, 1994;). Sin embargo, otros estudios muestran que estas enzimas no son determinantes en el ablandamiento, sino que éste se debe a los cambios de las pectinas con la acción de la β-galactosidasa (E.C.3.2.1.23) y exo-galactanasas (E.C.3.2.1.67) (Huber et al., 2001). Además, se ha reportado que durante la maduración del mango ocurre una pérdida de azúcares (galactosa) de la pared celular (Mitcham y McDonald, 1992).

Una alternativa para reducir el efecto del etileno sobre la maduración de frutos climatéricos como el mango, es el uso del 1-metilciclopropeno (1-MCP) cuya efectividad depende del material de estudio, tiempo de exposición, concentración y temperatura de aplicación. El 1-MCP induce efectos favorables en firmeza, respiración, producción de etileno, degradación de clorofila y desarrollo de enfermedades en frutas y hortalizas (Blankenship y Dole, 2003). Jeong y Huber (2004) señalaron que el 1-MCP redujo la actividad de α-galactosidasa (E.C.3.2.1.22), β-galactosidasa y PG en aguacate (Persea americana Mill.). Sin embargo, no existe evidencia sobre un efecto reductor en la transpiración de los frutos. Por ello, la combinación de una película comestible con 1-MCP podría ser una alternativa apropiada de manejo poscosecha.

El uso de recubrimientos comestibles modifica la atmósfera interna de gases y reduce el metabolismo y transpiración de frutas y hortalizas (Baldwin et al., 1999; Ca-rrillo-López et al., 2000). Un recubrimiento comestible utilizado es el quitosano, polisacárido extraído de exoesqueletos de cangrejo, camarón y langosta (Shepherd et al., 1997), el cual ha mostrado ser efectivo para prolongar la vida poscosecha de litchi (Litchi chinensis Sonn.) (Jiang et al., 2005). El objetivo del presente trabajo fue determinar el efecto del 1-MCP y de una película comestible elaborada con quitosano, en variables de calidad y vida de anaquel de mango 'Ataulfo', así como el efecto de la aplicación de 1-MCP sobre la actividad de enzimas hidrolíticas de la pared celular.

MATERIALES Y MÉTODOS

Pérdida de peso. Los frutos se pesaron en una balanza digital Mettler Toledo PR 8002. La tasa de pérdida de peso acumulada se determinó en función del peso inicial y peso final en siete frutos por tratamiento y se reportó como porcentaje (Muy et al., 2004).

Firmeza. La firmeza se determinó por punción expresada en Newtons (N), previa eliminación de la epidermis en dos partes de la zona ecuatorial del fruto (Bourne, 1980). Se utilizó un penetrómetro Chatillon Digital (DFIS-50) con un puntal de 10 mm de diámetro. Se evaluaron cinco frutos por tratamiento.

Acidez titulable y sólidos solubles totales. Las variables químicas de calidad se determinaron en cinco frutos por tratamiento, según el método de la AOAC (1998). Se utilizó un titulador automático Mettler Toledo modelo DL-21 equipado para indicar de manera directa el pH y la acidez titulable (porcentaje de ácido cítrico). La concentración de sólidos solubles totales (SST) se determinó en una gota del jugo del fruto colocada en un refractómetro Mettler Toledo modelo RE40D calibrado con agua destilada y se expresó en °Brix.

Producción de bióxido de carbono (CO₂). Los frutos se pesaron y se colocaron en frascos de vidrio herméticos de 3.7 L adaptados con mangueras de entrada y salida de aire y conectados a un tren de respiración con flujo constante de aire libre de CO₂. Se tomó 1 mL de aire de la manguera de salida y se analizó en un cromatógrafo de gases Varian 3300. La producción de CO₂ se cuantificó en tres frutos por tratamiento, en mL CO₂ kg^-1 h^-1; como estándar se usó CO₂ a 0.52 % en mezcla con nitrógeno (AGA Gas México, S. A. de C. V.), según Báez-Sañudo et al. (1997).

Análisis enzimático. Se cuantificó la actividad de las enzimas poligalacturonasa (PG, E.C.3.2.1.15), carboxi-metilcelulasa (Cx, E.C.3.2.1.4), α-galactosidasa (E.C.3.2.1.22), β-galactosidasa (E.C.3.2.1.23) y β-glucosidasa (E.C.3.2.1.22) en la pulpa de frutos. El extracto proteico de la muestra se obtuvo según Koslanund et al. (2005). De la pulpa de un fruto congelado se tomaron 10 g de muestra homogenizada, se agregaron 10 mL de la solución amortiguadora HEPES (50 mM, pH 7) que contenía 2 mM DTT y 3 mM de bisulfito de sodio, 2 mM de EDTA, PVPP 1 % (p/v) y de Triton X-100 0.1 % (v/v). Se homogenizó por 3 min y se centrifugó a 11 200 x g durante 30 min en una centrífuga Thermo-IEC modelo multiRF. El precipitado se resuspendió en una solución amortiguadora HEPES (50 mM pH 7) que contenía 2 mM de DTT, 3 mM bisulfito de sodio, 2 mM EDTA y 1.5 M NaCl. Posteriormente, se agitó durante 2 h y se centrifugó a 13 000 x g durante 30 min. El sobrenadante se desaló en membranas de diálisis MWCO de 8000 Da con una solución de acetato de sodio (50 mM pH 5) durante 48 h, con cambio de solución a las 24 h. El extracto enzimático se concentró en polientilenglicol (PM 15 000-20 000) y se filtró en malla Miracloth®. El extracto concentrado se utilizó para la actividad de hidrolasas. Todo el proceso de extracción se efectuó entre 2-4 °C en cuatro frutos por tratamiento y tiempo.

Actividad enzimática. Se evaluó solamente en frutos tratados con 1-MCP y en el testigo, ya que los tratados con PC y sus combinaciones (PC+1-MCP) no tuvieron una respuesta significativa en retrasar el ablandamiento de frutos durante el almacenamiento. La actividad de PG y Cx se determinó por separado al incubar a 37 °C, 1 mL de extracto proteico y 2 mL de ácido poligalacturónico 0.2 % (p/v) para PG y 2 mL de carboximetilcelulosa 0.2 % (p/v) para Cx, ambas a pH 5. A distintos tiempos se tomaron alícuotas de 100 μL y se agregó 1 mL de solución amortiguadora de boratos (0.1 M, pH 9) y 100 μL de 2-cianoacetamida 1 % (p/v); luego se aplicó ebullición por 10 min y se midió la absorbancia a 276 nm en un espectrofotómetro Cary 1-E (Varian Inc). Para PG la liberación de grupos reductores se determinó con base en una curva patrón de ácido galacturónico (0 a 40 μg) y su actividad se expresó en unidades de liberación de ácido galacturónico (1 nmol mg^-1 proteína min^-1). Para Cx se utilizó una curva patrón de glucosa (0 a 80 μg) y la actividad se expresó en unidades de liberación de glucosa (1 nmol mg^-1 proteína min^-1) (Gross, 1982).

Para las galactosidasas se incubaron 500 μL de extracto y 500 μL del p-nitrofenil glicósido correspondiente: p-nitrofenil a-galactopiranósido, p-nitrofenil p-galactopi-ranósido y p-nitrofenil p-glucopiranósido para α-galactosidasa, β-galactosidasa y β-glucosidasa, respectivamente. La reacción se detuvo con 1 mL de hidróxido de amonio 7 % (v/v) y se midió la absorbancia a 420 nm en un espectrofotómetro Varian Cary 1-E. La actividad de galactosidasas se determinó con base en una curva patrón de p-nitrofenol (0 a 40 μg) y se expresó en unidades de liberación de p-nitrofenol (1 nmol mg^-1 proteína min^-1). El contenido de proteína se analizó según Bradford (1976), con albúmina de suero bovino como estándar (Bio-Rad).

Análisis estadístico. El experimento se estableció bajo un diseño completamente al azar con dos factores (tratamiento químico y tiempo) para las variables destructivas (firmeza, pH, acidez titulable, sólidos solubles totales, PG, Cx, α- y β-galactosidasa y β-glucosidasa), mientras que para las variables no destructivas (pérdida de peso, color y respiración) se utilizó un arreglo de tres factores (tratamiento químico, fruto y tiempo). El factor fruto se anidó en tratamiento químico y el factor tiempo fue de medidas repetidas. El factor tratamiento químico con seis niveles [1) Testigo; 2) PC; 3) 1-MCP, 400 nL L^-1; 4) 1-MCP, 800 nL L^-1; 5) PC + 1-MCP, 400 nL L^-1; y 6) PC + 1-MCP, 800 nL L^-1] y el factor tiempo con seis niveles (0, 3, 6, 8, 12 y 15 d). Los efectos de interés fueron: tratamiento químico, tiempo y la interacción tratamiento químico x tiempo. Se hicieron los análisis de varianza, y cuando hubo efectos significativos se aplicó la prueba de comparación de medias de Tukey (α=0.05), mediante el programa estadístico MINITAB (2004) versión 14.0.

Pérdida de peso

Dado a que las variables de calidad evaluadas no mostraron cambios considerables cuando el fruto se almacenó por 7 d a 12 °C (simulación del tiempo de transporte), se omitieron estos resultados por ser similares a los del día cero a 20 °C, y por ello aquí se reporta solamente el comportamiento del fruto durante simulación de mercadeo (20 °C).

Los mangos tratados con 1-MCP presentaron diferencias significativas en la pérdida de peso después de 6 d de almacenamiento, pero la máxima diferencia alcanzada a los 12 d fue de 0.5 % y no se reflejó en la calidad de los frutos. La aplicación de la PC no fue efectiva para reducir la pérdida de peso de los mangos en comparación con los tratados con 1-MCP y testigo (Cuadro 1). Esto sugiere que la efectividad de una película comestible depende de las características del fruto (tipo de cutícula y velocidad de transpiración), composición y condiciones de almacenamiento, como propusieron Amarante y Banks (2001).

Baldwin et al. (1999) tampoco observaron una clara diferencia entre mangos 'Tommy Atkins' tratados con Nature Seal® (celulosa) y los frutos testigo. Para ambos resultados se puede considerar lo señalado por Hagenmaier y Shaw (1992), en el sentido de que las películas hechas con carbohidratos poseen características hidrofílicas que permiten la permeabilidad del vapor de agua de manera similar a los frutos no cubiertos.

Los frutos de mandarina (Citrus reticulata L.) tratados con 1-MCP no mostraron diferencias en la pérdida de peso con los frutos sin tratamiento (Laamim et al., 2005), contrario a lo observado en aguacate (Jeong et al., 2002). Esto indica que la efectividad del 1-MCP se relaciona con la fisiología de cada especie, como afirmaron Blankenship y Dole (2003).

De manera general, los mangos 'Ataulfo' presentaron una pérdida de peso superior a 8.5 % durante el almacenamiento, lo que hace necesario el estudio de otras alternativas que ayuden a reducir la transpiración del fruto de forma más efectiva.

Firmeza

El 1-MCP redujo la pérdida de firmeza de los mangos durante los primeros 9 d de almacenamiento, pero no cuando se combinó con PC. Los frutos tratados con 1-MCP a 400 nL L^-1 fueron 40 % más firmes durante los 3, 6 y 9 d de almacenamiento que los frutos testigo (Figura 1), lo que podría ser una alternativa poscosecha para mantener la firmeza de los frutos. Luego de 3 d de almacenamiento los frutos testigo y los tratados con la PC perdieron más de 50 % de firmeza, y a los 10 d también perdieron su calidad comercial. Mitcham y McDonald (1992) asociaron la pérdida de calidad del mango con valores de firmeza menores a 20 N.

Fue evidente el efecto del 400 nL L^-1 de 1-MCP para mantener la firmeza de los frutos por mayor tiempo (Figura 1), ya que este compuesto químico retrasa la acción del etileno y los cambios asociados con la maduración del fruto (Sisler y Serek, 1997). Similarmente, Pelayo et al. (2003) encontraron que los plátanos (Musa paradisiaca L.) tratados con 1-MCP (1000 nL L^-1) tuvieron mayor firmeza que los testigos, lo que podría incrementar su vida poscosecha. Esto es aún más importante en mangos debido a que la firmeza es determinante para su calidad (Mitcham y McDonald, 1992).

Al día cero los mangos mantuvieron valores de pH de 2.7 y de SST de 10 °Brix, valores que en promedio se incrementaron a pH= 4.5 y 16.5 °Brix al final del almacenamiento (Cuadro 1). En acidez titulable se observó una disminución de 2.3 a 0.56 % de ácido cítrico, donde los frutos tratados con 1-MCP 800 nL L^-1 con y sin PC mantuvieron estadísticamente (P ≤ 0.05) la mayor acidez con respecto al resto de los frutos, sin que hubiera diferencia entre ellos (Cuadro 1). Este comportamiento posiblemente se deba a un retraso ligero en la actividad metabólica (Figura 2) relacionada con velocidad de maduración de los frutos por efecto del 1-MCP. Al igual que en este estudio, Hofman et al. (2001) encontraron una mayor retención de acidez titulable en mangos 'Kensington Pride' tratados con 1-MCP, que asociaron con una maduración más lenta de los frutos. Los altos valores iniciales de acidez encontrados en este estudio son característicos de mangos 'Ataulfo' (Osuna-García et al., 2002); sin embargo, durante la maduración la acidez se pierde hasta alcanzar valores similares a los mangos 'Haden' y 'Kent' maduros (Carrillo-López et al. 2000; Zamora-Cienfuegos et al., 2004).

Producción de CO₂

El comportamiento respiratorio de los mangos correspondió a frutos climatéricos (Figura 2), igual que lo reportado por Montalvo et al. (2007). La máxima actividad en los frutos testigo se observó a los 9 d de almacenamiento con 116 mL CO₂ kg^-1 h^-1, seguido por los tratados con PC y 1-MCP a 400 y 800 nL L^-1. En cambio, en los frutos con PC + 1-MCP la mayor actividad se registró a los 12 d; todos los frutos tratados, con excepción de la PC, mostraron en promedio una reducción en la velocidad de respiración de más de 40 % con relación al testigo, lo cual se pudo relacionar con el efecto del 1-MCP para retrasar la actividad metabólica de los frutos y su velocidad de maduración, al igual que lo reportado por Blankenship y Dole (2003).

Similar a este comportamiento, la tasa respiratoria en frutos de plátano (Musa spp.) (Pelayo et al., 2003) y manzana 'Golden Delicious' [Malus sylvestris var. domestica (Borkh.) Mansf.] (Argenta et al., 2007) fue menor en frutos tratados con 1-MCP que en el testigo. Así mismo, el uso de películas comestibles elaboradas con carbohidratos o carnauba en mangos 'Tommy Atkins' retrasó la velocidad de respiración debido al menor intercambio de gases entre el fruto y el medio, y la mayor vida poscosecha de los frutos se asoció con un retraso en la actividad metabólica y la transpiración (Baldwin et al., 1999).

Actividad enzimática

Al inicio del estudio todos los mangos mostraron una baja actividad de la poligalacturonasa (PG), < 10 nmoles AGA mg prot^-1 min^-1, la cual se incrementó cuatro veces en los frutos testigo a los 6 d de almacenamiento, mientras que los tratados con 1-MCP a 400 y 800 nL L^-1 permanecieron sin cambios significativos (P > 0.05) (Figura 3A). Este comportamiento se podría relacionar con los mayores valores de firmeza registrados en los frutos tratados con 1-MCP a 400 nL L^-1 (Figura 1). Sin embargo, a los 12 d de almacenamiento la actividad enzimática se incrementó en los frutos de los tres tratamientos, sin diferencia (P > 0.05) entre el testigo y los tratados con 400 nL L^-1 de 1-MCP. Solamente los frutos tratados con 1-MCP 800 nL L^-1 quedaron en promedio con 17 unidades de actividad por abajo del resto de los frutos (Figura 3A).

El incremento en la actividad de la PG en los frutos a los 12 d de almacenamiento se atribuye a su proceso natural de maduración, ya que la PG participa en el ablandamiento de los frutos (El-Zoghbi, 1994). No obstante que el 1-MCP actúa de forma irreversible sobre el sitio de acción del etileno, es posible que el fruto haya desarrollado nuevos receptores de etileno capaces de inducir la maduración de los frutos, como señalaron Blankenship y Dole (2003).

La actividad de celulasa (Cx) mostró un comportamiento similar a la PG (Figura 3B), al empezar el día cero con una actividad muy baja en todos los frutos y lograr un incremento (P ≤ 0.05) a los 6 d en los frutos testigo y en los tratados con 1-MCP a 800 nL L^-1. La diferencia (P ≤ 0.05) en la actividad de la Cx entre los frutos tratados con 1-MCP a 400 y los tratados con 800 nL L^-1 registrada a los 6 d de almacenamiento, se puede asociar con los valores de firmeza de los frutos (Figura 1), ya que a menor actividad de la enzima se registra una mayor firmeza. Posteriormente, la actividad de la Cx continuó incrementando hasta el día 12, sin diferencia entre los frutos testigo y los tratados con 1-MCP (Figura 3B).

El incremento en la actividad de las enzimas PG y Cx durante la maduración de los frutos coincide con otros investigadores (Abu-Sarra y Abu-Goukh, 1992; Mitcham y McDonald, 1992), quienes señalaron que la degradación de las pectinas y la celulosa presente en los frutos es por efecto de las enzimas PG y Cx, respectivamente, las cuales debilitan la pared celular y la consistencia de los frutos. Sin embargo, Muy et al. (2004) reportaron que la pérdida de textura y la ruptura celular del tejido de mango 'Keitt' permiten la salida del jugo del fruto, característica sensorial atractiva por los consumidores pero que es un indicio de senescencia; este fenómeno es el que se busca retrasar con el uso de 1-MCP. En frutos de aguacate tratados con 1-MCP, la actividad PG fue suprimida los primeros 24 d de almacenamiento en comparación con los no tratados, y también retrasó los cambios en la textura (Jeong y Huber, 2004).

La actividad de α-galactosidasa en los frutos (Cuadro 2) inició con la producción de 30 unidades, para luego aumentar (P ≤ 0.05) a 85 unidades a los 6 d de almacenamiento, pero sin diferencia significativa entre los frutos testigo y los tratados; a los 12 d esta actividad se vio reducida. Según Huber et al. (2001), el incremento en la actividad de α-galactosidasa se relaciona con una pérdida de firmeza de los frutos y pudiera estar asociada con la degradación de pectinas de la lámina media de las células que favorece la pérdida de adhesividad y consistencia de los frutos.

Al inicio del estudio la actividad de la β-galactosidasa en los mangos superó en 300 % la de α-galactosidasa (Cuadro 2), debido posiblemente a que los componentes de la pared celular de los frutos de mango son más ricos en galactanos (Prasanna et al., 2003). Se observó un incremento significativo en la actividad de β-galactosidasa en los frutos tratados con 800 nL L^-1 de 1-MCP a los 6 d, seguido de un decremento a los 12 d. La mayor actividad de esta enzima en los frutos tratados con 1-MCP se podría relacionar al estrés que este químico ocasiona al fruto, seguido de una activación de glicosidasas presentes en la pared celular como mecanismo de reserva, según lo reportado por Prasanna et al. (2005).

La actividad de la β-glucosidasa (Cuadro 2) mostró un comportamiento similar a la α-galactosidasa, con una actividad inicial de 20 unidades y un incremento significativo al día 6. Los frutos tratados con 800 nL L^-1 de 1-MCP tuvieron valores mayores a 114 unidades, mientras que en los frutos testigo y los tratados con 400 nL L^-1 de 1-MCP los valores fueron cercanos a 80 unidades; luego hubo una disminución considerable a los 12 d de almacenamiento.

CONCLUSIONES

El 1-metilciclopropeno (1-MCP), la película comestible (PC) y sus combinaciones, no fueron efectivos para retrasar la pérdida de peso en los frutos de mango cv. 'Ataulfo' durante el almacenamiento por 7 d a 12 °C + 15 d a 20 °C. La aplicación de 400 nL L^-1 de 1-MCP fue el tratamiento que logró reducir la pérdida de firmeza de los frutos durante 9 d de almacenamiento a 20 °C, posterior al almacenamiento por 7 d a 10 °C. La aplicación de 1-MCP solo o combinado con PC en los mangos disminuyó la actividad respiratoria de los frutos. La actividad de las enzimas poligalacturonasa y carboximetilcelulasa se redujo en los frutos tratados con 1-MCP en comparación con el testigo, y lo contrario ocurrió con la actividad de las enzimas α-galactosidasa, β-galactosidasa y β-glucosidasas.

AGRADECIMIENTOS

A la SAGARPA-CONACYT por el apoyo financiero. Al M. C. Manuel Alonzo Báez-Sañudo, M. C. Rosabel Vélez de la Rocha, M. C. Laura Aracely Contreras-Angulo e Ing. Rosalba Contreras-Martínez, por el apoyo técnico.

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