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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Se evaluó la virulencia y termotolerancia de 18 cultivos monospóricos de Metarhizium anisopliae var. anisopliae derivados de aislados originales de la mosca pinta (Aeneolamia sp.), plaga de la caña de azúcar. La virulencia de las diferentes cepas se determinó en pupas de Tenebrio molitor (Coleoptera: Tenebrionidae) considerando el Tiempo Letal Medio (TL50) y la termotolerancia durante el crecimiento de los cultivos monospóricos a 25, 30, 35 y 40 °C, considerando el crecimiento radial durante 14 días. De acuerdo con los resultados del TL50 y la mortalidad acumulada, los aislados con mayor virulencia fueron EH-481/1, EH-469/6, EH-476/3, EH-474/6, EH-475/2 y EH-473/4, con TL50 de 5.19, 5.76, 5.97, 6.04, 6.15 y 6.53 días, respectivamente. Los resultados de termotolerancia indicaron que el mayor crecimiento de los cultivos monospóricos y de la cepa de referencia FI-1029 correspondiente a M. anisopliae var. anisopliae fue igual a los aislados de México evaluados a 25 y 30 °C. El crecimiento de los aislados a 35°C fue menor, y a 40°C no hubo crecimiento. Se discute la relevancia de la virulencia y termotolerancia para la selección de cepas de hongos como agentes microbianos para el control biológico.]]></p></abstract>
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<kwd lng="en"><![CDATA[biological control]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[plagas agrícolas]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Contribuciones</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Virulencia y termotolerancia de cultivos monosp&oacute;ricos de <i>Metarhizium anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>de la mosca pinta (Hemiptera: Cercopidae)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Virulence and thermotolerance of monospore cultures of <i>Metarhizium anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>isolated from spittlebugs (Hemiptera: Cercopidae)</b></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Conchita Toriello<sup>1 *</sup>, Elena Montoya&#150;Sans&oacute;n<sup>1</sup>, Monserrat Zavala&#150;Ram&iacute;rez<sup>1, 2</sup>, Hortensia Navarro&#150;Barranco<sup>1</sup>, David Basilio&#150;Hern&aacute;ndez<sup>1</sup>, Victor Hern&aacute;ndez&#150;Vel&aacute;zquez<sup>3</sup>, Teresa Mier<sup>2</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup> <i>Depto. de Microbiolog&iacute;a y Parasitolog&iacute;a, Facultad de Medicina, UNAM. M&eacute;xico D.F. 04510 M&eacute;xico. </i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>2</sup><i> Depto. El Hombre y su </i><i>Ambiente, UAM&#150;Xochimilco, M&eacute;xico D.F. 04960 M&eacute;xico. </i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>3</sup> <i>Centro Nacional de Referencia en Control Biol&oacute;gico (SAGARPA), </i><i>Tecom&aacute;n, Colima, Mexico y Universidad Aut&oacute;noma del Estado de Morelos, M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">*<b>Autor para correspondencia:</b> <a href="mailto:toriello@servidor.unam.mx">    <br> toriello@servidor.unam.mx</a></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido 10 de agosto 2008    <br> Aceptado 1 de diciembre 2008</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The virulence and thermotolerance of 18 monospore cultures <i>of Metarhizium anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>derived from isolates of the spittlebug <i>(Aeneolamia </i>sp.) in sugarcane were tested. Virulence was determined by the median lethal time (LT<sub>50</sub>) in <i>Tenebrio molitor </i>(Coleoptera: Tenebrionidae) pupae and thermotolerance by fungal growth at 25, 30, 35 and 40 &deg;C. Thermotolerance of monospore isolates was studied by the diameter of the fungal colonies at day 14. Virulence results revealed EH&#150;481/1, EH&#150;469/6, EH&#150;476/3, EH&#150;474/6, EH&#150;475/2 y EH&#150;473/4, with a LT<sub>50</sub> of 5.19, 5.76, 5.97, 6.04, 6.15 and 6.53 days, respectively. The highest growth of isolates and of reference strain FI&#150;1029, correspond ing to <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae, </i>same as the isolates from Mexico, occurred at 25 and 30 &deg;C. Growth at 35 &deg;C was very low, and no growth occurred at 40 &deg;C. Results show the relevance of virulence and thermotolerance studies for strain selection to be used as biological control microbial agents. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b>biological control, entomopathogenic fungi, agricultural pests.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se evalu&oacute; la virulencia y termotolerancia de 18 cultivos monosp&oacute;ricos de <i>Metarhizium anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>derivados de aislados originales de la mosca pinta <i>(Aeneolamia </i>sp.), plaga de la ca&ntilde;a de az&uacute;car. La virulencia de las diferentes cepas se determin&oacute; en pupas de <i>Tenebrio molitor </i>(Coleoptera: Tenebrionidae) considerando el Tiempo Letal Medio (TL<sub>50</sub>) y la termotolerancia durante el crecimiento de los cultivos monosp&oacute;ricos a 25, 30, 35 y 40 &deg;C, considerando el crecimiento radial durante 14 d&iacute;as. De acuerdo con los resultados del TL<sub>50</sub> y la mortalidad acumulada, los aislados con mayor virulencia fueron EH&#150;481/1, EH&#150;469/6, EH&#150;476/3, EH&#150;474/6, EH&#150;475/2 y EH&#150;473/4, con TL<sub>50 </sub>de 5.19, 5.76, 5.97, 6.04, 6.15 y 6.53 d&iacute;as, respectivamente. Los resultados de termotolerancia indicaron que el mayor crecimiento de los cultivos monosp&oacute;ricos y de la cepa de referencia FI&#150;1029 correspondiente a <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>fue igual a los aislados de M&eacute;xico evaluados a 25 y 30 &deg;C. El crecimiento de los aislados a 35&deg;C fue menor, y a 40&deg;C no hubo crecimiento. Se discute la relevancia de la virulencia y termotolerancia para la selecci&oacute;n de cepas de hongos como agentes microbianos para el control biol&oacute;gico. </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>control biol&oacute;gico, hongos entomopat&oacute;genos, plagas agr&iacute;colas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El hongo entomopat&oacute;geno <i>Metarhizium anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>(Metsch.) Sorokin es un biorregulador natural de la mosca pinta o salivazo de los pastos <i>(Aeneolamia </i>sp., <i>Prosapia </i>sp.) (Hemiptera: Cercopidae) el cual ha sido usado exitosamente para el control de esta plaga en Brasil (Sobral da Silveira, 1990), Trinidad (Allard <i>et al., </i>1990), Australia (Samuels y Pinnock, 1990) y Guatemala (Toriello <i>et al., </i>1999). A nivel mundial existen productos registrados a base de conidios de <i>M. anisopliae </i>(Jenkins y Gryzwacz, 2000) que representan una alternativa ecol&oacute;gica al uso de insecticidas qu&iacute;micos. En M&eacute;xico, <i>M. anisopliae </i>se ha aplicado en programas de manejo integrado de la mosca pinta, insecto que afecta en promedio 150,000 ha de ca&ntilde;a de az&uacute;car (Flores, 1994; Garc&iacute;a de Le&oacute;n y Mier, 2003; Leal&#150;Guerra et al., 1998). </font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con el fin de garantizar la calidad de un bioinsecticida biol&oacute;gico se requiere llevar a cabo estudios para seleccionar y caracterizar los aislados con mayor potencial. La efectividad de <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>para el control del salivazo de los pastos, requiere de estudios interdisciplinarios que garanticen su eficacia bajo condiciones de campo, entre ellos, el desarrollo de t&eacute;cnicas para el monitoreo e identificaci&oacute;n de aislados termotolerantes y con mayor grado de virulencia. La temperatura es un factor ambiental relevante que afecta la eficacia de los hongos entomopat&oacute;genos (Ayala&#150;Zerme&ntilde;o <i>et al., </i>2005; De Cross y Bidochka, 1999; Ouedraogo <i>et al., </i>1997) as&iacute; como la virulencia en insectos (Hajek y St. Leger, 1994; Liu <i>et al., </i>2000; Torres de la Cruz <i>et al., </i>2006). Tambi&eacute;n la viabilidad de las esporas de los hongos es afectada cuando las formulaciones se exponen a altas temperaturas (Luz y Fargues, 1997), el crecimiento vegetativo (Ouedraogo <i>et al., </i>1997), la tasa de penetraci&oacute;n del tubo germinativo en el insecto (Xu <i>et al., </i>2002) y la colonizaci&oacute;n y reproducci&oacute;n en los hospederos (Alves <i>et al., </i>2002; Glare y Milner, 1991).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Asimismo, la temperatura y la humedad relativa del ambiente durante el periodo de almacenamiento y aplicaci&oacute;n en el campo, pueden influir en la estabilidad de las formulaciones (Lecuona y Alves, 1995). Es fundamental considerar dichos factores durante la selecci&oacute;n de aislados para el control biol&oacute;gico.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La termotolerancia est&aacute; estrechamente relacionada con la presencia de prote&iacute;nas hidrof&oacute;bicas de la pared celular de los conidios, que protegen al hongo del estr&eacute;s t&eacute;rmico y contribuyen a su adhesi&oacute;n a la cut&iacute;cula del insecto, lo cual est&aacute; directamente relacionado con la virulencia de los hongos (Ying y Feng, 2004).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En el presente trabajo se estudi&oacute; la variabilidad de 18 cultivos monosp&oacute;ricos de <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>considerando su termotolerancia y su virulencia en pupas de <i>Tenebrio molitor </i>(Coleoptera: Tenebrionidae), utilizado como modelo experimental, con el objetivo de seleccionar cepas con alto potencial para el control biol&oacute;gico de la plaga de la mosca pinta.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Hongo y condiciones de crecimiento</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los aislados de <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>fueron obtenidos de adultos de la mosca pinta de los pastos <i>(Aeneolamia </i>sp.) infectados que fueron colectados en cultivo de ca&ntilde;a de az&uacute;car y otros provienen del Centro Nacional de Referencia de Control Biol&oacute;gico (CNRCB), SAGARPA&#150;DGSV, Tecom&aacute;n, Colima, M&eacute;xico. Los cultivos monosp&oacute;ricos fueron obtenidos en el Laboratorio de Micolog&iacute;a B&aacute;sica, Facultad de Medicina, UNAM, y se conservan en agua destilada, aceite mineral y nitr&oacute;geno l&iacute;quido a&#150;196 &deg;C. Para los diferentes ensayos se sembraron en medio APD (infusi&oacute;n de papa blanca 30 %, dextrosa 2 <i>%, </i>agar 1.5 %) y agar de Sabouraud&#150;dextrosa adicionado de extracto de levadura (SDYA: peptona de soya 1 <i>%, </i>glucosa 4 %, extracto de levadura 1 % y agar 1 %). Se utilizaron 11 cepas de Entomopathogenic Fungi, United States Department of referencia del hongo (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>) de las colecciones de Agricultura (ARSEF&#150;USDA) y del Commonwealth entomopat&oacute;genos   del  Agricultural   Research   Service   of     Scientific and Industrial Research Organization, Australia (CSIRO), representantes de los 10 clados (grupos) taxon&oacute;micos descritos por Driver <i>et al. </i>(2000), para comparar la termotolerancia con los aislados de M&eacute;xico. Antes de realizar los bioensayos, la virulencia de las cepas fue reactivada en larvas de <i>Tenebrio molitor </i>Linneo (Coleoptera: Tenebrionidae).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el bioensayo de virulencia se utilizaron 16 cultivos monosp&oacute;ricos, y para los ensayos de termotolerancia se utilizaron 18 monosp&oacute;ricos y 11 cepas de referencia (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>)</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Insectos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como indicador biol&oacute;gico de la virulencia del hongo se usaron pupas de <i>T. molitor (Alves, </i>1999). Los insectos fueron mantenidos en recipientes de pl&aacute;stico a temperatura ambiente y fueron alimentados con alimento para pollo est&eacute;ril y agua. Despu&eacute;s de establecida la cr&iacute;a, los insectos fueron separados de acuerdo a los estadios de larva, pupa y adulto. Durante el transcurso del experimento las condiciones de las pupas de <i>T. molitor </i>se mantuvieron id&eacute;nticas a las mencionadas para la cr&iacute;a. La pupa del cole&oacute;ptero <i>T. molitor </i>fue utilizada como insecto de elecci&oacute;n para este estudio por reunir requisitos de cr&iacute;a y manejo sencillos, y adem&aacute;s por presentar alteraciones definidas y f&aacute;cilmente observables despu&eacute;s de ser inoculado con M. <i>anisopliae </i>(Alves, 1999).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Bioensayos de virulencia</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Antes de la infecci&oacute;n con el hongo, las pupas fueron lavadas y esterilizadas con agua destilada est&eacute;ril, hipoclorito de sodio al 5 %, agua destilada est&eacute;ril, etanol al 70 % y agua destilada, cada uno durante 1&#150;2 minutos (Goettel e Inglis, 1997). Despu&eacute;s las pupas fueron depositadas en cajas de Petri con papel filtro est&eacute;ril y se secaron en el interior de una campana de flujo laminar. Los insectos fueron tratados con 2 &micro;L de una suspensi&oacute;n f&uacute;ngica de 10<sup>7</sup> conidios/mL de Tween&reg; 80 al 0.1 % depositando la suspensi&oacute;n entre el t&oacute;rax y abdomen. Los insectos tratados fueron colocados cajas de Petri y &eacute;stas dentro de un contenedor con una humedad relativa mayor de 90 % (soluci&oacute;n saturada de sulfato de potasio) durante 24 h a 28 &deg;C. Despu&eacute;s de este tiempo las pupas se transfirieron a cajas con agar&#150;agua y se incubaron a 28 &deg;C durante nueve d&iacute;as (216 h). Por cada aislado, se trataron 15 pupas con tres repeticiones por cada uno (45 pupas por aislado). Se utilizaron como testigos, 15 pupas inoculadas solamente con Tween 80 al 0.1 %, de igual forma se realizaron tres repeticiones.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para registrar el n&uacute;mero de insectos muertos se revisaron diariamente utilizando un microscopio estereoscopio (Olympus SZ40). El criterio para establecer la muerte de la pupa fue la observaci&oacute;n de crecimiento f&uacute;ngico en una zona diferente a donde se hab&iacute;a depositado el in&oacute;culo. Se corrobor&oacute; la identificaci&oacute;n del hongo espec&iacute;fico mediante siembras de muestras en APD.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La virulencia fue determinada mediante el tiempo letal medio (TL<sub>50</sub>) aplicando an&aacute;lisis Probit (Finney, 1972) con el paquete estad&iacute;stico POLO PC (1987), con base en el porcentaje de mortalidad acumulada. Se aplic&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (ANDEVA, &alpha; =5 %) univariado previa transformaci&oacute;n de los datos a arcoseno (%)/100. En caso de observar diferencias significativas, se aplic&oacute; una prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias de Tukey (Montgomery, 1991).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Termotolerancia</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La determinaci&oacute;n de la termotoleracia se llev&oacute; a cabo seg&uacute;n el m&eacute;todo de Driver <i>et al. </i>(2000) modificado. Se obtuvo una suspensi&oacute;n conidial de 10<sup>8</sup> conidios/mL a partir de cultivos en APD de 10 d&iacute;as de crecimiento a 28 &deg;C. En el centro de cajas de Petri (100 x 15 mm) con medio de SDYA se coloc&oacute; un c&iacute;rculo de papel filtro est&eacute;ril de 6 mm de di&aacute;metro y se impregn&oacute; con 2 &micro;L de la suspensi&oacute;n conidial (2 x 10<sup>5 </sup>conidios). Se utilizaron cinco cajas por aislado y por cepa de referencia y se incubaron a cuatro diferentes temperaturas: 25, 30, 35 y 40 &deg;C. El crecimiento fue medido diariamente considerando dos di&aacute;metros perpendiculares de las colonias, determinando el crecimiento radial por el promedio de los di&aacute;metros menos el di&aacute;metro del papel filtro. El an&aacute;lisis de los promedios del crecimiento radial se hizo a los 14 d&iacute;as de incubaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para determinar las variaciones en el crecimiento de los hongos a las temperaturas evaluadas se aplic&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (ANDEVA) con los datos obtenidos a un nivel de significancia de &alpha; = 0.05. Cuando se encontraron diferencias significativas se aplic&oacute; la prueba de comparaci&oacute;n m&uacute;ltiple de medias de Tukey. Todos los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos se llevaron a cabo con el programa SPSS, versi&oacute;n 12, 2003.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados y discusi&oacute;n</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Tenebrio molitor </i>(o escarabajo de la harina) ha sido utilizado como hospedero del hongo entomopat&oacute;geno <i>M. anisopliae </i>en diversos estudios de virulencia (Sosa G&oacute;mez, 1983; Vanninen <i>et al., </i>1989) ya que es considerada una especie modelo para este tipo de estudios debido a su facilidad de manejo, a condiciones y requerimientos sencillos y de ciclo biol&oacute;gico simple (Sevala et <i>al., </i>1994).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La virulencia de los aislados f&uacute;ngicos fue determinada con base en su TL<sub>50</sub>. Para considerar los aislados de mayor virulencia, se tomaron en cuenta tambi&eacute;n los l&iacute;mites de confianza del TL<sub>50</sub> y el an&aacute;lisis de varianza y pruebas de medias del porcentaje de mortalidad acumulada (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). De acuerdo a la separaci&oacute;n de medias de los datos de la mortalidad acumulada, los aislados con mayor virulencia fueron EH&#150;481/1, EH&#150;469/6, EH&#150;476/3, EH&#150;474/6, EH&#150;475/2, EH&#150;473/4, EH&#150;468/1, EH&#150;470/6 y EH&#150;479/2 (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). Sin embargo, dentro de estos aislados, los m&aacute;s virulentos son EH&#150;481/1, EH&#150;469/6, EH&#150;476/3, EH&#150;474/6, EH&#150;475/2 y EH&#150;473/4, debido a que caen dentro del intervalo de confianza de cada valor calculado de TL50 entre los aislados. Durante el bioensayo, en el aislado EH&#150;481/1 con un TL<sub>50</sub> de 5.19 d&iacute;as, la mortalidad de las pupas comenz&oacute; a registrarse a partir del tercer d&iacute;a, mientras que el aislado EH&#150;467/6 con un TL<sub>50</sub> de 7.69 d&iacute;as la mortalidad comenz&oacute; a registrarse hasta el quinto d&iacute;a. Por otro lado, el aislado EH&#150;473/4, con un TL<sub>50</sub> de 6.53 d&iacute;as, fue el &uacute;nico que ocasion&oacute; en las pupas tratadas un 100% de mortalidad acumulada, y los insectos muertos comenzaron a registrarse entre los tres y cuatro d&iacute;as (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t2.jpg" target="_blank">Tabla 2</a>). Los insectos del grupo testigo tuvieron un desarrollo normal y todas las pupas alcanzaron la fase de adulto.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La medici&oacute;n de la virulencia en los microorganismos puede llevarse a cabo a trav&eacute;s de diferentes pruebas como la concentraci&oacute;n letal media (CL<sub>50</sub>) o la dosis letal media (DL<sub>50</sub>), entre otras. Sin embargo, la determinaci&oacute;n del tiempo letal medio (TL<sub>50</sub>), tambi&eacute;n es v&aacute;lida y especialmente importante en la determinaci&oacute;n de la virulencia de los hongos entomopat&oacute;genos para valorar el desarrollo de la enfermedad en funci&oacute;n del poder agresivo del pat&oacute;geno (Butt y Goettel, 2000; Robertson et <i>al., </i>2007).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El progreso de la infecci&oacute;n del cultivo monosp&oacute;rico EH&#150;481/1 en <i>T. molitor </i>fue gradual y la esporulaci&oacute;n del hongo se expres&oacute; de manera marcada a los 9 d&iacute;as (216 h) del experimento (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). La presencia temprana de micelio en los &uacute;ltimos segmentos abdominales, &aacute;rea retirada de la zona de inoculaci&oacute;n indic&oacute; que el hongo penetr&oacute; por la cut&iacute;cula, invadi&oacute; el interior del insecto, y le caus&oacute; la muerte, para luego salir y esporular sobre la superficie de la pupa (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). Cuando se sembraron en APD las muestras de las diferentes cepas del hongo que salieron sobre la superficie cuticular de las pupas tratadas, se observaron los conidi&oacute;foros y conidios bas&iacute;petos catenulados que son espec&iacute;ficos y caracter&iacute;sticos de <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae. </i>En el testigo no se registraron pupas muertas e infectadas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mortalidad de los insectos est&aacute; relacionada a la concentraci&oacute;n de conidios de <i>M. anisopliae </i>(Butt y Goettel, 2000). En estudios previos utilizando <i>Beauveria bassiana </i>y <i>Metarhizium anisopliae </i>contra <i>Conotrachelus psidii </i>(Coleoptera: Curculionidae), se encontraron mortalidades entre 26.6 y 88.6% en diversos aislados (Brito <i>et al., </i>2008). En <i>Hypothenemus hampei </i>(Coleoptera: Scolytidae), se observ&oacute; una mortalidad entre 11 y 34% al utilizar dosis entre 1.3 a 2.9 x 10<sup>7</sup> conidios/mL con cinco cepas de <i>M. anisopliae </i>(De la Rosa Reyes <i>et al., </i>1995). En nuestro trabajo, en infecci&oacute;n de un cole&oacute;ptero con <i>M. anisopliae </i>se alcanz&oacute; una mortalidad del 100% con un aislado, y para los dem&aacute;s, la mortalidad vari&oacute; de 69 a 96 % pero nunca fue menor. La cantidad de conidios utilizada debe alcanzar cierta concentraci&oacute;n para obtener una penetraci&oacute;n efectiva del hongo en la cut&iacute;cula del insecto y as&iacute; ocasionar la muerte del hospedero (Zhioua <i>et al., </i>1997).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los cultivos monosp&oacute;ricos de <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>que mayor crecimiento mostraron a 25 &deg;C fueron EH&#150;468/1 y EH&#150;477/5 y el de menor desarrollo fue EH&#150;472/6. Con respecto a las cepas de referencia incubadas a 25 &deg;C, la que mayor crecimiento alcanz&oacute; fue FI&#150;1029 proveniente de la colecci&oacute;n CSIRO de Australia y que corresponde a <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>(<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>), especie igual a la estudiada en nuestro trabajo. La cepa 1941 de la colecci&oacute;n ARSEF de Filipinas que corresponde a <i>M. album </i>(<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>) mostr&oacute; el menor crecimiento colonial a esta misma temperatura. Las diferencias observadas en el crecimiento a 25 &deg;C fueron significativas tanto entre los aislados de M&eacute;xico (F=226.602; g.l.=17,72; &rho;&lt;0.01), todos <i>de M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae, </i>como entre las cepas de referencia (F=1126.871; g.l.=10, 44; &rho;&lt; 0.01), de diferentes especies de <i>Metarhizium </i>(<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El aislado de M&eacute;xico que alcanz&oacute; el mayor desarrollo a 30&deg;C fue EH&#150;465/8, y los aislados que mostraron el menor desarrollo fueron EH&#150;472/6 y EH&#150;473/4 (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). De las cepas de referencia la que mayor crecimiento alcanz&oacute; a esta misma temperatura fue la cepa FI&#150;1029 (CSIRO) de Australia, misma de <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>que tuvo el mejor crecimiento de las de referencia a 25&deg; C. La cepa FI&#150;698 (CSIRO, Nueva Zelanda) que corresponde a <i>M. anisopliae </i>var. <i>novazealandicum </i>mostr&oacute; el menor desarrollo a 30 &deg;C. Las diferencias observadas en el crecimiento a 30 &deg;C fueron significativas tanto entre los aislados de M&eacute;xico (F= 86.389; g.l. = 17, 72; &rho;&lt;0.01), todos de <i>M. anisopliae var. anisopliae, </i>como entre las cepas de referencia (F= 2988.797; g.l.=10,44; &rho;&lt;0.01), de diferentes especies de <i>Metarhizium </i>(<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A 35&deg;C, los aislados de M&eacute;xico que alcanzaron el mayor crecimiento fueron EH&#150;468/1, EH&#150;474/6, EH&#150;479/2, EH&#150;465/8 y EH&#150;475/2 a diferencia de los aislados EH&#150;466/2, EH&#150;467/6, EH&#150;478/1, EH&#150;480/8 y EH&#150;481/1 que mostraron el menor crecimiento (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). A esta temperatura, el crecimiento de las cepas de referencia disminuy&oacute; considerablemente con excepci&oacute;n de las cepas FI&#150;1029 (CSIRO) de Eritrea y 985 (ARSEF) de Australia que registraron un crecimiento intermedio. Estas dos cepas corresponden a <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>(FI&#150;1029), misma de los aislados de M&eacute;xico y a <i>M. anisopliae </i>var. <i>acridum </i>de Australia. Las diferencias observadas en el crecimiento a 35 &deg;C fueron significativas tanto entre los aislados de M&eacute;xico (F=49.541; g.l.=17,72; &rho;&lt;0.01), todos de <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae, </i>como entre las cepas de referencia (F=74.087; g.l.=10, 44; &rho;&lt; 0.01), de diferentes especies de <i>Metarhizium </i>(<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t3.jpg" target="_blank">Tabla 3</a>). A 40 &deg;C, ni los aislados de M&eacute;xico ni las cepas de referencia tuvieron crecimiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">De acuerdo con nuestros resultados, las temperaturas &oacute;ptimas para el crecimiento de los aislados de M&eacute;xico son 25 y 30 &deg;C. Esto concuerda con los resultados de Berlanga&#150;Padilla y Hern&aacute;ndez&#150;Vel&aacute;zquez (2002), quienes encontraron altos porcentajes de germinaci&oacute;n en cultivos de <i>M. anisopliae </i>a 27 &deg;C. Fargues <i>et al. </i>(1992) tambi&eacute;n report&oacute; que <i>M. anisopliae </i>requiere para su crecimiento micelial una temperatura &oacute;ptima entre 25 y 28 &deg;C, mientras que los hongos entomopat&oacute;genos <i>Beauveria bassiana, B. brongniartii, Paecilomyces fumosoroseus </i>y <i>Nomuraea rileyi </i>tienen un mayor desarrollo a 25 &deg;C.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los aislados que tuvieron el mayor crecimiento a 25 y 3 0 &deg;C fueron colectados en regiones tropicales del estado de Veracruz (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>). Con respecto a las cepas de referencia, la que alcanz&oacute; un mayor crecimiento en estas temperaturas fue <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>(FI&#150;1029) proveniente de Eritrea (<a href="/img/revistas/rmm/v28nspe/a7t1.jpg" target="_blank">Tabla 1</a>), con clima tropical. Estos resultados concuerdan con los obtenidos por Driver <i>et al. </i>(2000) quienes realizaron ensayos de termotolerancia con cepas representativas de diversos clados (grupos) del g&eacute;nero <i>Metarhizium, </i>pues muestran la relaci&oacute;n entre la regi&oacute;n geogr&aacute;fica de procedencia de la cepa y su tolerancia a temperaturas asociadas a la regi&oacute;n en donde fueron aisladas. Observaciones similares fueron obtenidas por Bidochka <i>et al. </i>(2001) quienes realizaron an&aacute;lisis de gen&eacute;tica de poblaciones de 83 aislados de <i>M. anisopliae, </i>de un &aacute;rea forestal y otra agr&iacute;cola de Ontario, Canad&aacute;. Los aislados se separaron en dos grupos, cada uno de los cuales estuvieron asociados a las condiciones del h&aacute;bitat pero no al grupo de hospedero. En este mismo trabajo (Bidochka <i>et al., </i>2001), las cepas provenientes del &aacute;rea forestal, crecieron en medios de cultivo a temperaturas bajas, aproximadamente a 8 &deg;C; mientras que las cepas provenientes del &aacute;rea agr&iacute;cola, crecieron a temperaturas mayores como 35 &deg;C, y adem&aacute;s estas mismas mostraron una mayor resistencia a la exposici&oacute;n de rayos UV.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En este estudio se muestra la variabilidad intraespec&iacute;fica existente entre aislados de <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>provenientes de tres estados mexicanos: Oaxaca, San Luis Potos&iacute; y Veracruz, considerando la virulencia en pupas de <i>T. molitor </i>y la termotolerancia a 25, 30, 35 y 40 &deg;C durante el crecimiento. Con base en los resultados obtenidos concluimos que los aislados EH&#150;481/1, EH&#150;469/6, EH&#150;476/3, EH&#150;474/6, EH&#150;475/2 y EH&#150;473/4 de <i>M. anisopliae </i>var. <i>anisopliae </i>debido a su virulencia y buen crecimiento a 25, 30 y 35&deg;C ser&iacute;an buenos candidatos para ser utilizados en el control microbiano de la mosca pinta; sin embargo, es necesario realizar estudios en condiciones de campo con el objeto de evaluar su eficacia.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este trabajo fue llevado a cabo con el apoyo del CONACYT, megaproyecto grupal G&#150;31451&#150;B, en colaboraci&oacute;n entre la UNAM, el CNRCB y la UAM&#150;X</font>.</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Literatura citada</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Aguirre&#150;Acosta, E., E. P&eacute;rez&#150;Silva, 1978. Descripci&oacute;n de algunas especies del g&eacute;nero <i>Laccaria </i>de M&eacute;xico. Bolet&iacute;n de la Sociedad Mexicana de Micolog&iacute;a 12: 33&#150;58.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722943&pid=S0187-3180200800030000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Allard, G.B., C.A. Chase, J.B. Heale, J.E. Isaac, C. Prior, 1990. Field evaluation of <i>Metarhizium anisopliae </i>(Deuteromycotina: Hyphomycetes) as a mycoinsecticide for control of sugarcane froghopper, <i>Aeneolamia varia saccharina </i>(Homoptera: Cercopidae). Journal of Invertebrate Pathology 55: 41&#150;46.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722944&pid=S0187-3180200800030000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Alves, S.B., R.M. Pereira, R.B. Lopes, M.A. Tamai, 2002. Use of entomopathogenic fungi in Latin America. In: Upadhyay, R. K. (ed.), Advances in microbiobial control of insect pests. Kluwer Academic/Plenum Publishers, New York. pp. 193&#150;212.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722945&pid=S0187-3180200800030000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Alves, T.R., 1999. Development of mycoinsecticide formulations and application techniques apropiate for pest control. Tesis Doctoral, University of London, Imperial College of Science, Technology and Medicine Department, Londres.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722946&pid=S0187-3180200800030000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ayala&#150;Zerme&ntilde;o, M.A., T. Mier, J. S&aacute;nchez Robles, C. Toriello, 2005. Variabilidad intraespec&iacute;fica de <i>Lecanicillium lecanii (=Verticillium lecanii) </i>por efecto de la temperatura. Revista Mexicana de Micolog&iacute;a 20: 93&#150;97.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722947&pid=S0187-3180200800030000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Berlanga&#150;Padilla, A., V.M. Hern&aacute;ndez&#150;Vel&aacute;zquez, 2002. Efecto de la temperatura sobre el crecimiento y la virulencia de <i>Metarhizium anisopliae, M. anisopliae. </i>var. <i>acridum </i>y <i>Beauveria bassiana </i>en <i>Schistocerca picefrons picefrons. </i>Manejo Integrado de Plagas 63: 51&#150;55.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722948&pid=S0187-3180200800030000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bidochka, M.J., A.M. Kamp, M.T. Lavender, J. Dekoning, J.N.A. De Cross, 2001. Habitat association in two genetic groups of the insect&#150;pathogenic fungus <i>Metarhizium anisopliae: </i>uncovering cryptic species? Applied and Environmental Microbiology 67: 1335&#150;1342.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722949&pid=S0187-3180200800030000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brito, E.S., A. R. de Paula, L. P. Vieira, C. Dolinski, R. I. Samuels, 2008. Combining vegetable oil and sub&#150;lethal concentrations of imidacloprid with <i>Beauveria bassiana </i>and <i>Metarhizium anisopliae </i>against adult guava weevil <i>Conotrachelus psidii </i>(Coleoptera: Curculionidae). Biocontrol Science and Technology 18: 665&#150;673.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722950&pid=S0187-3180200800030000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Butt, T. M., M. S. Goettel, 2000. Bioassays of entomogenous fungi. In: Navon, A., K. R. S. Ascher (eds.), Bioassays of entomopathogenic microbes and nematodes. CABI Publishing, Wallingford, pp. 141&#150;195. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722951&pid=S0187-3180200800030000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">De Cross, J.N.A., M.J. Bidochka, 1999. Effects of low temperature on growth parameters   in   the   entomopathogenic   fungus   <i>Metarhizium </i><i>anisopliae. </i>Canadian Journal of Microbiology 45: 1055&#150;1061. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722952&pid=S0187-3180200800030000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">De la Rosa&#150;Reyes, W., J. L. God&iacute;nez&#150;Aguilar, R. Alatorre&#150;Rosas, 1995. Biological activity of five strains of <i>Metarhizium anisopliae </i>upon the   coffee   berry   borer   <i>Hypothenemus   hampei   </i>(Coleoptera: Scolytidae). Entomophaga 40: 403&#150;412. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722953&pid=S0187-3180200800030000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Driver, F., R.J. Milner, J.H.W. Trueman, 2000. A taxonomic revision of <i>Metarhizium </i>based on a phylogenetic analysis of rDNA sequence data. Mycological Research 104: 134&#150;150. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722954&pid=S0187-3180200800030000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fargues, J., N.K.Maniania, J.C. Delmas, N. Smith, 1992. Influence de la temperature   sur   la   croissance   <i>in   vitro   </i>d'Hyphomycetes entomopathogenes. Agronomie 12: 557&#150;564. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722955&pid=S0187-3180200800030000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Finney, D.J., 1972. Probit Analysis, 3<sup>rd</sup>. ed., Cambridge University Press, Cambridge. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722956&pid=S0187-3180200800030000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Flores, C. S., 1994. Las plagas de la ca&ntilde;a de az&uacute;car en M&eacute;xico. M&eacute;xico, D.F. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722957&pid=S0187-3180200800030000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garc&iacute;a de Le&oacute;n, S., T. Mier, 2003. Panorama actual de la producci&oacute;n comercial y aplicaci&oacute;n de bioplaguicidas en M&eacute;xico. Sociedades Rurales, Producci&oacute;n y Medio Ambiente 7: 65&#150;81. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722958&pid=S0187-3180200800030000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Glare, T.R., R.J. Milner, 1991. Ecology of entomopathogenic fungi. In: Arora, D.K., L. Ajello, K.G. Mukerji (eds.), Handbook of applied mycology. Dekker, Nueva York. pp. 547&#150;612.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722959&pid=S0187-3180200800030000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2"> Goettel, M.S., S.D. Inglis, 1997. Fungi: Hyphomycetes. In: Lacey, L.A. (ed.), Manual  of Techniques  in  Insect  Pathology.  Academic  Press, Londres. pp. 213&#150;248. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722960&pid=S0187-3180200800030000700018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hajek, A.E., R.J. St. Leger, 1994. Interaction between fungal pathogens and insect host. Annual Review of Entomology 39: 293&#150;322. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722961&pid=S0187-3180200800030000700019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jenkins, N.E., D. Grzywacz, 2000. Quality control of fungal and viral biocontrol agents: assurance of product performance. Biocontrol Science and Technology 10: 753&#150;777. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722962&pid=S0187-3180200800030000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Leal&#150;Guerra, J.F., J. Reyes Hern&aacute;ndez, A. Guill&eacute;n V&aacute;zquez, 1998. Manejo integrado de plagas de la ca&ntilde;a de az&uacute;car en los ingenios del grupo Saenz, Tamaulipas, M&eacute;xico. En: Memorias del XXI Congreso Nacional de Control Biol&oacute;gico.  R&iacute;o  Bravo,  TS,  M&eacute;xico,  5&#150;6 noviembre, p. 286. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722963&pid=S0187-3180200800030000700021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lecuona, E.R., S. Alves, 1995. Epizootiolog&iacute;a. <i>In: </i>Lecuona, E.R. (ed.), Microorganismos pat&oacute;genos empleados en el control microbiano de insectos plaga. IMYZA&#150;CICA&#150;INTA Castelar, Buenos Aires. pp. 17&#150;34. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722964&pid=S0187-3180200800030000700022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Liu, Y.Q., M.G. Feng, S.S. Liu, 2000. Effect of temperature on virulence of <i>Beauveria bassiana </i>against <i>Myzus persicae. </i>Chinese Journal of Biological Control 16: 56&#150;60. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722965&pid=S0187-3180200800030000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Luz, C., J. Fargues,  1997. Temperature and moisture requirements for conidial germination on isolates of <i>Beauveria bassiana, </i>pathogenic to <i>Rhodnius prolixus. </i>Mycopathologia 138: 117&#150;125. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722966&pid=S0187-3180200800030000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Montgomery, D.C.,  1991.  Dise&ntilde;o y An&aacute;lisis de Experimentos.  Grupo Editorial Iberoamericana, M&eacute;xico, D.F. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722967&pid=S0187-3180200800030000700025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ouedraogo, A., J. Fargues, M.S. Goettel, C.J. Lomer, 1997. Effect of temperature on vegetative growth among isolates of <i>Metarhizium anisopliae </i>and<i> M. flavoviride. </i>Mycopathologia 137: 37&#150;43. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722968&pid=S0187-3180200800030000700026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Robertson, J. L., R. M. Rusell, H. K. Preisler, N. E. Savin, 2007. Bioassays with arthropods. CRC Press, Boca Raton. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722969&pid=S0187-3180200800030000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Samuels, K.D.Z., D.E. Pinnock, 1990. Scarabeid larvae control in sugarcane using <i>Metarhizium anisopliae. </i>Journal of Invertebrate Pathology 55: 135&#150;137. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722970&pid=S0187-3180200800030000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sevala, V.M., L. King, J. Puiroux, A. Pedelaborde, B.G. Loughton, 1994. A comparison of the potency of proctolin analogues and their relative affinity for the proctolin binding sites on locust oviduct. In: Borkovec, A. B., M. J. Loeb (eds.), Insect Neurochemistry and Neurophysiology. CRC Press, Inc., Boca Raton. pp. 233&#150;236</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722971&pid=S0187-3180200800030000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sobral da Silveira, N.S., 1990. Micoflora associada &agrave; rizosfera de cana&#150;de&#150;a&ccedil;&uacute;car <i>(Saccharum </i>spp.), sua intera&ccedil;ao com <i>Metarhizium anisopliae </i>(Metsch) Sorokin e o efeito de Bianca na sobrevivencia deste fungo <i>"in vitro" </i>e no solo. Tese de Mestre, Universidade Federal de Pernanbuco, Recife.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722972&pid=S0187-3180200800030000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sosa G&oacute;mez, D.R., 1983. Caracteriza&ccedil;ao e padroniza&ccedil;ao de isolados de <i>Metarhizium anisopliae </i>(Metsch.) Sorokin, 1883 provenientes de diferentesregioes do Brasil. M.Sc. Thesis, ESALQ/USP. pp. 117.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722973&pid=S0187-3180200800030000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vanninen, I., G. B. Husberg, M. T. Hokkanen, 1989. Occurrence of entomopathogenic fungi and entomoparasitic nematodes in cultivated soils in Finland. Acta Entomologica Fennica 53: 65&#150;71.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722974&pid=S0187-3180200800030000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Toriello, C., H. Navarro&#150;Barranco, M.L. Almengor, T. Mier, 1999. Aplicaci&oacute;n de <i>Metarhizium anisopliae </i>(Mestch.) Sorokin como bioinsecticida contra la mosca pinta (Homoptera: Cercopidae) en pastizales para ganado en Guatemala. Revista Mexicana de Micolog&iacute;a 15: 119&#150;121.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722975&pid=S0187-3180200800030000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Torres de la Cruz, M., H. Cortez&#150;Madrigal, C.F. Ortiz Garc&iacute;a, L.C. Lagunas Espinosa, G. D&iacute;az God&iacute;nez, 2006. Cepas nativas de <i>Metarhizium anisopliae </i>(Metsch.) Sorokin, (Deuteromycotina: Hyphomycetes) y su potencial para el manejo de <i>Aeneolamia postica </i>(Homoptera: Cercopidae) en ca&ntilde;a de az&uacute;car en Tabasco, M&eacute;xico. XXIX Congreso Nacional de Control Biol&oacute;gico. Manzanillo, Colima, noviembre 6&#150;8, p. 319.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722976&pid=S0187-3180200800030000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Xu, S.T., M.G. Feng, S.H. Ying, 2002. Time&#150;specific infection rate of <i>Beauveria bassiana </i>on <i>Myzus persicae </i>after topical inoculation of conidial suspension. Chinese Journal of Applied Ecology 13: 701&#150;704.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722977&pid=S0187-3180200800030000700035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ying S.H, M.G. Feng, 2004. Relationship between thermotolerance and hydrophobin&#150;like proteins in aerial conidia of <i>Beauveria bassiana and Paecilomyces fumosoroseus </i>as fungal biocontrol agents. Journal of Applied Microbiology 97: 323&#150;331.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722978&pid=S0187-3180200800030000700036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Zhioua, E., M. Browning, P.W. Johnson, H. S. Ginsberg, R. A. LeBrun, 1997. Pathogenicity of the entomopathogenic fungus <i>Metarhizium anisopliae </i>(Deuteromycetes) to <i>Ixodes scapularis </i>( Acari: Ixodidae). Journal of. Parasitology 83: 815&#150;818.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8722979&pid=S0187-3180200800030000700037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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