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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de la temperatura en el cultivo de larvas del bivalvo Mytilus chilensis originadas por reproductores de distintas latitudes en ambiente controlado]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[D-veliger larvae from Mytilus chilensis broodstocks from natural banks of Punta Arenas and Chiloé (Chile) were grown at 9 ± 0.5 °C and 15 ± 0.5 °C to compare results under two culture temperatures. During this experiment, larvae were fed Isochrysis galbana (clone T-ISO). The larvae were grouped into four groups depending on origin of broodstock and the culture temperature. The growth rate was statistically higher in the group from Punta Arenas at 15 °C, while settlement length was smaller in the group from Chiloé at 9 °C. In both cases, the remaining groups did not differ significantly. Settlement survival showed no significant differences between populations and temperatures. Both populations showed a better use of accumulated thermal units (°C day-1) during growth at 9 °C than at 15 °C. Despite the genetic differentiation of the Punta Arenas population, the productive outcome of M. chilensis larvae from broodstocks from different latitudes is similar.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Efecto de la temperatura en el cultivo de larvas del bivalvo <i>Mytilus chilensi</i>s originadas por reproductores de distintas latitudes en ambiente controlado</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Effect of temperature on the culture of larvae of the bivalve <i>Mytilus chilensis</i> originated from broodstocks from different latitudes in a controlled environment</b></font></p>      <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>L Lagos<sup>1,3+</sup>, I Uriarte<sup>2,3</sup>*, G Yany<sup>4</sup>, M Astorga<sup>2,3</sup></b></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup><i> Hatchery de Invertebrados Marinos, Universidad Austral de Chile, Sede Puerto Montt, Chile.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup><i> Instituto de Acuicultura, Universidad Austral de Chile, PO Box 1327, Puerto Montt, Chile. * Corresponding author. E&#45;mail</i>: <a href="mailto:iuriarte@spm.uach.cl">iuriarte@spm.uach.cl</a></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>3</sup> CIEN Austral, Los Pimientos 4369, Valle Volcanes, Puerto Montt, Chile.</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i><sup>4</sup> Escuela de Ciencias del Mar, Pontificia Universidad Cat&oacute;lica de Valpara&iacute;so, Avda. Altamirano 1505, Valpara&iacute;so, Chile.</i></font>	</p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>+ Programa Doctorado Acuicultura, Pontificia Universidad Cat&oacute;lica de Valpara&iacute;so.</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p> 	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Received November 2011    <br> 	Received in revised form April 2012    <br> 	Accepted April 2012.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se obtuvieron larvas veliger D de reproductores de <i>Mytilus chilensis</i> procedentes de Punta Arenas y Chilo&eacute; (Chile), y se cultivaron a 9 &#177; 0.5 &deg;C y 15 &#177; 0.5 &deg;C para comparar los resultados del cultivo larvario de las dos poblaciones a dos temperaturas. Durante el experimento, las larvas fueron alimentadas con <i>Isochrysis galbana</i> (Clon T&#45;ISO). Las larvas fueron cultivadas en cuatro grupos dependiendo del origen y la temperatura. La tasa de crecimiento fue estad&iacute;sticamente mayor en el grupo de Punta Arenas a 15 &deg;C, y el tama&ntilde;o de fijaci&oacute;n fue menor en el grupo de Chilo&eacute; a 9 &deg;C. En ambos casos, los restantes grupos no presentaron diferencias significativas. La supervivencia hasta la fijaci&oacute;n no present&oacute; diferencias significativas entre poblaciones ni entre temperaturas. En ambas poblaciones se observ&oacute; un mejor aprovechamiento de las unidades t&eacute;rmicas acumuladas (&deg;C d&iacute;a<sup>&#45;1</sup>) en el crecimiento a 9 &deg;C que a 15 &deg;C. El resultado productivo de larvas de <i>M. chilensis</i> generadas por reproductores de distintas latitudes es similar, pese a la diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica de la poblaci&oacute;n de Punta Arenas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> mit&iacute;lidos, larvas, supervivencia, crecimiento, temperatura.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">D&#45;veliger larvae from <i>Mytilus chilensis</i> broodstocks from natural banks of Punta Arenas and Chilo&eacute; (Chile) were grown at 9 &#177; 0.5 &deg;C and 15 &#177; 0.5 &deg;C to compare results under two culture temperatures. During this experiment, larvae were fed <i>Isochrysis galbana</i> (clone T&#45;ISO). The larvae were grouped into four groups depending on origin of broodstock and the culture temperature. The growth rate was statistically higher in the group from Punta Arenas at 15 &deg;C, while settlement length was smaller in the group from Chilo&eacute; at 9 &deg;C. In both cases, the remaining groups did not differ significantly. Settlement survival showed no significant differences between populations and temperatures. Both populations showed a better use of accumulated thermal units (&deg;C day<sup>&#45;1</sup>) during growth at 9 &deg;C than at 15 &deg;C. Despite the genetic differentiation of the Punta Arenas population, the productive outcome of <i>M. chilensis</i> larvae from broodstocks from different latitudes is similar.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> mussels, larvae, survival, growth, temperature.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Mytilus chilensis</i> (Hup&eacute; 1854) es un mit&iacute;lido muy importante para la acuicultura en Chile; su producci&oacute;n ha incrementado de 3352 t en 1992 a 175,728 t en 2009 (FAO 2010). Este aumento ha sido posible debido al mayor n&uacute;mero de concesiones mar&iacute;timas y a la industrializaci&oacute;n de los cultivos (Ruiz <i>et al.</i> 2008, Toro <i>et al.</i> 2008). El desarrollo larvario puede durar entre 20 (Ruiz <i>et al.</i> 2008) y 45 d&iacute;as (Toro <i>et al.</i> 2006) y pasa por varias estados hasta la fijaci&oacute;n (larva v&eacute;liger D, larva v&eacute;liger umbonada, larva pediv&eacute;liger, larva metam&oacute;rfica). Esta especie tiene un potencial de dispersi&oacute;n de cientos de kil&oacute;metros, y existe muy baja diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica y morfol&oacute;gica a lo largo de casi 1900 km de l&iacute;nea de costa, desde el golfo de Arauco hacia el sur, salvo una leve diferenciaci&oacute;n en la poblaci&oacute;n de Punta Arenas (Toro <i>et al.</i> 2004a, 2004b, 2006).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La diferencia latitudinal entre poblaciones conlleva diferentes medias t&eacute;rmicas. Pese a que en la literatura se ha relacionado positivamente al crecimiento larvario de los bivalvos con la temperatura (Lutz y Kennish 1992, Beaumont <i>et al.</i> 2004, Ruiz <i>et al.</i> 2008, Rico&#45;Villa <i>et al.</i> 2009, Galley <i>et al.</i> 2010), no se ha comparado el crecimiento de larvas provenientes de ejemplares de poblaciones naturales separadas entre s&iacute; por varios grados de latitud. El objetivo de este estudio fue determinar si las larvas de <i>M. chilensis</i> provenientes de reproductores de diferentes latitudes (Chilo&eacute; y Punta Arenas), con una leve diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica (Toro <i>et al.</i> 2004a, 2004b, 2006), presentan diferencias en la tasa de crecimiento y en el porcentaje de supervivencia a iguales temperaturas de cultivo. Esta comparaci&oacute;n del desarrollo larvario de las dos poblaciones de <i>M. chilensis</i> ya mencionadas ayudar&aacute; a determinar su potencial para la producci&oacute;n de semilla en criadero.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">En invierno de 2010 se recolectaron ejemplares de M. <i>chilensis</i> de bancos naturales en Punta Arenas (52&deg;46' S, 70&deg;47' O) y Chilo&eacute; (43&deg;50' S, 73&deg;30' O) (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6f1.jpg" target="_blank">fig. 1</a>); su longitud promedio fue de 79.6 &#177; 4.9 mm y 71.8 &#177; 7.1 mm, respectivamente. De cada poblaci&oacute;n, 96 ejemplares fueron aclimatados y acondicionados en el Hatchery de Invertebrados Marinos de la Universidad Austral de Chile (Puerto Montt), tanto a 9 &#177; 0.5 &deg;C como a 15 &#177; 0.5 &deg;C. Los ejemplares fueron alimentados con las microalgas <i>Isochrysis galbana</i> y <i>Chaetoceros neogracile</i> (1:1); la raci&oacute;n total diaria fue de 400,000 c&eacute;l mL<sup>&#45;1</sup> y se suministr&oacute; mediante pulsos durante el d&iacute;a. Concluidos los acondicionamientos, se originaron larvas veliger D de <i>M. chilensis</i> mediante el desove inducido por shock t&eacute;rmico. Para comparar las diferentes latitudes, expresadas por las temperaturas de acondicionamiento, las larvas veliger D obtenidas fueron cultivadas por separado por poblaci&oacute;n (Punta Arenas y Chilo&eacute;) y temperatura (9 &#177; 0.5 &deg;C y 15 &#177; 0.5 &deg;C), formando cuatro grupos de poblaci&oacute;n&#45;temperatura. Cada grupo se dispuso en contenedores de 3 L de capacidad, con cuatro r&eacute;plicas por grupo, y se cultiv&oacute; hasta la fijaci&oacute;n. La densidad inicial fue de 10 larvas mL<sup>&#45;1</sup>. El agua de mar fue filtrada a 1 &#956;m y esterilizada con luz UV; se hicieron recambios de agua completos cada dos d&iacute;as y se suministr&oacute; aireaci&oacute;n constante. Las larvas fueron alimentadas con <i>I. galbana</i> (Clon T&#45; ISO) a una concentraci&oacute;n diaria de 50,000 c&eacute;l mL<sup>&#45;1</sup> por contenedor. Diariamente y hasta el fin del experimento, se midi&oacute; la temperatura, calcul&aacute;ndose las unidades t&eacute;rmicas acumuladas (UTA &oacute; &deg;C d&iacute;a<sup>&#45;1</sup>) transcurridas desde la eclosi&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cada dos d&iacute;as se cambi&oacute; el agua de cultivo. Las larvas se tamizaron y se muestrearon mediante 10 al&iacute;cuotas (1 mL en total) que se observaron y contaron en microscopio &oacute;ptico Zeizz con aumentos de 4x y 10x. Tambi&eacute;n se tomaron fotograf&iacute;as de las larvas en cada muestreo con una c&aacute;mara Canon G10 con aumento de 5x sobre una lupa Zeiss modelo Stemi 2000&#45;C. Se midi&oacute; la longitud m&aacute;xima de las larvas con el programa Axio Vision 4.0 (Carl Zeiss). Se calcularon la supervivencia y la tasa de crecimiento larvaria (&#956;m d&iacute;a<sup>&#45;1</sup>). El cultivo se mantuvo hasta que el 100% de las larvas se encontraron en el estado de pediv&eacute;liger y pr&oacute;ximas a la fijaci&oacute;n y metamorfosis. Para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico de cada resultado, depu&eacute;s de la previa comprobaci&oacute;n de la distribuci&oacute;n normal de los datos (prueba de Kolmogorov&#45;Smirnov) y la determinaci&oacute;n de la homogeneidad de varianza (prueba de Levene), se realiz&oacute; un an&aacute;lisis de varianza (ANOVA) de dos v&iacute;as. Posteriormente, se realiz&oacute; una prueba de comparaciones m&uacute;ltiples de Tukey. En el an&aacute;lisis de la tasa de crecimiento larvario, en que no se cumpli&oacute; el principio de homogeneidad de varianza, se utiliz&oacute; un ANOVA por rangos (prueba de Kruskal&#45;Wallis) seguido de una prueba de comparaciones m&uacute;ltiples de dos colas. Todos los an&aacute;lisis se realizaron con el software Statistica 7.0 (StatSoft Inc).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La tasa de crecimiento de la poblaci&oacute;n de Chilo&eacute; vari&oacute; entre 2.12 y 3.92 &#956;m d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> a 9 &deg;C y entre 2.89 y 5.90 &#956;m d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> a 15 &deg;C. Para la poblaci&oacute;n de Punta Arenas, la fluctuaci&oacute;n fue entre 2.98 y 4.62 &#956;m d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> a 9 &deg;C y entre 4.07 y 4.76 &#956;m d&iacute;a<sup>&#45;1</sup> a 15 &deg;C. El promedio de la tasa de crecimiento total fue menor (Kruskal&#45;Wallis <i>P</i> &lt; 0.05) a 9 &deg;C que a 15 &deg;C para ambas poblaciones y para las larvas originadas por los ejemplares de la poblaci&oacute;n de Chilo&eacute; con respecto a las de los ejemplares provenientes de Punta Arenas, para ambas temperaturas (Kruskal&#45;Wallis <i>P</i> &lt; 0.05; <a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>, <a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6f2.jpg" target="_blank">fig. 2</a>). En todos los grupos de poblaci&oacute;n&#45;temperatura el periodo de mayor crecimiento coincidi&oacute; con la transici&oacute;n del estado de larva umbonada a larva pediv&eacute;liger (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6f2.jpg" target="_blank">fig. 2</a>). La longitud larvaria final para la poblaci&oacute;n de Chilo&eacute; vari&oacute; entre 173.70 y 239.44 &#956;m a 9 &deg;C y entre 182.27 y 258.28 &#956;m a 15 &deg;C. Para la poblaci&oacute;n de Punta Arenas, la fluctuaci&oacute;n fue entre 200.08 y 264.05 &#956;m a 9 &deg;C y entre 218.49 y 231.56 &#956;m a 15 &deg;C. En promedio, la longitud larvaria final fue significativamente mayor para el grupo Punta Arenas a 9 &deg;C y menor para el grupo Chilo&eacute; a 9 &deg;C (ANOVA <i>P</i> &lt; 0.05; <a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>), mientras que no se observaron diferencias en los otros grupos poblaci&oacute;n&#45;temperatura (ANOVA <i>P</i> &gt; 0.05).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la poblaci&oacute;n de Chilo&eacute; el estado de larva v&eacute;liger D se mantuvo hasta el d&iacute;a 13 (4% del total de larvas) a 9 &deg;C y al d&iacute;a 11 (10% del total de larvas) a 15 &deg;C, el estado de larva v&eacute;liger umbonada se extendi&oacute; desde el d&iacute;a 4 (42% del total de larvas) hasta el d&iacute;a 35 (11% del total de larvas) a 9 &deg;C y desde el d&iacute;a 6 (42% del total de larvas) hasta el d&iacute;a 29 (67% del total de larvas) a 15 &deg;C y el estado de pediv&eacute;liger apareci&oacute; a los 33 d&iacute;as (14% del total de larvas) a 9 &deg;C y a los 29 d&iacute;as (33% del total de larvas) a 15 &deg;C (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6f3.jpg" target="_blank">fig. 3</a>); el tiempo de desarrollo hasta la fijaci&oacute;n para el total de la poblaci&oacute;n fue de 39 d&iacute;as a 9 &deg;C y de 33 d&iacute;as a 15 &deg;C. En las larvas de la poblaci&oacute;n de Punta Arenas, el estado de larva v&eacute;liger D se mantuvo hasta el d&iacute;a 8 (11% del total de larvas) a 9 &deg;C y el d&iacute;a 11 (11% del total de larvas) a 15 &deg;C, el estado de larva v&eacute;liger umbonada se extendi&oacute; desde el d&iacute;a 4 (37% del total de larvas) al d&iacute;a 33 (20% del total de larvas) a 9 &deg;C y desde el d&iacute;a 4 (50% del total) al d&iacute;a 26 (40% del total de larvas) a 15 &deg;C y el estado de pediv&eacute;liger apareci&oacute; a los 29 d&iacute;as a 9 &deg;C (60% del total de larvas) y a los 26 d&iacute;as a 15 &deg;C (25% del total de larvas); el tiempo de desarrollo hasta la fijaci&oacute;n para el total de la poblaci&oacute;n fue de 29 d&iacute;as a 9 &deg;C y de 39 d&iacute;as a 15 &deg;C (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6f3.jpg" target="_blank">fig. 3</a>). Tanto las larvas de Chilo&eacute; como de Punta Arenas necesitaron menos UTA para la fijaci&oacute;n a 9 &deg;C que a 15 &deg;C (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La supervivencia larvaria hasta la fijaci&oacute;n de la poblaci&oacute;n de Chilo&eacute; vari&oacute; entre 0.01% y 1.68% a 9 &deg;C y entre 0.01% y 2.0% a 15 &deg;C. En la poblaci&oacute;n de Punta Arenas, la fluctuaci&oacute;n fue entre 0.01% y 1.67% a 9 &deg;C y entre 0.01% y 5.0% a 15 &deg;C. La supervivencia larvaria promedio de <i>M. chilensis</i> no mostr&oacute; diferencias significativas (ANOVA <i>P</i> &gt; 0.05) ni entre poblaciones ni entre temperaturas; todos los grupos en estudio presentaron porcentajes similares de supervivencia (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>) hasta el final del estado de fijaci&oacute;n de pediv&eacute;liger y fin del experimento (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6f2.jpg" target="_blank">fig. 2</a>, <a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). La mayor declinaci&oacute;n de la supervivencia se dio en todos los grupos poblaci&oacute;n&#45;temperatura en los primeros 4 d&iacute;as del cultivo larvario.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los resultados del presente estudio muestran que el crecimiento larvario, independientemente de las poblaciones estudiadas, est&aacute; influenciado por la temperatura, cuyo incremento acelera los procesos metab&oacute;licos (S&aacute;nchez&#45;Lazo y Mart&iacute;nez&#45;Pita 2011). Esto se ha registrado para especies s&iacute;miles, aunque las tasas de crecimiento del presente estudio son menores que las indicadas por otros autores (His <i>et al.</i> 1989, Pechenik <i>et al.</i> 1990, Lutz y Kennish 1992, Beaumont <i>et al.</i> 2004, Ruiz <i>et al.</i> 2008, Galley <i>et al.</i> 2010, S&aacute;nchez&#45;Lazo y Mart&iacute;nez&#45;Pita 2011). Dicho menor crecimiento podr&iacute;a explicarse por diferencias en el sistema de cultivo y en la cantidad y composici&oacute;n de la dieta suministrada en cada caso y por el hecho de que el presente estudio se bas&oacute; en un sistema de cultivo cerrado y una alimentaci&oacute;n con <i>I. galbana</i> (Clon T&#45; ISO).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Al comparar las poblaciones estudiadas, se debe tener en cuenta que se realiz&oacute; el acondicionamiento reproductivo a ambas temperaturas en iguales condiciones. As&iacute;, se elimina la influencia de las condiciones ambientales presentes en las distintas zonas de recolecci&oacute;n y, por lo tanto, el cultivo larvario expresa las diferencias dadas por el potencial reproductivo de los reproductores y el efecto de la temperatura de cultivo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las larvas provenientes de ejemplares de Punta Arenas tuvieron mayor crecimiento que aquellas provenientes de ejemplares de Chilo&eacute; tanto a 9 &deg;C como a 15 &deg;C. La diferencia se genera debido a que la tasa de crecimiento de las larvas de los ejemplares de punta Arenas fue mayor que la de las larvas de los ejemplares de Chilo&eacute; en la fase final del cultivo. Esta situaci&oacute;n podr&iacute;a explicarse por una mayor capacidad de adaptaci&oacute;n y aprovechamiento de la temperatura durante el desarrollo, dada su leve diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica (Toro <i>et al.</i> 2004a, 2004b, 2006). Finalmente, en ambos grupos de larvas se observ&oacute; una longitud de fijaci&oacute;n larvaria dentro del intervalo citado para otros mit&iacute;lidos (Ruiz <i>et al.</i> 2008, Galley <i>et al.</i> 2010), con la mayor longitud en las larvas de Punta Arenas a ambas temperaturas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La poblaci&oacute;n de Punta Arenas mostr&oacute; mayor crecimiento a 15 &deg;C, pero su mayor longitud final se encontr&oacute; en el grupo cultivado a 9 &deg;C. Esto coincide con lo documentado para especies s&iacute;miles, que al ser sometidas a menores temperaturas tienen mayor vida planct&oacute;nica y longitud de fijaci&oacute;n (Galley <i>et al.</i> 2010, S&aacute;nchez&#45;Lazo y Mart&iacute;nez&#45;Pita 2011). Las larvas de Chilo&eacute;, sin embargo, aunque siguen el mismo patr&oacute;n, presentan una tendencia a mayor longitud a 15 &deg;C.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Esta situaci&oacute;n deber&aacute; ponerse a prueba en posteriores estudios.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A la temperatura inferior (9 &deg;C), ambas poblaciones requirieron igual cantidad de UTA hasta el estado de pediv&eacute;liger, y dicho valor (382.2 UTA) fue menor que el necesitado a 15 &deg;C (<a href="/img/revistas/ciemar/v38n3/a6t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a>). Por ello, durante el desarrollo las larvas de <i>M. chilensis</i> presentar&iacute;an un mejor aprovechamiento de la temperatura cu&aacute;ndo &eacute;sta es menor. A la temperatura superior (15 &deg;C), la poblaci&oacute;n de Punta Arenas necesit&oacute; menos UTA para la fijaci&oacute;n que la de Chilo&eacute;. Al respecto, Fearman y Moltschanswisky (2010) indicaron que la gametog&eacute;nesis en <i>M. galloprovincialis</i> es m&aacute;s r&aacute;pida a baja temperatura debido a un incremento en las demandas metab&oacute;licas, lo que representa un patr&oacute;n similar al aqu&iacute; presentado y que podr&iacute;a aplicarse al crecimiento larvario.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las larvas provenientes de ambas poblaciones retrasaron los cambios de estados larvarios a 9 &deg;C respecto a 15 &deg;C. El cultivo necesit&oacute; 6 d&iacute;as m&aacute;s para finalizar con el total de la poblaci&oacute;n c&oacute;mo pediv&eacute;liger para el caso de las larvas de Chilo&eacute; y 10 d&iacute;as m&aacute;s para el caso de la poblaci&oacute;n de Punta Arenas. Con ello aumenta el per&iacute;odo de nataci&oacute;n libre, lo que concuerda con lo citado para otros bivalvos (Bayne 1983, S&aacute;nchez&#45;Lazo y Mart&iacute;nez&#45;Pita 2011). Esto hace que el cultivo sea m&aacute;s extenso y disminuye la supervivencia larvaria. Posteriores experimentos son necesarios para establecer el umbral inferior de crecimiento larvario de <i>M. chilensis</i> en funci&oacute;n de la temperatura.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La supervivencia larvaria observada en la presente investigaci&oacute;n es similar a la citada para otros bivalvos (Rico&#45;Villa <i>et al.</i> 2009) y se aproxima a los resultados encontrados por Torkildsen y Magnesen (2004) en cultivos larvarios del osti&oacute;n <i>Pecten maximus.</i> La mayor supervivencia para ambos grupos de larvas fue a 15 &deg;C, coincidiendo con la mayor tasa de crecimiento. Esto indica una relaci&oacute;n positiva entre el tiempo de cultivo y la mortalidad larvaria, como se ha comentado anteriormente y seg&uacute;n lo citado para otros bivalvos (Velasco y Barros 2008, Liu <i>et al.</i> 2010). Cabe hacer notar que, seg&uacute;n nuestros resultados, los primeros 4 d&iacute;as de desarrollo son cr&iacute;ticos en t&eacute;rminos de supervivencia, lo que coincide con lo descrito por Satuito <i>et al.</i> (1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presente investigaci&oacute;n indica que pese a la diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica existente en la poblaci&oacute;n de Punta Arenas (Toro <i>et al.</i> 2004a, 2004b, 2006), el resultado productivo, en t&eacute;rminos de cantidad final de larvas de <i>M. chilensis</i> generadas por reproductores de distintas latitudes, fue similar a ambas temperaturas estudiadas, aunque el crecimiento y tama&ntilde;o final de las larvas generadas por la poblaci&oacute;n de Punta Arenas fue mayor.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como estrategia de producci&oacute;n larvaria, dados los antecedentes aqu&iacute; aportados, podr&iacute;an utilizarse reproductores de bancos naturales distantes entre s&iacute;, con asincron&iacute;a en su &eacute;poca de desove, para ampliar la &eacute;poca de producci&oacute;n de larvas sin necesidad de acondicionamiento de los ejemplares. Esto incidir&iacute;a en una eventual disminuci&oacute;n de los costos del proceso productivo. En posteriores estudios, se debe enfrentar la optimizaci&oacute;n de la supervivencia larvaria para lograr el desarrollo del cultivo de <i>M. chilensis</i> en condiciones controladas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los autores agradecen el financiamiento por parte del Proyecto Innova (CORFO 07CN13PPD&#45;240), CIEN Austral, el Hatchery de Invertebrados Marinos de la Universidad Austral de Chile y la Comisi&oacute;n Nacional de Investigaci&oacute;n Cient&iacute;fica y Tecnol&oacute;gica (CONICYT).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>REFERENCIAS</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bayne BL. 1983. Physiological ecology of marine molluscan larvae. In: Verdonk NH (ed.), The Mollusca. Vol. III. Academic Press, New York, pp. 299&#45;343.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945365&pid=S0185-3880201200040000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Beaumont AR, Turner G, Wood AR, Skibinski DOF. 2004. Hybridisation between <i>Mytilus edulis</i> and <i>Mytilus galloprovincialis</i> and performance of pure species and hybrid veliger larvae at different temperatures. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 302: 177&#45;188.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945367&pid=S0185-3880201200040000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">FAO. 2010. Fishery Information, Data and Statistics Unit, FISHSTAT Plus: Universal software for fishery statistical time series. Version 2.3. Dataset: Aquaculture production: quantities 1970&#45;2008.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945369&pid=S0185-3880201200040000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fearman J, Moltschanswisky NA. 2010. Warmer temperatures reduce rates of gametogenesis in temperate mussels, <i>Mytilus galloprovincialis.</i> Aquaculture 305:20&#45;25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945371&pid=S0185-3880201200040000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Galley TH, Batista FM, Braithwaite R, King J, Beaumont AR. 2010. Optimisation of larval culture of the mussel <i>Mytilus edulis</i> (L.). Aquacult. Int. 18: 315&#45;325.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945373&pid=S0185-3880201200040000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">His E, Robert R, Dinet A. 1989. Combined effects of temperature and salinity on fed and starved larvae of the Mediterranean mussel <i>Mytilus galloprovincialis</i> and the Japanese oyster <i>Crassostrea gigas.</i> Mar. Biol. 100: 455&#45;463.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945375&pid=S0185-3880201200040000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Liu W, Gurney&#45;Smith H, Beerens A, Pearce CM. 2010. Effects of stocking density, algal density, and temperature on growth and survival of larvae of the basket cockle, <i>Clinocardium nuttallii.</i> Aquaculture 299: 99&#45;105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945377&pid=S0185-3880201200040000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lutz R, Kennish M. 1992. Ecology and morphology of larval and early postlarval mussels. In: Gosling E (ed.), The Mussel <i>Mytilus:</i> Ecology, Physiology, Genetics and Culture. Developments in Aquaculture and Fisheries Science. Vol. 25. Elsevier Science Publishers, Amsterdam, pp. 53&#45;85.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945379&pid=S0185-3880201200040000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pechenik J, Eyster L, Widdows J, Bayne B. 1990. The influence of concentration and temperature on growth and morphological differentiation of blue mussel <i>Mytilus edulis</i> L. larvae. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 136: 47&#45;64.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945381&pid=S0185-3880201200040000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rico&#45;Villa B, Pouvreau S, Robert R. 2009. Influence of food density and temperature on ingestion, growth and settlement of Pacific oyster larvae, <i>Crassostrea gigas.</i> Aquaculture 287: 395&#45;401.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945383&pid=S0185-3880201200040000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ruiz M, Tarife&ntilde;o E, Llanos&#45;Rivera A, Padget C, Campos B. 2008. Efecto de la temperatura en el desarrollo embrionario y larval del mejill&oacute;n, <i>Mytilus galloprovincialis</i> (Lamarck 1819). Rev. Biol. Mar. Oceanogr. 431: 51&#45;61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945385&pid=S0185-3880201200040000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">S&aacute;nchez&#45;Lazo C, Mart&iacute;nez&#45;Pita I. 2011. Effect of temperature on survival, growth and development of <i>Mytilus galloprovincialis</i> larvae. Aquacult. Res. doi: 10.1111/j.1365&#45;2109.2011.02916.x.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945387&pid=S0185-3880201200040000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Satuito CG, Natoyama K, Yamazaki M, Fusetani N. 1994. Larval development of mussel <i>Mytilus edulis galloprovincialis</i> cultured under laboratory conditions. Fish. Sci. 60: 65&#45;68.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945389&pid=S0185-3880201200040000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Torkildsen L, Magnesen T. 2004. Hatchery production of scallop larvae <i>(Pecten maximus)</i> survival in different rearing systems. Aquacult. Int. 12: 489&#45;507.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945391&pid=S0185-3880201200040000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Toro JE, Ojeda JA, Vergara AM. 2004a. The genetic structure of <i>Mytilus chilensis</i> (Hupe 1854) populations along the Chilean coast based on RAPDs analysis. Aquacult. Res. 35: 1466&#45;1471.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945393&pid=S0185-3880201200040000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Toro JE, Alcap&aacute;n AC, Vergara AM, Ojeda JA. 2004b. Heritability estimates of larval and spat shell height in the Chilean blue mussel <i>(Mytilus chilensis</i> Hupe 1854) produced under controlled laboratory conditions. Aquacult. Res. 35: 56&#45;61.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945395&pid=S0185-3880201200040000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Toro JE, Castro GC, Ojeda JA. 2006. Allozymic variation and differentiation in the Chilean blue mussel, <i>Mytilus chilensis,</i> along its natural distribution. Genet. Mol. Biol. 29: 174&#45;179.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945397&pid=S0185-3880201200040000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Toro JE, Alcap&aacute;n AC, Stead RA. 2008. Cruzamientos interpoblacionales en <i>Mytilus chilensis,</i> un bivalvo de importancia comercial y sus efectos sobre el crecimiento en longitud de la valva durante la etapa larval. Arch. Med. Vet. 40: 299&#45;303.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945399&pid=S0185-3880201200040000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Velasco L, Barros J. 2008. Experimental larval culture of the Caribbean scallops <i>Argopecten nucleus</i> and <i>Nodipecten nodosus.</i> Aquacult. Res. 39: 603&#45;618.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1945401&pid=S0185-3880201200040000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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