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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Genética poblacional del caracol rosado Strombus gigas en la Península de Yucatán: Implicaciones para su manejo y pesquería]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Population genetics of the pink snail Strombus gigas in the Yucatan Peninsula: Implications for its management and fishery]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The genetic population structure of the pink snail Strombus gigas in the Yucatan Peninsula, Mexico, was determined by isozyme expression in polyacrylamide gels. Muscle samples of 50 organisms, captured at four sites of the Yucatan Peninsula, were used to characterize the genotypic expression as revealed by the expression of 55 loci in 30 enzymatic systems. The TFPGA program was used to analyze genic frequency data. The following parameters were determined: descriptive statistics, F statistic, genetic distances, Hardy-Weinberg equilibrium, UPGMA and the number of migrants as indicator of gene flow. Heterozygosity values ranged from 0.3240 for OCTDH 2 to 0.0440 for FUM, with a mean value of 0.0366; Fis values ranged from 0.0835 for OCTDH 2 to 0.3600 for FUM, with a mean value of -0.0492; and Fst values ranged from 0.0082 for LAP 2 to 0.1967 for MDH 2, with a mean value of 0.1039, suggesting heterozygote deficiency. The number of migrants derived from the Slatkin equation is 2.156 per generation, which suggests a certain degree of variability among populations and corroborates the low values obtained for Nei's genetic distance, of 0.0053 for the node showing the separation of the population from Arrecife de Alacranes from the other populations. We conclude that the S. gigas populations studied here do not present genetic fragility for their subsistence.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Gen&eacute;tica poblacional del caracol rosado <i>Strombus gigas</i> en la Pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n: Implicaciones para su manejo y pesquer&iacute;a</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Population genetics of the pink snail <i>Strombus gigas</i> in the Yucatan Peninsula: Implications for its management and fishery</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Jorge A. Tello&#45;Cetina<sup>1*</sup>, Luis A. Rodr&iacute;guez&#45;Gil<sup>1</sup> y Faustino Rodr&iacute;guez&#45;Romero<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>1</i></sup> <i>Instituto Tecnol&oacute;gico de M&eacute;rida Av. Tecnol&oacute;gico s/n Apartado postal 9&#45;11 M&eacute;rida, Yucat&aacute;n. M&eacute;xico.</i> * E&#45;mail: <a href="mailto:74080625@itmerida.mx">74080625@itmerida.mx</a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>2</i></sup> <i>Instituto de Ciencias del Mar y Limnolog&iacute;a Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico. Apartado postal 70&#45;305, M&eacute;xico, DF, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido en agosto de 2004;    <br> 	aceptado en diciembre de 2004.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se determin&oacute; la estructura gen&eacute;tica poblacional del caracol rosado <i>Strombus gigas</i> en la Pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n, M&eacute;xico, mediante la expresi&oacute;n de isoenzimas en geles de poliacrilamida. Se utilizaron muestras de m&uacute;sculo de 50 organismos, capturados en cada uno de los cuatro sitios de la Pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n seleccionados, para caracterizar la expresi&oacute;n genot&iacute;pica revelada por la expresi&oacute;n de 55 loci en 30 sistemas enzim&aacute;ticos. Se utiliz&oacute; el programa TFPGA versi&oacute;n 1.3 para procesar los datos de frecuencias g&eacute;nicas de aloenzimas de las poblaciones en estudio. Los par&aacute;metros determinados fueron: estad&iacute;stica descriptiva, estad&iacute;stica <i>F,</i> distancias gen&eacute;ticas, equilibrio de Hardy&#45;Weinberg, UPGMA y el n&uacute;mero de migrantes como indicador del flujo de genes. Los valores de heterocigosis, en un rango de 0.3240 para OCTDH 2 hasta 0.0440 para FUM y promedio de 0.0366, los de <i>Fis,</i> con un rango de 0.0835 para OCTDH 2 hasta 0.3600 para la FUM y promedio de &#45;0.0492, y los de Fst, con un rango de 0.0082 para LAP 2 hasta 0.1967 para MDH 2 y promedio de 0.1039, indican una deficiencia de heterocigotos. El n&uacute;mero de migrantes derivado de la ecuaci&oacute;n de Slatkin result&oacute; de 2.156 por generaci&oacute;n, lo que en forma global indica un cierto grado de variabilidad entre las poblaciones y es consistente con los bajos valores de distancia gen&eacute;tica de Nei encontrados, particularmente en el nodo que sugiere la separaci&oacute;n de la poblaci&oacute;n de Alacranes de las otras poblaciones estudiadas, con un valor obtenido de 0.0053. Por los resultados, se concluye que las poblaciones de <i>S. gigas</i> en el Caribe mexicano presentan niveles de variabilidad gen&eacute;tica que no reflejan fragilidad para su subsistencia.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> gen&eacute;tica de poblaciones, isoenzimas, <i>Strombus gigas.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">The genetic population structure of the pink snail <i>Strombus gigas</i> in the Yucatan Peninsula, Mexico, was determined by isozyme expression in polyacrylamide gels. Muscle samples of 50 organisms, captured at four sites of the Yucatan Peninsula, were used to characterize the genotypic expression as revealed by the expression of 55 loci in 30 enzymatic systems. The TFPGA program was used to analyze genic frequency data. The following parameters were determined: descriptive statistics, <i>F</i> statistic, genetic distances, Hardy&#45;Weinberg equilibrium, UPGMA and the number of migrants as indicator of gene flow. Heterozygosity values ranged from 0.3240 for OCTDH 2 to 0.0440 for FUM, with a mean value of 0.0366; <i>Fis</i> values ranged from 0.0835 for OCTDH 2 to 0.3600 for FUM, with a mean value of &#45;0.0492; and <i>Fst</i> values ranged from 0.0082 for LAP 2 to 0.1967 for MDH 2, with a mean value of 0.1039, suggesting heterozygote deficiency. The number of migrants derived from the Slatkin equation is 2.156 per generation, which suggests a certain degree of variability among populations and corroborates the low values obtained for Nei's genetic distance, of 0.0053 for the node showing the separation of the population from Arrecife de Alacranes from the other populations. We conclude that the <i>S. gigas</i> populations studied here do not present genetic fragility for their subsistence.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> population genetics, isozymes, <i>Strombus gigas.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La caracterizaci&oacute;n de la estructura gen&eacute;tica poblacional constituye un criterio de gran utilidad para la preservaci&oacute;n de especies de importancia comercial y ecol&oacute;gica ya que &eacute;sta es indicadora de la heterogeneidad u homogeneidad de las poblaciones a lo largo de grandes regiones geogr&aacute;ficas (Bates y Innes, 1995). El caracol rosado <i>Strombus gigas</i> L. es un molusco gaster&oacute;podo marino grande (<a href="#f1">fig. 1</a>), de importancia econ&oacute;mica para el &aacute;rea marina del Caribe. El rango biogeogr&aacute;fico de la especie se extiende desde el sur de la Florida hasta Venezuela y del este de Am&eacute;rica Central hasta las Bahamas y las Islas de las Indias Occidentales. En las aguas costeras de las Bermudas tambi&eacute;n ha sido reportada una poblaci&oacute;n aislada.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v31n2/a6f1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Como resultado de un intenso esfuerzo de pesca y de la destrucci&oacute;n del h&aacute;bitat de este molusco, las pesquer&iacute;as de <i>S. gigas</i> en la mayor&iacute;a de las regiones del Caribe (Stoner y Ray, 1993) se han visto seriamente disminuidas y en algunos casos se ha llegado a la desaparici&oacute;n del recurso. Esto motiv&oacute; que <i>S. gigas</i> fuera considerada una especie comercialmente amenazada a nivel mundial en 1983 (Stoner, 1994) y a&ntilde;adida en 1992 al ap&eacute;ndice II del convenio sobre comercio internacional de especies en peligro de extinci&oacute;n (CITES) (Stoner <i>et al.,</i> 1996), propici&aacute;ndose con esta medida que su pesquer&iacute;a fuera cerrada estacionalmente por periodos multianuales en &aacute;reas de Venezuela, M&eacute;xico, Belice, Cuba, Colombia y los Estados Unidos (Stoner <i>et al.,</i> 1996). El problema de supervivencia en estos organismos se agrava debido a la falta de datos sobre la especie en algunas &aacute;reas del Caribe, principalmente datos sobre abundancia de juveniles y adultos, la distribuci&oacute;n y abundancia de larvas y la estructura gen&eacute;tica de sus poblaciones.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El recurso <i>S. gigas</i> en M&eacute;xico, se maneja actualmente con una veda de abril a noviembre que aparentemente coincide con su ciclo reproductivo. Otra medida reguladora es la talla m&iacute;nima de extracci&oacute;n, que se redujo de 22 cm a 20 cm de longitud sifonal debido a las presiones ejercidas por los pescadores dedicados a su captura. Es claro que esta nueva talla puede afectar tambi&eacute;n al acervo reproductivo y al reclutamiento. Finalmente, la cuota de captura de 2.5 toneladas por mes, no es respetada por los pescadores, quienes adem&aacute;s complementan sus cuotas asignadas con caracoles juveniles.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En vista de la falta de informaci&oacute;n fundamental sobre la gen&eacute;tica de las poblaciones de <i>S. gigas</i> del Caribe mexicano adyacente a la Pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n, que sirva como base para la mejor explotaci&oacute;n y para complementar las normas de la pesquer&iacute;a de este recurso dada su elevada importancia comercial, el objetivo del presente trabajo fue determinar la estructura gen&eacute;tica de las cuatro poblaciones m&aacute;s importantes de <i>S. gigas</i> en el &aacute;rea con el fin de coadyuvar al establecimiento de mecanismos y estrategias adecuados para el mejor manejo de su pesquer&iacute;a.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material y m&eacute;todos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La obtenci&oacute;n de los organismos se realiz&oacute; en cuatro sitios de las costas de la Pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n (<a href="#f2">fig. 2</a>). De cada sitio y con la ayuda de pescadores locales, se recolectaron 50 caracoles de todas las tallas, por medio de buceo libre en Punta Allen, Banco Chinchorro y Arrecife de Alacranes y por medio de SCUBA en Isla Mujeres.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v31n2/a6f2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Muestras de m&uacute;sculo se homogeneizaron en un volumen igual de buffer de extracci&oacute;n consistente en 12.1 g de Tris HCl, 336 mg de EDTA y 20 mg de NAD+, ajustado a un pH de 7 (Shaklee y Keenan, 1986), y se centrifugaron a 10,000 rpm por 10 min en una centr&iacute;fuga refrigerada a 7&deg;C. Para efectuar el corrido electrofor&eacute;tico, el revelado histoqu&iacute;mico y la determinaci&oacute;n fenot&iacute;pica de las muestras se utilizaron geles de poliacrilamida al 7.7%, preparados para ser usados con el sistema nativo (Brewer, 1970).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La presencia fenot&iacute;pica se determin&oacute; siguiendo los procedimientos de Shaw y Prasad (1970), Brewer (1970) y Shaal y Anderson (1974). Se designaron presuntos loci y alelos por medio del sistema de nomenclatura utilizado por Shaklee y Keenan (1986). Los m&uacute;ltiples loci de una enzima en particular se designaron num&eacute;ricamente (1, 2, 3, etc.) en orden de mayor a menor movilidad anodal. Los alelos de un locus en particular fueron designados por su movilidad an&oacute;dica relativa y nombrando al alelo m&aacute;s frecuente como 100 y a los dem&aacute;s por arriba y por debajo de &eacute;ste con los valores respectivos. Un locus se consider&oacute; polim&oacute;rfico si el alelo m&aacute;s frecuente tiene una probabilidad menor que 95% (Towsend y Shing, 1984). El nivel de heterocigosis se determin&oacute; con relaci&oacute;n a la ley del equilibrio de Hardy&#45;Weinberg.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se utiliz&oacute; el programa TFPGA <i>(Tools for population genetic analyses)</i> versi&oacute;n 1.3, para efectuar el an&aacute;lisis de los datos gen&eacute;ticos de las aloenzimas de la poblaciones (Miller, 2000). Los par&aacute;metros determinados fueron: estad&iacute;stica descriptiva, estad&iacute;stica <i>F,</i> distancia gen&eacute;tica, pruebas de robustez para Hardy&#45;Weinberg y los del m&eacute;todo de grupos de pares con media aritm&eacute;tica (UPGMA).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&Uacute;nicamente se utilizaron los loci que no fueron monom&oacute;rficos para determinar el nivel de polimorfismo. En la <a href="/img/revistas/ciemar/v31n2/a6t1.jpg" target="_blank">tabla 1</a> se presentan los resultados medios de los valores de heterocigosis, as&iacute; como los de polimorfismo en tres formas diferentes y los valores globales. El valor de 0.0366 de heterocigosis global se puede considerar bajo. Sin embargo, al efectuar el an&aacute;lisis con los ocho loci que presentaron variabilidad, se encontr&oacute; un valor de heterocigosis de 0.2203. Asimismo, se presentan los valores de polimorfismo, 9.3023% para el Arrecife de Alacranes, 14.8936% para Banco Chinchorro, 14.8936% para Isla Mujeres y 6.9707% para Punta Allen, con un valor global de 12.5000% en todas las poblaciones. Estos valores indicaron diversidad intrapoblacional con poca heterogeneidad interpoblacional.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La <a href="#t2">tabla 2</a> presenta los valores globales obtenidos con las pruebas de chi cuadrada y de Haldane. Se aprecia que los loci EST 2, G6PDH, LAP 2 y MDH 2 presentaron significancia diferencias significativas para la primera prueba mientras que EST 2, LAP 2 y MDH 2 fueron significativamente diferentes con la segunda prueba. Luego entonces, de los 8 loci que presentaron variaci&oacute;n en el tejido de m&uacute;sculo en las cuatro poblaciones analizadas, casi 50 de ellos se apartan de la condici&oacute;n de equilibrio. El an&aacute;lisis de remuestreo utilizando los m&eacute;todos de Monte Carlo y la cadena de Markov para cada uno de los sitios de muestreo confirm&oacute; que solamente EST 2 y MDH 2 son los loci que presentan alguna variabilidad.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t2"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v31n2/a6t2.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#t3">tabla 3</a> se muestran los valores de <i>Fis,</i> que van desde 0.0835 para la OCTDH 2 hasta 0.3600 para EST 2 y un promedio de &#45;0.0492, mientras que los del &iacute;ndice de fijaci&oacute;n (Fst) presentan un rango de 0.0082 para LAP 2 hasta 0.1967 para MDH 2, con un promedio de 0.1039.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t3"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v31n2/a6t3.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de distancia gen&eacute;tica se presentan en forma resumida en la <a href="/img/revistas/ciemar/v31n2/a6t4.jpg" target="_blank">tabla 4</a>. Todas las poblaciones son comparadas de manera pareada. Los valores obtenidos mediante el modelo de distancia insesgada de Nei (1978) fueron los m&aacute;s bajos en todas las poblaciones, mientras que los mayores fueron los de distancia establecidos con el modelo de Rogers (1972) y modificado por Wright (1978). En el primer caso la relaci&oacute;n Banco Chinchorro&#45;Isla Mujeres tuvo el valor m&aacute;s bajo (0.0011), y la relaci&oacute;n Arrecife de Alacranes&#45;Punta Allen fue la de valor m&aacute;s alto; en el segundo caso la relaci&oacute;n Banco Chinchorro&#45;Isla Mujeres fue la que present&oacute; el valor m&aacute;s bajo (0.0378), y la relaci&oacute;n Arrecife de Alacranes&#45;Punta Allen (0.0834) fue la mayor. Independientemente del modelo utilizado, los menores y mayores valores de relaci&oacute;n siempre se mantuvieron entre los pares de poblaciones Banco Chinchorro&#45;Isla Mujeres y Arrecife de Alacranes&#45;Punta Allen, al igual que lo ocurrido con los valores de identidad obtenidos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la <a href="#f3">figura 3</a> se presenta el dendrograma obtenido por el an&aacute;lisis de agrupamiento utilizando el modelo de distancia original de Nei (1972). El m&aacute;ximo valor de distancia (0.0053) lo present&oacute; el nodo que relaciona a la poblaci&oacute;n del Arrecife de Alacranes con las dem&aacute;s y el menor valor lo present&oacute; el nodo de Banco Chinchorro&#45;Isla Mujeres (0.0015).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v31n2/a6f3.jpg"></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las cuatro poblaciones de <i>S. gigas</i> de las costas de la Pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n que fueron analizadas presentaron baja variabilidad y poca diferenciaci&oacute;n geogr&aacute;fica entre ellas. Los valores de heterocigosis son relativamente bajos e indican una deficiencia de heterocigotos. El valor de polimorfismo encontrado (12.50% global para el m&uacute;sculo) es relativamente bajo si se compara con el promedio para invertebrados marinos (58%; Saavedra <i>et al.,</i> 1993). Estos bajos niveles de variabilidad pueden tener diversos or&iacute;genes, desde una circunstancia propia de la especie, hasta el esfuerzo pesquero a que son sometidas las poblaciones del &aacute;rea o el tama&ntilde;o de muestra utilizado (Heist <i>et al.</i> 1995). El valor de heterocigosis media global de 0.0366 encontrado para el m&uacute;sculo, aunque bajo, se encuentra dentro de los valores determinados para especies de invertebrados marinos en general, ya que la deficiencia de heterocigotos es una caracter&iacute;stica com&uacute;n que se presenta en estos organismos (Mamuris <i>et al.,</i> 1998; Boisselier&#45;Dubayle y Gofas, 1999) a pesar de que las caracter&iacute;sticas reproductoras de muchas de estas especies reflejen el cl&aacute;sico modelo panm&iacute;tico de las poblaciones gen&eacute;ticas (Bierley <i>et al.,</i> 1996). No obstante, siempre existe la posibilidad de que otros factores influyan para que se presenten niveles bajos de heterocigotos tales como el resultado de la mezcla de poblaciones (efecto Wahalund), los diversos tipos de selecci&oacute;n, la presencia de alelos nulos o la p&eacute;rdida de cromosomas que podr&iacute;an causar estimaciones incorrectas de las fracciones fenot&iacute;picas (Creasey <i>et al.,</i> 1996). En el caso de <i>S. gigas</i> los bajos valores de <i>Fst</i> determinados entre las poblaciones indican que no se puede considerar al efecto Wahalund como la causa de este fen&oacute;meno, aunque se mantiene la posibilidad de que exista entrada de migrantes (2.156) en las poblaciones. Como no se consider&oacute; la presencia de ale&#45;los nulos, la alternativa factible que puede explicar lo que est&aacute; ocurriendo en estas poblaciones es que este efecto se deba a alg&uacute;n tipo de selecci&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">No obstante que se ha sugerido, y en algunos casos demostrado, el flujo de genes, los resultados obtenidos mediante el an&aacute;lisis por chi&#45;cuadrada y la prueba de Haldane se&ntilde;alan que solo un m&iacute;nimo de loci son significativamente diferentes. Las pruebas de aleatoriedad efectuadas en los loci que mostraron diferencias significativas tambi&eacute;n sugieren la posibilidad de que alg&uacute;n factor desconocido pudiera ser el responsable de los resultados del an&aacute;lisis estad&iacute;stico. Aunque la baja heterocigosis observada puede dificultar la discriminaci&oacute;n de las poblaciones de <i>S. gigas,</i> el uso de par&aacute;metros como la identidad y la distancia gen&eacute;tica resultan &uacute;tiles cuando los valores de heterocigosis encontrados en especies bajo investigaci&oacute;n son bajos y se tiene un n&uacute;mero suficiente de loci, con lo cual se subsana el problema de contar con un tama&ntilde;o peque&ntilde;o de muestra (Bierley <i>et</i> <i>al.,</i> 1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los valores de distancia e identidad gen&eacute;tica para <i>S. gigas</i> en muestras de m&uacute;sculo de este estudio se encuentran dentro de los valores t&iacute;picos de especies o poblaciones bien mezcladas. Los valores de identidad marcadamente altos, as&iacute; como los valores similares y bajos en t&eacute;rminos de distancia gen&eacute;tica son comunes para especies que, de manera similar que <i>S. gigas,</i> tienen una vida planct&oacute;nica de gran dispersi&oacute;n.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los dendrogramas generados por las medidas de distancia utilizadas y por el an&aacute;lisis de agrupamiento UPGMA fueron similares pero no id&eacute;nticos al agrupar las poblaciones. Los valores de distancias fueron diferentes en todos los casos; sin embargo, ninguno cambi&oacute; la distribuci&oacute;n de las poblaciones en el agrupamiento, siendo la poblaci&oacute;n de Arrecife de Alacranes la que present&oacute; la mayor distancia respecto a las otras. Este resultado es congruente con el patr&oacute;n de corrientes que prevalece en esta &aacute;rea del Golfo de M&eacute;xico y que propicia que la estructura y variaci&oacute;n gen&eacute;tica de esta poblaci&oacute;n, comparada con las otras tres, sea la que manifieste mayores diferencias. No obstante, variaciones estoc&aacute;sticas en las corrientes marinas, los vientos de superficie, eventos meteorol&oacute;gicos y aun remolinos localizados, podr&iacute;an afectar la dispersi&oacute;n de las larvas y modificar el reclutamiento de &eacute;stas en localidades particulares. Bucklin <i>et al.</i> (1989) corroboraron y concluyeron que tales eventos pueden mantener el estado de discreci&oacute;n de las poblaciones en forma espacial o temporal, lo que finalmente evita la homogeneizaci&oacute;n del plancton durante el transporte. En el caso de Punta Allen, la Bah&iacute;a de la Ascensi&oacute;n genera procesos oceanogr&aacute;ficos locales que facilitan el confinamiento de estos organismos desde sus formas larvarias y da como resultado la diferenciaci&oacute;n y valores de distancia gen&eacute;tica caracter&iacute;sticos de esta poblaci&oacute;n.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bates, J.A. and Innes, D.J. (1995). Genetic variation among populations of <i>Mytilus</i> spp. in eastern Newfoundland. Mar. Biol., 124: 417&#45;424.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886401&pid=S0185-3880200500030000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bierley, A.S., Alicock, A.L. and Torpe, J.P. (1996). Biochemical genetic evidence supporting the taxonomic separation of <i>Loligo edulis</i> and <i>Loligo chinensis</i> (Cephalopoda: Teuthoidea) from the genus <i>Loligo.</i> Mar. Biol., 127: 97&#45;104.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886403&pid=S0185-3880200500030000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Boisselier&#45;Dubayle, M.C. and Gofas, S. (1999). Genetic relationships between marine and marginal&#45;marine populations of <i>Cerithium</i> species from the Mediterranean Sea. Mar. Biol., 135: 671&#45;682.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886405&pid=S0185-3880200500030000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Brewer, G.Y. (1970). An Introduction to Isozyme Techniques. Academic Press, New York, 186 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886407&pid=S0185-3880200500030000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Bucklin, A.M., Rienecker, M. and Mooers C.N.K. (1989). Genetic traces of zooplankton transport in coastal filaments of northern California. J. Geophys. Res., 94: 8277&#45;8288.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886409&pid=S0185-3880200500030000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Creasey, S., Rogers, A.D. and Tyler, P.A. (1996). Genetic comparison of two populations of the deep sea vent shrimp <i>Rimicaris exoculata</i> (Decapoda: Bresiliidae) from the mid&#45;Atlantic ridge. Mar. Biol., 125: 473&#45;482.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886411&pid=S0185-3880200500030000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Heist, E.J., Graves, J.E. and Musick, J.A. (1995). Population genetics of the sandbar shark <i>(Carcharhinus plumbeus)</i> in the Gulf of Mexico and mid&#45;Atlantic Bight. Copeia, 5: 556&#45;562.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886413&pid=S0185-3880200500030000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mamuris, Z., Apostolidis, A.P. and Triantaphyllidis, C. (1998). Genetic protein variation in red mullet <i>(Mullus Barbatus)</i> and striped red mullet <i>(M. surmuletus)</i> populations from the Mediterranean Sea. Mar. Biol.,130: 353&#45;360.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886415&pid=S0185-3880200500030000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Miller, M. (2000). TFPGA, a windows program for the analyses of allozyme and molecular population genetic data. Version 1.3. Dept. of Biological Sciences, Northern Arizona University. Nei, M. (1978). Genetic distance between populations. Am. Nat., 106: 283&#45;292.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886417&pid=S0185-3880200500030000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rogers, J.S. (1972). Measures of genetic similarity and genetic distance. Univ. Tex. Publ., 7213: 145&#45;153.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886419&pid=S0185-3880200500030000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Saavedra, C., Zapata, C., Guerra, A. and Alvarez, G. (1993). Allozyme variation in European populations of the oyster <i>Ostrea edulis.</i> Mar. Biol., 115: 85&#45;95.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886421&pid=S0185-3880200500030000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shaklee, J.B. and Keenan, C.P. (1986). A practical laboratory guide to the techniques and methodology of electrophoresis and its application to fish fillet identification. CSIRO. Marine Research Laboratories, Australia, Rep. 177, 60 pp.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886423&pid=S0185-3880200500030000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shaal, B.A. and Anderson, W.W. (1974). An outline of techniques for starch gel electrophoresis of enzymes from the American oyster <i>Crassostrea virginica</i> G. Tech. Rep. Ser., Georgia Marine Science, No. 74&#45;3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886425&pid=S0185-3880200500030000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Shaw, R.C. and Prasad, R. (1970). Starch gel electrophoresis of enzymes. A compilation of recipes. Biochem. Genet., 4: 297&#45;320.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886427&pid=S0185-3880200500030000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stoner, A.W. (1994). Significance of habitat and stock pre&#45;testing for enhancement of natural fisheries: Experimental analyses with queen conch <i>Strombus gigas.</i> J. World Aquacult. Soc., 25(1).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886429&pid=S0185-3880200500030000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stoner, A. and Ray, M. (1993). Aggregations dynamics in juvenile queen conch <i>(Strombus gigas):</i> Population structure, mortality, growth, and migration. Mar. Biol., 116: 571&#45;582.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886431&pid=S0185-3880200500030000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Stoner, A.W., Glazer, R. and Barile, P. (1996). Larval supply to queen conch nurseries: Relationships with recruitment process and population size in Florida and the Bahamas. J. Shellfish Res., 15(2): 404&#45;420.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1886433&pid=S0185-3880200500030000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Towsend, D.R. and Shing, R.S. (1984). Genetic variation for a monomer and dimmer equilibria of esterase 5 in <i>Drosophila pseudoobscura, D. Persimilis</i> and <i>D. miranda.</i> Can. J. Genet. 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