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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Respuestas inmunológicas y cicatrización en el poliqueto Eurythoe complanata (Annelida: Amphinomidae) expuesto a cobre]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Polychaetes exposed to 0.4 mg Cu+² L-1 (2.14 mg CuSO4 5H2O L-1; 30% 96 h-LC50) for seven days and control individuals were divided into three groups: the first two were sensitized and non-sensitized with Micrococcus lysodeikticus, and the third was sensitized with heat-killed yeast. Lysozyme activity was tested in the first two groups and phagocytosis in the third one. Lysozyme was measured at 2 h and phagocytosis 15 min after immune sensitization. The effect of copper on wound healing was also examined in the polychaetes. For this, the polychaetes exposed and not exposed to copper were cut in two halves, and the body fragments were held in aquaria containing clean seawater, and the cicatrization was periodically observed. The lysozyme and phagocytosis responses were induced by the sensitization; however, these responses were inhibited after the metal exposure. On the other hand, 60-80% of the body fragments from the control group healed within four days, whereas the copper-treated individuals did not show cicatrization in the same period of time. In conclusion, the inhibition of the experimental activation of lysozyme and phagocytosis, and of wound healing in the polychaete Eurythoe complanata exposed to acute copper exposure, suggests the metal's potential toxicity on the physiological mechanisms that modulate the innate immunity in annelids, whose alteration could affect their tolerance to microbial infection.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Respuestas inmunol&oacute;gicas y cicatrizaci&oacute;n en el poliqueto <i>Eurythoe complanata</i> (Annelida: Amphinomidae) expuesto a cobre</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Immunological responses and wound healing in the polychaete <i>Eurythoe complanata</i> (Annelida: Amphinomidae) exposed to copper</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Edgar Zapata&#45;V&iacute;venes*, Osmar A. Nusetti, Leida Marcano, Mar&iacute;a M. Esclap&eacute;s y Luis Arredondo</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><i>*</i></sup> <i>Laboratorio de Bioqu&iacute;mica Escuela de Ciencias Universidad de Oriente Cuman&aacute;&#45;Edo. Sucre, Venezuela</i> * E&#45;mail: <a href="mailto:ezapata@sucre.udo.edu.ve">ezapata@sucre.udo.edu.ve</a></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido en marzo de 2004;    <br> 	aceptado en junio de 2004.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se dividieron grupos de poliquetos, controles y expuestos a 0.4 mg Cu<sup>+2</sup> L<sup>&#45;1</sup> (2.14 mg CuSO<sub>4</sub> 5H<sub>2</sub>O L<sup>&#45;1</sup>; 30% 96 h&#45;CL<sub>50</sub>) por siete d&iacute;as, en tres grupos: sensibilizados y no sensibilizados con <i>Micrococcus lysodeikticus</i> para evaluar la actividad de lisozima del fluido cel&oacute;mico, y otro sensibilizado con levaduras inactivadas por calor para evaluar la respuesta fagoc&iacute;tica de los celomocitos. La lisozima fue medida a 2 h y la fagocitosis a los 15 min despu&eacute;s de la sensibilizaci&oacute;n inmunol&oacute;gica. Adem&aacute;s, se evalu&oacute; el efecto de la exposici&oacute;n al cobre sobre la respuesta de cicatrizaci&oacute;n en los poliquetos. Para ello, los organismos expuestos al cobre y no expuestos fueron cortados en dos mitades y mantenidos en acuarios conteniendo agua de mar (sin cobre), determin&aacute;ndose el porcentaje de individuos cicatrizados diariamente. Las respuestas de fagocitosis y lisozima fueron inducidas por la sensibilizaci&oacute;n e inhibidas despu&eacute;s de la exposici&oacute;n al metal. Por otra parte, 60&#45;80% de los individuos controles cicatrizaron al cabo de cuatro d&iacute;as, mientras que los individuos tratados con cobre no evidenciaron cicatrizaci&oacute;n en el mismo periodo de tiempo. En conclusi&oacute;n, la inhibici&oacute;n de la inducci&oacute;n experimental de la lisozima y la fagocitosis, y de la cicatrizaci&oacute;n en el poliqueto <i>Eurythoe complanata</i> por la exposici&oacute;n aguda al cobre, sugiere el potencial de toxicidad del metal sobre los mecanismos fisiol&oacute;gicos que modulan la inmunidad innata y la reparaci&oacute;n de heridas en an&eacute;lidos, funciones biol&oacute;gicas comunes en animales cuya supresi&oacute;n puede resultar en una disminuida tolerancia a infecciones microbianas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave:</b> cobre, cicatrizaci&oacute;n, fagocitosis, lisozima, <i>Eurythoe complanata.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Polychaetes exposed to 0.4 mg Cu+<sup>2</sup> L<sup>&#45;1</sup> (2.14 mg CuSO<sub>4</sub> 5H<sub>2</sub>O L<sup>&#45;1</sup>; 30% 96 h&#45;LC<sub>50</sub>) for seven days and control individuals were divided into three groups: the first two were sensitized and non&#45;sensitized with <i>Micrococcus lysodeikticus,</i> and the third was sensitized with heat&#45;killed yeast. Lysozyme activity was tested in the first two groups and phagocytosis in the third one. Lysozyme was measured at 2 h and phagocytosis 15 min after immune sensitization. The effect of copper on wound healing was also examined in the polychaetes. For this, the polychaetes exposed and not exposed to copper were cut in two halves, and the body fragments were held in aquaria containing clean seawater, and the cicatrization was periodically observed. The lysozyme and phagocytosis responses were induced by the sensitization; however, these responses were inhibited after the metal exposure. On the other hand, 60&#45;80% of the body fragments from the control group healed within four days, whereas the copper&#45;treated individuals did not show cicatrization in the same period of time. In conclusion, the inhibition of the experimental activation of lysozyme and phagocytosis, and of wound healing in the polychaete <i>Eurythoe complanata</i> exposed to acute copper exposure, suggests the metal's potential toxicity on the physiological mechanisms that modulate the innate immunity in annelids, whose alteration could affect their tolerance to microbial infection.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words:</b> copper, wound healing, phagocytosis, lysozyme, <i>Eurythoe complanata.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Introducci&oacute;n</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En los &uacute;ltimos a&ntilde;os ha surgido un creciente inter&eacute;s por el problema del deterioro de los sedimentos de las zonas costeras de las regiones tropicales, asociado a procesos de contaminaci&oacute;n qu&iacute;mica. Se han dirigido numerosas investigaciones a la selecci&oacute;n de organismos modelos y par&aacute;metros bioqu&iacute;micos y fisiol&oacute;gicos apropiados para evaluar su condici&oacute;n biol&oacute;gica en &aacute;reas impactadas por contaminantes. En este sentido, los poliquetos (an&eacute;lidos) han sido reconocidos como organismos sensores &uacute;tiles para estudiar los distintos grados de contaminaci&oacute;n del bentos (Reish, 1980, 1986, 1998; M&eacute;ndez y P&aacute;ez&#45;Osuna, 1998).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El sistema inmunol&oacute;gico de los an&eacute;lidos ofrece aspectos de inter&eacute;s para su aplicaci&oacute;n en estudios de toxicolog&iacute;a ambiental. Su capacidad inmunol&oacute;gica reside en el fluido cel&oacute;mico, y est&aacute; conformada por un conjunto de elementos funcionales no espec&iacute;ficos, humorales y mediados por las c&eacute;lulas, que presentan cierta analog&iacute;a u homolog&iacute;a con mecanismos de inmunidad de otros organismos (acu&aacute;ticos y terrestres) de diferentes grupos taxon&oacute;micos (Cooper, 1976; Goven <i>et al.,</i> 1994; Millar y Ratcliffe, 1994; Dhainaut y Scaps, 2001). Otro aspecto de inter&eacute;s en los an&eacute;lidos es el potencial de cicatrizar tejidos heridos y a su vez reponer partes completas del cuerpo que han sido eliminadas. Este fen&oacute;meno est&aacute; relacionado con respuestas inmunes mediadas por las c&eacute;lulas, que a su vez son funciones relacionadas con la actividad macrof&aacute;gica (Ville <i>et al.,</i> 1995; Cikutovic <i>et al.,</i> 1999).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El poliqueto <i>Eurythoe complanata</i> (gusano de fuego), debido a su abundancia en las zonas costeras de Venezuela y su amplia distribuci&oacute;n geogr&aacute;fica (Li&ntilde;ero, 1978), ha sido seleccionado como organismo modelo en bioensayos de an&aacute;lisis de inmunotoxicidad, midiendo la actividad de la lisozima y fagoc&iacute;tica de los celomocitos <i>in vitro</i> como biomarcadores de las respuestas de defensa innata, a fin de diagnosticar riesgos de inmunodeficiencia en organismos del bentos ante una situaci&oacute;n eventual de contaminaci&oacute;n (Marcano <i>et al.,</i> 1996, 1997; Nusetti <i>et al.,</i> 1998, 1999). En estas pruebas se ha utilizado como contaminante de referencia al cobre, debido a su persistencia (al igual que la de otros metales pesados) en ambientes estuarinos y costeros y su gran tendencia a bioacumularse en la biota con importantes implicaciones inmunotoxicol&oacute;gicas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La susceptibilidad de las defensas inmunol&oacute;gicas al cobre en <i>E. complanata</i> y otras especies de invertebrados marinos ha sido demostrada despu&eacute;s de fases de contaminaci&oacute;n agudas y cr&oacute;nicas, basado fundamentalmente en mediciones de las respuestas inmunol&oacute;gicas <i>in vitro</i> (Chen <i>et al.,</i> 1984; Anderson <i>et al.,</i> 1994; Marcano <i>et al.,</i> 1997; Nusetti <i>et al.,</i> 1998; Nicholson, 2003). Los resultados sugieren efectos inmunosupresores en el organismo, pero no revelan una relaci&oacute;n directa con la capacidad del organismo de responder adaptativamente a un material no propio. En general, investigaciones en este aspecto toxicol&oacute;gico son limitadas en invertebrados marinos.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este estudio examin&oacute; la inmunocompetencia del poliqueto <i>E. complanata</i> despu&eacute;s de un tratamiento de contaminaci&oacute;n aguda con sulfato de cobre. Se midieron las funciones inmunol&oacute;gicas innatas en base a las actividades de la lisozima y fagocitosis en el fluido cel&oacute;mico, tras un proceso de inmunosensibilizaci&oacute;n microbiana. Tambi&eacute;n, se evalu&oacute; el efecto del cobre sobre la capacidad de cicatrizaci&oacute;n del organismo a fin de establecer la relaci&oacute;n entre las respuestas inmunol&oacute;gicas y los procesos de reparaci&oacute;n de tejidos.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Materiales y m&eacute;todos</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Organismos</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los ejemplares de <i>E. complanata</i> fueron recolectados en la l&iacute;nea costera sur del Golfo de Cariaco, 20 km al este de Cuman&aacute;, Venezuela. Los poliquetos fueron mantenidos durante dos semanas en condiciones de laboratorio, en acuarios de 5 L de capacidad, conteniendo agua de mar filtrada (36%o, pH 7.8, 25 &plusmn; 1&deg;C), aireaci&oacute;n constante y sustrato arenoso proveniente del sitio de captura, el cual le sirvi&oacute; de refugio y alimento.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Bioensayos de toxicidad</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se escogieron poliquetos con pesos comprendidos entre 1.2 y 1.4 g para realizar los bioensayos. Los organismos fueron expuestos a una concentraci&oacute;n nominal de 0.4 mg Cu<sup>+2</sup> L<sup>&#45;1</sup> de cobre (2.14 mg CuSO<sub>4</sub> 5H<sub>2</sub>O L<sup>&#45;1</sup>) por un periodo de siete d&iacute;as, con sus respectivos controles. Esta concentraci&oacute;n representa el 30% de la concentraci&oacute;n letal media a 96 h, LC<sub>50</sub>: 1.30 mg L<sup>&#45;1</sup> CuSO<sub>4</sub> 5H<sub>2</sub>O, l&iacute;mite de confidencia de 0.4 a 2.0 mg L<sup>&#45;1</sup>, estimada por Marcano <i>et al.</i> (1996). Se realizaron recambios de agua, sedimentos y contaminantes cada tres d&iacute;as para eliminar productos de desecho. El pH del agua de mar se mantuvo entre 7.6 y 7.8.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La concentraci&oacute;n de Cu<sup>+2</sup> usada en los bioensayos de toxicidad es equivalente a 0.39 g<sup>&#45;1</sup> de agua de mar, la cual es inferior a la cantidad se&ntilde;alada (10 g<sup>&#45;1</sup>) para sedimentos superficiales no contaminados de las regiones costeras del Golfo de Cariaco (Mart&iacute;nez, 2002).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Bioacumulaci&oacute;n de cobre</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Despu&eacute;s del periodo de exposici&oacute;n se determin&oacute; el contenido de cobre en la masa corporal libre de v&iacute;sceras de <i>E. complanata</i> mediante espectrometr&iacute;a de llama, usando un espectr&oacute;metro Varian AA&#45;20, con l&iacute;mite m&iacute;nimo de detecci&oacute;n de 0.03 &micro;g mL<sup>&#45;1</sup> (Marcano <i>et al.,</i> 1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Recolecci&oacute;n del fluido cel&oacute;mico</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los poliquetos controles y expuestos a cobre, inoculados con 25 mL de una soluci&oacute;n de <i>Micrococcus lysodeikticus</i> (Sigma Chemical Co., San Luis, Miss., EUA; 8 mg mL<sup>&#45;1</sup>) y no inoculados fueron utilizados para recolectar fluido cel&oacute;mico. A las 2 h despu&eacute;s de la inyecci&oacute;n bacterial, el fluido cel&oacute;mico fue recolectado usando el m&eacute;todo descrito previamente por Arredondo (1993). Los gusanos fueron colocados durante 5 min en una c&aacute;psula de Petri de 10 cm de di&aacute;metro conteniendo 40 mL de una soluci&oacute;n constituida por 2.5 mg mL<sup>&#45;1</sup> de hidrato de cloral (Merck) y 0.1 mg mL<sup>&#45;1</sup> de &eacute;ter glicerol guaiacolato (Sigma Chemical Co.) en agua de mar filtrada (Miliporo: 0.45 &micro;m, salinidad 36%, pH 7.5&#45;7.8), para estimular la expulsi&oacute;n del fluido cel&oacute;mico, el cual fue recolectado directamente del poro del pigidio con la ayuda de una pipeta Pasteur. Luego, el fluido fue transferido a un tubo de centrifugaci&oacute;n de polietileno de 5 mL, seguida por centrifugaci&oacute;n a 200 <i>g</i> y 4&deg;C por 10 min. El sobrenadante fue usado como fuente de lisozima.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Actividad de lisozima</i></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">La actividad de la lisozima fue determinada por el m&eacute;todo de McHenery <i>et al.</i> (1979). Se colocaron al&iacute;cuotas de 40 &#181;L de fluido cel&oacute;mico en pozos de 5 mm de di&aacute;metro en lisoplacas de agarosa 1.0% en buffer fosfato (pH 6.2), conteniendo <i>M. lysodeikticus</i> (0.6 mg cel secadas con fr&iacute;o mL<sup>&#45;1</sup>) como sustrato en placas de Petri. Las placas fueron incubadas a 24&deg;C por 48 h, periodo en el cual se hicieron claramente visibles los halos correspondientes a la lisis bacterial. La actividad de la lisozima fue determinada mediante una curva de calibraci&oacute;n preparada con lisozima est&aacute;ndar de clara de huevo de gallina (5 mg mL<sup>&#45;1</sup> en buffer fosfato 100 mM, pH 6.2; HEL, Sigma Chemical Co.). Los resultados se expresaron como HEL&#45;equivalentes (&micro;g mL<sup>&#45;1</sup>), calculados por el siguiente modelo de regresi&oacute;n:</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">HEL&#45;equivalente (&micro;g mL<sup>&#45;1</sup>) = antilog<sub>10</sub> {a + b (di&aacute;metro, mm)}</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Fagocitosis</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los poliquetos controles y los expuestos al metal fueron inoculados con 25 &micro;L de una suspensi&oacute;n de levaduras inactivadas por calentamiento (1 mg mL<sup>&#45;1</sup> agua de mar filtrada). Transcurridos 15 min de la sensibilizaci&oacute;n, el fluido cel&oacute;mico fue recolectado y centrifugado a baja velocidad, y el precipitado celular fue resuspendido en 400 &micro;L de agua de mar EDTA, pH 7.8 a 4&deg;C. Para cuantificar la actividad fagoc&iacute;tica se mezclaron 100 &micro;L de la suspensi&oacute;n celular con 100 &micro;L de una soluci&oacute;n de cristal violeta y se contaron 100 c&eacute;lulas en el hemocit&oacute;metro a una magnificaci&oacute;n 400x en un microscopio Nikon. Las c&eacute;lulas que mostraron por lo menos una inclusi&oacute;n citopl&aacute;smica de levadura claramente visible al microscopio fueron contadas como fagoc&iacute;ticas. El conteo total y la viabilidad celular de los celomocitos fueron determinados como se indica en Nusetti <i>et al.</i> (1998), antes de la prueba de fagocitosis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Cicatrizaci&oacute;n</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se escindieron transversalmente en dos mitades diez poliquetos controles y diez poliquetos expuestos al cobre. Los fragmentos escindidos (anterior y posterior) fueron colocados en acuarios que conten&iacute;an s&oacute;lo agua de mar, sedimento y aireaci&oacute;n. Se realizaron observaciones diarias para determinar el porcentaje de individuos cicatrizados y el tiempo de cicatrizaci&oacute;n total de la herida. Se consideraron totalmente sellados aquellos organismos que lograron desprender los restos de tejidos muertos y el co&aacute;gulo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>An&aacute;lisis estad&iacute;sticos</i></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las diferencias de las actividades de la lisozima entre los controles y los grupos experimentales fueron evaluadas por el an&aacute;lisis de varianza sencillo. Se us&oacute; la prueba de diferencias significativas m&iacute;nimas (LSD) para establecer diferencias significativas entre pares de grupos (Snedecor y Cochran, 1971). Se utiliz&oacute; el an&aacute;lisis <i>t</i> de Student para determinar los efectos de la exposici&oacute;n al cobre sobre la actividad fagoc&iacute;tica en el fluido cel&oacute;mico, y una prueba de Kruskall&#45;Wallis para determinar las diferencias entre los efectos de los tratamientos estudiados sobre el proceso de sellado total de las heridas.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resultados</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los niveles de cobre acumulados durante el periodo de ensayo en tejido corporal de <i>E. complanata</i> fueron de 5.60 y 42.0 &#181;g g<sup>&#45;1</sup> de tejido seco en poliquetos controles y expuestos al cobre, respectivamente. La bioconcentraci&oacute;n del metal en los organismos experimentales indica su biodisponibilidad en el curso del bioensayo de toxicidad. Los niveles de cobre en los poliquetos se encuentran en el rango de las concentraciones de cobre (0.63&#45;67.01 &micro;g g<sup>&#45;1</sup>) reportado por Mart&iacute;nez (2002) para la capa superficial de los sedimentos en la regi&oacute;n costera sur del Golfo de Cariaco.</font></p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los gusanos no sensibilizados con <i>M. lysodeikticus,</i> contaminados con el cobre, no mostraron cambios significativos en la actividad de la lisozima en comparaci&oacute;n con el grupo control no sensibilizado (<a href="#t1">tabla 1</a>). La lisozima fue estimulada por la sensibilizaci&oacute;n microbiana; sin embargo, esta respuesta fue inhibida significativamente por la exposici&oacute;n al cobre (Fs = 20.68, <i>P</i> &lt; 0.001, prueba LDS) (<a href="#t1">tabla 1</a>).</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="t1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v31n1a/a1t1.jpg"></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La viabilidad celular (90&#45;95%) y el n&uacute;mero total de celomocitos (7&#45;9 x 10<sup>5</sup> c&eacute;l mL<sup>&#45;1</sup>) no fueron afectados por el tratamiento experimental con cobre. La fagocitosis fue estimulada por la inyecci&oacute;n de levaduras en los organismos no expuestos, siendo esta respuesta inhibida significativamente por la exposici&oacute;n al cobre (11.0 &plusmn; 0.6 <i>vs.</i> 4.8 &plusmn; 0.6; Fs = 24.70, <i>P</i> &lt; 0.001 ). El n&uacute;mero de fagocitos en el fluido cel&oacute;mico de los poliquetos en presencia y ausencia de cobre alcanz&oacute; su m&aacute;ximo valor a los 15 min despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n con levadura.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El proceso de cicatrizaci&oacute;n fue afectado por el tratamiento con cobre (<a href="#f1">fig. 1</a>); la capacidad de sellar completamente las heridas disminuy&oacute; significativamente en los organismos expuestos con respecto a los organismos controles (Kruskall&#45;Wallis, <i>P</i> &lt; 0.003). Entre 60% y 80% de los individuos controles cicatrizaron sus heridas al cabo de cuatro d&iacute;as, mientras que los individuos tratados con cobre no evidenciaron reparaci&oacute;n del tejido en este mismo periodo de tiempo. Por otra parte, los fragmentos de la regi&oacute;n posterior de los organismos expuestos al cobre presentaron un mayor retardo en la habilidad de recuperarse en comparaci&oacute;n con los de la regi&oacute;n anterior.</font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/ciemar/v31n1a/a1f1.jpg"></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Discusi&oacute;n</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los niveles basales de la lisozima en <i>E. complanata</i> probablemente reflejan la existencia natural de un mecanismo de defensa humoral que protege al organismo de bacterias que viven en su ambiente, y controla tambi&eacute;n su flora simbi&oacute;tica normal. La inducci&oacute;n de la actividad de la lisozima por la inoculaci&oacute;n con <i>M. lysodeickticus</i> posiblemente est&aacute; asociada con la activaci&oacute;n de un mecanismo de vigilancia de primera l&iacute;nea en los procesos de reconocimiento de la carga infecciosa bacteriana y la potenciaci&oacute;n de la capacidad bacteriol&iacute;tica del fluido cel&oacute;mico. Se han observado concentraciones basales e inducci&oacute;n de esta enzima en la hemolinfa y fluido cel&oacute;mico de otros invertebrados (Perin y Jolles, 1972; McHenery <i>et al.,</i> 1979; Hirigoyembeny <i>et al.,</i> 1990; Hawking <i>et al.,</i> 1993). El mecanismo de inducci&oacute;n de la lisozima en <i>E. complanata</i> inmunol&oacute;gicamente sensibilizado, podr&iacute;a estar vinculado con un aumento de la liberaci&oacute;n de la prote&iacute;na hacia el fluido cel&oacute;mico, lo que conlleva a un aumento de la inmunocompetencia innata de los individuos infectados. Posiblemente, esta respuesta funcional tiene relaci&oacute;n, al menos parcialmente, con ajustes bioqu&iacute;micos sobre la tasa de recambio de las prote&iacute;nas (s&iacute;ntesis <i>vs.</i> degradaci&oacute;n). En concordancia con esta posibilidad, Hirigoyemberry <i>et al.</i> (1990) observaron que los inhibidores de la s&iacute;ntesis de prote&iacute;nas, actinomicina D y cicloheximida, afectaron la inducci&oacute;n de prote&iacute;nas bacteriol&iacute;ticas, incluyendo lisozima, en la lombriz de tierra <i>Eisenia foetida</i> inyectada con <i>Aeromonas hydrophila.</i> Aparentemente, la modulaci&oacute;n de los mecanismos de bios&iacute;ntesis de prote&iacute;nas a nivel transcripcional desempe&ntilde;a una funci&oacute;n clave en el control de la actividad bacteriol&iacute;tica humoral en an&eacute;lidos (Dhainaut y Scaps, 2001).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La contaminaci&oacute;n con el cobre produjo un efecto inhibitorio sobre la actividad de la lisozima en los organismos inoculados con <i>M. lysodeickticus;</i> presumiblemente, el nivel de bioacumulaci&oacute;n (42 &micro;g gps<sup>&#45;1</sup>) modific&oacute; los procesos de inducci&oacute;n de la enzima, limitando la capacidad de respuesta de defensa interna contra el agente bacterial invasor. Alternativamente, la bioacumulaci&oacute;n de cobre en <i>E. complanata</i> pudo propiciar cambios moleculares y celulares (por ejemplo, estr&eacute;s oxidativo; Nusetti <i>et al.,</i> 2001) que podr&iacute;an exacerbarse durante la fase de infecci&oacute;n con consecuencias perjudiciales sobre la funci&oacute;n de la lisozima. Tales alteraciones biol&oacute;gicas son factibles en organismos en el medio ambiente natural, en condiciones de infecci&oacute;n microbiana y elevadas concentraciones de cobre en su h&aacute;bitat, seg&uacute;n report&oacute; Mart&iacute;nez (2002) para el Golfo de Cariaco.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La exposici&oacute;n al cobre en poliquetos no sensibilizados no afect&oacute; la actividad de la lisozima; un hallazgo similar fue reportado por Marcano <i>et al.</i> (1997) en <i>E. complanata.</i> En contraste, Goven <i>et al.</i> (1994) describieron efectos inhibitorios sobre la lisozima en la lombriz de tierra <i>Lumbricus terrestris</i> asociados con un incremento de bioacumulaci&oacute;n del cobre en condiciones experimentales agudas (cinco d&iacute;as a sulfato de cobre), mostrando una relaci&oacute;n dosis&#45;respuesta, y sugirieron que la toxicidad del metal estuvo probablemente relacionada con alteraciones en la estructura funcional de la prote&iacute;na. Esta suposici&oacute;n concuerda con la inhibici&oacute;n, <i>in vitro,</i> de la lisozima de aves por cobre (Feeney <i>et al.,</i> 1956). Es interesante destacar que en otras investigaciones realizadas en an&eacute;lidos se han observado diferentes respuestas de la lisozima a la contaminaci&oacute;n aguda con cobre, por ejemplo, activaci&oacute;n en <i>Amynthas hawayanus</i> (Nusetti <i>et al.,</i> 1999) e inhibici&oacute;n en <i>Eisenia foetida</i> (Nusetti <i>et al.,</i> 1996).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Altos conteos y viabilidad de celomocitos indicaron que estas c&eacute;lulas fueron suficientes para probar su capacidad fagoc&iacute;tica en todos los organismos experimentales. La exposici&oacute;n aguda al cobre inhibi&oacute; la respuesta fagoc&iacute;tica en los poliquetos. Este efecto inmunomodulatorio podr&iacute;a estar asociado con cambios en la composici&oacute;n relativa de los fagocitos, o estar relacionado con modificaciones bioqu&iacute;micas sobre la capacidad de eliminar materiales extra&ntilde;os a trav&eacute;s de mecanismos inmunes mediados por c&eacute;lulas. La fagocitosis es activada normalmente por est&iacute;mulos antig&eacute;nicos tales como microbios y otros agentes opsonisados, y esta respuesta es sensible a la exposici&oacute;n de metales pesados en an&eacute;lidos (Chen <i>et al.,</i> 1991; Fuger&eacute; <i>et al.,</i> 1996; Nusetti <i>et al.,</i> 1999; Sauv&eacute; <i>et al.,</i> 2002). Nusetti <i>et al.</i> (1998) demostraron que la exposici&oacute;n aguda y cr&oacute;nica de <i>E. complanata</i> al cobre altera la capacidad de los celomocitos de formar rosetas secretorias y eritroc&iacute;ticas contra eritrocitos de rat&oacute;n, indicando deficiencias en los mecanismos de reconocimiento antig&eacute;nico y en la producci&oacute;n de factores aglutinantes (lectinas y aglutininas), lo que resulta en una disminuci&oacute;n de la inmunocompetencia humoral y celular. Se han realizado observaciones similares en la lombriz de tierra <i>L. terrestis</i> contaminada con bifenilos policlorados, o Aroclors (Rodrigu&eacute;z&#45;Grau <i>et al.,</i> 1989; Goven <i>et al.,</i> 1994).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La concentraci&oacute;n nominal de cobre utilizada produjo efectos inhibitorios sobre el proceso normal de cicatrizaci&oacute;n de los fragmentos de <i>E. complanata.</i> Probablemente, la disminuida capacidad de los poliquetos de sellar completamente las heridas result&oacute; de una acci&oacute;n t&oacute;xica del cobre bioacumulado sobre los mecanismos fisiol&oacute;gicos que determinan la capacidad de cicatrizaci&oacute;n, en especial sobre los mecanismos de inmunidad innata. El proceso de cicatrizaci&oacute;n en an&eacute;lidos involucra eventos consecutivos tales como: la formaci&oacute;n de un co&aacute;gulo que evita la p&eacute;rdida de l&iacute;quido cel&oacute;mico, la inflamaci&oacute;n de la regi&oacute;n da&ntilde;ada y, a su vez, la activaci&oacute;n del sistema inmuno&#45;celular y humoral. La inhibici&oacute;n de la actividad de la lisozima y de los fagocitos en el fluido cel&oacute;mico puede afectar la inmunocompetencia del organismo, y por consiguiente, su capacidad de cicatrizaci&oacute;n. En an&eacute;lidos, espec&iacute;ficamente oligoquetos, se ha encontrado que diversos xenobi&oacute;ticos, en especial los metales pesados, act&uacute;an como factores que alteran el proceso de cicatrizaci&oacute;n, afectando directamente parte del sistema inmunol&oacute;gico (Cooper y Roch, 1992; Ville <i>et al.,</i> 1995; Cikutovic <i>et al.,</i> 1999). Por otra parte, es factible que la exposici&oacute;n al cobre haya generado una condici&oacute;n de estr&eacute;s oxidativo (Nusetti <i>et al.,</i> 2001; Geracitano <i>et al.,</i> 2002), causando cambios bioqu&iacute;micos y celulares que podr&iacute;an alterar la capacidad de cicatrizaci&oacute;n del poliqueto. El procesamiento metab&oacute;lico del cobre, al igual que el de otros metales pesados y xenobi&oacute;ticos org&aacute;nicos, puede causar un incremento de las especies reactivas de ox&iacute;geno y otras mol&eacute;culas reactivas, que al exceder las defensas antioxidantes resultan en una posible disfunci&oacute;n inmunol&oacute;gica promoviendo alteraciones en los mecanismos de reparaci&oacute;n de tejidos lesionados.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El retardado proceso de cicatrizaci&oacute;n observado en los fragmentos posteriores de los poliquetos contaminados con cobre, posiblemente es resultado de la distinta acci&oacute;n t&oacute;xica del metal sobre las diferentes regiones anat&oacute;micas del organismo. Es conocido que ciertos an&eacute;lidos poseen la capacidad de bioacumular altas concentraciones de metales pesados (cobre, plomo) mayormente en la regi&oacute;n posterior&#45;caudal (Lucan&#45;Bouche <i>et al.,</i> 1999), haciendo esta regi&oacute;n m&aacute;s vulnerable que la regi&oacute;n anterior a la acci&oacute;n t&oacute;xica del metal sobre el proceso de sanado de las heridas. Este aspecto de toxicidad de metales pesados sobre los mecanismos biol&oacute;gicos de cicatrizaci&oacute;n en an&eacute;lidos no ha sido aclarado.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, la inducci&oacute;n de la actividad de la lisozima y la fagocitosis por la inoculaci&oacute;n microbiana en <i>E. complanata,</i> posiblemente est&aacute; asociada con la activaci&oacute;n de un mecanismo de protecci&oacute;n de primera l&iacute;nea entre los procesos de inmunidad innata (humoral y celular). Los efectos t&oacute;xicos del cobre sobre la lisozima y fagocitosis presumiblemente afectaron la capacidad de los poliquetos para reparar heridas, alteraciones biol&oacute;gicas que pudieron estar relacionados con el desarrollo de un estr&eacute;s oxidativo inducido por el metal. La supresi&oacute;n de estas respuestas funcionales pueden causar manifestaciones patol&oacute;gicas en organismos silvestres. Por lo tanto, la estimulaci&oacute;n microbiana de las defensas inmunol&oacute;gicas y la capacidad de sellar heridas en <i>E. complanata</i> pueden ser adecuadas para su uso en monitoreos de bentos contaminados por qu&iacute;micos.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se agradece al Consejo de Investigaci&oacute;n del N&uacute;cleo de Sucre, de la Universidad de Oriente, el apoyo institucional y econ&oacute;mico a este estudio, y al Instituto Oceanogr&aacute;fico de Venezuela&#45;Universidad de Oriente la infraestructura facilitada para la realizaci&oacute;n de este estudio.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Referencias</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Anderson, R., Mora, L. and Thomson, S. (1994) Modulation of oyster <i>(Crassostrea virginica)</i> hemocyte functions by copper, as measured by luminol&#45;enhanced chemiluminescence. Comp. Biochem. Physiol., 108C: 215&#45;220.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880640&pid=S0185-3880200500010000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Arredondo, L. (1993). Desarrollo de un m&eacute;todo para colecci&oacute;n de celomocitos en el poliqueto <i>Eurythoe complanata</i> (Annelida: Amphinomidae). Trabajo de Grado, Maestr&iacute;a en Biolog&iacute;a Aplicada: Contaminaci&oacute;n Ambiental, Universidad de Oriente, Venezuela.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880642&pid=S0185-3880200500010000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen, T.C. and Sullivan, J.P. (1984). Effects of heavy metals on phagocytosis by molluscan hemocytes. Mar. Environ. Res., 14: 305&#45;315.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880644&pid=S0185-3880200500010000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chen, S.C., Fitzpatrick, L.C., Goven, A., Venables, B. and Cooper E. (1991). Nitroblue tetrazolium dye reduction by earthworm <i>(Lumbricus terrestris)</i> coelomocytes: An enzyme assay for nonspecific immunotoxicity of xenobiotics. Environ. Toxicol. Chem., 10: 1037&#45;1043.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880646&pid=S0185-3880200500010000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cikutovic, M.A., Fitzpatrick, L.C., Goven, A.J., Venables, B.J., Giggleman, M.A. and Cooper E.L. (1999). Wound healing in earthworms <i>Lumbricus terrestris:</i> A cellular&#45;based biomarker for assessing sublethal chemical toxicity. Bull. Environ. Contam. Toxicol., 62: 508&#45;514.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880648&pid=S0185-3880200500010000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cooper, E.L. (1976) Phagocytosis. In: E.L. Cooper (ed.), Comparative Immunology. Prentice&#45;Hall, Englewood Cliffs, NJ, pp.40&#45;60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880650&pid=S0185-3880200500010000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cooper, E.L. and Roch, P. (1992). The capacities of earthworm to heal wound and to destroy allografts are modified by polychlorinated biphenyls (PCB). J. Invert. Pathol., 232: 67&#45;72.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880652&pid=S0185-3880200500010000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Dhainaut, A. and Scaps, P. (2001). Immune defense and biological responses induced by toxics in Annelida. Can. J. Zool., 79: 233&#45;253.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880654&pid=S0185-3880200500010000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Feeney, R.E., Macdonnell, L.R. and Ducay, D. (1956). Irreversible inactivation of lysozyme by copper. Arch. Biochem. Biophys., 61: 72&#45;83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880656&pid=S0185-3880200500010000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fug&eacute;re, N., Brousseau, P., Krzystyniak, K., Coderre, D. and Founder, M. (1996). Heavy metal&#45;specific inhibition of phagocytosis and different <i>in vitro</i> sensitivity of heterogeneous coelomocytes from <i>Lumbricus terrestris</i> (Oligochaeta). Toxicology, 109: 157&#45;166.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880658&pid=S0185-3880200500010000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Geracitano, L., Monserrat, J.M. and Bianchini, A. (2002). Physiological and antioxidant enzyme responses to acute and chronic exposure of <i>Laeonereis acuta</i> (Polichaeta, Nereididae) to copper. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 277: 145&#45;156.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880660&pid=S0185-3880200500010000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Goven, A.J, Fitzpatrick, L. and Venables, B. (1994). Chemical toxicity and host defense in earthworms. Ann. NY Acad. Sci., 712: 280&#45;299.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880662&pid=S0185-3880200500010000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hawking, L.E., Brook, J. and Hutchison, S. (1993). The effects of tidal exposure an aspects of metabolic and immunological activity in the hard clam <i>Mercenaria mercenaria</i> (Linnaeus). Comp. Biochem. Physiol., 104A: 225&#45;228.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880664&pid=S0185-3880200500010000100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Hirigoyemberry, F., Lasalle, F. and Lassagues, M. (1990). Antibacterial transcription and regulation of lysozyme and proteins evidenced after bacterial infestation. Comp. Biochem. Physiol., 95B: 25&#45;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880666&pid=S0185-3880200500010000100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Li&ntilde;ero, I. (1978). Algunos aspectos biol&oacute;gicos y ecol&oacute;gicos de los poliquetos errantes. Lagena, 41&#45;42: 45&#45;53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880668&pid=S0185-3880200500010000100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Lucan&#45;Bouche, M.L., Biagianti&#45;Risbourg, S., Arsac, F. and Vernet, G. (1999). An original decontamination process developed by the aquatic oligochaete <i>Tubifex tubifex</i> exposed to copper and lead. Aquat. Toxicol., 45: 9&#45;17.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880670&pid=S0185-3880200500010000100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Marcano, L., Nusetti, O., Rodr&iacute;guez&#45;Grau, J. and Vilas, J. (1996). Uptake and depuration of copper and zinc in relation to metal&#45;binding protein in the polychaete <i>Eurythoe complanata.</i> Comp. Biochem. Physiol., 114C: 179&#45;184.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880672&pid=S0185-3880200500010000100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Marcano, L., Nusetti, O., Rodr&iacute;guez&#45;Grau, J., Brice&ntilde;o, J. and Vilas, J. (1997). Coelomic fluid lysozyme activity induction in the polychaete <i>Eurythoe complanata</i> as a biomarker of heavy metal toxicity. Bull. Environ. Contam. Toxicol., 59: 22&#45;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880674&pid=S0185-3880200500010000100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mart&iacute;nez, G. (2002). Algunos metales pesados en sedimentos superficiales del Golfo de Cariaco, Edo. Sucre, Venezuela. Bol. Inst. Oceanogr. Univ. Oriente., 41: 83&#45;93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880676&pid=S0185-3880200500010000100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">McHenery, J.G., Birbeck, T.H. and Allen, L. (1979). The occurrence of lysozyme in marine bivalves. Comp. Biochem. Physiol., 63B: 25&#45;28.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880678&pid=S0185-3880200500010000100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">M&eacute;ndez, N. and P&aacute;ez&#45;Osuna, F. (1998). Trace metals in two populations of the fireworm <i>Eurythoe complanata</i> from Mazatlan bay: Effects of body size on concentrations. Environ. Pollut., 102(2&#45;3): 279&#45;285.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880680&pid=S0185-3880200500010000100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Millar and Ratcliffe, N.A. (1994). Immunology: A comparative approach. John Wiley, New York, pp. 50&#45;52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880682&pid=S0185-3880200500010000100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nicholson, S. (2003). Lysosomal membrane stability, phagocytosis and tolerancia to emersion in the <i>Perna viridis</i> (Bivalvia: Mytilidae) following exposure to acute, sublethal copper. Chemosphere, 52(7): 1147&#45;1151.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880684&pid=S0185-3880200500010000100023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nusetti, O., Marcano, L. y Cordova, L. (1996). Desarrollo de protocolos estandarizados de evaluaci&oacute;n de toxicidad subletal a nivel inmunol&oacute;gico, empleando la lombriz de tierra <i>Eisenia feotida</i> (Annelida: Lumbricidal). Bolet&iacute;n T&eacute;cnico de la Gerencia General de Investigaciones Ecol&oacute;gicas y Ambientales. INTEVEP, S.A.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880686&pid=S0185-3880200500010000100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nusetti, O.A., Salazar&#45;Lugo, R., Rodr&iacute;guez&#45;Grau, J. and Vilas, J. (1998). Immune and biochemical responses of the polychaete <i>Eurythoe complanata</i> exposed to sublethal concentration of copper. Comp. Biochem. Physiol., 119C(2): 177&#45;183.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880688&pid=S0185-3880200500010000100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nusetti, O.A., Parejo, E., Esclap&eacute;s, M.M., Rodr&iacute;guez&#45;Grau, J. and Marcano, L. (1999). Acute&#45;sublethal copper effects on phagocytosis and lysozyme activity in the earthworm <i>Amynthas hawayanus.</i> Bull. Environ. Contam. Toxicol., 63: 350&#45;356.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880690&pid=S0185-3880200500010000100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Nusetti, O., Esclap&eacute;s, M., Salazar, G., Nusetti, S. and Pulido, S. (2001). Biomarkers of oxidative stress in the polychaete <i>Eurythoe complanata</i> (Amphinomidae) under short term copper exposure. Bull. Environ. Contam. Toxicol., 66: 576&#45;581.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880692&pid=S0185-3880200500010000100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Perin, J. and Jolles, P. (1972). The lysozyme from <i>Nephthys hombergy</i> (Annelid). Biochim. Biophys. Acta, 263: 683&#45;689.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880694&pid=S0185-3880200500010000100028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Reish, D.J. (1980). Use of polychaetous annelids as test organisms for marine bioassays experiments. In: A.L. Buikema and J.C. Cairs (eds.), Aquatic Invertebrate Bioassays. ASTM 715, Philadelphia, pp. 140&#45;145.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880696&pid=S0185-3880200500010000100029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Reish, D.J. (1986). Benthic invertebrates as indicators of marine pollution: 35 years of study. IEEE Oceans'86 Conference Proc. Washington, DC, September 23&#45;25, pp. 885&#45;888.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880698&pid=S0185-3880200500010000100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Reish, D.J. (1998). The use of larvae and small species of polychaetes in marine toxicological testing. In: P. Well, K. Lee and C. Blaise (eds.), Microscale Testing in Aquatic Toxicology: Advances, Techniques and Practice. 1st ed. CRC Press, pp. 383&#45;392.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880700&pid=S0185-3880200500010000100031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rodr&iacute;gez&#45;Grau, J., Venables, B., Fitzpatric, L., Goven, A. and Cooper, E. (1989). Suppression of secretory rosette formation PCBs in <i>Lumbricus terrestris,</i> and earthworm immune assays for humoral immunotoxicity of xenobiotics. Environ. Toxicol. Chem., 8: 1201&#45;1207.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880702&pid=S0185-3880200500010000100032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">S&aacute;nchez&#45;Alvardo, A. (2000). Regeneration in the metazoans: Why does it happen? Bioassays, 22: 578&#45;590.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880704&pid=S0185-3880200500010000100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Sauv&eacute;, S., Hendawi, M., Brousseau, P. and Founder, M. (2002). Phagocytic response of terrestrial and aquatic invertebrates following <i>in vitro</i> exposure to trace elements. Ecotoxicol. Environ. Safety, 5(1): 21&#45;29.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880706&pid=S0185-3880200500010000100034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Snedecor, W.G. and Cochran, E.G. (1971). Statistical Methods. Iowa State Univ. Press, Ames, Iowa, pp. 258&#45;298.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880708&pid=S0185-3880200500010000100035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Ville, P., Roch, P., Nasson, P. and Narbonne, J. (1995). PBCs increase molecular&#45;related activities (lysozyme, antibacterial hemolysis, proteases) but inhibit macrophage&#45;related function (phagocytosis, wound healing) in earthworm J. Invert. Pathol., 65: 217&#45;224.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1880710&pid=S0185-3880200500010000100036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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