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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Incidencia de Infecciones Virales Mezcladas en un Área de Producción de Fresa en Guanajuato, México]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Irapuato county, in Guanajuato state in central Mexico, was the main strawberry producer at national level, where viral infections was one of the causes for the decrease in the amount of acres cultivated with this crop. Strawberry mottle virus (SMoV), Strawberry crinkle virus (SCV), and Strawberry latent ringspot virus (SLRSV) were previously found affecting strawberry production in Irapuato; however, the viral diversity present in strawberry fields of Mexico is unknown. This survey was carried in a small area of Irapuato and Abasolo counties, in Guanajuato state, where the highest viral diversity associated to strawberry has been reported. We detected seven different viral species in 57 samples collected: SCV, SMoV, Fragaria chiloensis cryptic virus (FClCV), Fragaria chiloensis latent virus (FClLV), Strawberry pallidosis associated virus (SPaV), Strawberry necrotic shock virus (SNSV), and Strawberry mild yellow edge virus (SMYEV). All in single and in 24 different mixed infections, conforming the Irapuato s Local Strawberry Virus Complex (LSVC). The most abundant viruses were SMoV, FClCV, SNSV, and SMYEV. We compared nucleotide sequences of strawberry Mexican viral isolates with those that affect strawberry in the USA, finding deletions, silent and non-silent mutations in the Mexican isolates.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos cient&iacute;ficos</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Incidencia de Infecciones Virales Mezcladas en un &Aacute;rea de Producci&oacute;n de Fresa en Guanajuato, M&eacute;xico</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Incidence of Mixed Viral Infections in a Strawberry Producing Area in</b> <b>Guanajuato, Mexico</b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Carlos Alberto Contreras Paredes<sup>1</sup>, Laura Silva Rosales<sup>1</sup>, Violana Gallegos<sup>1</sup>, M. Lucila Ortiz Castellanos<sup>1</sup>, Alba Estela Jofre Garfias<sup>1</sup>*, Pedro Antonio D&aacute;valos Gonz&aacute;lez<sup>2</sup></b></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Departamento de Ingenier&iacute;a Gen&eacute;tica at Centro de Investigaci&oacute;n y de Estudios Avanzados del IPN&#45;Unidad Irapuato (Cinvestav Irapuato). Km 9.6, Libram. Nte. Irapuato, Guanajuato. CP 36821, M&eacute;xico. </i>*Corresponding author: <a href="mailto:ajofre@ira.cinvestav.mx">ajofre@ira.cinvestav.mx</a></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>Centro de Investigaci&oacute;n Regional Centro, Campo Experimental Baj&iacute;o, Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP). Km 6.5 Carr. Celaya&#45;San Miguel Allende, Celaya, Guanajuato. CP 38110, M&eacute;xico.</i></font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Recibido: Abril 10, 2014    <br> 	Aceptado: Agosto 14, 2014</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Irapuato, en el estado de Guanajuato, fue el principal productor de fresa a nivel nacional. La p&eacute;rdida de ese estatus fue debida a infecciones virales, entre otras causas. El virus del moteado de la fresa (SMoV), el del arrugamiento de la fresa (SCV) y el virus latente del anillo necr&oacute;tico de la fresa (SLRSV) fueron encontrados previamente en Irapuato; sin embargo, la diversidad viral es a&uacute;n desconocida. Este estudio se realiz&oacute; en los municipios de Irapuato y Abasolo, en donde se hab&iacute;a reportado su presencia. Detectamos siete especies virales en 57 muestras colectadas: SCV, SMoV, el virus cr&iacute;ptico de <i>Fragaria chiloensis</i> (FClCV), el latente de <i>Fragaria chiloensis</i> (FClCLV), el asociado a la palidosis de la fresa (SPaV), el del choque necr&oacute;tico de la fresa (SNSV) y el amarillamiento marginal tenue de la fresa (SMYEV). &Eacute;stos se encontraron en infecciones sencillas y en 24 mezclas, conformando el complejo viral local de fresa (LSVC). Los m&aacute;s abundantes fueron: SMoV, FClCV, SNSV y SMYEV. Se compararon las secuencias de nucle&oacute;tidos de los aislamientos virales mexicanos con los de EE. UU.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave adicionales</b>: virus de fresa, infecciones virales mixtas.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Irapuato county, in Guanajuato state in central Mexico, was the main strawberry producer at national level, where viral infections was one of the causes for the decrease in the amount of acres cultivated with this crop. <i>Strawberry mottle virus</i> (SMoV), <i>Strawberry crinkle virus</i> (SCV), and <i>Strawberry latent ringspot virus</i> (SLRSV) were previously found affecting strawberry production in Irapuato; however, the viral diversity present in strawberry fields of Mexico is unknown. This survey was carried in a small area of Irapuato and Abasolo counties, in Guanajuato state, where the highest viral diversity associated to strawberry has been reported. We detected seven different viral species in 57 samples collected: SCV, SMoV, Fragaria chiloensis cryptic virus (FClCV), <i>Fragaria chiloensis latent virus</i> (FClLV), <i>Strawberry pallidosis associated virus</i> (SPaV), <i>Strawberry necrotic shock virus</i> (SNSV), and <i>Strawberry mild yellow edge virus</i> (SMYEV). All in single and in 24 different mixed infections, conforming the Irapuato s Local Strawberry Virus Complex (LSVC). The most abundant viruses were SMoV, FClCV, SNSV, and SMYEV. We compared nucleotide sequences of strawberry Mexican viral isolates with those that affect strawberry in the USA, finding deletions, silent and non&#45;silent mutations in the Mexican isolates.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Additional keywords</b>: strawberry viruses, mixed viral infections.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La fresa <i>(Fragaria</i> x <i>ananassa</i> Duch.) es una fruta peque&ntilde;a de gran importancia en todo el mundo. M&eacute;xico ha sido un importante productor de fresa durante muchos a&ntilde;os (FAOSTAT, 2011). Aunque, existen 12 estados diferentes productores de fresa, s&oacute;lo tres estados &#45;Michoac&aacute;n (Mich.), Baja California (BC) y Guanajuato (Gto.)&#45; generan m&aacute;s del 90% de la producci&oacute;n nacional. Dentro de estos tres estados, las ciudades de Zamora en Mich., Ensenada en BC e Irapuato en Gto., son las m&aacute;s importantes. En la d&eacute;cada de los 70's, Irapuato fue el principal productor, y ha sido hist&oacute;ricamente una zona de producci&oacute;n de fresa en los &uacute;ltimos 100 a&ntilde;os. Recientemente, la introducci&oacute;n de cultivos hort&iacute;colas nuevos y m&aacute;s rentables, tales como el br&oacute;coli y la coliflor, en la zona agr&iacute;cola de Irapuato, han desplazado el cultivo de la fresa. Adem&aacute;s, los problemas fitopatol&oacute;gicos, incluyendo las enfermedades virales, podr&iacute;an haber desempe&ntilde;ado un papel importante influyendo en el desplazamineto de este cultivo.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En 1989 la incidencia de los virus dentro de los viveros de Irapuato vari&oacute; del 10% &#45; 67%. En los campos de producci&oacute;n, la incidencia fue a&uacute;n mayor en las localidades (93% y 25%, respectivamente), seg&uacute;n lo reportado por Teliz&#45;Ortiz y Trejo&#45;Reyes, (1989). En ese reporte, con el uso de injertos de plantas indicadoras se observaron dos virus en infecciones simples y mixtas: el virus del moteado (SMoV) y el del enrollamiento (SCV) de la fresa (Teliz&#45;Ortiz y Trejo&#45;Reyes, 1989). En otro estudio realizado en el 2004 en Irapuato, se detect&oacute; el virus de la mancha anular latente (SLRSV) mediante ELISA (P&eacute;rez&#45;Moreno <i>et al.,</i> 2004). Nuestro grupo ha reportado infecciones virales de la fresa con hasta seis especies diferentes en una muestra de una peque&ntilde;a &aacute;rea de producci&oacute;n en el centro de M&eacute;xico (SilvaRosales <i>et al.,</i> 2013). Por &uacute;ltimo, existen resportes de infecciones virales mixtas en plantas de fresa en los EE.UU. (Martin y Tzanetakis, 2006) y en Europa (Fr&aacute;nov&aacute;&#45;Honetslegrov&aacute; <i>et al.,</i> 1999). En este estudio, se realiz&oacute; una investigaci&oacute;n en Irapuato utilizando 11 diferentes pares de cebadores (primers) dise&ntilde;ados para detectar varios virus encontrados en los EE.UU.: SLRSV (Postman <i>et al.,</i> 2004), el del choque necr&oacute;tico (SNSV) (Tzanetakis <i>et al.,</i> 2001), el clor&oacute;tico moteado de la fresa (SCFaV) (Tzanetakis and Martin, 2007), el virus del falso amarilleo de la remolacha (BPYV) (Tzanetakis <i>et al.,</i> 2003), el latente de Fragaria chiloensis (FClLV) (Tzanetakis and Martin, 2005b), el de la palidosis asociada a la fresa (SpaV) (Tzanetakis <i>et al.,</i> 2004), el cr&iacute;ptico de Fragaria chiloensis (FClCV) (Tzanetakis and Martin, 2005a), SMoV (Martin <i>et al.,</i> 2009), el virus de la rizadura (SVBV), SCV y el del amarillamiento marginal tenue (SMYEV) (Thompson <i>et al.,</i> 2003). Algunos de estos virus fueron detectados en infecciones simples o mixtas conformando el "complejo local viral de la fresa en Irapuato" (LSVC). Con el fin de tener una valoraci&oacute;n inicial de la diversidad viral y la variabilidad del LSVC en Irapuato, M&eacute;xico, las secuencias de algunos segmentos virales amplificadas fueron obtenidas y se compararon con los reportados en EE.UU.</font></p>     <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Material vegetal.</b> Se recolectaron un total de 57 muestras de fresas de las variedades "Camino Real", "Festival" y "Sweet Charlie", as&iacute; como algunos clones resultantes de un programa local de mejoramiento desarrollado entre el INIFAP y el CIVESTAP&#45;Irapuato. Todas las muestras se recolectaron en un &aacute;rea de 851 kil&oacute;metros cuadrados en la ciudad de Irapuato. Los clones UC&#45;4 y UC&#45;10 se cultivaron al mismo tiempo como indicadoras de las infecciones virales en una de las locaciones llamada "La Mocha". Se ha reportado previamente que estas l&iacute;neas de cultivares mostraron los s&iacute;ntomas virales caracter&iacute;sticos cuando se infectaron con algunos pat&oacute;genos, incluyendo algunos virus (Yoshikawa and Converse, 1990; Welsh&#45;Assembly&#45;Goverment, 2010). La UC&#45;4 es susceptible a SCV, SMYEV y SMoV, y la UC&#45;10 es susceptible a SPaV (Yoshikawa and Converse, 1990; Welsh&#45;Assembly&#45;Goverment, 2010).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Muestreo.</b> Se recolectaron hojas de plantas con s&iacute;ntomas virales en plantaciones experimentales y comerciales de 13 lugares diferentes en &aacute;reas de Irapuato y Abasolo, en el estado de Guanajuato, durante las temporadas de cosecha 2007&#45;2008, 2008&#45;2009 y 2012&#45;2013 (abril y diciembre de 2007, julio y diciembre de 2008 y julio del 2013), conformando cinco conjuntos diferentes de muestras (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a2c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). El n&uacute;mero de &aacute;fidos (vectores de transmisi&oacute;n de virus) se registr&oacute; en cada lugar de acuerdo con Holman <i>et al.,</i> (1991), junto con una escala hed&oacute;nica de vigor de la planta, con valores asignados de la 5, donde 1 corresponde al m&aacute;s d&eacute;bil y 5 al m&aacute;s fuerte.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamiento de ARN total.</b> La extracci&oacute;n del ARN total se realiz&oacute; de acuerdo a lo descrito por Halgren <i>et al.,</i> (2007), donde 150 mg de tejido foliar se molieron y homogeneizaron con 1 mL de amortiguador de extracci&oacute;n (200 mM Tris&#45;HCl, 300 mM LiCl, 1.5% de litio&#45;dodecil&#45;sulfato, 10 mM EDTA, 1% de desoxicolato de sodio, 2% de polivinilpirrolidona, 1% Tergitol NP&#45;40 y 1% de 2&#45;mercapto&#45;etanol) despu&eacute;s de la centrifugaci&oacute;n (16000 xg durante 20 min). Se recolect&oacute; el sobrenadante y se a&ntilde;adi&oacute; un volumen igual de acetato de potasio 6 M, pH 6.5. La mezcla se incub&oacute; a &#45;20&deg;C durante 30 min y se centrifug&oacute; a 16000 xg durante 10 min. El ARN se precipit&oacute; con alcohol isoprop&iacute;lico fr&iacute;o por centrifugaci&oacute;n a 16000 xg durante 20 min. El sedimento se resuspendi&oacute; en 500 &#956;L de soluci&oacute;n de lavado (Tris 10 mM, EDTA 0.5 mM, NaCl 50 mM y etanol al 50%). El sedimento final que conten&iacute;a el ARN se resuspendi&oacute; mediante la adici&oacute;n de una soluci&oacute;n de Tris&#45;EDTA y 25 &#956;L de leche de s&iacute;lice/vidrio. Para finalizar, se realiz&oacute; una centrifugaci&oacute;n m&aacute;s a 2375 xg durante 10 seg, seg&uacute;n lo sugerido por Rott and Jelkmann (2001), y modificado por Tzanetakis <i>et al.,</i> (2005). La concentraci&oacute;n de ARN se cuantific&oacute; por medici&oacute;n de absorbancia a 260 nm y su calidad se verific&oacute; por electroforesis en un gel de agarosa al 1%.</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Detecci&oacute;n viral por PCR y su secuenciaci&oacute;n.</b> Se llevaron a cabo experimentos de PCR para todas las muestras de ARN extra&iacute;das utilizando primers desarrollados en el laboratorio de Bob Martin (USDA), y dirigidos contra once de los virus m&aacute;s importantes que afectan a las fresas en todo EE.UU. (SLRSV, SNSV, SCFaV, BPYV, FClLV, SPaV, FClCV, SMoV, SVBV, SCV y el SMYEV). El mRNA end&oacute;geno NADH deshidrogenasa se amplific&oacute; como un control interno (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a2c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Se utiliz&oacute; la SuperScript III (Invitrogen Corporation; California, EE.UU.) para realizar la transcripci&oacute;n reversa y la DreamTaq DNA Polymerasa (Fermentas) para PCR, ambos de acuerdo con las instrucciones del fabricante.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las secuencias de nucle&oacute;tidos de los fragmentos virales se obtuvieron despu&eacute;s de la amplificaci&oacute;n PCR y se clonaron en el pJET1.2/blunt CloneJET PCR Cloning Kit (Fermentas). Se curaron las secuencias y se depositaron en la base de datos GenBank con los siguientes n&uacute;meros de acceso: FClLV (JQ629412), SCV (JQ629413), SMoV (JQ629414), SMYEV (JQ629417), SNSV (JQ629415) y SPaV (JQ629416). El fragmento obtenido despu&eacute;s de la amplificaci&oacute;n del FClCV fue de 152 pb de longitud y no cumpli&oacute; con los requisitos de GenBank para ser incluido en la base de datos (por lo menos 200 pb).</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis de los s&iacute;ntomas.</b> Se analizaron 57 muestras de fresas provenientes de Irapuato y Abasolo. Cuarenta correspondieron a las variedades comerciales 'Camino Real', 'Festival' y 'Sweet Charlie', y doce fueron clones desarrollados dentro de un programa local de mejoramiento de fresas locales. Las fresas UC&#45;4 y UC&#45;10 se cultivaron al mismo tiempo, como plantas indicadoras de infecciones virales, y sirvieron como un marcador indirecto para establecer cuales virus ser&iacute;an parte del LSVC. Durante el verano, las plantas UC&#45;4 generalmente desarrollaron un enrojecimiento prematuro visible en los bordes de las hojas, el cual se extendi&oacute; a lo largo de toda la hoja d&aacute;ndoles una apariencia de pseudo&#45;latencia. Estas hojas infectadas murieron prematuramente y a la planta le crecieron hojas nuevas. Por lo general, estas hojas eran m&aacute;s peque&ntilde;as de lo normal, y en algunos casos, estaban arrugadas, deformadas, moteadas con manchas clor&oacute;ticas o curvadas. Las plantas indicadoras infectadas UC&#45;4 y/o UC&#45;10, mostraron enfermedades cr&oacute;nicas durante tres o cuatro meses y luego murieron.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se encontraron &aacute;fidos en casi la mitad de los sitios de muestreo y se identificaron utilizando una gu&iacute;a taxon&oacute;mica para &aacute;fidos de la regi&oacute;n (Holman <i>et al.,</i> 1991). Las especies de &aacute;fidos predominantes fueron: <i>Chaetosiphon fragaefolli</i> (Cockerell), vector de SCV y SMYEV, y <i>Aphis gossypii</i> vector para la transmisi&oacute;n del SMoV (Tzanetakis and Martin, 2013).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Diversidad viral asociada a los cultivos de fresa mexicana.</b> La diversidad viral asociada a los cultivos de fresa mexicana es poco conocida. En este estudio, se analizaron 57 muestras de fresas procedentes de 13 ubicaciones diferentes en Irapuato y Abasolo, dentro de la subregi&oacute;n geogr&aacute;fica conocida como "El Baj&iacute;o" (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a2c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>). El an&aacute;lisis fu&eacute; realizado despu&eacute;s de la amplificaci&oacute;n de fragmentos virales presentes en las muestras analizadas por PCR. Los resultados revelaron la presencia de siete especies virales diferentes: SNSV, FClLV, SPaV, FClCV, SMoV, SCV y SMYEV, ya sea en infecciones simples o mixtas. Cuarenta y siete muestras fueron positivas para al menos uno de los siete virus presentes, y 10 no dieron lugar a ning&uacute;n producto viral amplificado, y, por lo tanto, fueron negativas. La presencia de FClCV fue asignado bas&aacute;ndose en la secuencia del fragmento amplificado por PCR de 151 nucle&oacute;tidos (AAGTCCGTGAGCACTGCCATGCCCGTGACGAATTACTCTGCCTTCGAATGCTCAATTTCCAGAATACGTCGTAGAATCTGGCG CAATGTCAACTTTGCGTGCACATTCCATTCACCAAGACGCTGGAATCAATTCCCGTTACTTGTATTCA) el cual fue id&eacute;ntico al mismo tramo del segmento de ARN1 del &uacute;nico aislado de Chile (DQ093961.2) disponible en el NCBI (Tzanetakis and Martin, 2005a).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El SMoV <i>(Secoviridae)</i> se detect&oacute; en 31 de las 57 muestras analizadas (54%), dos miembros de la familia <i>Bromoviridae,</i> FClLV y SNSV, en 25 muestras (44%), SMYEV <i>(Alphaflexiviridae)</i> en 15 muestras (26%), SCV <i>(Rhabdoviridae)</i> en 1 6 muestras (28%), SPaV <i>(Closteviridae)</i> en 9 muestras (16%) y el FClCV en 14 muestras (24%).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se identificaron 14 muestras infectadas con s&oacute;lo un virus: ocho ten&iacute;an SMoV, cinco ten&iacute;an SCV y uno ten&iacute;a SPaV. (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a2c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). Las 29 muestras restantes ten&iacute;an infecciones mixtas con dos o m&aacute;s virus presentes en 23 combinaciones (C) (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a2c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>). De las 14 muestras con dos virus, cinco conten&iacute;an la combinaci&oacute;n SMoV + FClCV (C1), dos con SMoV + SMYEV (C2), dos con SMoV + SNSV (C6) y dos con SMYEV + SNSV (C7). Las otras tres muestras conten&iacute;an una combinaci&oacute;n no repetitiva de FClCV + FClLV (C3), FClLV + SCV (C4) y SMoV + SPaV (C5). Doce muestras ten&iacute;an mezclas de tres virus: dos con SMoV + FClCV + FClLV (C9), dos con SMYEV+ SNSV + SPaV (C10) y dos con SMoV + SCV+ SMYEV (C16). Los seis restantes ten&iacute;an las combinaciones SCV+ SNSV+ SPaV (C8), SMoV + FClCV + SCV (C11), SMoV+ SNVS+ SPaV (C12), SMoV+ SCV+ SNSV (C13), SMoV+ FClCV+ SNSV (C14) y SCV+ SMYEV+ SNSV (C15). Adicionalmente, se observaron cuatro muestras &uacute;nicas con mezclas de cuatro virus FClCV+ FClLV+ SMYEV+ SNSV (C17), SMoV+ SCV+ SNSV+ SPaV (C18), SMoV+ SMYEV+ SNSV+ SPaV (C19) y SMoV+ SCV+ SMYEV+SNSV (C20). Las dos muestras con cinco virus mixtos fueron: FClCV+ FClLV+ SCV+ SMYEV+ SNSV (C21) y SMoV+ FCICV+ FClLV+ SMYEV+ SNSV (C22). Por &uacute;ltimo, &uacute;nicamente se encontr&oacute; una muestra con seis virus: FClCV+ FClLV+ SCV+ SMoV+ SMYEV+ SPaV (C23) (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a2c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>).</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Con la finalidad de determinar la relaci&oacute;n de las cepas virales que se encontraron con aquellas reportadas en los EE.UU., de donde proven&iacute;an la mayor&iacute;a de las pl&aacute;ntulas, se compararon las secuencias parciales de los diferentes segmentos de los nucle&oacute;tidos de las siete especies virales detectadas (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a2f1.jpg" target="_blank">Figura 1</a>). No se observaron diferencias entre la secuencia de nucle&oacute;tidos de SPaV parecida a HSP70 del aislamiento de EE.UU. (Tzanetakis <i>et al.,</i> 2004) y el aislamiento encontrado en &eacute;ste trabajo. El FClCV de esta regi&oacute;n geogr&aacute;fica mostr&oacute; dos diferencias con la secuencia de referencia del Chile (Tzanetakis <i>et al.,</i> 2008): un nucle&oacute;tido cambi&oacute; y otro fue escindido en el ORF de la RdRp (ARN polimerasa dependiente de ARN). Se encontraron m&aacute;s diferencias de nucle&oacute;tidos en el SMoV mexicano con ocho diferencias de nucle&oacute;tidos en comparaci&oacute;n con el 3 'UTR de su par chileno m&aacute;s similar (Thompson and Jelkmann, 2003). Todas las otras especies virales detectadas e identificadas en este estudio, mostraron diferencias de nucle&oacute;tidos que resultaron en cambios de amino&aacute;cidos en diferentes ORFs en cuatro de las siete especies de M&eacute;xico, en comparaci&oacute;n con sus hom&oacute;logos m&aacute;s cercanos: una sustituci&oacute;n de una asparagina en la regi&oacute;n carboxi de la prote&iacute;na de la c&aacute;pside (CP) en lugar de una glutamina en el SNSV de EE.UU. (Tzanetakis <i>et al.,</i> 2010). Se encontr&oacute; una serina en lugar de una prolina en la misma regi&oacute;n (CP), del virus del amarillamiento marginal tenue de la fresa de Alemania (Jelkmann <i>et al.,</i> 1990), y una arginina en lugar de un &aacute;cido glut&aacute;mico en la regi&oacute;n media de la ARN polimerasa dependiente de ARN del FCILV de EE.UU. (Tzanetakis <i>et al.,</i> 2008). Finalmente, dos cambios de amino&aacute;cidos se infirieron en la regi&oacute;n central de la prote&iacute;na L (ARN polimerasa de ARN) del virus del arrugamiento de la fresa; una leucina por una isoleucina; y una prolina en lugar de una arginina, en comparaci&oacute;n con el aislado de Holanda (Klerks <i>et al.,</i> 2004).</font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Cerca de 30 virus de ADN y ARN se han asociado a la fresa en todo el mundo (Tzanetakis and Martin, 2013), sin embargo, la diversidad viral asociada al cultivo de fresa es desconocido. En este trabajo, se detectaron siete virus en parcelas de fresa en una peque&ntilde;a &aacute;rea del central estado mexicano de Guanajuato, en la regi&oacute;n "El Baj&iacute;o". Las infecciones mixtas no son nuevas en los campos de fresa, tal como lo muestran los reportes de la d&eacute;cada de los 30's donde se propone la coexistencia de mezclas virales conformadas principalmente por el SCV (Martin y Tzanetakis, 2006). Tambi&eacute;n por el SMYEV, SMoV, SPaV, virus latente C (SLCV) y SVBV han sido sugeridos por estar presentes en infecciones mixtas (Martin and Tzanetakis, 2006), pero no hay muchos reportes fuera de los EE.UU. que aborden este tema. En el presente estudio se encontr&oacute; al SMoV presente con frecuencia en las infecciones mixtas. De las 22 plantas detectadas con infecciones mixtas, 15 de ellas incluyeron al SMoV. Esto no es de sorprenderse, ya que esta especie viral, junto con el SCV fue reportada por primera vez hace m&aacute;s de 20 a&ntilde;os en esta &aacute;rea (Teliz&#45;Ortiz and Trejo&#45;Reyes, 1989). La prevalencia de infecciones mixtas parece ser un sello distintivo de las infecciones virales de la fresa. Hay dos factores que podr&iacute;an haber influido en la prevalencia del SMoV y del SCV en esta regi&oacute;n. La primera de ellas es la persistencia de las poblaciones de &aacute;fidos que pueden transmitir ambas especies virales (Martin and Tzanetakis, 2006). La presencia de vectores &aacute;fidos podr&iacute;a haber facilitado la amplia propagaci&oacute;n de infecciones mixtas en el &aacute;rea de estudio, ya que aproximadamente el 75% de las muestras analizadas present&oacute; infecciones mixtas. La segunda, son las pr&aacute;cticas agron&oacute;micas del cultivo. A pesar de que la planta certificada es importada de los EE.UU., las plantas son infectadas ya que algunos de los productores de la regi&oacute;n tienen viveros de plantas en las proximidades cercanos al primer o segundo a&ntilde;o de producci&oacute;n, actuando como reservorios del LSVC.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La mayor&iacute;a de las infecciones mixtas se compon&iacute;a de tres o m&aacute;s diferentes especies virales, como se muestra por las diecis&eacute;is combinaciones virales diferentes (C8 a C23 en el <a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a2c4.jpg" target="_blank">cuadro 4</a>), independientemente del cultivar de fresa evaluado. Las infecciones mixtas podr&iacute;an verse favorecidas por la presencia de afidos transmisores de SCV, SMYEV, SMoV y mosca blanca, transmitiendo el SPaV. Adem&aacute;s, el FClLV y el SNSV se transmiten por el polen. Los trips, los cuales fueron observados pero no registrados en este trabajo, tambi&eacute;n pueden contribuir a la propagaci&oacute;n del SNSV. La fresa se cultiva en esta regi&oacute;n durante todo el a&ntilde;o. La presencia de hospederos alternativos durante todo el a&ntilde;o en muchos lugares donde se cultive la fresa, como especies de <i>Chenopodium</i> entre otras, en esta regi&oacute;n (Vibrans, 2012), podr&iacute;a facilitar la presencia de las especies virales detectadas.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A pesar de tener peque&ntilde;os productos amplificados por PCR, con el conjunto de oligonucle&oacute;tidos utilizado, la secuenciaci&oacute;n directa e inversa confirm&oacute; la fiabilidad de los cambios observados a nivel de nucle&oacute;tidos o de amino&aacute;cidos. La falta de cambios en el SPaV en el gen HSP70 podr&iacute;a indicar que, o bien la misma cepa est&aacute; presente en M&eacute;xico y en los EE.UU., o las pl&aacute;ntulas importadas ya estaban infectadas con el virus al entrar al pa&iacute;s. Los cambios silenciosos de nucle&oacute;tidos, ya sea en las regiones no codificantes, como en el caso de SMoV o el FClCV, as&iacute; como los no&#45;silenciosos, como en el caso de SNSV, SMYEV, FClLV y el SCV, sugieren la diversificaci&oacute;n de virus ya sea desde los primeros a&ntilde;os despu&eacute;s de primera introducci&oacute;n del virus, si se introdujo primero en plantas contaminadas, o bien derivados de plantas silvestres y malas hierbas en las inmediaciones del &aacute;rea de siembra.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La frecuencia de infecciones virales mixtas en la fresa, ya sean de material importado contaminado o bien de cepas virales preexistentes, enfatiza la importancia de utilizar nuevos m&eacute;todos y m&aacute;s r&aacute;pidos para garantizar que las pl&aacute;ntulas de fresa importadas est&eacute;n libres de virus. Las regulaciones fitosanitarias mexicanas requieren la evaluaci&oacute;n <i>in situ</i> de los productos importados. Sin embargo, aunque a veces con la ayuda de t&eacute;cnicas de ELISA para detectar la presencia de algunos virus, las inspecciones han sido en su mayor&iacute;a visuales. Este estudio sugiere la necesidad de desarrollar m&eacute;todos de detecci&oacute;n molecular para detectar cepas virales en todas las regiones productoras de fresa.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Infecciones individuales o mixtas de plantas que tienen hasta seis especies virales de SMoV, SCV, FCILV, SPaV, FClCV, SNSV y SMYEV, fueron encontradas en un &aacute;rea muy peque&ntilde;a en el centro de M&eacute;xico (regi&oacute;n del Baj&iacute;o), en 23 combinaciones diferentes. Sin embargo, el n&uacute;mero de combinaciones virales no parece ser equivalente a la diversidad de s&iacute;ntomas virales probablemente como un reflejo de las relaciones virales sin&eacute;rgicas o antagonistas o con la planta en el campo. Diferentes combinaciones virales, as&iacute; como su orden de llegada al hospedero, producen diferentes respuestas en la planta como se ha observado para otros sistemas. En el presente estudio, el SMoV fue virus m&aacute;s frecuente por lo que se podr&iacute;a especular que la combinaci&oacute;n de este virus con los otros seis virus restantes podr&iacute;a ser el responsable de los s&iacute;ntomas en la planta (<a href="/img/revistas/rmfi/v32n1/a2f2.jpg" target="_blank">Figura 2</a>). Actualmente est&aacute;n en marcha experimentos m&aacute;s controlados con las diferentes combinaciones de virus para comprobar esta hip&oacute;tesis.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se observaron algunas modificaciones virales tales como mutaciones no silentes en cuatro especies virales (SNSV, SMYEV, FClLV y SCV) en comparaci&oacute;n con sus contrapartes m&aacute;s similares, esto ser&iacute;a una posible se&ntilde;al de la adaptaci&oacute;n de los virus a un nuevo ambiente en caso de que hubieran sido introducidos del extranjero. Adem&aacute;s, estos cambios presentes en cualquiera de las proteinas estructurales (prote&iacute;na de la c&aacute;pside o CP) o de replicaci&oacute;n (ARN polimerasa dependiente de ARN o RdRp) podr&iacute;an ser de beneficio para que los virus prevalezcan (compitieran) con otros virus en el LSVC.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>  	    ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Este estudio es una aproximaci&oacute;n al conocimiento de la diversidad de los virus de la fresa de Abasolo e Irapuato, en el estado de Guanajuato. En 57 muestras de fresas se detectaron siete virus: SNSV, FClLV, SPaV, FClCV, SMoV, SCV y SMYEV en infecciones virales simples o mixtas, conformando el LSVC de Irapuato.</font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Por otra parte, se observaron algunos cambios en las secuencias virales obtenidas lo cual podr&iacute;a llevar a entender la relaci&oacute;n entre virus y la planta en un nicho ecol&oacute;gico.</font></p> 	    <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Agradecimientos.</b> Esta obra fue financiada con el apoyo financiero de los proyectos no. 07&#45;03&#45;K662&#45;051 A02 del Consejo Estatal de Ciencia y Tecnolog&iacute;a del Estado de Guanajuato (CONCYTEG) a AEJG, el 330/04 de "Fundaci&oacute;n Produce Guanajuato, AC" para PADV y AEJG y el 2012&#45;06&#45;190290 de SAGARPA&#45;CONACYT a LSR, PADG y AEJG. Estamos muy agradecidos con el Dr. Ioannis Tzanetakis por proporcionar algunos de los cDNAs que se utilizaron como controles positivos de los experimentos, y por la metodolog&iacute;a de aislamiento del ARN. A N&eacute;lida V&aacute;zquez y Jimena Carrillo Tripp por su asistencia t&eacute;cnica con parte de los experimentos de PCR y la clonaci&oacute;n de los fragmentos virales.</font></p>  	    <p>&nbsp;</p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURE CITED</b></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Chang L, Zhang Z, Yang H, Li H and Dai H. 2007. Detection of Strawberry RNA and DNA Viruses by RT&#45;PCR Using Total Nucleic Acid as a Template. Journal of Phytopathology 155:431&#45;436.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485935&pid=S0185-3309201400010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <p align="justify"><font face="verdana" size="2">FAOSTAT. 2011. <a href="http://faostat.fao.org/site/339/default.aspx" target="_blank">http://faostat.fao.org/site/339/default.aspx</a>, Retrieved September 10, 2011.</font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fauquet C, Mayo MA, Maniloff J, Desselberger U and Ball LA. 2005. Virus Taxonomy. Eighth report of the International Committee on the Taxonomy of Viruses. Elsevier Academic Press. San Diego. 1259+p.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485938&pid=S0185-3309201400010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Fr&aacute;nov&aacute;&#45;Honetslegrov&aacute; J, Mr&aacute;z I, Nebes&aacute;rov&aacute; J and MS. 1999. Preferential bnding of secondary veins in strawberry is caused by mixed virus infection. Acta Virologica 43:349&#45;355.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485940&pid=S0185-3309201400010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Halgren A, Tzanetakis IE and Martin RR. 2007. Identification, Characterization, and Detection of Black raspberry necrosis virus. Phytopathology 97:44&#45;50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485942&pid=S0185-3309201400010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Holman J, Pe&ntilde;a MR y Bujanos MR. 1991. Gu&iacute;a para la identificaci&oacute;n y an&aacute;lisis de los pulgones alados (Hom&oacute;ptera: Aphidae) del Baj&iacute;o (Mexico City: CONACYT, INIFAP&#45;SARH, COFAA&#45;IPN.) pp. 8&#45;11.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485944&pid=S0185-3309201400010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Jelkmann W, Martin RR, Lesemann DE, Vetten HJ and Skelton F. 1990. A new potexvirus associated with strawberry mild yellow edge disease. The Journal of General Virology 71:1251&#45;1258.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485946&pid=S0185-3309201400010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Klerks MM, Lindner JL, Vaskova D, Spak J, Thompson JR, Jelkmann W, and Schoen CD. 2004. Detection and tentative grouping of Strawberry crinkle virus isolates. Eurorpean Journal of Plant Pathology 110:45&#45;52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485948&pid=S0185-3309201400010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p> 	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Martin RR, Marcum DB and Buchner R. 2009. Evaluation of nursery screenhouse strawberries for the presence of viruses. In Annual Production Research Report. California Strawberry Commission. Watsonville. pp. 99&#45;105.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485950&pid=S0185-3309201400010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Martin RR and Tzanetakis IE. 2006. Characterization and recent advances in detection of strawberry viruses. Plant Disease 90:384&#45;396.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485952&pid=S0185-3309201400010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">P&eacute;rez&#45;Moreno L, Rico&#45;Jaramillo E, S&aacute;nchez&#45;Pal&eacute; JR, Ascencio&#45;Ib&aacute;&ntilde;ez JT, D&iacute;az&#45;Plaza R y Rivera&#45;Bustamente RF. 2004. Identificaci&oacute;n de Virus Fitopat&oacute;genos en Cultivos Hort&iacute;colas de Importancia Econ&oacute;mica en el Estado de Guanajuato, M&eacute;xico. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 22:187&#45;197.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485954&pid=S0185-3309201400010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Postman JD, Tzanetakis IE and Martin RR 2004. First report of Strawberry latent ringspot virus in a Mentha sp from North America. Plant Disease 88:907&#45;907.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485956&pid=S0185-3309201400010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Rott ME and Jelkmann W. 2001. Characterization and detection of several filamentous viruses of cherry: Adaptation of an alternative cloning method (DOP&#45;PCR), and modification of an RNA extraction protocol. European Journal of Plant Pathology 107:411&#45;420.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485958&pid=S0185-3309201400010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Silva&#45;Rosales L, Vazquez&#45;Sanchez MN, Gallegos V, Ortiz&#45;Castellanos ML, Rivera&#45;Bustamante R, Davalos&#45;Gonzalez PA and Jofre&#45;Garfias AE. 2013. First Report of Fragaria chiloensis cryptic virus, Fragaria chiloensis latent virus, Strawberry mild yellow edge virus, Strawberry necrotic shock virus, and Strawberry pallidosis associated virus in Single and Mixed Infections in Strawberry in Central Mexico. Plant Disease 97:1002&#45;1002.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485960&pid=S0185-3309201400010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Teliz&#45;Ortiz D and Trejo&#45;Reyes A. 1989. Strawberry virus diseases in Mexico. Revista Mexicana de Fitopatolog&iacute;a 7:38&#45;40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485962&pid=S0185-3309201400010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Thompson JR and Jelkmann W. 2003. The Detection and Variation of Strawberry mottle virus. Plant Disease 87:385&#45;390.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485964&pid=S0185-3309201400010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Thompson JR, Wetzel S, Klerks MM, Vaskova D, Schoen, CD, Spak J and Jelkmann W. 2003. Multiplex RT&#45;PCR detection of four aphid&#45;borne strawberry viruses in Fragaria spp. in combination with a plant mRNA specific internal control. Journal of Virological Methods 111:85&#45;93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485966&pid=S0185-3309201400010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE, Halgren AB, Keller KE, Hokanson SC, Maas JL, McCarthy PL and Martin RR. 2004. Identification and detection of a virus associated with strawberry pallidosis disease. Plant Disease 88:383&#45;390.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485968&pid=S0185-3309201400010000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE, Keller KE and Martin RR. 2005. The use of reverse transcriptase for efficient first&#45; and second&#45;strand cDNA synthesis from single&#45; and double&#45;stranded RNA templates. Journal of Virological Methods 124:73&#45;77.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485970&pid=S0185-3309201400010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE, Mackey IC and Martin RR. 2001. <i>Strawberry Necrotic Shock Virus:</i> A New Virus Previously Thought to be <i>Tobacco Streak Virus.</i> Acta Horticulturae 656:27&#45;31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485972&pid=S0185-3309201400010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE and Martin RR. 2005a. Fragaria chiloensis cryptic virus: A new strawberry virus found in Fragaria chiloensis plants from Chile. Plant Disease 89:1241&#45;1241.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485974&pid=S0185-3309201400010000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE and Martin RR. 2005b. New features in the genus Ilarvirus revealed by the nucleotide sequence of Fragaria chiloensis latent virus. Virus Research 112:32&#45;37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485976&pid=S0185-3309201400010000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE and Martin RR. 2007. Strawberry chlorotic fleck: identification and characterization of a novel <i>Closterovirus</i> associated with the disease. Virus Research 124:88&#45;94.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485978&pid=S0185-3309201400010000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE and Martin RR. 2013. Expanding Field of Strawberry Viruses Which Are Important in North America. International Journal of Fruit Science 13:184&#45;195.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485980&pid=S0185-3309201400010000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE, Martin RR. and Scott SW. 2010. Genomic sequences of blackberry chlorotic ringspot virus and strawberry necrotic shock virus and the phylogeny of viruses in subgroup 1 of the genus Ilarvirus. Archives of Virology 155:557&#45;561.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485982&pid=S0185-3309201400010000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE, Postman JD and Martin RR. 2007. Identification, detection and transmission of a new vitivirus from Mentha. Archives of Virology 152:2027&#45;2033.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485984&pid=S0185-3309201400010000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE, Price R and Martin RR. 2008. Nucleotide sequence of the tripartite Fragaria chiloensis cryptic virus and presence of the virus in the Americas. Virus Genes 36:267&#45;272.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485986&pid=S0185-3309201400010000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Tzanetakis IE, Wintermantel WM and Martin RR. 2003. First Report ofBeet pseudo yellows virusin Strawberry in the United States: A Second Crinivirus Able to Cause Pallidosis Disease. Plant Disease 87:1398&#45;1398.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485988&pid=S0185-3309201400010000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Vibrans, H. 2012. "Sitio Malezas de M&eacute;xico". Retrieved Jun 28, 2012, 2012, from <a href="http://www.conabio.gob.mx/malezasdemexico/2inicio/home&#45;malezas&#45;mexico.htm" target="_blank">http://www.conabio.gob.mx/malezasdemexico/2inicio/home&#45;malezas&#45;mexico.htm</a>.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485990&pid=S0185-3309201400010000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Welsh&#45;Assembly&#45;Goverment 2010. Special requirements for strawberry plants to qualify as nuclear stock. Food and Environment Research Agency). pp. 4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485992&pid=S0185-3309201400010000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>  	    <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Yoshikawa N and Converse RH. 1990. Strawberry Pallidosis Disease&#45;Distinctive Dsrna Species Associated with Latent Infections in Indicators and in Diseased Strawberry Cultivars. Phytopathology 80:543&#45;548.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=8485994&pid=S0185-3309201400010000200030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body><back>
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