Introducción

El nardo (Polianthes tuberosa L.) es una planta tuberosa, herbácea y perenne conocida de forma común como nardo, amole, tuberosa blanca, amiga de noche, azucena y vara de San José (^{González-Vega, 2016}). Es una planta ornamental originaria de México que se dispersó alrededor del mundo en el siglo XVI (^{Barba-González et al., 2012}). El nardo es una especie que ocupa una posición importante entre las bulbosas ornamentales, ya que comercialmente se utiliza como flor de corte y ornamental de maceta, además de que se extraen aceites esenciales de las flores, los cuales son altamente valorados (^{Kameswari et al., 2014}). En México, Cuba, India, Nueva Zelanda y Japón, el nardo se utiliza como flor de corte en eventos sociales y para arreglos florales debido a su apreciado aroma (^{Barba-González et al., 2012}; ^{González-Vega, 2016}).

En México, particularmente en Morelos, Oaxaca, Guerrero, Veracruz y Puebla, se cultivan 306.1 ha de nardo como flor de corte, lo que genera 61.9 millones de pesos en ventas anuales (^{Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera [SIAP], 2020}). En Morelos, el nardo se ubica entre los principales cultivos de flores de corte (^{SIAP, 2020}), donde la variedad con flores sencillas es la ‘Mexicano’, y la de flores dobles es ‘Perla’, la cual se cultiva en mayor proporción (^{Vázquez-García, 2004}). A nivel internacional, se tienen variedades de nardo como ‘Doble excelsior’, ‘Tall double’, ‘Florentiu’ y ‘Orange flower’ (^{González-Vega, 2016}). En India, se reportan variedades como ‘Shiringar’, Vaibhav’, ‘Calcuta doble’ y ‘Prajwal’, en las cuales se ha evaluado su comportamiento en cultivo y en poscosecha (^{Pérez-Arias et al., 2019}).

Las flores de corte, inmediatamente después de la cosecha y antes del almacenamiento, o después del almacenamiento y subsecuente transporte (pero antes de aplicar soluciones de florero o conservadoras), se colocan en: a) soluciones rehidratantes, que tienen como objetivo restaurar la turgencia (generalmente son con agua a temperatura ambiente, la cual contiene algún germicida, agente humectante y acidificante, sin azúcar); b) soluciones pulsos, que consiste en colocar, por un periodo corto (desde segundos hasta horas), las flores recién cosechadas en una solución que contenga sales de plata o acidificador, un germicida y altas cantidades de azúcar, y c) soluciones para apertura de botones flores, las cuales se utilizan cuando se cortan las flores en estadio de botón y contienen cantidades moderadas de azúcar y un germicida (^{Arief-Zargar, 2016}; ^{Reid, 2009}).

El uso de soluciones conservadoras es el método más económico y práctico para extender la vida poscosecha de las flores de corte; además, ayudan a conservar una apariencia fresca por más tiempo, por lo que los vendedores detallistas o los consumidores las utilizan para mantener a las flores en condiciones de venta o vida en florero por un periodo más prolongado. Estas soluciones generalmente contienen un germicida, azúcares, regulador de pH y, en ocasiones, surfactantes y hormonas (^{Kumar et al., 2017}; ^{Nowak & Rudnicki, 1990}; ^{Salunkhe et al., 1990}).

El nardo es una flor de corte con una vida poscosecha corta, la cual varía entre 4 y 13 días (^{Pérez-Arias et al., 2019}). Una vez cosechada, la respiración y producción de etileno se incrementan, por lo que se requiere hidratación y suministro de azúcares para obtener una mayor apertura de las flores y para incrementar la vida útil (^{Kumari et al., 2018}; ^{Pérez-Arias et al., 2019}). ^{Wahitaka et al. (2001)} indican que al cosechar las espigas de nardo con dos o tres flores basales abiertas, realizar un pretratamiento pulso con sacarosa al 20 % y almacenar a temperatura entre 0 y 5 °C se puede mantener por más tiempo la calidad de las espigas.

En el caso del nardo, diversos autores señalan que soluciones conservadoras con sacarosa (Sac) + ácido cítrico (AC) o AC solo incrementan la vida útil del nardo entre 1 y 10 días, si se compara con flores que sólo se colocaron en agua (^{Sao & Verma, 2020}; ^{Sigma et al., 2018}). ^{Anjum et al. (2001)} reportan que el ácido ascórbico (AAsc) en dosis de 200 mg·L^-1 incrementó en 1 día la vida poscosecha del nardo en comparación con las flores testigo. En forma comercial, se tiene un producto denominado Crystal® de FloraLife® (que contiene alimento para las flores cortadas), el cual precipita las partículas de polvo y suciedad, además mantiene el agua de florero limpia y sin olor durante la apertura y crecimiento floral, esto al aplicarse una dosis de 5 g·L^-1 (^{FloraLife, 2020}).

En soluciones conservadoras, el germicida 8-HQC es el más utilizado para controlar bacterias, levaduras y hongos (^{Kumar et al., 2017}). La sacarosa al 1 o 2 % es la fuente de energía más empleada para proveer energía a las flores, y los ácidos o sales adicionados para ajustar el pH (entre 3.5 y 5.0) son necesarios para reducir el desarrollo de algunos microorganismos y para que el consumo de agua por los tallos florales sea más fácil (^{Kumar et al., 2017}).

Por lo anterior, el objetivo del trabajo fue evaluar la aplicación de soluciones conservadoras (Crystal®, sacarosa [Sac] + ácido cítrico [AC] + hidroxiquinoleína citrato [HQC] o ácido ascórbico [AAsc]) sobre algunos cambios físicos, fisiológicos y químicos de espigas de nardo ‘Mexicano’ y ‘Perla’ durante poscosecha.

Materiales y métodos

Resultados y discusión

La variedad ‘Mexicano’, con diferentes soluciones conservadoras, aumentó su peso fresco relativo al tercer día: 13 % con Crystal®, 9 % con Sac + AC + HQC y 5 % con AAsc. Posteriormente, el peso fresco relativo se mantuvo en las espigas tratadas con Crystal®, y con el resto de los tratamientos disminuyó más de 100 % (Figura 1A). En la variedad ‘Perla’ se tuvo un aumento significativo entre 11 y 18 % de peso fresco con Crystal® y AAsc, después de 3 y 5 días de evaluación, respectivamente, manteniéndose así aun después de 7 días (Figura 1B). Las espigas del testigo, tanto ‘Mexicano’ como ‘Perla’, mostraron el menor peso fresco a partir del tercer día (Figura 1 A y 1B). En poscosecha, el comportamiento del peso fresco relativo de las flores de corte refleja el balance entre el agua que absorben y el agua que pierden por transpiración a través de los estomas de las hojas y, en algunos casos, de las flores (^{van Doorn, 2012}). En ambas variedades de nardo, la solución con Crystal® favoreció el consumo de agua y, probablemente, el cierre de estomas.

Figura 1 Cambios en el peso fresco relativo, consumo de agua, apariencia y flores abiertas en dos variedades nativas de nardo: ‘Mexicano’ (A, C, E y G) y ‘Perla’ (B, D, F y H), sometidas a diferentes soluciones conservadoras (Crystal®, sacarosa [Sac] + ácido cítrico [AC] + hidroxiquinoleína citrato [HQC] o ácido ascórbico). Cada punto representa la media de ocho observaciones ± su error estándar. Las notaciones ns, *, ** y *** indican significancia estadística con 0.05, 0.01 y <0.0001, respectivamente. Números en negro indican diferencia mínima significativa (Tukey, P ≤ 0.05). 

En ‘Mexicano’, el consumo de agua fue entre 101 y 148 % mayor en las espigas tratadas con alguna solución nutritiva en comparación con las flores testigo (Figura 1C). En ‘Perla’, el consumo de agua fue entre 101.5 y 238.9 % mayor en las flores cuando se trataron con Crystal® o AAsc, mientras que las espigas tratadas con Sac + AC + HQC consumieron entre 54 y 64 % más que las espigas testigo (Figura 1D). En ambas variedades, las soluciones con Crystal® o AAsc mejoraron las relaciones hídricas (Figuras 1A -D).

Uno de los principales problemas del nardo en poscosecha es el taponamiento del xilema (^{Sao & Verma, 2020}). Las soluciones conservadoras evaluadas favorecieron el consumo de agua debido a que el pH del agua disminuyó (Cuadro 1), lo que evitó el desarrollo de microorganismos en el medio y ayudó en la absorción del agua (^{Kumar et al., 2017}). ^{Mosqueda-Lazcares et al. (2011)} evaluaron el uso de Crystal® en ocho variedades de rosa y observaron una mejora en la hidratación, ya que hubo un incremento de 69 % en el peso fresco relativo en comparación con tallos colocados en agua de la llave. Estos autores atribuyeron dicha respuesta, en parte, a que el pH de la solución de Crystal® fue de 5, el cual fue inferior al pH del agua de la llave, que estuvo entre 6.5 - 7, lo cual sugiere que se rompió la tensión superficial del agua y facilitó la absorción por los tejidos conductores del tallo de la rosa. Las soluciones conservadoras evaluadas mostraron mayor CE (Cuadro 1), esto sugiere que parte de los solutos se transportaron a las hojas y pétalos, lo que ocasionó un mayor consumo de agua (^{Sigma et al., 2018}).

Al inicio, la apariencia de las espigas de nardo ‘Mexicano’ fue excelente, al tercer día fue buena y al quinto día regular, sin que se detectaran diferencias entre tratamientos (Figura 1E). En ‘Perla’, las espigas que se trataron con Crystal® mostraron una apariencia excelente, aun a los 5 días. A los 7 días de evaluación, las espigas con Crystal® o AAsc expusieron una apariencia regular. Por su parte, las flores testigo mostraron una apariencia mala desde los 5 días. La aplicación de Crystal® y AAsc generó un efecto positivo en ‘Perla’ (Figura 1F).

El producto Crystal® se ha evaluado en rosa y ha mejorado su vida en poscosecha, principalmente porque disminuye el pH y la acidez, además de aportar azúcares que son necesarios para la apertura floral (^{Mosqueda-Lazcares et al., 2011}); un efecto similar se puede atribuir en nardo. El AAsc mejora la vida poscosecha en flores de corte, ya que se considera un bioregulador que en bajas concentraciones ejerce un efecto en la calidad y vida de florero, principalmente como promotor de los compuestos de las plantas (^{Budiarto, 2019}).

En ‘Mexicano’ y ‘Perla’ no se detectaron diferencias significativas entre tratamientos en el número de flores abiertas al inicio del experimento (Figura 1G y 1H). Posteriormente, las espigas de la variedad ‘Mexicano’ colocadas en las soluciones conservadoras mostraron un mayor número de flores abiertas a los 5 días (entre 24 y 28 flores), en comparación con las espigas testigo (Figura 1G). Después de 7 días, abrieron entre 13 y 14 flores de ‘Perla’ con Crystal® y AAsc (Figura 1H). En ambas variedades, las espigas tratadas con Crystal® o AAsc mantuvieron la mayor apertura de flores (Figura 1H). ^{Anjum et al. (2001)} mencionan que dosis de AAsc entre 50 y 200 mg·L^-1 incrementan la apertura floral hasta en un 41 % en comparación con el testigo (apertura de 14.21 %), lo que es similar a lo obtenido en el presente trabajo.

En rosa se ha reportado que el AAsc ayuda a mantener la apertura floral, aún después de un estrés hídrico (^{Jin et al., 2006}). En algunas flores de corte, la aplicación de azúcares en solución favorece el comportamiento poscosecha y la apertura floral (^{Reid, 2009}). En el presente trabajo, la solución conservadora compuesta con Sac + AC + HQC en ‘Mexicano’ también favoreció la apertura floral (Figura 1G). Lo anterior sugiere que las soluciones son importantes en nardo, esto debido a su efecto en la apertura floral.

La respiración en ‘Mexicano’ se mantuvo similar durante los tres primeros días de evaluación, y el quinto día incrementó en todos los tratamientos, a excepción de las espigas con Crystal® (Figura 2A). En ‘Perla’, la respiración aumentó a partir del tercer día en las espigas con Sac + AC + HQC y las testigo, en tanto que las espigas con Crystal® disminuyeron su respiración hasta el quinto día de evaluación, y el último día incrementó significativamente. Esta situación no ocurrió en las espigas con AAsc, las cuales mantuvieron constante su respiración (Figura 2B). ^{Reid y Jiang (2012)} indican que la vida poscosecha de flores de narciso es menor cuando la respiración incrementa, lo que ocurrió en las espigas testigo y con aplicación de Sac + AC + HQC.

Figura 2 Cambios en la respiración, azúcares totales y actividad específica de la superóxido dismutasa (SOD) en dos variedades nativas de nardo: ‘Mexicano’ (A, C, E y G) y ‘Perla’ (B, D, F y H), sometidas a diferentes soluciones conservadoras (Crystal®, sacarosa [Sac] + ácido cítrico [AC] + hidroxiquinoleína citrato [HQC] o ácido ascórbico). Cada punto representa la media de ocho observaciones ± su error estándar. Las notaciones ns, *, ** y *** indican significancia estadística con 0.05, 0.01 y <0.0001, respectivamente. Números en negro indican diferencia mínima significativa (Tukey, P ≤ 0.05). 

En la concentración de azúcares totales no se detectaron diferencias significativas entre los tratamientos aplicados a nardo ‘Mexicano’ al inicio del experimento, pero a partir del tercer día las espigas tratadas con Sac + AC + HQC y AAsc tuvieron la mayor concentración de azúcares, y las tratadas con Crystal® mantuvieron la menor concentración (Figura 2C). En el quinto día, las espigas con AAsc y las testigo se mantuvieron con los valores mayores, y las espigas con Sac + AC + HQC y Crysal® con los valores menores (Figura 2C). En ‘Perla’, sólo se encontraron diferencias entre tratamientos al tercer día, donde las espigas tratadas con Sac + AC + HQC mostraron el menor contenido de azúcares. En los días posteriores, no se detectaron diferencias entre tratamientos, y la tendencia en todos los tratamientos fue decreciente.

^{Arief-Zargar (2016)} señala que durante la senescencia de las flores el contenido de los azúcares en los pétalos disminuye, ya que son utilizados como sustratos de la respiración. No obstante, en el presente trabajo no se observó dicha asociación, ya que en ‘Mexicano’ las espigas que tuvieron la menor respiración también mostraron la menor concentración de azúcares, que fueron las tratadas con Sac + AC + HQC. En contraste, las espigas de ‘Perla’ no mostraron diferencias en el contenido de azúcares totales, mientras que en respiración se observaron claras diferencias entre tratamientos (Figura 2B). La falta de asociación entre los azúcares y la respiración se atribuye, probablemente, a que los azúcares se evaluaron en flores de la parte media de la espiga y la respiración fue de la espiga completa.

En ‘Mexicano’, la actividad específica de la SOD al inicio del experimento fue mayor en las espigas con Sac + AC + HQC, y la menor actividad fue en las espigas con AAsc. En los días posteriores, no se detectaron diferencias entre tratamientos, aunque se observó que las espigas con soluciones conservadoras incrementaron su actividad en menor proporción que las espigas testigo, lo cual fue más evidente el quinto día de evaluación (Figura 2 E). En ‘Perla’, se observaron diferencias entre tratamientos en cuanto a la actividad específica de la SOD, donde las espigas testigo mantuvieron su actividad constante durante 5 días, y el séptimo día presentaron una disminución drástica. Por su parte, las espigas con soluciones conservadoras iniciaron con baja actividad y alcanzaron su máximo al tercero, quinto y séptimo día cuando fueron tratadas con Crystal®, AAsc o Sac + AC + HQC, respectivamente. Al final del periodo, dicha actividad disminuyó drásticamente en todos los tratamientos, a excepción de las espigas tratadas con Sac + AC + HQC (Figura 2F).

^{Saeed et al. (2014)} sugieren que una mayor actividad de la SOD en poscosecha de flores de corte se asocia con un retraso en la senescencia y, por lo tanto, mantiene una calidad adecuada por más tiempo, lo que genera una mayor vida poscosecha. Este comportamiento se observó principalmente en las espigas de ‘Perla’ tratadas con Crystal® y AAsc.

Conclusiones

Las soluciones conservadoras en las variedades de nardo ‘Mexicano’ y ‘Perla’ favorecen el consumo de agua, la apertura de flores y la actividad de la SOD; además, mantienen el peso fresco, la apariencia agradable por más tiempo y disminuyen la respiración. No se detectó efecto de las soluciones conservadoras en el contenido de azúcares. Las soluciones con Crystal® o AAsc mostraron un efecto benéfico en el comportamiento poscosecha de las espigas de nardo ‘Mexicano’ y ‘Perla’, que puede ser considerado para desarrollar tecnologías de manejo poscosecha.