Introducción

El orégano (Lippia graveolens Kunth) es una especie nativa de las zonas áridas de México, donde se recolecta y se comercializa para generar ingresos a las familias de esas zonas; es una especie aromática con gran potencial económico, ya que tiene demanda a nivel internacional por sus usos en la industria farmacéutica y cosmética (^{Pascual, Slowing, Carretero, Sánchez, & Villar, 2001}; ^{Silva, 2003}). El orégano se ha estudiado y probado como conservador de alimentos, anticancerígeno, plaguicida y antimicrobiano (^{Machado et al., 2010}; ^{Martínez-Rocha, Puga, Hernández-Sandoval, Loarca- Piña, & Mendoza, 2008}; ^{Zheng & Wang, 2001}). También se ha estudiado la composición química del tallo por su contenido importante de flavonoides que pueden contribuir al desarrollo de nuevos compuestos con aplicaciones en la agronomía y medicina (^{González-Güereca, Soto, Kite, & Martínez, 2007}), lo cual le da aún más importancia a la planta.

México es uno de los países con mayor producción de orégano seco en el mundo; en ^{Huerta, 1997}, reportó que la producción era de 4,000 t∙año-1 y que el país era uno de los mayores exportadores, superado sólo por Turquía. Debido a que la especie se recolecta en áreas naturales, no se lleva un control en las estadísticas de la producción y no se cuenta con datos más recientes. No obstante, el orégano mexicano es considerado el de más alta calidad, debido a la composición química de sus aceites esenciales, lo cual ha impulsado la comercialización en los últimos años (^{Comisión Nacional Forestal [CONAFOR], 2007}). La mayor parte de la producción de orégano en México proviene de poblaciones silvestres ubicadas en zonas con precipitación baja y temperaturas altas. Esto aunado a que la recolección se hace durante la época de floración hace que la tasa de regeneración natural de la planta sea lenta. Por esto, se requiere de programas de reforestación que garanticen la permanencia del orégano en su hábitat natural.

El orégano puede ser un cultivo alternativo en las regiones con baja disponibilidad de agua para riego. Por ser una especie nativa de las regiones áridas, los requerimientos hídricos son bajos (^{Villa-Castorena, Catalán-Valencia, Arreola-Ávila, Inzunza-Ibarra, & Román-Lopez, 2011}); sin embargo, la siembra de orégano en campo de forma directa tiene baja probabilidad de éxito, debido principalmente a que la semilla es muy pequeña, tiene bajo porcentaje de germinación y la plántula en sus etapas tempranas es muy frágil, para soportar las prácticas de cultivo. Esto trae como consecuencia una baja densidad de población, lo cual se refleja en una cosecha reducida. La producción de plántula de orégano en forma masiva en vivero es una opción para obtener plantas de buena calidad con un sistema radicular bien desarrollado y tallos fuertes.

Esto permite que la planta tenga una buena adaptación y establecimiento en campo cuando sea trasplantada.

El sustrato y el tipo de contenedor son dos factores muy importantes en la producción de plántulas en vivero. Estos definen el crecimiento y desarrollo tanto de la raíz como de la parte aérea. Al seleccionar un sustrato debe tenerse en cuenta sus propiedades físicas y químicas, las cuales determinan la disponibilidad de agua y oxígeno, la movilidad del agua, la facilidad de penetración de la raíz y la absorción de nutrientes (^{Abad, Martínez, & Martínez, 1993}; ^{Cremades, 2005}). Un sustrato debe propiciar un buen crecimiento de las plántulas dentro del espacio limitado del contenedor. Es por esto que los estudios referentes a la respuesta del crecimiento de las plántulas de orégano para trasplante a diferentes tipos de sustrato y contenedor son relevantes; además, el conocimiento de estos factores ayuda a realizar una mejor planeación del vivero, ya que se puede determinar el espacio necesario para la producción de plántulas, así como los costos necesarios para esta actividad. Tomando en cuenta lo anterior, en el presente trabajo se evaluó el efecto del tipo de sustrato y contenedor en el crecimiento y calidad de plántulas de orégano, cultivadas bajo condiciones de vivero.

Materiales y métodos

El trabajo se desarrolló en un invernadero con cubierta de policarbonato en sus lados lateral y frontal y polietileno en el techo, así como extractores para ventilación. El invernadero está ubicado a 25° 30’ LN - 103° 42’ LO y a una altura de 1,135 m, en el campo experimental del CENID RASPA INIFAP en Gómez Palacio, Durango. La temperatura máxima y mínima dentro del invernadero variaron desde 28.3 a 39.3 °C y 15.6 a 22.5 °C, respectivamente, mientras que la humedad relativa osciló entre 32 y 85 %.

Se evaluaron cinco sustratos y cinco contenedores para la producción de orégano en vivero. Los sustratos fueron: S1 = mezcla comercial BM2 (turba + perlita + vermiculita, 80:10:10), S2 = mezcla BM2 + arena de río (1:1), S3 = mezcla de BM2 + arena de río (1.5:1), S4 = mezcla de BM2 + vermiculita + perlita (1:1:1) y S5 = mezcla de composta + arena (1.5:1); las proporciones se hicieron con base en el volumen. La densidad aparente y la capacidad de retención de humedad de cada sustrato se presentan en el Cuadro 1. Los contenedores evaluados fueron: charolas de poliestireno expandido (PE) de 200 (CH200), 128 (CH128) y 72 (CH72) cavidades, con volumen de 16, 28 y 74 cm3, respectivamente; vaso de PE de 250 cm3; y bolsa de plástico negro (PN) calibre 150 μm de 10 x 15 cm y volumen de 712 cm3.

Se usó un diseño experimental de bloques al azar con arreglo factorial 5 x 5, con cuatro repeticiones por tratamiento. El factor A comprendió a los tipos de sustratos mientras que el factor B incluyó al tipo de contenedor. La combinación de ambos factores dio un total de 25 tratamientos (Cuadro 2). La parcela experimental consistió en dos charolas de cada tipo (200, 128 y 72 cavidades), 10 vasos y 10 bolsas.

Las semillas se desinfectaron con una solución clorada al 5 % por 60 s, se enjuagaron con agua destilada y después se trataron con una solución de ácido giberélico a una concentración de 250 mg∙L-1 de agua y un tiempo de inmersión de 12 h. Previo a la siembra, los sustratos se prepararon en las proporciones correspondientes a cada tratamiento, se mezclaron con una pala y se humedecieron. Posteriormente, los contenedores se llenaron y se sembraron tres semillas en cada cavidad; después de la emergencia, las plántulas se desahijaron dejando sólo una.

Las plántulas se regaron con agua hasta la aparición de las primeras hojas verdaderas. Desde ese momento y hasta los 45 días después de la emergencia (dde), las plántulas se regaron con una solución nutrimental a una concentración de 20-40-30 mg∙L-1 de N, P y K, respectivamente. Después de los 45 y hasta los 90 dde, la concentración de la solución se cambió a 60- 80-90. Esta solución se preparó con agua de pozo y fertilizantes solubles. La aportación de nutrientes del agua de riego se consideró en la formulación de la solución nutrimental. La solución nutrimental se preparó con los fertilizantes comerciales monofosfato de potasio, nitrato de potasio y nitrato de amonio. También se usó ácido fosfórico para regular el pH de la solución a 6.5. Los riegos se hicieron cada dos o tres días según la edad de la planta y las condiciones de humedad en las charolas, lo cual estuvo influenciado por la temperatura y humedad en el invernadero; los riegos se aplicaron con un sistema de microaspersión tipo nebulizador.

A los 110 días después de la siembra (dds), cinco plantas se seleccionaron en cada tratamiento y repetición, para medir la altura de la planta, el área foliar y el diámetro del tallo. La altura se midió desde la base del tallo hasta el punto de crecimiento de la planta con una regla graduada, y el diámetro se registró en la base del tallo con un vernier digital (Auto Tec, Charlottre, NC, USA). Todas las hojas de cada planta (sin pecíolo) se cortaron y se midieron con un integrador de área foliar (LI-COR 3500, Lincoln, Nebraska, USA). Además de lo anterior, el peso seco de la parte aérea (vástago) y peso seco de la raíz se obtuvieron mediante el secado de las hojas (incluyendo el pecíolo), tallo y raíz en estufa de aire forzado a 68 °C por 48 h. La suma del peso seco de las hojas y del tallo dio como resultado el peso seco del vástago. Los índices morfológicos relación entre el peso seco de la parte aérea y peso seco de raíces, y el índice de calidad de Dickson (ICD) también se calcularon (^{Olivo & Buduba, 2006}). Este último se estimó mediante la siguiente relación:

ICD= PTAPD+PSVPSR

Los datos se analizaron mediante un análisis de varianza acorde con el diseño experimental usado. Cuando los factores estudiados y la interacción de ellos fueron significativos (P ≤ 0.05), se hizo la comparación de medias mediante la prueba de Tukey (P = 0.05). Los análisis se hicieron con el paquete estadístico SAS versión 9.0 (^{Statistical Analysis System [SAS Institute], 2002}).

Resultados y discusión

Altura de la planta Lippia graveolens

El análisis de varianza de la altura de la planta (AP) indicó que los efectos del tipo de contenedor, sustrato y la interacción de ambos factores fueron significativos (P ≤ 0.01). La Figura 1 muestra la comparación gráfica en la altura de la planta, como resultado de la interacción sustrato-contenedor. Las plantas más altas, en cada sustrato estudiado, se produjeron en el contenedor en bolsa, excepto en el S5. Las combinaciones bolsa con S1 y S2 tuvieron un efecto estadísticamente similar en la AP; en promedio, las plantas midieron 23.4 cm y fueron superiores al resto de las combinaciones. El contenedor CH128 en combinación con todos los sustratos, excepto con el S1, produjo las plantas más pequeñas con sólo 25 % de la AP de las mejores combinaciones.

Figura 1 Interacción del sustrato y tipo de contenedor en la altura de la planta de orégano (Lippia graveolens) a los 110 días después de la siembra. S1 = Mezcla BM2 (turba+ perlita + vermiculita [80:10:10]), S2 = BM2 + arena (1:1), S3 = BM2 + arena (1.5:1), S4 = BM2 + perlita + vermiculita (1:1:1) y S5 = Mezcla de composta + arena (1.5:1). Contenedores: Charolas de poliestireno expandido (PE) de 200 (CH200), 128 (CH128) y 72 (CH72) cavidades, con volumen de 16, 28 y 74 cm3, respectivamente; vaso de PE de 250 cm3; y bolsa de plástico negro, calibre 150 μm de 10 x 15 cm y volumen de 712 cm3. Barras con letra distinta indican diferencia estadística entre medias de acuerdo con la prueba de Tukey (P = 0.05). 

Área foliar de Lippia graveolens

El área foliar (AF) del orégano fue afectado significativamente (P ≤ 0.01) por el sustrato, tipo de contenedor e interacción de ambos factores. La Figura 2 muestra que la bolsa mostró mayor AF que los demás Bar-Yosef, & Kafkafi, 1990), tomate (^{Kemble, Davis, Gardner, & Sanders, 1994}) y sandía (^{Liu & Latimer, 1995}). Las plantas con valores altos de diámetro del tallo son mejores que aquéllas que tienen tallos menos gruesos, ya que un diámetro mayor reduce daños de acame por efecto del viento y, en consecuencia, tienen mayor adaptación al momento del trasplante.

Figure 2 Interacción del sustrato y tipo de contenedor en el área foliar de orégano (Lippia graveolens) a los 110 días después de la siembra. S1 = Mezcla BM2 (turba + perlita + vermiculita [80:10:10]), S2 = BM2 + arena (1:1), S3 = BM2 + arena (1.5:1), S4 = BM2 + perlita + vermiculita (1:1:1) y S5 = Mezcla de composta + arena (1.5:1). Contenedores: Charolas de poliestireno expandido (PE) de 200 (CH200), 128 (CH128) y 72 (CH72) cavidades, con volumen de 16, 28 y 74 cm3, respectivamente; vaso de PE de 250 cm3; y bolsa de plástico negro de 10 x 15 cm y volumen de 712 cm3. Barras con letra distinta indican diferencia estadística entre medias de acuerdo con la prueba de Tukey (P = 0.05). 

Los sustratos S1 y S5, los cuales tuvieron mayor cantidad de materia orgánica, produjeron un diámetro de tallo promedio de 1.5 mm, 19 % superior al promedio observado en los sustratos S2 y S4, y 30 % superior al sustrato S3 (Cuadro 3).

Cuadro 3 Diámetro del tallo de orégano (Lippia graveolens) en cada sustrato y contenedor evaluado a los 110 días después de la siembra. 

Sustrato	Diámetro de tallo (mm)	Contenedor	Diámetro del tallo (mm)
Mezcla BM2 (S1)	1.55 a	CH200	0.96 d
Mezcla BM2 + Arena 1:1(S2)	1.27 bc	CH128	1.00 d
Mezcla BM2 + Arena 1.5:1(S3)	1.15 c	CH72	1.21 c
Mezcla BM2 + vermiculita + perlita 1:1:1 (S4)	1.25 bc	VASO	1.42 b
Composta + Arena 1.5:1(S5)	1.45 ab	BOLSA	2.08 a

BM2: Turba + perlita + vermiculita (80:10:10). Contenedores: Charolas de poliestireno expandido (PE) de 200 (CH200), 128 (CH128) y 72 (CH72) cavidades, con volumen de 16, 28 y 74 cm3, respectivamente; vaso de PE de 250 cm3; y bolsa de plástico negro, calibre 150 μm de 10 x 15 cm y volumen de 712 cm3. Medias seguidas con la misma letra dentro de columnas no son estadísticamente diferentes de acuerdo con la prueba de Tukey (P = 0.05).

Conclusiones

Los sustratos y tipos de contenedores evaluados afectaron de manera definitiva el crecimiento y calidad de la planta de orégano. La combinación bolsa y sustrato S1 (BM2 = Turba, perlita y vermiculita [80:10:10]) produjo plantas de mayor altura, área foliar, peso seco del vástago y peso seco de raíz. Los sustratos S1 y S5 (mezcla de composta con arena, 1.5:1) promovieron tallos más gruesos, al igual que el contenedor bolsa de plástico negro (calibre 150 μm de 10 x 15 cm). También el sustrato S1 y el contenedor bolsa produjeron el índice de calidad de Dickson más alto. Por otra parte, los contenedores de mayor volumen (CH128, vaso y bolsa) mostraron la mayor relación del peso seco del vástago y peso seco de la raíz. Con la información generada y el conocimiento de la cantidad de plantas requeridas es posible definir las dimensiones del vivero, así como las prácticas de manejo para la producción masiva de plantas, ya sea para reforestar áreas naturales o para el establecimiento como cultivo.