SciELO - Scientific Electronic Library Online

 
vol.7 número2Tipología de productores de uva (Vitis vinifera L.) en Aguascalientes, MéxicoEvaluación inicial de algunos aspectos de calidad del fruto de aguacate ‘Hass’ producido en tres regiones de México índice de autoresíndice de assuntospesquisa de artigos
Home Pagelista alfabética de periódicos  

Serviços Personalizados

Journal

Artigo

Indicadores

Links relacionados

  • Não possue artigos similaresSimilares em SciELO

Compartilhar


Revista mexicana de ciencias agrícolas

versão impressa ISSN 2007-0934

Rev. Mex. Cienc. Agríc vol.7 no.2 Texcoco Fev./Mar. 2016

 

Artículos

Prohexadiona de calcio reduce crecimiento vegetativo e incrementa brotación floral en mango ‘Ataulfo’

María Hilda Pérez Barraza1 

Tomás Osuna Enciso2 

Edilberto Avitia García3 

María Alejandra Gutiérrez Espinosa4 

María de Jesús Santiago Cruz5 

Homero Ramírez6 

Raquel Cano Medrano4  § 

1Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias. Carretera Internacional México-Nogales, km 6, Ent. a Santiago Ixc. Santiago Ixcuintla, Nayarit. C. P. 63300. Tel: 323 2352031. (perez.mariahilda@inifap.gob.mx).

2Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo. Carretera El Dorado, km 5.5, Col. Campo El Diez, Culiacán Sinaloa. C.P. 80129. (tosuna@ciad.edu.mx).

3Universidad Autónoma de Chapingo. Depto. de Fitotecnia. Carretera Fed. México-Texcoco. Chapingo km 38.5, Estado de México. C. P. 56230.

4Colegio de Postgraduados- RGP-Fruticultura. Carretera México-Texcoco, km 36.5, Montecillo, Estado de México. C. P. 56230. Tel. 595 9520200. (alexge@colpos.mx)

5Colegio de Postgraduados Programa-Economía. Carretera México-Texcoco km 36.5, Montecillo, Estado de México. C. P. 56230. Tel. 595 9520200. (ecomjsc@colpos.mx).

6Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro. Calzada Antonio Narro 1923. Buenavista. Saltillo. Coahuila C.P. 25315. México Teléfono: 844 4110306. (hrr_homero@hotmail.com).


Resumen

La producción irregular en mango se atribuye a variación en la floración. Prohexadiona de calcio (P-Ca) reduce crecimiento vegetativo y favorece floración en frutales templados como manzano y subtropicales como aguacate. En mango ‘Ataulfo’, no hay información al respecto. El objetivo fue determinar dosis, época y número de aplicación de P-Ca en mango ‘Ataulfo’ con la finalidad de asegurar floración y encontrar un sustituto para paclobutrazol (PBZ). El estudio se realizó de 2012 a 2014 en Tepic y San Blas Nayarit, en ambos años, los árboles fueron podados después de cosecha. Experimento 1 y 2: P-Ca (150, 250 y 500 mg L-1) a 0+10+20+30 días después de la poda (ddp) y 30+45+60 ddp, respectivamente. Experimento 3: P-Ca (500 mg L-1) una, dos o tres aplicaciones a 0, 0+10 y 0+10+20 ddp y Experimento 4: P-Ca (150 y 500 mg L-1) a 30+45+60 ddp y 1 500 mg L-1 en una sola aplicación (1 x) 30 ddp. En todos los experimentos se incluyó un tratamiento estándar de PBZ (2 500 mg L-1) 30 ddp y un testigo (agua más surfactante). El diseño fue completamente al azar, 6 repeticiones, un árbol como unidad experimental. En Experimento 2, se logró reducir un 35% el crecimiento vegetativo con P-Ca 500 mg L-1 (3 x) entre 30-60 ddp. Esta misma dosis de P-Ca (500 mg L-1) (3 x) a 30, 45 y 60 ddp, o una sola aplicación (1 500 mg L-1) 30 ddp logró igual el efecto de PBZ en adelanto (20-35 días) y porcentaje de floración. En los dos ciclos, ambos productos mejoraron amarre y producción de fruto. Con base a los resultados obtenidos se considera que P-Ca pudiera ser un sustituto para PBZ en mango ‘Ataulfo’ para asegurar floración y producciones regulares año con año.

Palabras clave: Mangifera indica L.; bioreguladores del crecimiento; época de floración; floración irregular; inhibidores de giberelinas

Abstract

The irregular in mango production is attributed to variation in bloom. Prohexadione calcium (P-Ca) reduces vegetative growth and promotes flowering in temperate and subtropical fruits such as apple and avocado. In mango 'Ataulfo', no information about. The objective was to determine dosage, time and application number P-Ca in mango 'Ataulfo' in order to ensure flowering and find a replacement for paclobutrazol (PBZ). The study was conducted in 2012-2014 in Tepic and San Blas Nayarit, in both years, the trees were pruned after harvest. Experiment 1 and 2: P-Ca (150, 250 and 500 mg L-1) 0 + 10 + 20 + 30 days after pruning (ddp) and 30 + 45 + 60 ddp, respectively. Experiment 3: P-Ca (500 mg L-1) one, two or three applications to 0, 0 and 0 + 10 + 10 + 20 ddp and Experiment 4: P-Ca (150 and 500 mg L-1) 30 + 45 + 60 ddp and 1500 mg L-1 in one application (1 x) 30 ddp. In all experiments a standard treatment of PBZ (2500 mg L-1) 30 ddp and control (water plus surfactant) was included. The design was completely randomized, 6 replicates a tree as experimental unit. In Experiment 2, it was reduced by 35% vegetative growth with P-Ca 500 mg L-1 (3 x) 30-60 ddp. This same dose of P-Ca (500 mg L-1) (3 x) at 30, 45 and 60 ddp, or one application (1 500 mg L-1) 30 ddp achieved as the effect of PBZ in advance (20 -35 days) and percentage of flowering. In both cycles, both products improved mooring and fruit production. Based on the results obtained it is considered that P-Ca could be a substitute for PBZ in mango 'Ataulfo' to ensure flowering and regular productions each year.

Keywords: Mangifera indica L.; bioregulators of growth; irregular flowering; inhibitors gibberellins; flowering season

Introducción

La producción irregular en mango se atribuye a variación en floración y en zonas subtropicales a retención del fruto (Whiley, 1993). La variación en la cantidad de flores puede variar de año a año, entre árboles del mismo año y entre brotes en el mismo árbol. Aunque el factor aceptado para inducir floración es temperatura (≈15-20/10-15) no garantiza que ocurra iniciación floral debido a las interacciones con el crecimiento vegetativo (Wilkie et al., 2008). El crecimiento vegetativo en mango ocurre por flujos, el número de los cuales aumenta conforme aumenta temperatura (Whiley et al., 1989; Davenport, 2007). La época de desarrollo del flujo es importante pues tanto desarrollo vegetativo como reproductivo ocurren solo en flujos maduros. La época de desarrollo como la sincronización de los mismos se puede lograr con poda en la época adecuada, lo cual intensifica la floración (Yeshitela et al., 2005; Vázquez et al., 2009a).

Para la maduración del flujo se ha dependido fuertemente del reguladores de crecimiento como placlobutrazol (Singh y Bhattacherjee, 2005; Rebolledo et al., 2008; Arzani et al., 2009; Vázquez et al., 2009b; Pérez-Barraza et al., 2011; Martínez-Fuentes et al., 2013; Samani, 2014), inhibidor de las enzimas de biosíntesis de giberelinas (GAs) en la etapa II (Dalziel and Lawrence, 1984; Hedden and Graebe, 1985; Redemarcher, 2000) y prohexadiona de calcio (P-Ca). P-Ca, tiene una estructura parecida al ácido 2-oxoglutárico, el sustrato de dioxigenasas, que catalizan las reacciones de la etapa III de la formación de Gas.

Específicamente, P-Ca bloquea GA20 3β-hidroxilasa inhibiendo la formación de giberelinas biológicamente activas y formando precursores inactivos (Rademacher, 2000; Rademacher et al., 2006). P-Ca pudiera también actuar como inhibidor de la síntesis de etileno (Rademacher et al., 2006; Rademacher, 2014), lo cual pudiera favorecer amarre de fruto al evitar la abscisión. Interfiere también en el metabolismo de flavonoides (Rademacher, 2014).

En frutales templados caducifolios, P-Ca se ha aplicado en dosis de 50 a 250 mg L-1 simples o repetidas durante y después de floración (2 y 4 aplicaciones, a intervalos de 14-20 días) con resultados positivos en reducción de la longitud del brote (18-50%) (Costa et al., 2006; Ramírez et al., 2006; Cline et al., 2008; Kiessling-Davison et al., 2008; Einhorn et al., 2014), incremento en amarre y producción de fruto (21-63, 22%, respectivamente) en manzano ‘Golden Delicious/MM106’ (Ramírez et al., 2006) y producción en pera ‘William’ y manzano ‘Fuji’, 50-40 %, respectivamente (Costa et al., 2006). Aunque en pera ‘Blanquilla’ (Asin et al., 2007) y ‘D‘Anjou’ (Einhorn et al., 2014) no se encontró efecto en intensidad de floración y rendimiento.

En frutales tropicales y subtropicales aparentemente la respuesta a P-Ca varía con la especie y cultivar. En aguacate ‘Hass’, se obtuvo una disminución en el crecimiento vegetativo de brotes del flujo de primavera con P-Ca 1 y 1.4% (10 - 20%, respectivamente) al aplicarlo en plena floración (90%), pero no hubo efecto en el amarre de frutos (Mandemaker et al., 2005). En limón ‘Eureka’ con una aplicación de 250 y 500 mg L-1 de P-Ca un día después de la poda (mediados de mayo), se redujo 30% la longitud de los brotes, mientras que en naranjo ‘Washington Navel’ no hubo el mismo efecto (Garner et al., 2010). En limón, 500 mg L-1 de P-Ca redujo la producción total de fruto (kg y núm. de frutos árbol-1) así como la producción de frutos de tamaño comercial. En aguacate ‘Hass’ encontraron un incremento de 26% en amarre de frutos con tres aplicaciones de 250 mg L-1 de P-Ca durante floración y amarre; mientras que dos aplicaciones de 150 mg L-1 en floración incrementó la producción acumulada de frutos de tamaño comercial sin reducir la producción total de fruta con relación al testigo.

En mango Kent, la combinación de P-Ca (1.5 g de i.a.·planta-1) con PBZ (3.0 g i.a.·planta-1) aplicado 40 días después de la poda fue efectiva para reducir crecimiento vegetativo en 67 % pero no tuvo efecto en floración o producción (Do Carmo-Mouco et al., 2011). En mango ‘BaladiAbuZaid’ y ‘BaladiBurai’ se adelantó floración 60 días con PBZ y 40 con P-Ca aplicado después de cosecha (18 de julio) (Abdel Rahim et al., 2011).

Dosis de P-Ca entre 75 - 500 mgL-1 tienen respuestas diferentes en crecimiento vegetativo, amarre de frutos, floración y rendimiento. La respuesta depende de la especie (clima templado o tropical), número de aplicaciones y etapa fenológica. Por lo anterior, el objetivo del estudio fue determinar dosis, número y época de aplicación de P-Ca para reducir el crecimiento del brote, adelantar y/o uniformizar brotación floral y aumentar producción de fruto en mango ‘Ataulfo’

Materiales y métodos

Los estudios se realizaron en los ciclos de producción 2012-2013 y 2013-2014 en huertos comerciales de mango ‘Ataulfo’/criollo regional, ubicados en los municipios de Tepic y San Blas, Nayarit. Los huertos se manejaron con riego por gravedad (uno cada mes a partir de febrero hasta abril), poda (despunte de aproximadamente 50 cm) y fertilización con 2 kg de Triple 17 por árbol al inicio de la temporada de lluvias (junio) y 4 kg de fertilizante orgánico (gallinaza) por árbol aplicado en septiembre (huertos San Blas). En el huerto de Tepic la fertilización fue con 3 kg de Triple 17 después de cosecha (julio) y 4 kg de fertilizante orgánico en septiembre.

En 2012-2013 (año on), se establecieron tres experimentos para determinar dosis, número y época de aplicaciones. En los tres experimentos los árboles fueron podados después de cosecha (23 de julio de 2012). Experimento 1 (E1), se evaluaron las dosis de 150, 250 y 500 mg L-1 de P-Ca, cada dosis en cuatro aplicaciones, 4 x, 0+10+20+30 días después de la poda (ddp). Se usaron árboles de 10 años de edad establecidos a 7 x 5 m. Experimento 2 (E2), se evaluaron las dosis anteriores y se redujo el número de aplicaciones a tres. Las aplicaciones iniciaron 30 ddp (brotes de 5-10 cm de longitud) y posteriormente a 45 y 60 días. La edad de los árboles fue de 8 años establecidos a 5 x 5 m. Experimento 3 (E3), se evaluó una sola dosis de P-Ca (500 mg L-1) aplicada, 0, 1+10 y 1+10+20 ddp. La edad de los árboles fue de 15 años establecidos a 9 x 9 m.

En 2013-2014 (año off), se estableció el experimento 4 (E4) con base a los resultado del ciclo anterior. Los tratamientos fueron 150, 500 (3 x, 30+45+60 ddp) y 1 500 (1 x, 30 ddp) mg L-1 de P-Ca. Los árboles fueron de 15 años de edad establecidos a 9 x 9 m y se podaron el 25 julio de 2013.

En todos los experimentos se incluyó el tratamiento estándar de PBZ 2 500 mg L-1; (1X, 30 ddp) y un testigo. Las soluciones de P-Ca (Apogee®) se prepararon con agua corriente y se usó 1 ml L-1 de surfactante Inex®. P-Ca se aplicó al follaje a punto de goteo mediante bomba aspersora motorizadas. PBZ (Austar®) fue aplicado al suelo, bañando el tallo principal a una altura de 30 cm de la base del suelo. Los árboles testigo fueron asperjados con agua + surfactante.

En 2012 las condiciones ambientales de septiembre a diciembre fueron las siguientes: temperatura máxima y mínima mensual de ≈32 y 22 °C, similar en los cuatro meses. La precipitación fue de 355 y 95 mm durante septiembre y primera quincena de octubre, respectivamente, no se presentaron lluvias en los meses de noviembre y diciembre. Para 2013, de septiembre a diciembre, la temperatura máxima promedio fue de 32, 31.6, 33 y 29.7, respectivamente y mínima de 24, 23, 25 y 27 °C. La precipitación fue de 352, 117, 141 y 102 mm mensuales, respectivamente.

En todos los experimentos se evaluaron las siguientes variables:

Longitud de brote. Se seleccionaron cuatro brotes vegetativos (BV) por árbol emergidos después de la poda y se midió la longitud de cada flujo de crecimiento (dos flujos) mediante un vernier digital (Control Company). El crecimiento total del BV fue la suma de dos flujos.

Brotación floral. Se contabilizaron los días transcurridos desde la última aplicación de P-Ca (23 de septiembre 2012; 11 de septiembre 2013) hasta el inicio de la floración (5% de floración en la copa del árbol; entre 3 - 28 de enero 2013; 28 dic 2013 - 31 enero 2014) y plena floración (80% de floración; entre 19 enero - 25 febrero 2013; 24 de enero - 28 febrero 2014). El porcentaje de floración se evaluó registrando semanalmente el porcentaje de inflorescencias que cubrían la copa del árbol, a partir del 5% hasta plena floración.

Número de frutos. Para evaluar el número de frutos se seleccionaron cuatro inflorescencias por árbol y se contabilizó el número de frutos polinizados (POL) y partenocárpicos (PRT) de 1-2 cm de diámetro (tamaño canica) a los 45 días después de floración (DDF), período en el que pasó la mayor caída de fruto, y el número de frutos inflorescencia-1 hasta madurez fisiológica (15 días antes de cosecha).

Producción de fruto. La producción se evaluó al momento de la cosecha, registrando los kg de fruta árbol-1; se utilizó una báscula digital marca Ohaus.

El diseño experimental fue completamente al azar en todos los experimentos y ciclo productivos. En cada experimento se evaluaron 5 tratamientos con seis repeticiones y un árbol como parcela útil. Se efectuó análisis de varianza de los resultados y se usó la prueba de Tukey (p≤ 0.05) para comparación de medias. Se utilizó el programa SAS versión 9.2.

Resultados

Ciclo 2012-2013

Se registraron dos flujos de crecimiento en todos los tratamientos incluyendo el testigo. En el primer flujo (del 8 al 30 de agosto) de E1, P-Ca redujo el crecimiento vegetativo entre 18, 22 y 29% con 150, 250 y 500 m L-1, respecto al tratamiento con PBZ y el testigo. En el segundo flujo (del 28 de septiembre al 18 de octubre) no hubo diferencias entre los tratamientos y el testigo, a excepción de 250 mg L-1 de P-Ca que redujo 13 % (Figura 1A).

Medias con la misma letra dentro de columnas no son significativamente diferentes. Tukey p≤ 0.05. Ciclo 2012-2013.

Figura 1 Longitud del brote vegetativo emergido después de poda (23 de julio) en árboles de mango ‘Ataulfo’. A) P-Ca cuatro aplicaciones (4 x) de cada dosis (mg L-1) a 0+10+20+30 ddp. B) P-Ca 3 x de cada dosis a 30+45+60 ddp. C) P-Ca (500 mg L-1) 1x a 0 ddp, 2x a 0+10 y 3x a 0+10+20 días. PBZ (2 500 mg L-1), 1x a 30 ddp y testigo. 

El crecimiento total fue similar entre los tratamientos con P-Ca (59, 56 y 56 cm) comparado con PBZ (63 cm) pero fue de 12-17% menor respecto al testigo (67 cm). En E2, P-Ca redujo el crecimiento vegetativo entre 18 a 37 % en el primer flujo (10 - 31 agosto) y de 21 a 44% en el segundo (28 sep. - 31 oct.), pero solo P-Ca 500 mgL-1 redujo un 35% en la longitud total (Figura 1B). En E3, no se encontraron diferencias entre tratamientos y testigo en la longitud total (Figura 1 C).

En un año “on”, se encontraron diferencias significativas en los días a plena floración (Pr= 0.0278) y porcentaje de la misma (Pr= <0.0001) en E1, pero en E2 y E3 no hubo diferencia entre tratamientos. En E1, plena floración se presentó de ≈186 a 213 días después de la poda (ddp), solo los tratamientos 500 mg L-1 de P-Ca (4 x, 0+10+20+30 ddp) y 2 500 mg L-1 de PBZ (1 x, 30 ddp) fueron diferentes al testigo (Cuadro 1). En el mismo Cuadro se observa que el porcentaje de floración vario de 39 a 80% en E1, de 81 a 87 en E2 y de 79 a 93 en E3.

Cuadro 1 Días a plena brotación floral, adelanto y porcentaje de floración en árboles de mango ‘Ataulfo’ con P-Ca. Ciclo 2012-2013. 

Tratamiento Plena brotación floral (ddp)z Porcentaje (%)
Ely E2 E3 El E2 E3
P-Ca 150 213 ax 183 a 176 a 68 ab 80 a 79 a
P-Ca250 220 a 185 a 174 a 74 ab 80 a 86 a
P-Ca500 192 b 180a 175 a 66 b 83 a 93 a
PBZ 2500 186b 182a 170 a 80 a 87 a 91a
Testigo 213a 189a 176 a 39c 81a 83 a
CV 8.8 5.7 12.1 12.7 17.4 10.4

zPlena brotación floral, ≥ 80%. Días después de la poda (ddp); yP-Ca (mg L-1), 4 x a 0+10+20+30 ddp en E1; 3 x a 30+45+60 ddp en E2 y P-Ca 500 mg L-1, 1 (0 ddp), 2 (0+10) y 3 x (0+10+20) en E3; PBZ (mg L-1), 1 x a 30 ddp; xMedias con la misma letra dentro de columnas no son significativamente diferentes. Tukey p≤ 0.05.

Durante el año “on” solo en E3, se encontraron diferencias significativas en número inicial de frutos polinizados (POL) y partenocárpicos (PRT) (Pr= <0.0001, 0.0171, respectivamente) y número final de frutos POL (Pr= <0.0001). El número inicial de frutos POL varió de 1.6 a 2.8 frutos inflorescencia-1, mientras que el de frutos PRT de aproximadamente 4 - 6 frutos. En número final de frutos POL fue de 1.6 a 2 frutos inflorescencia-1 (Cuadro 2).

Cuadro 2 Número inicial de frutos POL y PRT y amarre final de POL en árboles de mango ‘Ataulfo’ con P-Ca. Ciclo 2012-2013. 

Tratamiento Frutos inflorescencia-1 (Núm.)
Inicialz Finalz
POL PRT POL
P-Ca 500 (1х)y 2.6 abx 6.0 a 2.1 ab
P-Ca500 (2 х) 2.2 b 6.0 a 1.7b
P-Ca 500 (З х) 2 8a 4.4 ab 2.5 a
PBZ 2500 (1 x) 2.6 ab 3.6 ab 2.5 a
Testigo 2 1.6c 5.7b 1.6b
CV 14.69 25.5 15.6

zInicial, 45 DDF; final, dos semanas antes de cosecha. yuna aplicación (1 X); dos aplicaciones (2 X); tres aplicación (3 x). xMedias con la misma letra dentro de columnas no son significativamente diferentes. Tukeyp≤ 0.05.

La producción de fruto file significativa en E1 (Pr=0.0041) y E3 (Pr= 0.0050). Durante un año "on", en El los árboles con P-Ca, 500 mg L-1 (4 x 0+10+20+30 ddp) produjeron 63 kg y 75 kg con PBZ, 2 500 mg L-1(1 x, 30 ddp), mientras que el testigo produjo 38 kg. En E3, la producción file de 74 y 80 kg árbol-1 en tratamientos con 500 mg L-1 de P-Ca (1 y 3x entre 1-20 ddp, respectivamente) y un rendimiento similar con PBZ (80 kg), en eltestigo los árboles produjeron 47 kg (Figura 2). Se tuvo un aumento en la producción de fruto árbol-1 de 40 - 50% con P-Ca 500 mg L-1 (4 x) y PBZ 2500 (1 x), respectivamente con relación al testigo. En E3 se obtuvieron resultados similares a E1 con tres aplicaciones de P-Ca 500 mg L-1 y PBZ, el incremento logrado fue de 36-40% en los diferentes tratamientos respecto al testigo.

Las barras en cada punto representan el promedio de 6 árboles por tratamiento ± error estándar. Ciclo 2012-2013.

Figura 2 Producción de fruta en árboles de mango ‘Ataulfo’. A) P-Ca 4x de cada dosis (mg·L-1) a 0+10+20+30 ddp. B) P-Ca (mg L-1); 1 x a 0,2 x a 0+10 y 3 x, a 0+10+20 ddp. 

Ciclo 2013-2014

El primer flujo vegetativo se presentó del 17 de septiembre al 3 de octubre de 2013, mientras que el segundo inicio el 19 de nov. y terminó el 11 de dic. No hubo diferencias estadísticas entre tratamientos en los dos flujos presentados ni en longitud total (Figura 3).

Las barras en cada punto representan el promedio de 24 brotes por tratamiento ± error estándar. Ciclo 2013-2014.

Figura 3 Longitud del brote vegetativo emergido después de la poda (24 julio) en árboles de mango ‘Ataulfo’. P-Ca 150 y 500 (mg L-1) 3 x a 30+45+60 ddp y 1 500 1 x a 30 ddp. Las fechas corresponden al inicio y término de cada flujo. 

Respecto a brotación floral, en E4, se encontraron diferencias estadísticas en plena floración (Pr= 0.0024) y porcentaje (Pr= 0.0040). En un año “off”, plena floración se alcanzó entre 135 y 170 días. El porcentaje de floración fue de 55 a 92% (Cuadro 3).

Cuadro 3 Días a brotación floración, adelanto e intensidad de floración en árboles de mango ‘Ataulfo’ con P-Ca. Ciclo 2013-2014. 

Tratamiento Plena brotación floral (ddp)z Adelantoy (días) Porcentaje (%)
P-Cal50 (3 x)x 161 aw 9 55.0b
P-Ca500(3x) 150 ab 20 68.3 ab
PBZ2500(1 x) 145 b 25 86.7 ab
P-Cal500(1 x) 135b 35 92.2 a
Testigo 170 a 55.8b
CV 8.7 26.2

zPlena brotación floración, >80%. Días después de la poda, ddp. ynúmero de días respecto al testigo. xTres aplicaciones= 3 X; una aplicación= 1 X. wmedias con la misma letra dentro de columnas no son significativamente diferentes. Tukey p≤0.05.

La producción de fruto en un año off fue significativa con Pr= 0.0092. En E4, la producción varió de 149 a 240 kg árbol-1, los tratamientos con reguladores tuvieron mayor producción de fruta pero solo P-Ca (1 500 mg L-1, 1 x) y PBZ (2 500 mg L-1) fueron estadísticamente diferentes al testigo (Figura 4). En año “off”, la producción obtenida con P-Ca 1 500 (1 x a 30 ddp) y PBZ significó un incremento de aproximadamente 38% en ambos tratamientos respecto al testigo.

Las barras en cada punto representan el promedio de 6 árboles por tratamiento ± error estándar. Ciclo 2013-2014.

Figura 4 Producción de fruta en árboles de mango ‘Ataulfo’ con P-Ca. 

Discusión

La baja respuesta de P-Ca para disminuir crecimiento vegetativo en el segundo flujo pudo deberse a que el producto tiene una vida media de 14 días en planta (Rademacher et al., 2006) y la última aplicación había sido realizada aproximadamente 35 días antes. En E2, P-Ca probablemente continuaba activo en el segundo flujo ya que la última aplicación se había realizado apenas 10 días antes (22 de septiembre).

En E3 se observó una ligera reducción del brote en el primer flujo, pero en el segundo la longitud total fue similar entre los tratamientos incluyendo el testigo, probablemente influyó las dosis utilizadas (menores a las de E1 y E2) y el periodo (35 días) entre la última aplicación de P-Ca y la aparición del segundo flujo. Aparentemente, por ser un especie tropical podría requerir mayor dosis que en los templados o subtropicales donde con dosis más pequeñas si lograron reducir crecimiento vegetativo (Ramírez et al., 2006; Garner et al., 2010); además, el producto tiene muy poca duración (14 días) en planta (Rademacher et al., 2006).

Los resultados coinciden con los obtenidos en frutales templados como manzana al aplicar P-Ca después de floración (2 y 4 x, a intervalos de 14-20 días) con resultados positivos en reducción de la longitud del brote (18-48 %) (Ramírez et al., 2006; Cline et al., 2008; Kiessling-Davison et al., 2008) y pera al aplicar P-Ca durante y después floración (4X, a intervalos de 20 días) disminuyendo la longitud del brote de 24-50% (Asin et al., 2007; Einhorn et al., 2014) aunque con dosis más bajas (50 - 250 mg L-1) que las utilizadas en mango ‘Ataulfo’. Menores crecimientos también se han reportado con PBZ en pera (Asin et al., 2007), en nuestro estudio los mejores resultados se obtuvieron con P-Ca probablemente por el uso de dosis más altas que las utilizadas en pera.

El efecto de P-Ca radica en inhibir la síntesis de GAs activas al bloquear GA20 3β-hidroxilasa promoviendo la formación de GAs inactivas (Rademacher, 2000; Rademacher et al., 2006). Manzana con 250 mg L-1 de P-Ca, identificaron GAs A9, A20, A51 y A53, mientras que en los brotes sin P-Ca identificaron GAs activas como A1, A4 y A7 (Ramírez et al., 2006). Aunque en nuestro estudio no se realizó la identificación de GAs, la reducción en el crecimiento total por la acción del P-Ca fue de 35%. En frutales subtropicales, los resultados fueron efectivos en reducir crecimiento de brotes después de poda en primavera especies como limón ‘Eureka’ pero no en naranjo ‘Washington Navel’ (Garner et al., 2010) con 250 y 500 mg L-1 en aplicaciones simples. En aguacate ‘Hass’ si hubo efecto con 250 mg L-1 de P-Ca en tres aplicaciones (Mandemaker et al., 2005; Garner et al., 2010), lo que coincide con los resultados de este estudio al tener mayor reducción en aplicaciones repetidas P-Ca (500 mg L-1), lo que indica que en frutales subtropicales y tropicales la dosis debe ser mayor que en templados por el crecimiento vigoroso que presentan estas especies. Por otro lado, en mango Kent, se encontró una disminución del crecimiento vegetativo con P-Ca combinado con PBZ, pero no hubo respuesta al aplicarlo solo (Do Carmo-Mouco et al., 2011).

En un año “off”, la longitud de los brotes fue similar en ambos flujos, aunque se en el primero se observó un menor crecimiento con los reguladores, este no fue diferente al testigo. La longitud total en este ciclo fue similar entre los tratamientos. Lo anterior puede atribuirse que la presencia de temperaturas cálidas (>30 °C) y periodos de lluvia que se prolongaron de junio hasta diciembre, favoreciendo el crecimiento de los brotes. En mango el crecimiento vegetativo ocurre por flujos y el número de ellos aumenta conforme aumenta temperatura (Whiley et al., 1989; Davenport, 2007).

Durante un año on, en E2 y E3 no hubo adelantos significativos en días a plena floración respecto al testigo y la floración fue abundante en todos los tratamientos. Para octubre de 2012, los brotes vegetativos en todos los tratamientos incluyendo testigo se encontraban con la edad fisiológica requerida para ser inducidos. En mango, la floración está regulada por la edad del flujo vegetativo (Davenport, 2003). En E1, con dosis altas de P-Ca (500 mg L-1, 0+10+20+30 ddp) y PBZ (2500 mg L-1), se logró un adelanto en la floración con relación al testigo de aproximadamente 21 y 28 días, respectivamente. El porcentaje de floración se incrementó en todos los tratamientos, aunque con PBZ fue mayor (51%) respecto al testigo (39%).

La respuesta obtenida con PBZ coincide con numerosos estudios que avalan su efecto en adelantar y aumentar floración en muchos cultivares de mango incluyendo ‘Ataulfo’ (Singh y Bhattacherjee, 2005; Rebolledo et al., 2008; Arzani et al., 2009; Vázquez et al., 2009b; Pérez-Barraza et al., 2011; Martínez-Fuentes et al., 2013; Samani, 2014). Aunque hay pocos reportes en mango con relación al uso de P-Ca, nuestros resultados coinciden con los reportados por Abdel Rahim et al. (2011) quienes encontraron en mango ‘BaladiAbuZaid’ y ‘BaladiBurai’ 40 días de adelantó en floración con P-Ca aplicado después de cosecha (18 de Julio); aunque, en variedades diferentes a ‘Ataulfo’; no obstante, Do Carmo-Mouco et al. (2011) no encontraron respuesta en floración en mango ‘Kent’.

Adil et al. (2011) indican que el efecto en floración encontrado en P-Ca estuvo relacionado con un incremento en el contenido de citocinina en yemas y hoja durante el periodo de inducción floral, mientras que los niveles de giberelinas y citocininas disminuyeron en el mismo periodo por efecto tanto de P-Ca como de PBZ favoreciendo floración. En nuestro estudio, el efecto en floración con P-Ca puede estar relacionado con la reducción en crecimiento vegetativo encontrado con 500 mg L-1 (4 x, 1+10+20+30 ddp), lo que sugiere niveles bajos de giberelinas que favorecieron floración. A pesar de un año “off”, se logró un adelanto en la floración en árboles con 500 (3 x, 30+45+60) y 1 500 (1 x) mg L-1 de P-Ca (30 ddp) de 20 y 35 días, respectivamente con relación al testigo. PBZ (2500 mg L-1; 1X) adelantó 25 días.

En un año “off”, que resultó en un floración irregular en la mayoría de los cultivares de mango en el Nayarit, incluyendo ‘Ataulfo’, dosis altas de P-Ca lograron igualar el efecto de PBZ en adelanto y porcentaje de floración. Por el contrario, dosis bajas de P-Ca (150 mg L-1, 3 x) no fueron capaces de mejorar floración por lo que árboles con este tratamiento presentaron una floración irregular similar a la obtenida en los testigo.

A los 45 días después de plena floración todas las inflorescencias con regulador tuvieron más frutos POL que los testigos; lo que significó un incremento 27 - 43% respecto al testigo, pero solo P-Ca 500 mg L-1 (3 x, 30+45+60 ddp) y PBZ 2 500 mg L-1 (1 x, 30 ddp) incrementaron el número final poco antes de cosecha (15 días), lo que se flejó en 38%. Respecto a frutos PRT, los árboles con P-Ca 500 mg L-1 (3 x) y PBZ (1X) produjeron menor número de frutos con relación al testigo. Los resultados obtenidos coinciden en parte con otros autores en especies como manzano (Ramírez et al., 2006) y en tropicales como los obtenidos en aguacate ‘Hass’ por Garner et al. (2010). No obstante, existen opiniones contrastantes al respecto.

Por un lado, en templados como manzano se reporta un incremento en amarre de fruto (Ramírez et al., 2006), mientras que en pera ‘Blanquilla’ y ‘D’Anjou’ no encontraron efecto en esta variable (Asin et al., 2007; Einhorn et al., 2014). En subtropicales como aguacate ‘Hass’ Mandemaker et al. (2005) no tuvieron efecto en amarre de fruto; mientras que Garner et al. (2010) en el mismo cultivar, lograron un incremento en amarre de frutos cuando se aplicó durante floración y amarre sugiriendo que el aumento pudo haber sido al inhibir la síntesis de etileno, otro efecto inhibitorio de P-Ca según (Rademacher et al., 2006; Rademacher, 2014), aunque este efecto no fue estudiado en aguacate.

En tropicales como mango, ‘BaladiAbuZaid’, ‘BaladiBurai’ y ‘Kent’ no se reporta efecto en amarre de fruto (Abdel Rahim et al., 2011; Do Carmo-Mouco et al., 2011); pero en nuestro estudio si se logró incrementar el amarre final, lo que indica que el efecto depende de la especie, dosis y probablemente la etapa fenológica en que se aplica. Sorpresivamente, en este estudio se observó una tendencia a una menor producción de frutos PRT en árboles con tres aplicaciones de P-CA (500 mg·L-1) y en aquellos con una sola de PBZ (2500 mg L-1), lo que significó una producción de frutos de mayor valor comercial.

La mayor producción obtenida en E1 y E3 estuvo relacionada con el aumento en el porcentaje de floración y el amarre de frutos logrado por los mismos tratamientos, debido al efecto de los reguladores probablemente inhibiendo síntesis de giberelinas y modificando traslocación de asimilados del ápice hacia otros puntos como frutos en desarrollo (Ramírez et al., 2014). Los resultados obtenidos coinciden con lo reportado en templados como manzano (Costa et al., 2006; Ramírez et al., 2006) aunque con menor dosis (150 y 250 mg L-1, 1 x) que las usada en mango ‘Ataulfo’ y con lo reportado en aguacate ‘Hass’ por Garner et al. (2010) con dos y tres aplicaciones de 150 y 250 mg L-1, respectivamente.

En naranjo ‘Washington Navel’ se reporta una reducción en la producción y tamaño de fruto con una aplicación de 500 mg L-1, contrario a lo obtenido en mango ‘Ataulfo’ con dosis más altas, lo cual pudiera deberse a un mayor requerimiento de P-Ca para que se manifieste el efecto en ‘Ataulfo’ por ser una especie tropical. Los resultados con PBZ corroboran el efecto obtenido y reportado en muchos cultivares de mango incluyendo ‘Ataulfo’ como se mencionó anteriormente.

Conclusiones

Tres aplicaciones de P-Ca (500 mg L-1, 30+45+60 ddp) reducen el crecimiento vegetativo total (suma de dos flujos) en mango ‘Ataulfo’. Esta misma dosis o una sola aplicación (1 500 mg L-1, 30 ddp) es suficiente para igualar o incluso superar en algunos casos el efecto de PBZ en intensidad y época de floración, logrando floraciones abundantes y anticipadas. En un año “off”, el efecto en floración es mayor con cualquiera de los reguladores.

Existe una tendencia a reducir la producción de frutos partenocárpicos con P-Ca (500 mg L-1 (3 x, 30+45+60 ddp), y PBZ 2500 mg L-1 aplicado al suelo 30 días después de la poda.

En ambos ciclos evaluados, pero sobretodo en un año off, P-Ca se muestra como un posible sustituto de PBZ para reducir crecimiento vegetativo, incrementar y adelantar floración, y producción de fruto.

Aparentemente se requieren mayores dosis de P-Ca en mango, por ser una especie tropical, que en frutales templados para lograr el efecto deseado.

Literatura citada

Abdel-Rahim, A. O. S.; Elamin, O. M. and Bangerth, F. K. 2011. Effects of growth retardants, paclobutrazol (PBZ) and prohexadione-Ca on floral induction of regular bearing mango (MangiferaindicaL.) cultivars during off season. ARPN J. Agric. Biol. Sci. 6:1990-6145. [ Links ]

Arzani, K.; Bahadori, F. and Piri, S. 2009. Paclobutrazol reduces vegetative growth and enhances flowering and fruiting of mature ‘J.H. Hale’ and ‘Red Skin’ peach trees. Hort. Environ. Biotechnol. 50:84-93. [ Links ]

Asin, L.; Alegre, S. and Montserrat, R. 2007. Effect of paclobutrazol, prohexadione-Ca, deficit irrigation, summer pruning and root pruning on shoot growth, yield, and return bloom, in ‘Blanquilla’ pear orchard. Sci. Hortic. 113:142-148. [ Links ]

Cline, J. A.; Embree, C. G.; Hebb, J. and Nichols, D. S. 2008. Performance of prohexadione-calcium on shoot growth and fruit quality of apple - Effect of spray surfactants. Can. J. Plant Sci. 88:165-174. [ Links ]

Costa, G.; Andreotti, C.; Spinelly, F. and Rademacher, W. 2006. Prohexadione-Ca: More than o growth regulator for pome fruit trees. Acra horticulturae. 727:107-116. [ Links ]

Dalziel, J. and Lawrence, D. K. 1984. Biochemical and biological effects of kaurene oxidase inhibitors, such as paclobutrazol. BPGRG, Monograph. 11:43-57. [ Links ]

Davenport, T. L. 2003. Management of flowering in three tropical and subtropical fruit tree species. HortSci. 38:1331-1335. [ Links ]

Davenport, T. L. 2007. Reproductive physiology of mango. Braz. J. Plant Physiol. 19:363-376. [ Links ]

Do Carmo-Mouco, M. A.; Ono, E. O. e Rodriguez, J. D. 2011. Controle do crescimento vegetativo e floração de mangueiras cv. Kent com reguladores de crescimento vegetal. Rev. Bras. Frutic. Jaboticabal. 33:1043-1047. [ Links ]

Einhorn, T. C.; Pasa, M. S. and Turner, J. 2014. ‘D’Anju’ pears hoot growth and return Bloom, but not fruit size, are reduced by prohexadione-Calcium. HortSci . 49:180-187. [ Links ]

Garner, L. C.; Zheng, Y.; Khuong, T. and Lovatt, C. J. 2010. Prohexadione Calcium affects shoot growth of evergreen subtropical woody perennials differently than deciduous temperate zone woody perennials - Is it a case of apples and oranges. Acta Hortic. 884:249-256. [ Links ]

Hedden, P. and Graebe, J. E. 1985. Inhibition of giberellin biosynthesis by paclobutrazol in cell-free homogenates of Cucurbita maxima endosperm and Malus pumila embryos. J. Plant. Growth Reg. 4:111-122. [ Links ]

Kiessling-Davison, C. M.; Magaña-Magaña, J. E.; Segovia-Lerma, A.; Obando-Rodríguez, A. J. y Villareal-Ramírez, V. H. 2008. Prohexadiona de calcio como regulador de crecimiento en el manzano (Malus domestica Borkh.) “Golden Delicious”, Ciudad Cuauhtémoc, Chihuahua, México. Tecno Ciencia Chihuahua. 1:7-12. [ Links ]

Mandemaker, A. J.; Cutting, J. G. M.; Smith, D. B. and Dixon. J. 2005. Effect of prohexadione-ca on shoot growth, fruit set and retention in 'Hass' avocado in New Zealand. New Zealand Avocado Grower's Association Annual Research Report. 5:35-42. [ Links ]

Martínez-Fuentes, M.; Mesejo, C.; Muñoz-Fambuena, N.; Reig, C.; Gonzalez-Mas, M. C.; Iglesias, D. J.; Primo-Millo, E. and Agusti, M. 2013. Fruit load restricts the flowering promotion effect of paclobutrazol in alternate bearing Citrus spp. Scientia Hortic. 151:122-127. [ Links ]

Pérez-Barraza, M. H.; Osuna-García, J. A.; Sánchez-Lucio, R. y VázquezValdivia, V. 2011. El paclobutrazol como promotor de la floración en mango ‘Manila’, aun sin condiciones ambientales inductivas. Rev. Chapingo Ser. Hortic. 17:47-52. [ Links ]

Rademacher, W. 2000. Growth retardants: effects on gibberellin biosynthesis and other metabolic pathways. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 51:501-31. [ Links ]

Rademacher, W.; Spinelli, F. and Costa, G. 2006. Prohexadione-Ca: Modes of action of a multifunctional plant bioregulator for fruit trees. Acta Hort. 727:97-106. [ Links ]

Rademacher, W. 2014.Prohexadione-Ca and trinexapac-ethyl: similarities in structure but differences in biological action. Acta Hort. 1042:33-42. [ Links ]

Ramírez, H.; Alonso, S. and Benavides, A. 2006. Prohxadione-Ca modifies growth and endogenous hormones in the shoot apex in apple trees. Acta Hortic. 727:117-123. [ Links ]

Ramírez, H.; Sánchez-Canseco, J. C.; Ramírez-Pérez, L. J. and Benavides, A. 2014. Significance of hormones on flower bud initiation and fruit quality in apple: our expertise. Acta Hort. 1042:73-78. [ Links ]

Rebolledo, M. A.; Del-Angel, P. A. L. and Rey, M. J. 2008. Effect of paclobutrazol and KNO3 over flowering and fruit quality in two cultivars of mango Manila. Interciencia. 33:518-522. [ Links ]

Samani, E. B. 2014. Effects of paclobutrazol on vegetative and reproductive characteristics of peach (Prunuspersica L.) cv. ‘Kardi’. Agric. Comm. 2:37-42. [ Links ]

Singh, V. K. and Bhattacherjee, A. K. 2005. Genotypic response of mango yield to persistence of paclobutrazol in soil. Scientia Hortic. 106:53-59. [ Links ]

Vázquez, V. V.; Pérez, B. M. H.; Osuna, G. J. A. y Urías, L. M. A. 2009a. Intensidad de poda sobre el vigor, producción y peso del fruto, del mango ‘Ataulfo’. Rev. Chapingo Ser. Hortic. 15:127-132. [ Links ]

Vázquez V. V.; Pérez, B. M. H.; Osuna, G. J. A. y Urías, L. M. A. 2009b. Manejo integral de huertos de mango ‘Ataulfo’ con altas densidades de plantación. Rev. Chapingo Ser. Hortic. 15:155-160. [ Links ]

Whiley, A. W. 1993. Environmental effects on phenology and physiology of mango: a review. Acta Hortic. 341:168-176. [ Links ]

Whiley A. W.; Rasmussen, T. S.; Saranah, J. B. and Wolstenholme, B. N. 1989. Effect of temperature on growth, dry matter production and starch accumulation in ten mango (Mangifera indica L.) cultivars. J. Hortic. Sci. 64:753-765. [ Links ]

Wilkie, J. D.; Sedgley, M. and Olesen, T. 2008. Regulation of initiation in horticultural trees. J. Exp. Bot. 59:3215-3228. [ Links ]

Yeshitela, T.; Robbertse, P. J. and Stassen, P. J. C. 2005. Effects of pruning on flowering, yield and fruit quality in mango (Mangifera indica). Australian Journal of Experimental Agriculture. 45:1325-1330. [ Links ]

Recibido: Octubre de 2015; Aprobado: Febrero de 2016

§Autora para correspondencia: racm@colpos.mx

Creative Commons License Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia Creative Commons