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Hidrobiológica

versão impressa ISSN 0188-8897

Hidrobiológica vol.28 no.2 México Mai./Ago. 2018  Epub 25-Fev-2020

https://doi.org/10.24275/uam/izt/dcbs/hidro/2018v28n2/bustamante 

Artículos

Crecimiento y calidad espermática en trucha arcoíris Oncorhynchus mykiss (Teleostei: Salmonidae) durante la temporada reproductiva

Growth and sperm quality in rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Teleostei: Salmonidae) during the reproductive season

Jesús Dámaso Bustamante-González1  * 

Araceli Cortés-García1 

Martha Rodríguez-Gutiérrez1 

1Laboratorio de Reproducción Genética y Sanidad Acuícola. Departamento El Hombre y su Ambiente. Universidad Autónoma Metropolitana, Unidad Xochimilco. Calzada del Hueso 1100, col. Villa Quietud, Coyoacán, Ciudad de México, 04906. México


Resumen

Antecedentes:

Oncorhynchus mykiss es una de las especies que más se cultiva en el mundo y que tiene alto valor económico, por tal motivo, optimizar su crecimiento y reproducción es fundamental para la acuacultura.

Objetivos:

Evaluar el crecimiento y calidad espermática en trucha arcoíris durante la temporada reproductiva.

Métodos:

La investigación se realizó en el centro acuícola El Zarco, Estado de México, con 32 machos sexualmente maduros de tres años. De julio a febrero se registraron mensualmente: longitud total, altura, grosor (cm), peso (g), ganancia de peso (GP), tasa de crecimiento absoluto (TCA) y tasa instantánea de crecimiento (TIC). Las muestras de semen se obtuvieron de agosto a febrero. Las variables para determinar la calidad espermática fueron: volumen, color, consistencia, concentración, pH y movilidad.

Resultados:

En cuando a longitud y peso, la mayor TCA, GP y TIC se obtuvo de julio a agosto, mes previo al periodo reproductivo. De agosto a febrero la TCA fue de 1.13 cm; GP de 0.01 g y TIC de 0.0321 ± 0.0522 cm y 0.0932 ± 0.2223 g en promedio. En julio se registraron diferencias en longitud y peso (p <0.05) en comparación con los meses del periodo reproductivo. El patrón de producción de semen se incrementó de agosto a octubre y decreció hasta febrero con diferencias significativas (p <0.05). En general, se encontró semen de color blanco y consistencia lechosa. La mayor concentración espermática se presentó en septiembre (8.17 ± 2.06 x 109 ML-1) y disminuyó hasta febrero, con diferencias significativas (p <0.05) entre los meses. El pH fue alcalino, con un promedio de 8.07 ± 0.31. La movilidad mostró un incremento de agosto a diciembre y un decremento de enero a febrero, con diferencias significativas (p <0.05) entre los meses.

Conclusiones:

Durante el periodo reproductivo la energía procedente del alimento se destina a asegurar la reproducción, por lo que el crecimiento se ralentiza y la calidad espermática varía entre los meses.

Palabras clave: color; concentración espermática; consistencia; movilidad; peso; pH; producción de semen; talla; trucha arcoíris

Abstract

Background:

Oncorhynchus mykiss is a species that is widely cultivated in the world with high economic value. For this reason, it is essential to optimize its growth and reproduction for aquaculture.

Goals:

Evaluate the growth and sperm quality of rainbow trout during the reproductive season.

Methods:

We conducted research at the “El Zarco” Aquaculture Center in the state of Mexico, with 32 sexually mature three-year-old males. Once a month, we recorded total length, height, thickness (cm), and weight (g) during July-February, and calculated weight gain (WG), absolute growth rate (AGR), and instantaneous growth rate (IGR). Semen samples were obtained during (August-February). In order to evaluate the spermatic quality, we measured volume, color, consistency, concentration, pH, and mobility.

Results:

The highest AGR, WG, and IGR in terms of length and weight were obtained from July-August, i.e., a month prior to the reproductive period; from August-February the AGR was 1.13 cm, WG was 0.01 g, and there was an average IGR of 0.0321 ± 0.0522 cm and 0.0932 ± 0.2223 g. Differences (p <0.05) in length and weight were found between July and the months of the reproductive period. There was a pattern of semen production: It increased from August to October and then decreased until February, with significant differences (p <0.05). Usually, white semen and milky consistency were found. The highest sperm concentration occurred in September (8.17 ± 2.06 x 109 mL-1) and decreased until February, with significant differences (p <0.05) between months. The pH was alkaline with an average value of 8.07 ± 0.31. Mobility increased from August to December and decreased from January to February, with significant differences (p <0.05) between months.

Conclusions:

During the reproductive period, food energy is channeled to ensure reproduction, so that growth slows and sperm quality varies during the reproductive months.

Keywords: color; consistency; motility; pH; rainbow trout; semen production; size; sperm concentration; weight

Introducción

La acuicultura es parte esencial del quehacer económico y social, ya que ha favorecido la sobreexplotación de pesquerías y el aumento en el consumo de productos acuícolas, los cuales han permitido que está actividad se convierta en una alternativa para ampliar y contribuir a la oferta alimentaria, además de crear fuentes permanentes de empleo que estimulan el desarrollo regional y generación de divisas (FAO, 2012).

Entre las especies acuícolas de mayor consumo en México, de acuerdo con el Anuario Estadístico de Acuacultura y Pesca (SAGARPA, 2014), destaca la trucha arcoíris Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792), que se ubica en el sexto lugar de la producción nacional, con 15 695 toneladas, y a nivel mundial en el treintavo lugar.

En los centros de cultivo de peces el alimento representa el mayor costo en la producción; puede llegar a ser de hasta un 30%, mientras que su calidad y cantidad afectan directamente la fisiología, que de manera sustancial se ve reflejada en la reproducción (Bobe & Labbé, 2010; Hajirezaee et al., 2010).

Para la mayoría de los peces el ciclo reproductivo es estacional y su duración es variable; ésta determina la calidad y cantidad de los gametos (Büyükhatipoglu & Holtz, 1984; Munkittrick & Moccia, 1987; Aral et al., 2005; Sahin et al., 2014; Bustamante-González et al., 2016a).

En la reproducción de peces uno de los factores que afecta el potencial de fertilidad es la calidad espermática (Bobe & Labbé, 2010; Hajirezaee et al., 2010), la cual se define como la habilidad del espermatozoide para fertilizar un óvulo. De acuerdo con Alavi & Cosson (2005), Aral et al. (2007), Cosson (2008), Alavi et al. (2008a, b) y Bustamante-González et al. (2016b), su evaluación se realiza a partir de parámetros cualitativos, como color y consistencia, y cuantitativos, como volumen, pH, concentración espermática y movilidad. Sin embargo, al igual que en otras especies, hay factores que contribuyen a las variaciones reproductivas entre los individuos: edad, tipo de alimentación, origen genético, fotoperiodo, temperatura, temporada reproductiva y estrés generado durante la manipulación, pues influyen directamente sobre la calidad del semen (Billard et al., 1995; Rurangwa et al., 2004; Bobe & Labbé, 2010; Hajirezaee et al., 2010).

Por lo anterior, el objetivo de la presente investigación fue evaluar el crecimiento de la trucha arcoíris y su calidad espermática durante la temporada reproductiva, información que permitirá establecer estrategias para optimizar su reproducción.

Materiales y métodos

La presente investigación se realizó en el centro acuícola El Zarco, en el municipio de Ocoyoacac, Estado de México, con una muestra de 32 machos sexualmente maduros de tres años de edad, monitoreados de julio a febrero (Bustamante-González et al., 2016a).

Los organismos se mantuvieron en estanque rústico de 13.5 m de largo y 6 m de ancho, con una profundidad de 75 cm, un flujo promedio de 121.27 L min-1, una temperatura promedio del agua de 11.31 ± 1.25 C y con un fotoperiodo natural. Fueron alimentados una vez al día con Winfish-Zeigler® para trucha, equivalente al 1.3% de la biomasa, ajustada mensualmente. Previo a la obtención de muestras, se mantuvieron en ayuno durante 24 horas, con el fin de prevenir la contaminación del semen con materia fecal. Para minimizar el estrés fueron sedados con esencia de clavo a una concentración de 0.05 mL L-1 de agua (Rodríguez-Gutiérrez et al., 2007).

Biometría. La longitud total, altura y grosor (cm) se determinaron mediante un ictiómetro de 90 cm ± 0.01 de precisión y escuadra de 90º; el peso (g), con una balanza Adam CBK 70a Max 32 kg d = 1.0 g, una vez al mes.

Crecimiento. La ganancia de peso (GP) se calculó de acuerdo con la fórmula propuesta por Moreno et al. (2000):

GP = W2− W1

Donde:

GP

= ganancia de peso en gramos

W2

= peso en gramos al finalizar el periodo

W1

= peso en gramos al iniciar el periodo

La tasa de crecimiento absoluto (TCA) se determinó de acuerdo con la fórmula propuesta por Wootton (1999):

TCA = VBF−VBI

Donde:

TCA

= tasa de crecimiento absoluto

VBF

= variable biométrica final (longitud, altura, grosor, peso)

VBI

= variable biométrica inicial (longitud, altura, grosor, peso)

La tasa instantánea de crecimiento (TIC) se estableció conforme a lo propuesto en Soriano y Hernández (2002):

TIC= Ln VBF −Ln VBIT (100)

Donde:

Ln

= logaritmo natural

VBF

= variable biométrica final (longitud, altura, grosor, peso)

VBI

= variable biométrica inicial (longitud, altura, grosor, peso)

T

= tiempo (días)

Recolecta y evaluación del semen. Las muestras se obtuvieron durante el periodo reproductivo, de agosto a febrero (Bustamante-González et al., 2016a). La extracción se obtuvo mediante ligera presión abdominal en dirección opérculo-caudal y se recolectó en tubos graduados con capacidad de 50 mL, para evitar la contaminación con orina, heces, sangre o agua (Rodríguez-Gutiérrez et al., 2007).

Se evaluó color, consistencia y concentración espermática del semen a partir de una solución madre compuesta de formol al 4% y NaCl al 0.9%, con el semen previamente homogeneizado, y el volumen se expresó en mL. El conteo se realizó en cámara de Neubauer con el programa Image-Pro 5.1®, bajo un microscopio Olimpus Optical BX41TF®, y se expresó como número de células mL-1 (Rodríguez-Gutiérrez et al., 2007; Bustamante-González et al., 2016b).

El pH del semen se determinó con potenciómetro Hanna HI 9125® y electrodo HI 1330®. La movilidad (n ≥ 5) se activó con agua y se registró con cronómetro la duración total, en segundos, bajo el microscopio óptico Olimpus Optical BX41TF® 40x (Bustamante-González et al., 2016b).

Análisis estadístico. Las variables de estudio fueron procesadas con análisis descriptivos, expresados con media ± desviación estándar (DE), y por medio del análisis de varianza de una vía (ANOVA). Al determinar diferencias se aplicó la prueba de Tukey, con un nivel de significancia de p <0.05 (Daniel, 2017).

Asimismo, por mes de muestreo se realizó un análisis de correlación múltiple entre las variables independientes: longitud (cm), peso (kg), altura (cm) y grosor (cm), con respecto a las variables dependientes: volumen de semen (mL) y concentración espermática, con un nivel de significancia de p <0.05.

Resultados

Crecimiento. En cuanto a longitud y peso, los mayores valores de TCA, GP y TIC se obtuvieron de julio a agosto, mes previo al periodo reproductivo. De agosto a febrero la TCA fue de 1.13 cm; GP de 0.01 g y TIC de 0.0321 ± 0.0522 cm y 0.0932 ± 0.2223 g, en promedio (Tabla 1). Al respecto, se establecieron diferencias en longitud y peso (p <0.05) entre julio y los meses que comprenden el periodo reproductivo. Las curvas del crecimiento se ajustaron al modelo logarítmico (longitud y altura), polinómico (peso) y potencial (grosor) (Fig. 1).

Tabla 1 Indicadores del crecimiento de Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792), valores promedio ± DE, desde julio hasta febrero. 

Mes Días Variable Valor inicial Valor final TCA TIC
Jul. - Agosto 31 Longitud total (cm) 54.68 ± 2.34 57.44 ± 2.56 2.76 0.1586
Altura (cm) 13.26 ± 0.55 14.17± 0.73 0.91 0.2143
Grosor (cm) 7.52 ± 0.36 08.22 ± 0.61 0.7 0.2862
Peso (kg) 2.37 ± 0.30 02.87 ± 0.38 0.5 0.625
Agosto - Sept. 38 Longitud total (cm) 57.44 ± 2.56 57.79 ± 2.81 0.35 0.016
Altura (cm) 14.17 ± 0.73 14.61 ± 0.92 0.44 0.08
Grosor (cm) 8.22 ± 0.61 07.77 ± 0.34 -0.42 -0.1376
Peso (kg) 2.87 ± 0.38 02.84 ± 0.39 -0.04 -0.0335
Longitud total (cm) 57.79 ± 2.81 57.87 ± 2.78 0.08 0.0037
Altura (cm) 14.61 ± 0.92 14.71 ± 1.09 0.1 0.019
Grosor (cm) 7.77 ± 0.34 08.16 ± 0.60 0.36 0.1258
Peso (kg) 2.84 ± 0.39 2.89 ± 0.47 0.05 0.0503
Oct.- Nov 30 Longitud total (cm) 57.87 ± 2.78 58.09 ± 2.71 0.22 0.0127
Altura (cm) 14.71 ± 1.09 15.03 ± 1.22 0.32 0.0719
Grosor (cm) 8.16 ± 0.60 08.48 ± 0.69 0.32 0.128
Peso (kg) 2.89 ± 0.47 02.95 ± 0.46 0.06 0.0718
Nov. - Dic. 35 Longitud total (cm) 58.09 ± 2.71 58.20 ± 2.96 0.11 0.0053
Altura (cm) 15.03 ± 1.22 15.09 ± 1.15 0.06 0.0116
Grosor (cm) 8.48 ± 0.69 08.34 ± 0.65 -0.14 -0.0492
Peso (kg) 2.95 ± 0.46 02.90 ± 0.47 -0.05 -0.0537
Dic. - Enero 28 Longitud total (cm) 58.20 ± 2.96 58.24 ± 2.86 0.04 0.0024
Altura (cm) 15.09 ± 1.15 15.19 ± 1.29 0.1 0.0241
Grosor (cm) 8.34 ± 0.65 08.17 ± 0.52 -0.17 -0.0718
Peso (kg) 2.90 ± 0.47 02.86 ± 0.45 -0.04 -0.05
Enero - Feb. 22 Longitud total (cm) 58.24 ± 2.86 58.57 ± 2.90 0.33 0.026
Altura (cm) 15.07 ± 1.23 15.35 ± 1.19 0.19 0.0554
Grosor (cm) 8.17 ± 0.52 08.85 ± 0.84 0.68 0.362
Peso (kg) 2.86 ± 0.45 02.88 ± 0.47 0.03 0.0424

TCA = Tasa de crecimiento absoluto. TIC = Tasa instantánea de crecimiento.

Figuras 1a-d Curvas de tendencia de crecimiento de julio a febrero de Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792). a) peso (kg); b) longitud total (cm); c) altura (cm); d) grosor (cm). 

Producción de semen. El patrón de producción de semen incrementó de agosto a octubre, y tras este periodo la producción decreció hasta febrero. Las diferencias establecidas entre septiembre, octubre y noviembre fueron de (p <0.05), lapso donde se presentó la mayor producción y porcentaje de madurez, que determina el pico reproductivo de la especie (Tabla 2).

Tabla 2 Valores promedio ± DE, porcentaje de madurez, volumen de semen, concentración, pH y movilidad espermática en Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792), durante la temporada reproductiva. 

n Temporada reproductiva % madurez Volumen de semen (mL) Concentración espermática (x109 mL-1 ) pH Movilidad
n Duración (s)
32 Agosto 66 11.58 ± 9.97SON 6.02 ± 4.87SDEF 8.11 ± 0.15 8 41.31 ± 2.80NDE
31 Septiembre 100 22.38 ± 14.51ADEF 8.17 ± 2.06AODEF 8.19 ± 0.20 17 32.71 ± 8.45NDE
31 Octubre 94 24.62 ± 11.04ADEF 5.99 ± 1.75 SF 8.00 ± 0.20 9 42.61 ± 6.02NDE
26 Noviembre 96 19.86 ± 16.01AEF 6.90 ± 2.34DEF 8.58 ± 1.89 6 61.06 ± 12.27SODF
25 Diciembre 88 12.25 ± 8.34SO 4.10 ± 1.82ASNF 7.87 ± 0.36 7 88.79 ± 10.64ASONEF
20 Enero 85 9.21 ± 7.88SO 3.77 ± 1.64ASNF 8.01 ± 0.26 5 65.50 ± 3.83ASODF
19 Febrero 32 4.88 ± 2.35SON 2.25 ± 1.51ASONDE 7.94 ± 0.48 5 38.67 ± 2.99NDE
  Promedio   17.26 ± 13.15 5.89 ± 3.19 8.07 ± 0.31   48.75 ± 21.39

Los superíndices indican la inicial de los meses durante los que se presentaron diferencias significativas (p <0.05).

Color y consistencia del semen. De acuerdo con el análisis de frecuencias, es más común encontrar semen de color blanco y consistencia lechosa (Tabla 3).

Tabla 3 Análisis de frecuencias de acuerdo al color y consistencia del semen en Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792), durante la temporada reproductiva. 

Color Consistencia Frecuencia relativa (%)
Agosto Sept. Oct. Nov. Dic. Enero Feb.
Transparente Acuosa 0.17
Grisáceo Acuosa 0.12
Grisáceo Lechosa 0.10
Blanco Acuosa 0.10 0.28 0.24 0.68 0.41 0.33
Blanco Lechosa 0.82 0.70 0.72 0.68 0.32 0.41 0.50
Blanco Cremosa 0.13 0.10 0.08 0.06
Amarillento Lechosa 0.05

Concentración espermática. La mayor concentración se presentó en septiembre, con 8.17 ± 2.06 x 109 mL-1 y disminuyó durante la temporada reproductiva (Tabla 2) con diferencias significativas (p <0.05).

pH. Se estableció un rango de alcalinidad a partir del valor máximo de 8.58 ± 1.89 registrado en noviembre y un valor mínimo de 7.87 ± 0.36, registrado en diciembre. El valor promedio fue de 8.07 ± 0.31 (Tabla 2). No se detectaron diferencias significativas entre los meses (p >0.05).

Movilidad espermática. Se detectó un incremento de agosto a diciembre y un decremento de enero a febrero. En diciembre se obtuvo la mayor duración con 88.79 ± 10.64 s. Se registraron diferencias significativas (p <0.05) entre los meses (Tabla 2).

Asociación de variables. El análisis de correlación múltiple determinó que no hay asociación entre peso (kg), longitud total (cm), longitud patrón (cm), altura (cm) y grosor (cm) con respecto al volumen de semen (mL) y la concentración espermática entre los meses que comprenden el periodo reproductivo (Tabla 4).

Tabla 4 Análisis de correlación múltiple entre las variables peso, longitud total, longitud patrón, altura y grosor, con las variables volumen de semen y concentración espermática (mL-1) en Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792), durante la temporada reproductiva. 

Variables Agosto Sept. Oct. Nov. Dic. Enero Feb.
r r r r r r r
Peso (kg)-Volumen de semen (mL) 0.1079 -0.0165 -0.1345 0.1697 0.3184 0.3471 0.1441
Peso (kg)-Concentración espermática (mL-1) -0.0003 -0.239 -0.201 -0.1958 0.1373 0.153 0.2948
Longitud total (cm)-Volumen de semen (mL) 0.1134 0.0897 0.0749 0.301 0.2088 0.3339 0.3444
Longitud total (cm)-Concentración espermática (mL-1) 0.1549 -0.3003 -0.2887 -0.3181 -0.1237 -0.0706 0.0981
Longitud patrón (cm)-Volumen de semen (mL) 0.0371 0.0396 0.115 0.3009 0.2761 0.3318 0.3381
Longitud patrón (cm)-Concentración espermática (mL-1) 0.0846 -0.2979 -0.2757 -0.3538 -0.0854 0.0471 0.138
Altura (cm)-Volumen de semen (mL) 0.1883 0.1052 -0.1435 0.1929 0.2947 0.5004* -0.0043
Altura (cm)-Concentración espermática (mL-1) 0.0035 -0.2049 -0.1452 -0.1399 0.0975 0.1038 0.4425
Grosor (cm)-Volumen de semen (mL) -0.1084 0.0092 -0.1836 0.3136 0.1541 0.2407 -0.0097
Grosor (cm)-Concentración espermática (mL-1) -0.1533 -0.2033 -0.1792 -0.1343 0.0094 0.0022 0.2538
Volumen de semen (mL)- Concentración espermática (mL-1) 0.4535* -0.2783 0.3035 0.041 0.5158* 0.4186 0.5837*

*Indica diferencias significativas (p <0.05).

Discusión

El crecimiento en los peces es continuo hasta alcanzar el peso o longitud final, pero su tasa varía durante el ciclo de vida, que se ve afectado por la cantidad y tipo de alimento, condiciones físico-químicas del agua, densidad y el estado fisiológico de los organismos (Von Bertalanffy, 1938; Royce 1972).

Los resultados con respecto al crecimiento, previos a la temporada reproductiva, demostraron un incremento significativo (p <0.05) y mayor TIC entre julio y agosto; sin embargo, durante el periodo reproductivo (de agosto a febrero) el crecimiento fue mínimo y no se detectaron diferencias (p >0.05), probablemente a que el suministro de alimento fue menor a la tasa recomendada por el proveedor, lo cual está sustentado en estudios previos como los de Hunter y Leong (1981) y Camacho et al. (2000).

No obstante lo anterior, la producción de semen no se vio afectada, ya que la energía proporcionada por el alimento fue destinada para asegurar la reproducción, tal como se reporta en Wootton (1999) y Hao y Chen (2009), quienes mencionan que la energía adquirida del alimento se reparte entre el crecimiento y supervivencia, y al entrar en etapa reproductiva gran parte de ésta energía se destina a los diversos procesos de maduración sexual.

Evaluar la calidad y cantidad del semen en los centros de cultivo a lo largo de la temporada reproductiva permite estimar el potencial reproductivo de la población y el número de machos necesarios para la reproducción (Sahin et al., 2014; Bustamante-González et al., 2016a). Se ha reportado que la madurez sexual en machos de trucha arcoíris inicia al año y medio de edad, de agosto a febrero, y que está directamente relacionada con los factores bióticos y abióticos (Sosa et al., 2000; Bustamante-González et al., 2016a). Los resultados de esta investigación, que corresponden a machos sexualmente maduros de tres años, determinaron que el volumen de semen, concentración espermática y movilidad varían significativamente durante la temporada reproductiva (p <0.05), comportamiento similar al reportado en salmónidos (Büyükhatipoglu & Holtz, 1984; Munkittrick & Moccia, 1987; Hajirezaee et al., 2010; Johnson et al., 2013).

En cuanto al volumen de semen, se alcanzó un comportamiento análogo al obtenido para esta especie por Büyükhatipoglu y Holtz (1984) en Alemania, en Canadá por Munkittrick y Moccica (1987) y en Turquía por Aral et al. (2005) y Sahin et al. (2014), quienes refieren que la producción de semen va en aumento en los primeros meses y alcanza su máximo entre el tercer y cuarto mes, comportamiento contrario al reportado en otros teleósteos de la familia Ciprinidae, como Barbus barbus (Linnaeus, 1758) (Alavi et al., 2008b) y como Pseudoplatystoma metaense (Bleeker, 1862) de la familia Pimelodidae (Ramírez-Merlano et al., 2011), especies cuya madurez inicia con el volumen máximo, a partir del cual comienza el decremento, que se extiende hasta el final de la temporada reproductiva.

El color y consistencia del semen se atribuyen a la concentración espermática y del líquido seminal, que sirve como medio de suspensión. Valdebenito et al. (1995), Cruz-Casallas (2001) y Torres et al. (2014) reportan que el semen en salmónidos es de color blanco, consistencia lechosa y, en algunos casos, viscoso, características que concuerdan con las obtenidas en la presente investigación, donde el color blanco de consistencia lechosa fue el más frecuente durante el periodo reproductivo, lo cual está relacionado también con el hecho de que los espermatozoides de los peces obtienen la capacitación y maduración durante la migración a lo largo del conducto eferente con la producción del fluido que determina su hidratación (Schulz & Miura, 2002).

La concentración espermática incrementó progresivamente y el máximo registro se presentó en septiembre. Varios estudios en salmónidos concuerdan con este resultado en Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792) (Aral et al., 2005; Sahin et al., 2014; Bustamante-González et al., 2016a), Salmo trutta caspius (Kessler, 1877) (Hajirezaee et al., 2010) y Salvelinus namaycush (Walbaum, 1792) (Johnson et al., 2013), pero es contrario en ciprínidos como Schizothorax richardsonii (Gray, 1832) (Agarwal & Raghuvanshi, 2009), Barbus barbus (Linnaeus, 1758) (Alavi et al., 2008b) y Tinca tinca (Linnaeus, 1758) (Zuromska, 1981), así como espáridos: Sparus aurata (Linnaeus, 1758) y morónidos como: Dicentrarchus labrax (Linnaeus, 1758) (Kara & Labed, 1994), lo cual demuestra que la concentración espermática y el volumen de semen tienen una relación específica.

De acuerdo con Rurangwa et al. (2004), Bradshaw y Holpsafel (2007), Bobe y Labbé (2010), Hajirezaee et al. (2010), Aragón-Flores et al. (2014) y Bustamante-González et al. (2016a) las diferencias en el volumen de semen y concentración espermática pueden atribuirse a la especie, temporada reproductiva, alimentación, edad, origen genético, métodos de recolecta y estímulos ambientales como temperatura y fotoperiodo, donde estos últimos, que dependen de la latitud, altitud y estación del año, resultan relevantes para la reproducción. Lo anterior, explica las diferencias entre los resultados de la presente investigación y los reportes previos de Büyükhatipoglu y Holtz (1984), Munkittrick y Moccia (1987), Aral et al. (2005), Sahin et al. (2014) y Bustamante-González et al. (2016a).

La movilidad de los espermatozoides en peces de fertilización externa se adquiere al iniciar el contacto con un medio acuoso, en donde responden a condiciones fisicoquímicas, como cambios en la presión osmótica, temperatura y pH, las cuales se pierden pocos segundos después (Alavi & Cosson, 2005, 2006; Bustamante-González et al., 2016b).

El pH cumple un papel relevante en la activación de la movilidad espermática, Alavi y Cosson (2005) mencionan que el pH del plasma seminal se encuentra usualmente entre 7.5 y 8.5; de la misma forma, Billard (1986) y Gatti et al. (1990) reportan que el pH interno de los espermatozoides es de aproximadamente una unidad por debajo del externo. El pH externo influye en la concentración de protones intracelulares, los cuales afectan el potencial de membrana y la movilidad (Boitano & Omoto, 1992). Lahnsteiner et al. (1998) señalan que el pH para la movilidad óptima de los espermatozoides en trucha arcoíris es de 8.0 a 8.2; sin embargo, se ha reportado que la frecuencia del batido flagelar de los espermatozoides de trucha depende del pH de la solución activadora (Billard & Cosson, 1989).

Al respecto, hay registros de movilidad superior al minuto con un pH ≤ 8.0. En el presente estudio el pH promedio fue de 8.07 ± 0.31, con movilidad entre 24.22 y 127 s, similar a lo obtenido con trucha arcoíris por Secer et al. (2004), Rurangwa et al. (2004), Dietrich et al. (2005), Bozkurt (2006), Aral et al. (2007), Cosson (2008) y Nynca et al. (2012) al utilizar agua como solución activadora. Lo anterior demuestra que el volumen, concentración espermática, pH y movilidad son parámetros que definen la calidad de semen y pueden ser utilizados como indicadores de la capacidad fecundante (Rurangwa et al., 2004; Cosson, 2008; Bobe & Labbé, 2010; Hajirezaee et al., 2010), la cual varía de acuerdo con la especie, organismos y temporada reproductiva (Büyükhatipoglu & Holtz, 1984; Munkittrick & Moccica, 1987; Aral et al., 2005; Sahin et al., 2014; Alavi et al., 2008b; Agarwal & Raghuvanshi, 2009; Ramírez-Merlano et al., 2011; Johnson et al., 2013; Bustamante-González et al., 2016a).

El estudio demostró que al entrar en el periodo reproductivo la energía procedente del alimento se destina a asegurar la reproducción, por lo que el crecimiento se ralentiza; sin embargo, la calidad del semen no se ve afectada y varía durante la temporada reproductiva.

Agradecimientos

A la Subdelegación de Pesca del Estado de México, por autorizar la realización de la investigación; al responsable del centro acuícola El Zarco MVZ. Fernando Vergara Domínguez y a los revisores anónimos, por sus aportes para enriquecer el manuscrito.

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Recibido: 23 de Marzo de 2017; Aprobado: 18 de Junio de 2018

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