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INTRODUCCIÓN
La producción de carne de cerdo en México es de aproximadamente 1 291 000 t al año y en su mayoría se concentra en los estados de Jalisco, Sonora, Guanajuato, Puebla, Yucatán y Michoacán (SIAP 2014).
Asociado a la producción de carne, la actividad porcina genera diariamente una cantidad importante de desechos en sus unidades de producción, principalmente estiércol, cuyo manejo representa un gran reto para los productores.
Se ha reportado que la excreción fecal en cerdos puede ser de hasta 1.35 kg de material fresco por cada kg de materia seca ingerida, con un promedio de 25 % de contenido de materia seca y alrededor de 70 % de materia orgánica (Martínez et al. 2004).
No obstante, la cantidad y composición del estiércol porcino dependerá de factores como el fin zootécnico, edad de los animales, tipo de alimentación y condiciones de confinamiento (Sánchez y González 2005).
Las excretas pueden contener una cantidad significativa de compuestos bioquímicos con posibles aplicaciones, incluida la nutrición animal (Borges-Gómez et al. 2003, Bórquez et al. 2009, Bulkowska et al. 2012, Moset et al. 2014), que favorecen el mantenimiento y proliferación de una importante carga de microorganismos propios de este tipo de residuos.
La microbiota del estiércol incluye diversas especies, principalmente de los géneros Escherichia, Enterococcus, Clostridium, Bacillus, Listeria, Salmonella, Campylobacter, algunos hongos y levaduras, e incluso algunos virus (Sahlström et al. 2008, Masse et al. 2011, Zhang et al. 2011).
La combinación de nutrientes y microorganismos en el estiércol porcino, además de su manejo deficiente, ha provocado que la producción de cerdos contribuya con hasta un 13 % a la emisión de gases y compuestos de efecto invernadero (GyCEI) a nivel mundial (707 000 t de gases como CO2, CH4 y NO2) (Steinfeld et al. 2006, FAO 2013a, FAO 2013b, Philippe y Nicks 2015).
En México se ha reportado que la actividad porcina genera alrededor de 16 000 t diarias de estiércol y la mayoría son arrojadas a tierras de cultivo, cauces de ríos y drenajes municipales (García et al. 2010), lo que contribuye a la contaminación de mantos acuíferos y otros recursos naturales.
Con el objetivo de mitigar el daño ambiental que puede provocar la excreta porcina, se han realizado diferentes estudios para evaluar los efectos del uso de procesos orientados a la descontaminación de este residuo.
Procesos como la fermentación, acidificación y pasteurización, han mostrado reducir la carga microbiana del estiércol porcino, además de que algunos de estos procesos favorecen la obtención de biogás y biofertilizantes. (Hiriart 1984, Caballero-Hernández et al. 2004, López et al. 2008, Moset et al. 2014).
Una de las alternativas que ha resultado factible para el tratamiento del estiércol porcino es el proceso de ensilaje (Castellanos-Aceves et al. 2010, Galindo-Barboza et al. 2012).
Originalmente el ensilaje se definió como la fermentación láctica de materiales vegetales y fue desarrollado como un método de conservación de forrajes bajo condiciones de anaerobiosis (Hiriart 1984, Muck 2010).
Mediante el ensilaje se controla la actividad microbiana para inducir la fermentación de carbohidratos por las bacterias ácido lácticas (BAL), con o sin el uso de aditivos, lo que favorece las transformaciones bioquímicas para el aprovechamiento de los productos (Hiriart 1984, Muck 2010).
El mayor efecto de conservación de los nutrientes mediante el ensilaje se logra a través de la disminución del pH, que puede reducir los valores hasta 4.5 o 5.0, lo que limita la sobrevivencia de microorganismos competidores de las BAL (Hiriart 1984, Muck 2010).
El proceso de ensilaje no es exclusivo para materiales vegetales, ya que cualquier producto con suficientes carbohidratos fermentables puede ser ensilado (Herrera et al. 2015).
Específicamente, para el tratamiento de estiércol porcino, se ha adecuado el proceso de ensilaje y actualmente se sabe que el producto resultante puede ser aprovechado como ingrediente alternativo de bajo costo en la alimentación de animales (Castellanos-Aceves et al. 2010).
Su uso en la suplementación de animales, como vacas en lactación o cerdos en producción, se ha hecho sin mostrar disminución de la productividad o calidad de los productos (Smith et al. 2005, Sahlström et al. 2008, Ruvalcaba et al. 2011a, Ruvalcaba et al. 2011b, Zhao et al. 2013).
Sin embargo, resulta necesario ampliar los esquemas de evaluación para procesos como el ensilaje de excretas, principalmente para generar evidencias científicas sobre la calidad e inocuidad del producto que se obtiene, con la finalidad de hacer más eficiente su aprovechamiento o tratamientos posteriores.
El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto del proceso de ensilaje sobre la reducción de la carga microbiana del estiércol porcino a través del monitoreo de diferentes grupos indicadores de microorganismos y cambios en el pH.
MATERIALES Y MÉTODOS
Microsilos experimentales
Para el experimento se colectó estiércol fresco (menos de 24 horas) de cerdos en etapa de crecimiento y desarrollo, de una explotación porcina de tipo intensivo ubicada en el municipio de Tepatitlán de Morelos en Jalisco, el cual se utilizó para preparar los microsilos experimentales.
En el estudio fueron considerados cuatro tratamientos y un grupo testigo; cada tratamiento (Cuadro I) consistió en una combinación de estiércol fresco (85 % para tratamientos T1 y T2; 91.5 % para tratamientos T3 y T4), una fuente de BAL como promotores de la fermentación y un ingrediente con alto contenido de carbohidratos.
CUADRO I FORMULACIÓN DE LOS SILOS EXPERIMENTALES
| Ingrediente | Tratamiento | ||||
| T1 | T2 | T3 | T4 | Testigo | |
| Proporción (%)1 | |||||
| Estiércol de cerdo | 89.5 | 89.5 | 91.5 | 91.5 | 100 |
| Sorgo molido | 10 | 10 | 0 | 0 | 0 |
| Melaza | 0 | 0 | 8 | 8 | 0 |
| Suero de queso | 0.5 | 0 | 0.5 | 0 | 0 |
| Bio-sile™ | 0 | 0.5 | 0 | 0.5 | 0 |
1Los porcentajes están calculados con base en el peso final del microsilo en base húmeda
El ingrediente rico en carbohidratos correspondió a 10 % peso/peso (p/p) de sorgo para los tratamientos T1 y T2 y, 8 % p/p de melaza con 50 - 60 % de azucares (CONADESUCA 2016) para los tratamientos T3 y T4.
La fuente de BAL consistió en un inóculo comercial denominado Bio-sile™ para los tratamientos T2 y T4 (0.5 % p/p; Lactobacillus plantarum y Pediococcus pentosaceus, 9×109 UFC/g; Hansen, EUA), mientras que la segunda consistió en suero de leche, obtenido como subproducto de la elaboración de queso artesanal (tratamientos T1 y T3, 0.5 % peso/volumen).
Paralelamente, a partir del suero de leche se recuperaron diferentes aislamientos bacterianos mediante discriminación morfológica colonial en medios de cultivo selectivos para su posterior crioconservación, identificación y caracterización (información no incluida, artículo en proceso).
Como testigo negativo se utilizó estiércol de cerdo sin la adición de una fuente de carbohidratos, ni de bacterias ácido lácticas.
Los microsilos fueron construidos en recipientes de polipropileno estériles de 2.5 L de capacidad con tapa hermética, en los cuales se depositaron las mezclas correspondientes a cada uno de los tratamientos. Para cada tratamiento se prepararon tres microsilos (repeticiones) y se mantuvieron incubados a 25 ºC durante 21 días.
Toma de muestras
Las muestras del interior de cada uno de los microsilos fueron tomadas diariamente para la determinación del pH y a los días 0, 10 y 21 del tratamiento para la evaluación microbiológica.
Las muestras fueron colectadas en condiciones asépticas mediante el uso de sacabocados estériles para evitar la ruptura del sello superficial del microsilo y las condiciones del mismo.
Cambios en el pH de la excreta
Para la medición del pH se tomaron 10 g de muestra y se diluyeron en 50 mL de agua destilada estéril. El pH fue determinado a partir del sobrenadante obtenido por gravedad, utilizando un potenciómetro portátil marca Hanna® modelo HI 98127. La medición se llevó a cabo por duplicado (Sadzawka et al. 2005).
Evaluación microbiológica
Las unidades formadoras de colonia por gramo (UFC/g) de bacterias mesofílicas aerobias (BMA), hongos y levaduras (HyL), enterococos (ENT) y BAL se determinaron a partir de diluciones decimales seriadas de las muestras en agua estéril.
También se determinó la cuenta de organismos coliformes (pruebas presuntiva y confirmativa, OCTP y OCTC respectivamente), organismos coliformes fecales (OCF) y bacterias productoras de ácido sulfhídrico (BPAS) por la técnica del número más probable (NMP/g). Además, se realizó la búsqueda de cepas patógenas de Escherichia coli y Salmonella spp. (Pérez et al. 2013).
Análisis estadístico
El diseño experimental consistió en un experimento completamente al azar y los datos obtenidos de los análisis microbiológicos se transformaron a valores base log10. La matriz de datos fue analizada en el paquete estadístico SASTM ver. 9.3 (SAS 2012).
Se emplearon los procedimientos de: modelo general lineal (GLM), univariado y análisis de varianza (ANDEVA); se utilizó un nivel de significancia de α = 0.05 y se complementó el análisis de varianza con la comparación de medias entre tratamientos con la prueba de comparación múltiple de Tukey.
Adicionalmente se efectuaron análisis de asociación (chi cuadrado) y correlación (Pearson) con un nivel de significancia de α = 0.05 en paquete estadístico SPSS®.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Disminución del pH
Uno de los indicadores más simples para evaluar el proceso del ensilaje sobre el valor nutritivo de materiales con alto contenido de humedad es el pH. En general un valor de pH bajo en ensilados es deseable, debido a que este indica que ha ocurrido una fermentación con producción de ácido láctico (Herrera et al. 2015).
En este estudio, los resultados mostraron que el proceso de ensilaje en todos los tratamientos favoreció la disminución del pH del estiércol (Fig. 1).
Fig. 1 Valores de pH durante el proceso de ensilaje de estiércol porcino. T1: Tratamiento 1 (Estiércol+sorgo+suero de quesería); T2: Tratamiento 2 (Estiércol+sorgo+cultivo iniciador); T3: Tratamiento 3 (Estiércol+melaza+suero de quesería); T4: Tratamiento 4 (Estiércol+melaza+cultivo iniciador); Testigo: Estiércol sin aditivos
Al inicio del proceso los valores de pH de los tratamientos T3 y T4 fueron diferentes significativamente (p < 0.05) a los de los tratamientos T1, T2 y el testigo (5.77 ± 0.12 y 5.83 ± 0.06 vs 6.93 ± 0.06, 7.03 ± 0.06 y 6.72 ± 0.05, respectivamente).
En general, el pH disminuyó en los primeros 10 días del proceso de ensilaje, con lo que alcanzó valores de 4.8 ± 0.07 para los cuatro tratamientos. A partir del onceavo día, la disminución del pH fue menor.
Al final del experimento (día 21), el pH del grupo testigo se mantuvo superior (pH 5.31 ± 0.10, p < 0.05) respecto a los demás tratamientos.
Estadísticamente, el tratamiento T1 fue el que mayor disminución de pH registró (pH final de 4.60 ± 0.01), lo que marcó una diferencia significativa (p < 0.05) respecto al valor del pH de los tratamientos T2, T3 y T4 (pH de 4.7 ± 0.02).
Desde la perspectiva del pH, los niveles alcanzados indican que el proceso fue adecuado, debido a que se ha establecido previamente que un ensilado con humedad superior al 65 % que tiene valores de pH inferior a 4.8, es considerado un ensilado de buena calidad (Herrera et al. 2015).
Evaluación microbiológica
Al inicio del estudio todos los tratamientos se encontraron en igualdad de condiciones referente al contenido de bacterias para la mayoría de los grupos indicadores incluidos.
Los grupos en mayor abundancia al inicio del proceso fueron los ENT (8.38 ± 0.56 log10 UFC/g) y BAL (8.7 ± 0.22 log10 UFC/g), seguidos por los OCT y OCF (6.7 ± 0.32 log10 NMP/g), BMA (6.6 ± 0.54 log10 UFC/g) y las BPAS (6.19 ± 0.57 log10 UFC/g) (Fig. 2, Cuadro II).
Fig. 2 Comportamiento microbiológico del ensilado de estiércol porcino con diferentes formulaciones. Tratamiento T1: Estiércol+sorgo+suero de queso; Tratamiento T2: Estiércol+sorgo+cultivo iniciador; Tratamiento T3: Estiércol+melaza+suero de quesería; Tratamiento T4: Estiércol+melaza+cultivo iniciador. (OCT, OCF) Organismos coliformes totales y fecales; (H y L) Hongos y levaduras; (ENT) Enterococos; (BPAS) Bacterias productoras de ácido sulfhídrico; (BMA) Bacterias mesófilas aerobias; (BAL) Bacterias ácido lácticas
CUADRO II DETERMINACIÓN DE DIFERENTES GRUPOS INDICADORES DE MICROORGANISMOS DURANTE EL ENSILAJE DE EXCRETAS PORCINAS
| Tratamiento | BMA1 | HyL1 | OCT2 | OCF2 | ENT1 | BPAS2 | BAL1 |
| Concentración inicial (log10 UFC/g o NMP/g) | |||||||
| T1 | 6.84b ± 0.17 | 4.36a ± 0.32 | 6.82a ± 0.38 | 6.82a ± 0.38 | 8.45a,b ± 0.16 | 5.78a ± 0.51 | 8.67a,b ± 0.28 |
| T2 | 6.29b ± 0.87 | 4.20a,b ± 0.17 | 6.75a ± 0.49 | 6.53a ± 0.45 | 8.59a,b ± 0.38 | 6.32a ± 0.75 | 8.51b ± 0.08 |
| T3 | 6.35b ± 0.54 | 4.30a ± 1.5 | 6.57a ± 0.16 | 6.57a ± 0.16 | 7.65b ± 0.57 | 5.96a ± 0.37 | 8.70a,b ± 0.09 |
| T4 | 6.94b ± 0.08 | 4.45a ± 0.23 | 6.92a ± 0.22 | 6.79a ± 0.22 | 8.84a ± 0.12 | 6.70a ± 0.33 | 8.92a ± 0.22 |
| Testigo | 8.71a ± 0.25 | 3.45b ± 0.05 | 7.04a | 7.04a ± 0.0 | *** | *** | 7.83c ± 0.03 |
| Tratamiento | Concentración final (log10 UFC/g o NMP/g) | ||||||
| T1 | 5.95a ± 0.75 | 3.24a ± 0.33 | 2.15a ± 0.17 | 1.25b ± 0.62 | 0.00a | 3.63b,c ± 0.0 | 5.48c ± 0.02 |
| T2 | 4.94a,b ± 0.17 | 1.00a ± 1.73 | 1.83a ± 0.23 | 1.52a ± 0.05 | 0.00a | 3.36c ± 0.0 | 5.74b,c ± 0.10 |
| T3 | 4.99a,b ± 1.51 | 1.70a ± 2.94 | 1.52a ± 0.05 | 1.49a ± 0.0 | 0.00a | 4.04a ± 0.12 | 5.93a,b,c ± 0.01 |
| T4 | 4.43b,c ± 0.23 | 4.66a ± 0.15 | 2.06a ± 0.50 | 1.49aa ± 0.0 | 0.00a | 3.86a,b ± 0.19 | 6.24a ± 0.37 |
| Testigo | 3.56c ± 0.03 | 2.11a ± 0.09 | 1.49a ± 0.0 | 1.49a ± 0.0 | *** | *** | 6.04a,b ± 0.13 |
Los resultados están expresados en log10 de 1UFC o 2NMP de cada uno de los indicadores microbiológicos. a,b Medias dentro de la misma columna que no comparten una letra son significativamente diferentes (p<0.05).***Información no disponible. (OCT, OCF) Organismos coliformes totales y fecales; (H y L) Hongos y Levaduras; (ENT) Enterococos; (BPAS) Bacterias productoras de ácido sulfhídrico; (BMA) Bacterias mesófilas Aerobias; (BAL) Bacterias ácido lácticas
El indicador en menor proporción al inicio del experimento fue HyL (3.61 ± 0.46 log10 UFC/g). Sólo se registraron diferencias estadísticas entre tratamientos al inicio del proceso para los contenidos de ENT y BAL (p < 0.05).
Los efectos de la fermentación ácido láctica se observaron desde el día 10 del monitoreo, debido a que en ese tiempo se registraron disminuciones importantes en el contenido de todos los grupos indicadores; en tanto que se mantuvo elevada la proporción de BAL (entre 6.5 y 7.5 ± 0.31 log10 UFC/g).
El mayor efecto de disminución de la carga microbiana se observó al final del proceso de ensilaje (día 21), donde la proporción de OCT y OCF se redujo hasta valores de entre 1 y 2 log10 NMP/g. Mientras que los ENT habían llegado a niveles por debajo del límite de detección de los métodos utilizados.
Al día 21 los contenidos de BMA, HyL, BPAS y BAL presentaron diferencias significativas con respecto al contenido registrado al inicio del proceso de ensilaje (p < 0.05), con disminuciones de entre 1 y 3 log10 UFC/g para todos los tratamientos. Por su parte, el tratamiento T2 fue el que presentó menor proporción de HyL y BPAS al día 21.
En términos de reducción total del contenido de bacterias, las BMA presentaron el menor nivel de reducción y en promedio quedaron en niveles de entre 4 y 5 ± 0.89 log10 UFC/g.
No obstante, las BMA no podrían considerarse como determinante de la inocuidad del ensilado, debido a que involucran una gama amplia de géneros bacterianos tanto aerobios como anaerobios facultativos y obligados.
Niveles mayores de reducción fueron observados para OCT y OCF debido a que al final del proceso de ensilaje, los OCT se redujeron a niveles alrededor de los 2 ± 0.35 log10 NMP/g, sin mostrar diferencias significativas entre tratamientos (p > 0.05).
Por otra parte, para OCF se observó mayor reducción en el tratamiento T1 en relación al resto de los tratamientos (p < 0.05), con lo que se disminuyó al nivel de 0.6 log10 NMP/g en comparación con 1.49 log10 NMP/g para el resto de los tratamientos.
En contraste, las BPAS se mantuvieron presentes hasta el final del proceso, pero con reducciones considerables en las determinaciones. Este grupo de bacterias se redujo más en los tratamientos T1 y T2 en relación a lo determinado para los tratamientos T3 y T4 (p < 0.05).
El medio de cultivo utilizado para BPAS fue medio leche fierro, para determinar el fenómeno “fermentación tormentosa” (fermentación de la leche y fractura del cuajo), que es utilizado como prueba presuntiva para especies del género Clostridium, que está asociado a la producción de olores indeseables característicos del estiércol (Navarro et al. 2009).
Las bacterias del género Clostridium se han reportado como parte de la microbiota del estiércol porcino y se caracterizan por ser anaerobios obligados, esporulados, con crecimientos a temperaturas de entre 30 y 37 ºC a pH de 6.5 a 7 (Zhu 2000), lo que dificulta su eliminación.
Sin embargo, la reducción determinada en el presente estudio para BPAS podría ser un factor clave en la eliminación de malos olores.
Además, la hidrólisis de carbohidratos, proteínas y ácidos grasos asociadas al proceso de fermentación ácido láctica (Hansen y Schieberle 2005), se puede relacionar con cambios percibidos en el olor de la excreta durante el proceso de ensilaje, que fue menos desagradable al olfato al final del proceso.
Para confirmar los cambios en las características sensoriales del estiércol, es necesario realizar estudios que incluyan la medición de compuestos asociados al olor, como es el análisis de compuestos volátiles, entre otros.
Es importante mencionar que los niveles de reducción del contenido de bacterias en los tratamientos incluidos son comparables con las reducciones reportadas mediante la aplicación de otro tipo de tratamientos.
Masse et al. (2001), a través de digestión anaerobia a 24 ºC, reportan reducciones de entre 2.6 y 2.9 log10 tanto para OCF como para Salmonella respectivamente, a partir del día 7 de tratamiento y con reducciones totales a los 28 días.
Sin embargo, los autores de dicha referencia reportan reducciones poco significativas para Clostridium perfringens y Enterococcus spp. con este tratamiento (entre 0 y 0.8 log10); en contraste con lo obtenido en el presente estudio, donde se observó la eliminación completa de los ENT.
Otro tratamiento comparable en niveles de reducción de cuentas bacterianas en estiércol es la pasteurización.
Sahlström et al. (2008) reportan que para eliminar los enterococos en residuos biológicos utilizados para la producción de biogás, es necesario aplicar pasteurización a 70 ºC durante 30 min, con lo que además se elimina en su totalidad OCT y OCF.
No obstante, a pesar de la intensidad del tratamiento, los autores reportan conteos de más de 4 log10 UFC/g para C. perfringens posterior a la aplicación del tratamiento.
Los resultados obtenidos en esta investigación también son comparables, e incluso superan a algunos reportes, en los que se evalúa el efecto de la acidificación a temperatura ambiente de estiércol o el uso de biofiltros sobre la reducción del contenido de bacterias (De la Torre et al. 2000, Sahlström et al. 2008, Zhang et al. 2011, McCarthy et al. 2015).
En contraste, sobre la presencia de BAL en todos los tratamientos, no se observó reducción significativa y al día 21, la cantidad de estos microorganismos se mantuvo en el orden de los 6 log10 UFC/g.
Es importante mencionar que en los tratamientos T3 y T4 se determinaron las mayores concentraciones de BAL al final del proceso, en comparación con los tratamientos T1 y T2 (p < 0.05).
El grupo de las BAL incluye un conjunto amplio de géneros relacionados por sus características tanto morfológicas como fisiológicas, y cuya actividad principal es la producción de ácido como resultado de la fermentación de carbohidratos, por lo que son consideradas como determinantes en los ensilados (Axelsson 2004).
Diversos factores, como el contenido y tipo de carbohidratos y concentración de materia seca, influyen en la prevalencia de las BAL durante la fermentación de los silos, asociado además a las características propias de estas bacterias como la osmotolerancia y su diversidad metabólica (Woolford 1984, McDonald et al. 1991, Oude Elferink et al. 1999).
Lo observado en este estudio coincide con el comportamiento típico de las BAL en ensilados, que incluye un aumento en su concentración durante las etapas iniciales del proceso, para posteriormente disminuir a medida que el pH desciende y se limita la disponibilidad de nutrientes (Kim et al. 2016, Ni et al. 2017).
Para ensilados de producción se ha reportado que los géneros de BAL predominantes son Lactobacillus, Pediococcus, Leuconostoc, Enterococcus, Lactococcus y Streptococcus que, en su mayoría, son bacterias anaerobias facultativas y mesófilas, con la capacidad de acidificar el medio a niveles de pH de entre 4 y 5 (Oude et al. 1999).
Adicionalmente, se ha establecido que el proceso de ensilaje de materiales vegetales debe incluir cuatro fases principales diferenciadas: aeróbica, de fermentación, estable y de deterioro (Weinberg y Muck 1996, Merry et al. 1997).
Las tres primeras fases corresponden a una disminución importante en los valores del pH, reducción de indicadores microbiológicos y aumento en la acidez, mientras que en la etapa final se deben mantener los niveles de BAL y de acidez, para poder así realizar la apertura del silo (Weinberg y Muck 1996, Merry et al. 1997).
En el presente estudio fue posible diferenciar las cuatro fases del proceso de ensilaje, a efecto de los cambios en el pH que, a su vez, favorecieron la disminución de los indicadores microbiológicos incluidos.
Referente a la búsqueda de microorganismos patógenos, es importante señalar que en el desarrollo experimental las determinaciones fueron negativas para aislados o cepas patógenas de Salmonella spp. y Escherichia coli.
Asociación de los componentes del ensilado con la disminución de la carga microbiana
Se determinó el efecto de la fuente de carbohidratos (FC) y la fuente de BAL (FI) en la disminución de los diferentes indicadores microbiológicos (Cuadro III).
CUADRO III EFECTO DE LA FUENTE DE CARBOHIDRATOS (FC) Y LA FUENTE DE BAL (FI) SOBRE LA REDUCCIÓN DEL pH y BACTERIAS DURANTE EL ENSILAJE DE ESTIERCOL PORCINO
| Indicador microbiológico | ||||||||
| BMA1 | HyL1 | OCT2 | OCF2 | ENT1 | BPAS2 | BAL1 | pH | |
| Concentración Inicial (log10 UFC/g o NMP/g) | ||||||||
| FC/FI | ||||||||
| Sorgo/Suero (T1) | 6.84b ± 0.17 | 4.36a ± 0.32 | 6.82a ± 0.38 | 6.82a ± 0.38 | 8.45a,b ± 0.16 | 5.78a ± 0.51 | 8.67a,b ± 0.28 | 6.93a ± 0.06 |
| Sorgo/Biosile (T2) | 6.29b ± 0.87 | 4.20a,b ± 0.17 | 6.75a ± 0.49 | 6.53a ± 0.45 | 8.59a,b ± 0.38 | 6.32a ± 0.75 | 8.51b ± 0.08 | 7.03a ± 0.06 |
| Melaza/Suero (T3) | 6.35b ± 0.54 | 4.30a ± 1.5 | 6.57a ± 0.16 | 6.57a ± 0.16 | 7.65b ± 0.57 | 5.96a ± 0.37 | 8.70a,b ± 0.09 | 5.83b ± 0.12 |
| Melaza/Biosile (T4) | 6.94b ± 0.08 | 4.45a ± 0.23 | 6.92a ± 0.22 | 6.79a ± 0.22 | 8.84a ± 0.12 | 6.70a ± 0.33 | 8.92a ± 0.22 | 5.83b ± 0.06 |
| Testigo | 8.71a ± 0.25 | 3.45b ± 0.05 | 7.04a ± 0.0 | 7.04a ± 0.0 | *** | *** | 7.83c ±0.03 | 6.95a ± 0.19 |
| Concentración final (log10 UFC/g o NMP/g) | ||||||||
| FC | ||||||||
| Sorgo (T1,T2) | 5.45a±0.74 | 1.89a± 1.74 | 1.99a ± 0.25 | 1.38a ±0.43 | 0a | 3.48b± 0.15 | 5.61b ± 0.16 | 4.65c ± 0.55 |
| Melaza (T3, T4) | 4.66b± 0.98 | 2.80a± 2.47 | 1.77a ± 0.44 | 1.49a ± 0.0 | 0a | 3.95a ± 0.18 | 6.08a ± 0.29 | 4.70b± 0.0 |
| Testigo | 3.56c ± 0.03 | 2.11a ± 0.09 | 1.49a ± 0.0 | 1.49a ± 0.0 | *** | *** | 6.04a,b ± 0.13 | 5.30a ± 0.02 |
| FI | ||||||||
| Suero (T1, T3) | 5.57a ± 1.46 | 1.62a ± 2.22 | 1.82a ± 0.37 | 1.36a ± 0.42 | 0a | 3.84a ± 0.23 | 5.70b ± 0.25 | 4.65c ± 0.06 |
| Bio-sile™ (T2, T4) | 4.67b± 0.33 | 2.83a ± 2.29 | 1.95a ± 0.37 | 1.50a ± 0.03 | 0a | 3.61b± 0.30 | 5.99a,b± 0.37 | 4.70b± 0.0 |
| Testigo | 3.56c ± 0.03 | 2.11a ± 0.09 | 1.49a ± 0.0 | 1.49a ± 0.0 | *** | *** | 6.04a,b ± 0.13 | 5.30a ± 0.02 |
Los resultados están expresados en log10 de 1UFC o 2NMP de cada uno de los indicadores microbiológicos. a,bMedias dentro de la misma columna que no comparten una letra son significativamente diferentes (p<0.05).***Información no disponible. (OCT, OCF) Organismos coliformes totales y fecales; (HyL) Hongos y Levaduras; (ENT) Enterococos; (BPAS) Bacterias productoras de ácidosulfhídrico; (BMA) Bacterias mesófilas Aerobias; (BAL) Bacterias ácido lácticas.
El descenso del pH es deseable en los procesos de ensilaje y, en ese contexto, se observó que en los tratamientos con sorgo y suero de leche (tratamiento T1), hubo niveles más bajos de pH en comparación con lo observado en los tratamientos con melaza o con el cultivo iniciador comercial (p < 0.05).
Específicamente con el uso de sorgo (tratamientos T1 y T2) en contraste con el uso de melaza (tratamientos T3 y T4), se observó una mayor disminución en la cantidad de HyL, debido a que el contenido de este grupo de microorganismos al final del proceso fue menor en los tratamientos con sorgo como fuente de carbohidratos.
El mismo comportamiento en el contenido de HyL se observó para los tratamientos que incluyeron suero como fuente adicional de BAL, en relación con los que incluyeron el cultivo iniciador.
Por su parte, la FC parece no ser determinante para la reducción o eliminación de OCT, OCF y ENT, debido a que las reducciones observadas para estos indicadores fueron independientes de la FC e incluso de la FI.
En contraste, tanto la FC como la FI tuvieron efecto sobre la reducción de las BPAS, ya que menor contenido de este grupo de bacterias se observó en los tratamientos con sorgo en relación con los que incluyeron melaza.
De igual manera se observó mayor disminución de las BPAS en los tratamientos con suero obtenido de queso en comparación con los que incluyeron el cultivo iniciador comercial (p < 0.05).
Las mayores reducciones de los grupos indicadores fueron observadas en los tratamientos con sorgo como FC respecto a los tratamientos con melaza; este resultado podría estar relacionado con el hecho de que el sorgo podría aumentar el contenido de materia seca en el ensilado y generar una mezcla más homogénea.
A diferencia del uso sorgo, el de melaza, cuya viscosidad la vuelve un material más difícil para su homogeneización durante el preparado, genera mezclas heterogéneas y de difícil manejo (Titterton y Barreba 2001).
Los resultados obtenidos mostraron que el suero proveniente de queso fue mejor como FI en relación al uso de cultivo iniciador para la disminución del pH y control de algunos indicadores microbiológicos (Cuadro III).
Este resultado podría estar asociado a una mayor diversidad de BAL en el suero, lo que favorecería mayor acumulación de ácidos orgánicos, metabolitos secundarios y sustancias diversas que producen estas bacterias (Parra 2010).
Con respecto al grado de relación entre variables, a través del análisis de chi cuadrado (Χ2), se observaron relaciones significativas (p < 0.05) entre el pH de los microsilos y el contenido de algunos grupos de microorganismos como HyL, OCF, ENT, BAL y BPAS
De manera similar, a través del análisis de correlación, se corroboró que la disminución de algunos de los grupos indicadores está correlacionada significativamente (p < 0.05) con la disminución del pH, incluido el contenido de BMA (ρ = 0.429), OCT (ρ = 0.850), OCF (ρ = 0.820), ENT (ρ = 0.667) y BPAS (ρ = 0.500).
Por lo tanto, se puede inferir que el pH es una de las variables determinantes para la reducción de la carga microbiana de la excreta porcina.
La disminución del pH en la excreta se puede relacionar con la presencia de las BAL (principales responsables de la fermentación), que, aunque disminuyeron junto con el pH (P = 0.514, p < 0.05), al final del proceso fue el grupo de mayor abundancia en relación con el resto de los grupos indicadores evaluados.
Los resultados sugieren, por lo tanto, que es importante para el ensilaje de excretas porcinas mantener una abundancia relativa alta de BAL para lograr la reducción del pH y limitar la sobrevivencia de microorganismos no deseados.
CONCLUSIONES
El uso de bacterias ácido lácticas y una fuente de carbohidratos, como promotores para el establecimiento del ensilaje, resultó una estrategia efectiva para reducir la carga microbiana del estiércol porcino.
Los resultados se asociaron principalmente a la disminución del pH como factor determinante y que, a su vez, se relacionó directamente con la cantidad de BAL presentes en el proceso, que además se favoreció con la inclusión de sorgo como fuente alterna de carbohidratos.
La disminución de la carga microbiana del estiércol podría contribuir a la descontaminación de las excretas porcinas con fines de inclusión en un esquema de aprovechamiento y manejo integrado de residuos.
