En México, se sembraron 154, 346.49 ha del cultivo de chile en el año 2020, con una producción de 3, 027, 855.06 toneladas; siendo los estados de Zacatecas, Chihuahua y San Luis Potosí los principales producto res ^{(SIAP 2021)}. Sin embargo, las enfermedades causa das por hongos y Oomicetos que se encuentran en el suelo, son un factor limitante en la producción de chi le ^{(Palma et al. 2017)}. A este cultivo se asocian como agentes causales de la “marchitez del chile” a los hon gos fitopatógenos Phytophthora capsici, Rhizoctonia solani y Fusarium oxysporum ^{(Lozano et al. 2015)}. En el orden Mortierellales se han descrito100 especies en 13 géneros de la Familia Mortierellaceae ^{(Kirk et al. 2008)}. Las principales especies del género Mortierella consideradas por ^{Yadav et al. (2014)} son M. alliacea, M. alpina, M. polycephala, M. elongata, M. spinosa, M. gamsii, M. isabellina, M. humilis, y M. reticulata; sin embargo, de acuerdo con ^{Vandepol et al. (2020)} cinco especies conforman este género. Algunas de estas especies como M. alpina producen ácidos grasos poliinsaturados como el ácido araquidónico ^{(Ho et al. 2007}, ^{Rayaroth et al. 2017)} reportado como inductor de resistencia en cultivos hortícolas ante la presencia de fitopatógenos ^{(Zlotek y Wojcik 2014)}, además se ha descrito a Mortierella sp. como solubilizadora de fosforo ^{(Ramírez et al. 2013)}. En México se reportó a Mortierella elongata como patógeno del cultivo de aguacate ^{(Hernández et al. 2018)}. Por otra parte, ^{Mares et al. (2017)} aislaron diferentes especies de Mortierella en manzano, pero ninguna resultó patogénica. Por lo anteriormente expuesto el objetivo de este trabajo fue identificar un hongo aislado de raíces de chile del que se sospecha corresponde al género Mortierella por sus características microscópicas, además de evaluar su patogenicidad.

Se colectaron plantas de chile serrano (Capsicum annuum L.) en el ciclo primavera-verano del año 2017, con síntomas de amarillamiento y marchitez en lotes comerciales establecidos en Altamira, Tamaulipas, México (22° 21’ 24.8” N 98° 02’ 23.1” W, 22° 21’ 28.5” N 98° 02’ 11.6” W, 22° 20’ 57.5” N 98° 00’ 05.5” W). Las muestras de raíz de las plantas se lavaron una vez con agua corriente para eliminar el exceso de suelo y fueron secadas a temperatura ambiente, se cortaron secciones de 0.5 cm de tejido necrosado y se desinfectaron con hipoclorito de sodio al 3 % por 1 min, se lavaron tres veces con agua destilada estéril y se colocaron sobre toallas de papel estéril para secarse. El tejido vegetal se depositó en cajas Petri con medio de cultivo papa dextrosa agar (PDA) adicionado con 3 g de extracto de malta y se incubó a 25 °C en oscuridad por cinco días hasta obtener crecimiento micelial. Los diferentes aislamientos fueron observados en un microscopio estereoscopio y la purificación se realizó por punta de hifa, incubando las cepas en las mismas condiciones anteriormente mencionadas por 72 h. Los aislamientos se identificaron por sus características morfológicas a nivel de género de acuerdo con ^{Watanabe (2010)} observándose a través de un microscopio compuesto bifocal Olympus CX41 y un microscopio electrónico Hitachi TM3000. Posteriormente se realizó la identificación molecular a 6 aislamientos, el ADN del hongo fue extraído por el método descrito por ^{Velarde et al. (2015)}, la amplificación se realizó mediante el método de reacción en cadena de polimerasa (PCR) de las regiones espaciadoras internas transcritas ITS1 e ITS4 entre los genes ribosomales 18S y 28S, utilizando el par de iniciadores ITS1: 5’- TCC GTA GGT GAA CCC TGC GG-3’ e ITS4: 5’- TCC TCC GCT TAT TGA TAT GC-3’, mediante el método propuesto por ^{O´Donell et al. (1998)} y ^{Geiser et al. (2004)}.

Los productos amplificados fueron analizados mediante electroforesis en geles de agarosa al 1 %, y posteriormente se mandaron secuenciar en el Laboratorio Nacional de Biotecnología Agrícola, Médica y Ambiental del Instituto Potosino de Investigación Científica y Tecnológica (IPICYT), San Luis Potosí, México. La búsqueda de similitud entre las secuencias obtenidas se realizó en el banco de genes del National Center for Biotechnology Information (NCBI) utilizando el programa BLAST, de esta manera se identificaron los valores en homología para los aislamientos obtenidos. Para corroborar la patogenicidad de las seis cepas, se inocularon plantas de chile serrano con 10 cm de altura, las cuales fueron trasplantadas en vasos de plástico con capacidad de 300 g de suelo estéril, para la inoculación se tomó un fragmento de PDA con crecimiento micelial de 1 cm de diámetro y se colocaron en el sustrato junto a la raíz, de acuerdo la metodología utilizada por ^{Silva-Rojas et al. (2009)}.

De acuerdo con la identificación morfológica, se obtuvieron seis aislados de Mortierella sp. (Figura 1) que desarrollaron crecimiento radial en forma de roseta de color blanco en medio PDA, con micelio hialino y cenocítico, con clamidosporas intercalares y esporangios terminales ovalados, características que reportan las claves taxonómicas de ^{Watanabe (2010)}.

Figura 1 Aislamientos de Mortierella sp. a-b: Morfología de Mortierrella sp., micelio en medio de cultivo PDA. c: Clamidospora intercalar con hifas septadas. d-f: Esporangios y esporangioforos terminales. 

En cuanto a la identificación molecular se corroboró la identidad de la cepa Mortierella sp. con 577 pb y 100 % de similitud con el número de acceso MF423591, según las secuencias disponibles en la base de datos del GenBank (NCBI), la secuencia de los aislamientos se depositó en el GenBank con número de acceso ON113022. Las plantas de chile inoculadas con Mortierella sp., se evaluaron transcurridos 15 días, no se observaron síntomas de enfermedad al igual que las plantas testigo, esto concuerda con el estudio realizado en el cultivo de manzano, donde las cepas aisladas de Mortierella no resultaron patogénicas ^{(Mares et al. 2017)}. Se reporta el aislamiento, hallazgo y presencia de Mortierella sp. asociada al cultivo de chile en Tamaulipas, México.