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Revista mexicana de ciencias agrícolas

versión impresa ISSN 2007-0934

Rev. Mex. Cienc. Agríc vol.14 no.8 Texcoco nov./dic. 2023  Epub 09-Feb-2024

https://doi.org/10.29312/remexca.v14i8.3208 

Artículos

Efecto antifúngico y estudio químico de Eysenhardtia polystachya (Fabaceae) sobre Phaneroquete crysosporum y Ganoderma lucidium

César Bonifacio Ramírez López1 

Sonia Pérez-Mayorga1 

Ernesto Ramírez Briones1 

Ramón Macias Rodríguez1 

Eduardo Salcedo-Pérez1  § 

1Departamento de botánica y zoología-Centro Universitario de Ciencias Biológicas y Agropecuarias. Carretera Guadalajara-Nogales km 15.5, Jalisco, México. CP. 45200. Tel. 33 37771150, ext. 32924. (cesar.ramirezl@academicos.udg.mx; soniapermay@hotmail.com; ernesto.ramirez@academicos.udg.mx; ramon.rmacias@academicos.udg.mx; eduardo.salcedo@academicos.udg.mx).


Resumen

Las especies forestales, son fuente de productos maderables y no maderables. Además de ser importante en la obtención de extractos botánicos, contienen en sus tejidos numerosos metabolitos secundarios a los que se les han reconocido por su diversidad y actividad bilógica. considerados como una alternativa contra hongos causantes de pudrición y degradación en la madera (hongos xilófagos), así como los hongos causantes de enfermedades en cultivos agrícolas. En este sentido, se propuso el estudio de Eysenhardtia polystachya como fuente preservante natural de madera debido a su alta resistencia a la pudrición de sus tallos. Para ello, se obtuvieron extractos con disolventes de diferentes polaridades a partir de hoja, albura y duramen. Se realizó un escrutinio y selección de los extractos con mayor eficacia en Phaneroquetes crysosporum y Ganoderma lucidium; se sometió a cromatografía en columna. Se determinó el contenido de fenoles y flavonoides. Los extractos de hoja presentaron selectividad en cuanto a su inhibición micelial en P. crysosporum con mayor sensibilidad a los extractos que G. lucidium. El efecto sinérgico de los compuestos presentes favorece la inhibición en P. crysosporum. Por lo que, E. polystachya presenta compuestos químicos que pueden preservar la madera y prolongar su tiempo de uso ante el ataque por hongos xilófagos, así como generar un control en hongos fitopatógenos.

Palabras claves: hongos xilófagos; inhibición micelial; metabolitos secundarios

Abstract

Forest species are a source of timber and non-timber products. In addition to being important in obtaining botanical extracts, they contain in their tissues numerous secondary metabolites that have been recognized for their diversity and biological activity, considered as an alternative against fungi that cause rot and degradation in wood (xylophagous fungi), as well as fungi that cause diseases in agricultural crops. In this sense, it was proposed to study Eysenhardtia polystachya as a natural preservative source of wood due to its high resistance to stem rot. For this, extracts were obtained from leaf, sapwood, and heartwood with solvents of different polarities. Scrutiny and selection of the extracts with greater efficacy in Phanerochaete chrysosporium and Ganoderma lucidum were carried out; they were subjected to column chromatography. The content of phenols and flavonoids was determined. The leaf extracts showed selectivity regarding mycelial inhibition in P. chrysosporium, with greater sensitivity to the extracts than G. lucidum. The synergistic effect of the compounds present favors inhibition in P. chrysosporium. Therefore, E. polystachya presents chemical compounds that can preserve the wood and prolong its use time against attack by xylophagous fungi and generate control in phytopathogenic fungi.

Keywords: mycelial inhibition; secondary metabolites; xylophagous fungi

Introducción

La madera como recurso natural renovable juega un papel importante en la economía mundial, particularmente en la construcción y fabricación de muebles (González- Laredo et al., 2015). Como cualquier otro material orgánico, la madera es susceptible al deterioro por factores mecánicos y factores biológicos principalmente por insectos y hongos degradadores (xilófagos) (Goktas et al., 2007). Para proteger y prolongar la vida útil de los productos que utilizan madera se han desarrollado diferentes compuestos químicos sintéticos, los cuales, no han sido muy aceptados debido a que en su mayoría contienen compuestos tóxicos que dañan la salud y contaminan el ambiente, como suelos y aguas.

Por lo anterior, una de las prioridades para la preservación de la madera es buscar alternativas amigables con el ambiente que permitan reducir el uso de estos compuestos químicos y así evitar en lo posible efectos negativos (Tascioglu et al., 2013). Considerando que las plantas sintetizan y almacenan diversos metabolitos secundarios con actividad biológica, los cuales pueden ser extraídos para evaluar su potencial uso como alternativa sustentable (Stevenson et al., 2017; Shakya et al., 2019).

Desde hace más de 100 años, varias especies vegetales han sido consideradas como opción para evaluar sus extractos o alguna de sus fracciones como agentes de control biológico contra organismos relacionados con la degradación de la madera, principalmente termitas y hongos xilófagos (Ramírez-López et al., 2016).

Así; por ejemplo, Goktas et al. (2007) mencionó que los efectos antifúngicos de extractos obtenidos de hojas y flores de Nerium oleander contra los hongos Postia placenta y Trametes versicolor. Como plantea Tascioglu et al. (2013) muchas especies arbóreas han demostrado tener diversas funciones en ámbitos agronómicos (control de plagas), industrial (madera de uso en construcción) y medicinal, la corteza de mimosa (Acacia mollissima) y quebracho (Schinopsis lorentzii) mostraron ser eficientes contra los hongos degradadores de la madera: Trametes versicolor, Pleurotus ostreatus, Gloeophyllum trabeum y Fomitosis palustris.

Por su parte, Brocco et al. (2017) en un estudio para evaluar el potencial de preservación de la madera reportaron efectos favorables de extractos etanólicos obtenidos del duramen de teca (Tectonia grandis) contra Postia placenta. En otro estudio más reciente Lajnef et al. (2018) reportaron que los extractos de granada (Punica granatum) y Melia azederach obtenidos de la corteza fueron eficientes como agentes antifúngicos contra Coriolus versicolor y Coniophora puteana, mejorando la durabilidad de las maderas de haya y pino marítimo.

A pesar de los estudios existentes sobre el efecto de extractos de plantas sobre el crecimiento de hongos degradadores de la madera, en México existe una diversidad de especies vegetales que no han sido evaluadas para conocer su potencial como fuente de compuestos naturales con actividad antifúngica, como es el caso de la leguminosa conocida como ‘palo dulce’ o ‘palo azul’ Eysenhardtia polystachya (Fabaceae).

Aunque es reconocida esta especie arbórea en la medicina tradicional (Pablo-Pérez et al., 2016) y existen estudios de extractos con propiedades farmacológicas (Pablo-Pérez et al., 2018), los reportes de actividad antimicrobiana aún son limitados. Otros reportes consideran que los extractos de hoja de E. polystachya demostraron un efecto sobre el crecimiento de microorganismos patógenos como Escherichia colli. (Alonso-Castro et al., 2018).

Uno de los estudios realizados en el grupo de trabajo se demostró que los extractos obtenidos de albura y duramen de E. polystachya inhibían el crecimiento micelial en los hongos Rizoctonia solani y Sclerotium cepiporum (Bernabé-Antonio et al., 2017). El objetivo de este estudio fue evaluar el efecto anti-fúngico y químico de diferentes extractos obtenidos del ‘palo dulce’ E. polystachya contra Phaneroquete crysosporum y Ganoderma lucidium.

Materiales y métodos

Recolecta de Eysenhardtia polystachya

En julio de 2019 se recolectó hojas y tallos del arbusto E. polystachya en poblaciones silvestres localizadas en las comunidades de San Luciano y las Trojes municipio de Jocotepec, Jalisco. Entre las coordenadas 20° 10’ 00’’ de latitud norte y los 103° 17’ 30’’ longitud oeste a 1 840 msnm. El espécimen se trasladó al Laboratorio de productos naturales del Departamento de Madera Celulosa y Papel (Universidad de Guadalajara), donde fue procesado para obtener la biomasa de sus diferentes órganos (hojas, albura y duramen). Las muestras del espécimen colectado del arbusto se clasificaron de acuerdo con lo reportado con la Red de Herbarios del Noroeste de México.

Obtención de extractos

Se obtuvieron 238 g de hojas a partir del secado a temperatura ambiente y molienda de estas, para obtener las muestras del tejido leñoso se procedió al descortezado de tallos, astillado y molido de las astillas (malla 1 mm) para obtener 300 g de aserrín de albura y 285 g de duramen. Cada una de las muestras fueron maceradas con disolventes en polaridad ascendente (hexano, diclometano y metanol).

La maceración con hexano se realizó durante tres días, se filtró con papel Whatman® poro mediano (Sigma Aldrich, USA), se concentró en un rotavapor a 65 °C Rotava-RE-114 and vacuum pump B-169 (Büchi, Switzerland). Posteriormente, la biomasa se dejó secar a temperatura ambiente para someter a maceración con diclometano, se concentró en un rotavapor a 35 °C. Posteriormente, las mismas muestras fueron maceradas con metanol y concentradas a 75 °C. El extracto hexánico fue desengrasado, para obtener un extracto graso y uno libre de grasa.

A partir de los extractos diclorometánicos, se obtuvieron dos fracciones, la del primer lavado con hexano y la segunda con acetato de etilo. Obteniendo un total de 15 extractos, cinco extractos por tipo de biomasa vegetal (albura, duramen y hoja) que fueron empleados para la evaluación contra los hongos xilófagos Phaneroquete crysosporum y Ganoderma lucidium.

Cepas de Phaneroquete crysosporum y Ganoderma lucidium

Los hongos empleados para este estudio fueron obtenidos de cepas puras resguardadas en tubos de ensayo a 26 °C, otorgadas por el laboratorio de Bioingeniería del Departamento de Madera, Celulosa y Papel del Centro Universitario de Ciencias Exactas e Ingenierías de la Universidad de Guadalajara, se reactivaron en cajas de petri con agar papa dextrosa para someterá evaluación en presencia de los extractos.

Evaluación de los extractos contra P. crysosporum y G. lucidium.

Preparación de los extractos orgánicos

Los extractos obtenidos fueron disueltos en etanol al 96° (1mg ml-1). Se utilizó como control positivo, el Cercobin® (tiofanato de metilo) y como control negativo el etanol. El diseño experimental de los tratamientos que fueron evaluados en bloques como se muestran en el Cuadro 1, donde se realizó un modelo completamente al azar con una n= 3 por tratamiento.

Cuadro 1 Diseño experimental de la actividad anti-fúngica vs P. crysosporum y G. lucidium de los extractos orgánicos obtenidos (n= 3, por tratamiento). 

Extracto Órgano 1 2 3 4 5
Hoja T1 T2 T3 T4 T5
Albura T6 T7 T8 T9 T10
Duramen T11 T12 T13 T14 15
Control (+) Cercobin® T16 Control (-) Etanol T17

1= extracto graso (EG); 2= extracto hexánico desengrasado (EHD); 3= extracto diclorometano-acetato de etilo (EDA); 4= extracto diclorometano-hexano (EDH); y 5= extracto metanólico (EM). Cada uno con albura, duramen y hoja.

Evaluación por el método de difusión en agar

Para cada hongo se prepararon 15 cajas de Petri (55 x 15 mm) con agar papa dextrosa y en cada caja se colocaron cinco discos de papel filtro Whatman® (Sigma Aldrich, USA) de 0.5 mm de diámetro. Cada disco fue impregnado con 10 µl de cada extracto en estudio. En todas las cajas se incluyeron el control positivo (fungicida) y control negativo (etanol). Posteriormente, sobre cada disco se colocó 1 mm3 del micelio de cada hongo; y se incubo a 36 ±2 °C por 72 h. Los datos obtenidos fueron reportados como porcentaje de inhibición mediante la medición del halo de crecimiento del micelio control con respecto a los tratamientos, como se muestra en siguiente fórmula: inhibición (%)= [(Cc - Ct)/ (Cc + Ct)]*100. Donde: Cc= crecimiento control; y Ct= crecimiento tratado. Se realizó un análisis de varianza y una comparación de medias con una prueba de Tukey (α= 0.05) Stadistic versión 7.

Fraccionamiento de los extractos con mayor actividad antifúngica contra P. crysosporum y G. lucidium

Los extractos de hoja que tuvieron mejor efecto antifúngico fueron fraccionados por cromatografía en columna y analizada su actividad sobre los hongos. La cromatografía se realizó utilizando como fase estacionaria sílica gel y como fase móvil una mezcla de hexano/acetato de etilo en polaridad ascendente. Cada fracción obtenida constituyó un tratamiento evaluado, de acuerdo con la metodología mencionada para los extractos (Cuadro 1).

Determinación de fenoles y flavonoides totales en las fracciones seleccionadas

Se realizó una determinación de fenoles totales donde se extrajo con 5 ml de metanol y centrifugación a 6 000 rpm durante 20 min, posteriormente se determinó la concentración de fenoles mediante el método de Folin-Ciolcalteau (Yim et al., 2012), utilizando ácido gálico como estándar. Los resultados obtenidos fueron expresados como mg de ácido gálico equivalentes por gramo de muestra (mg GAE g-1 DW).

La determinación del contenido total de flavonoides fue de acuerdo con el método utilizado por Liu et al. (2009). Para la curva estándar se utilizó la quercetina como indicador, está se realizó de acuerdo con el protocolo utilizado por Bernabé-Antonio et al. (2017) y los resultados fueron reportados como miligramog de quercetina equivalentes por gramo de muestra (mg QE g-1 DW).

Resultados y discusión

Efecto de los extractos sobre el crecimiento micelial en G. lucidium y P. crysosporum

Se encontró que los extractos de E. polystachya presentaron efecto fungicida y fungistático sobre el desarrollo del micelio en ambos hongos degradadores de madera, al igual ha sido reportado en trabajos que muestran la eficacia de otros extractos vegetales con el mismo efecto para hongos xilófagos que ocasionan daños considerables a cultivos de importancia agrícola (Bahraminejad et al., 2015).

Los resultados demuestran que existe selectividad de los extractos de E. polystachya; P. crysosporum (fitopatógeno) resultó sensible, mientras que G. lucidium (hongo de importancia medicinal) presentó mayor resistencia. Algunos extractos demostraron inhibir el crecimiento del hongo hasta su totalidad (fungicida), mientras otro grupo de extractos solo detuvieron el crecimiento (fungistático), al igual que los reportados por Bernabé-Antonio et al. (2017) para R. solani y S. cepivorum como se muestra en el Cuadro 2.

Cuadro 2 Porcentaje de inhibición de los tratamientos evaluados en P. crysosporum y G. lucidium  

Tipo de biomasa
Hoja (%) Duramen (%) Albura (%)
Pc Gl Pc Gl Pc Gl
T1 14 ±1.9 d 0 T6 24 ±4.1 c 0 T11 45 ±4.1 a 0
T2 20 ±4.3 d 0 T7 78 ±7.1 a 0 T12 30 ±6.1 ab 42 ±2.1 a
T3 84 ±3.2 b 0 T8 70 ±6.3 a 0 T13 28 ±1.2 ab 0
T4 57 ±2.4 c 50 ±3.2 T9 60 ±1.8 ab 48 ±4.7 T14 25 ±4.2 b 28 ±2.6 b
T5 100 ±0 a 0 T10 57 ±1.3 b 56 ±6.2 T15 6 ±0.9 c 18 ±1.5 c

Los tratamientos se delimitan en el Cuadro 2. Pc = P. crysosoporum; Gl = G. lucidium. Valores con la misma letra en la misma fila no presentaron diferencia significativa, de acuerdo con la prueba de Tukey con α= 0.5.

Para el presente trabajo se consideró efecto fungicida, los extractos que inhibieron el crecimiento del hongo en un porcentaje igual o mayor al 70% y fungistático con una inhibición menor de 70%. Los extractos con mayor efecto sobre P. crysosporum fueron diclorometano-hexano de hoja (E3H) con un 84 ±3.2% y el extracto metanólico de hoja (E5H) con 100% de inhibición sobre el crecimiento micelial (Cuadro 2).

El tratamiento T4 (diclorometano/hexano) fue seleccionado para fraccionar por cromatografía en columna y determinar la eficacia de los metabolitos secundarios responsables de inhibir el crecimiento micelial en P. crysosporum. La eficacia de los extractos se muestra en la Figura 1, donde se observa la inhibición del crecimiento micelial de los hongos comparados con los controles positivos y negativos con un 70 y 100% (Figura 1a y 1b). Los compuestos presentes en los extractos pueden dificultar la eficacia que puede ejercer como sinergismo sobre el hongo. Por lo que es imposible determinar la efectividad química y funcionalidad en una mezcla compleja.

Figura 1 Efecto de los extractos diclorometanólicos/hexano de hoja (T4 disco 3) sobre el crecimiento micelial en P. crysosporum a las 72 h (a). Extracto hexánico desengrasado (T2 disco 2) (b). Los discos 6 (S/tratamiento), disco 1 (fungicida) para todos los experimentos. 

A partir de los extractos que presentaron efecto fungicida en P. crysosporum se obtuvieron 25 fracciones del extracto diclorometano/hexano de hoja (T4) con un rendimiento de 0.7 al 3.5%. En el Cuadro 3 se muestra el efecto de las fracciones obtenidas del extracto seleccionado sobre el crecimiento micelial. La fracción 16 (T4-16) fue la que presentó mayor efecto fungicida (88.2 ±9.8%) sobre S. cepivorum, coincidiendo con las concentraciones más altas de fenoles totales (17.61 ±1.31 mg GAE g-1 DW) y flavonoides (8.93 ±1.23 mg QE g-1 DW).

Cuadro 3 Efecto inhibitorio de las fracciones obtenidas del extracto diclorometano/hexano de Hoja (T4) y el contenido de fenoles totales y flavonoides. 

Tratamiento Inhibición del crecimiento micelial (%) Determinación de compuestos aromáticos
P. crysosporum R. solani S. cepivorum Fenoles totales (mg GAE g-1 DW) Flavonoides (mg QEg-1 DW)
T4-1 NA NA 10.1 ±0.6 ND ND
T4-4 7.1 ±0.9d 8.6 ±3.0d ND 0.96 ±0.02b 0.32 ±0.01d
T4-6 ND 16.3 ±6.1c ND ND ND
T4-7 ND 13.2 ±3.1cd 47.8 ±7.4b 0.75 ±0.01c 0.21 ±0.03d
T4-8 ND 8.4 ±2.1d 19.6 ±4.1e ND ND
T4-9 11 ±1.1c 3.8 ±0.7f 12.9 ±2.3ef ND ND
T4-10 13.9 ±1.3c 5.9 ±1.1e 10.1 ±0.9f ND ND
T4-11 2.6 ±0.5f ND 41.3 ±6.1bc 0.71 ±0.11c 0.54 ±0.15c
T4-12 5.6 ±0.7e ND 24.4 ±7.2d ND ND
T4-13 7.7 ±1.1d 8.9 ±2.3d 25.6 ±1.6cd ND ND
T4-14 26 ±4.3b 23.8 ±5.1ab 26.9 ±2.3c ND ND
T4-15 ND ND 41.4 ±2.5dc ND ND
T4-16 6.7 ±0.9de 7.9 ±0.8de 88.2 ±9.8a 17.61 ±1.31a 8.93 ±1.23a
T4-17 39.3 ±6.8a 29.4 ±7.3a 26.8 ±2.3c 1.64 ±0.79b 0.98 ±0.11b
T4-18 31 ±5.4ab 24.3 ±2.4ab 12.2 ±2.2ef ND ND

Se muestran únicamente las fracciones que presentaron un efecto inhibitorio sobre el crecimiento micelial. Sin efecto= no presentaron inhibición. ND= no determinado. Valores con la misma letra en la misma columna no presentaron diferencia estadísticamente significativa (α= 0.05) según la prueba de Tukey, stadistic versión. Sin embargo, Supradip, reportó resultados similares atribuyendo una sinergia de otros compuestos de tipo terpenos que favorecieron la actividad fúngica, donde se considera que actúa sobre la composición química de la pared del hongo, al estimular enzimas degradadoras. La fracción 7 (T4-7) presentó solo efecto fungistático (47.8 ±7.4%) y un contenido de fenoles de 0.75 ±0.01 mg GAE g-1 DW y flavonoides de 0.21 ±0.03 mg QE g-1 DW. El bajo contenido de fenoles y flavonoides es debido a que los extractos hexánicos no favorecen la obtención de compuestos de está polaridad.

En el Cuadro 4 se muestra el efecto de las fracciones obtenidas de los extractos metanólico de hoja (T5), se obtuvieron 18 fracciones del extracto. La fracción 1 (T5-1) presentó efecto fungistático sobre P. crysosporum con 45.7 ±4.8, R. solani 36.9 ±7.5 y S. cepivorum 65.1 ±4.3, el contenido de fenoles totales fue de 8.91 ±0.94 mg GAE g-1 DW y flavonoides totales de 5.75 ±1.21 mg QEg-1 DW.

Cuadro 4 Efecto inhibitorio sobre el crecimiento micelial en P crysosporum, R. solani y S. cepivorum de las fracciones obtenidas del extracto metanólico de hoja (T5) y el contenido de fenoles totales y flavonoides. 

Tratamiento Inhibición del crecimiento micelial (%) Determinación de compuestos aromáticos
P. crysosporum R. solani S. cepivorum Fenoles totales (mg GAE g-1 DW) Flavonoides (mg QEg-1 DW)
T5-1 45.7 ±4.8a 36.9 ±7.5a 65.1 ±4.3b 8.91 ±0.94a 5.75 ±1.21b
T5-2 Sin efecto Sin efecto 14.5 ±2.1e ND ND
T5-3 Sin efecto Sin efecto 6.5 ±0.8f ND ND
T5-4 24.7 ±3.9bc 13.9 ±2.1c Sin efecto ND ND
T5-5 9.1 ±0.7d Sin efecto Sin efecto ND ND
T5-6 5.6 ±1.2e Sin efecto Sin efecto ND ND
T5-8 4.5 ±0.5e 13.9 ±6.1bc 46 ±9.3c 0.86 ±0.05b 0.59 ±0.03c
T5-12 28.4 ±1.9b Sin efecto 22.7 ±2.9d ND ND
T5-17 21.2 ±1.3c 19.7 ±2.1b 85.4 ±9.6a 9.78 ±1.23a 7.29 ±1.12a

Se muestran únicamente las fracciones que presentaron un efecto inhibitorio sobre el crecimiento micelial. Sin efecto= no presentaron inhibición; ND= no determinado. Los datos presentados en el cuadro representan las medias ± desviación estándar de tres replicas. Valores con la misma letra en la misma columna no presentaron diferencia significativa estadísticamente (α= 0.05) de acuerdo con la prueba de Tukey.

La eficacia y selectividad de las moléculas presentes a nivel extracto y nivel fracción demuestran una vez más su efecto fungicida y fungistático característico para cada tipo de fitopatógeno, por lo que se considera de gran interés ante la aplicación de fungicidas de uso comercial y botánico, así como la importancia en su relación estructura química y actividad.

El contenido de compuestos fenólicos totales y flavonoides encontrados en las fracciones con efecto inhibitorio sobre el crecimiento micelial de los tres hongos evaluados fue comparado con los reportados en hoja y cultivo celular de E. polystachya al igual que los valores obtenidos con otras especies de la familia Fabaceae (Bernabé-Antonio et al., 2017).

En otras familias de especies vegetales se ha reportado el contenido de fenoles y flavonoides totales menor que los presentados en E. polystachya, al igual que en las fracciones; por ejemplo, en especies como Artemisia absinthium L., el contenido de fenoles fue de 3.57 mg GAE g-1 DW, menor que E. polystachya (Cuadro 4) y flavonoides de 1.89 mg QE g-1 DW menor que los tratamientos presentes en el Cuadro 3 y 4, E. polystachya es enriquecida por compuestos de tipo flavonoides y chalconas en hoja y tallo (Toroglu, 2007).

Los tratamientos T5-1 y T5-17 fueron los únicos con efecto fungicida en S. cepivorum como se muestra el Cuadro 3 y 4. Sin embargo, el tratamiento T5-1 demostró un efecto fungistático contra S. cepivorum, por lo que se seleccionaron estos tres tratamientos para determinar su concentración efectiva 50 (CE50) en S. cepivorum. Para determinar la concentración efectiva 50 se realizaron diluciones 1:10 en un intervalo de 0.1 a 0.01 mg ml-1, en el que se encontró que a la concentración de 12.1 y 14.5 µg ml-1 presentaron una CE50 sobre el crecimiento micelial los tratamientos T5-1 y T5-17 respectivamente.

El tratamiento T5-1 presentó una CE50 de 8.7 µg ml-1. Con estos datos se demuestra la eficacia de las fracciones en cuanto a su CE50, con un efecto favorable que el reportado por Marel-Abdelgaleil et al. (2018), en que se determinó una CE50 de 9.31 mg L-1 en Alternaria Solani y 24.69 mg L-1 en Rhizoctonia solani en extractos o fracciones compuestas por monoterpenos.

En la Figura 2 se muestran las imágenes del efecto considerado de las fracciones obtenidas de los extractos seleccionados en R. solani, S. cepivorum (Bernabé-Antonio et al., 2017) y P. crysosporum, G. lucidium no presentó inhibición del crecimiento con las fracciones evaluadas. Sin embargo, la selectividad y eficiencia de los extractos y las fracciones obtenidas de la misma especie vegetal es de interés para la inhibición de algunos hongos fitopátogenos, G. lucidium es considerado como un hongo medicinal, R. solani y S. cepivorum ocasionan daño a productos de importancia agrícola, siendo los de mayor impacto las especies del género Sclerotio (Morales-Palacios, 2016).

Figura 2 Efectos de las fracciones obtenidas de los extractos seleccionados con actividad antifúngica en R. solani. Fracciones de la 1 a la 4 del extracto hexánico/diclolometano de hoja (a). Fracción del 1 al 4 del extracto metanólico de hoja (b). Efecto de la fracción 7 obtenida del extracto diclorometano-hexano hoja (disco 3) (c). 

Algunos reportes consideran que E. polystachya contiene compuestos de tipo terpenos, la mayoría de ellos detectables en extractos no polares como hexano y éter de petróleo, ya que tienen como precursores compuestos de ácidos grasos, así como compuestos fenólicos desde estructuras simples; muchas de ellas dando origen a chalconas y flavonoides (Rivas-Morales et al., 2009; García-Hernández et al., 2016).

Muchos de estos compuestos son considerados metabolitos secundarios presentes en diversos órganos de la planta y que han demostrado tener actividad biológica contra hongos fitopatógenos. Por lo que fue importante determinar el contenido de fenoles y flavonoides totales en las fracciones seleccionadas, ya que en la hoja se encontró una cantidad considerable de fenoles totales de 155.17 mg GAE g-1 DW contra la mitad de contenido reportado en cultivo celular con 73.98 mg GAE g-1 DW (Bernabé-Antonio et al., 2017).

Con este hallazgo se demostró de nuevos biofungicidas específicos para cada hongo, se puede considerar a E. polystachya como una fuente inexplorada de compuestos bioactivos contra fitopatógenos. Tales efectos pueden estar relacionados con moléculas químicas presentes en esta especie vegetal y de la cual existen escasos estudios sobre los posibles metabolitos secundarios responsables de su actividad.

Conclusiones

Los extractos obtenidos de E. polystachya (Palo dulce) presentaron efecto antifúngico sobre hongos xilófagos, posiblemente por la presencia de flavonoides y algunos compuestos de tipo terpénicos que se ha reportado su presencia en la especie. Por lo que E. polystachya puede considerarse una biofuente de metabolitos secundarios como fungicida vegetal de interés en el área agronómica y forestal.

Bibliografía

Alonso-Castro, A. J.; Zapata-Morales, J. R.; Arana-Argáez, V.; Torres-Romero, J.C.; Ramírez-Villanueva, E.; Pérez-Medina, S. E.; Ramírez-Morales, M. A.; Juárez-Méndez, M. A.; Infante-Barrios, Y. P.; Martínez-Gutiérrez F.; Carranza-Álvarez, C.; Isiordia-Espinoza, M. A. and Flores-Santos, A. 2018. Pharmacological and toxicological study of a chemical -standardized ethanol extract of the branches and leaves from Eysenhardtia polystachya (Ortega) Sarg. (Fabaceae). Journal of Ethnopharmacology. 5(224):314-322. Doi: 10.1016/j.jep.2018.06.016.PMID 29913299. [ Links ]

Bahraminejad, S. N.; Amiri R. M., y Abbasi S. R. 2015. Propiedades antifúngicas de 43 especies vegetales frente a Alternaria solani y Botrytis cinerea. Archivos de Fitopatología y Protección Fitosanitaria. 48(4):336-344. [ Links ]

Bernabé-Antonio, A.; Maldonado-Magaña, A.; Ramírez-López, C. B.; Salcedo-Pérez, E.; Meza-Contreras, J. C.; González-García, Y. and Cruz-Sosa, F. 2017. Establishment of callus and cell suspension cultures of Eysenhardtia polystachya (Ortega) and fungistatic activity of their extracts. South African Journal of Botany. 112(4):40-47. Doi: 10.1016/j.sajb.2017.05.023. [ Links ]

Brocco, V. F.; Paes, J. B.; da Costa, L. G.; Brazolin, S. y Arantes, M. D. C. 2017. Potential of teak heartwood extracts as a natural wood preservative. Journal of Cleaner Production. 142(4):2093-2099. Doi: https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2016.11.074. [ Links ]

García-Hernández, D. G.; Rivas-Morales, C. y Leos-Rivas, C. 2016. Actividad antifúngica. In: Rivas-Morales, C.; Oranday-Cárdenas, M. A. y Ver-de-Star, M. J. Ed. Investigación en plantas de importancia médica. Barcelona, España. OmniaScience. 101-128 pp. [ Links ]

Goktas, O.; Mammadov, R. A.; Duru, M. E.; Ozen, E. and Colak, A. M. 2007. Application of extracts from the poisonous plant, Nerium Oleander L., as a wood preservative. African Journal of Biotechnology. 6(17):2000-2003. https://www.researchgate.net/publication/27797907. [ Links ]

González-Laredo, R. F.; Rosales-Castro, M.; Rocha-Guzmán, N. E.; Gallegos-Infante, J. A.; Moreno-Jiménez, M. R. y Karchesy, J. J. 2015. Conservación de la madera con productos naturales. Madera y Bosques. 21(SPE):63-76. Doi: https://doi.org/10.21829/myb.2015.210427. [ Links ]

Lajnef, L.; Caceres, I.; Trinsoutrot, P.; Carrier-El Bouhtoury, F.; Ayed, N.; Charrier, B. 2018. Effect of Punica granatum peel and Melia azedarach bark extracts on durability of European beech and maritime pine. Eur. J. Wood Products. 76:1725-1735. Doi: https://doi.org/10.1007/s00107-018-1340-x. [ Links ]

Liu, C. Z. and Saxena, P. K. 2009. Saussurea medusa cell suspension cultures for flavonoid production. In: Mohan, J. S. and Saxena, P. Ed. Protocols for in vitro cultures and secondary metabolite analysis of aromatic and medicinal plants. methods in molecular Biology. 547(4):53-59. Doi:10.1007/978-1-60327-287-24. [ Links ]

Marel, G. I. and Abdelgaleil, S. 2018. Antifungal potential and biochemical effects of monoterpenes and Phenylpropenes on plant pathogenic Fungi. Plant Protection Science. 54(1):9-16. [ Links ]

Morales-Palacios, F. G. 2016. Análisis espectroscópico de compuestos del duramen de maderas durables que inhiben el crecimiento de Trametes versicolor. Tesis de Maestría. Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo.17-22 pp. [ Links ]

Pablo-Pérez, S. S.; Estévez-Carmona, M. M.; Meléndez-Camargo, M. E. 2016. Diuretic activity of the bark of Eysenhardtia polystachya. Bangladesh Journal Pharmacol. 11(1):212-17. [ Links ]

Pablo-Pérez, S. S.; Parada-Cruz, B.; Barbier, O. C. and Meléndez-Camargo, M. E. 2018. The ethanolic extract of Eysenhardtia polystachya (Ort.) Sarg. Bark and Its fractions delay the progression of rheumatoid arthritis and show antinociceptive activity in murine models. Iran Jornal of Pharmaceutical Research. 17(1):236-248. [ Links ]

Ramírez-López, C. B.; García-Sánchez, E.; Martínez-Muñoz, R. E.; Del Río, R. E. and Martínez-Pacheco, M. M. 2016. Chemical composition of the essential oil from Ageratina jocotepecana and its repellent effect on Drywood termite Incisitermes marginipennis. Boletin Latinoamericano y del Caribe de plantas medicinales y aromáticas. 15(1):53-60. [ Links ]

Rivas-Morales, C.; Oranday-Cárdenas, M. A.; Verde-Star, M. J.; Morales-Rubio, M. E.; Ortiz-Mier, E. J. y Garza-González, E. 2009. Activity of extracts from two Eysenhardtia species against microorganisms related to urinary tract infections British Journal of Biomedical Science. 66(2):102-106. [ Links ]

Shakya, P. S.; Marslin, G. F.; Siram, K. A.; Beerhues, L. C. y Frankin, G. 2019. Elicitation as a tool to improve the profiles of high‐value secondary metabolites and pharmacological properties of Hypericum perforatum. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 71(1):70-82. Doi: https://doi.org/10.1111/jphp.12743. [ Links ]

Stevenson, P. C.; Nicolson, W. C. and Geraldine, A. W. 2017. Plant-Pollinator interactions from flower to landscape. Plant secondary metabolites in nectar: impacts on pollinators and ecological functions. Functional Ecology. 31(1):65-75. Doi: https://doi.org/10.1111/1365-2435.12761. [ Links ]

Tascioglu, C.; Yalcin, M. M.; Sen, S. and Akcay, C. 2013. Antifungal properties of some plant extracts used as wood preservatives. International Biodeterioration & Biodegradation. 85(0):23-28. Doi: https://doi.org/10.1016/j.ibiod.2013.06.004. [ Links ]

Toroglu, S. 2007. In vitro antimicrobial activity and antagonistic effect of essential oils from plant species. Journal of Environmental Biology. 28(3):551-559. [ Links ]

Yim, H. S.; Chye, F. Y.; Koo, S. M.; Matanjun, P. C.; How, S. E. and Ho, C. W. 2012. Optimization of extraction time and temperature for antioxidant activity of edible wild mushroom, Pleurotus porrigens. Food and Bioproducts Processing. 90(2):235-242. Doi: 10.1016/j.fbp.2011.04.00 [ Links ]

Recibido: 01 de Septiembre de 2023; Aprobado: 01 de Noviembre de 2023

§Autor para correspondencia: eduardo.salcedo@academicos.udg.mx.

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